超高效液相色谱三重四极杆质谱联用法快速检测尿液和血浆中鹅膏毒肽和鬼笔毒肽

超高效液相色谱三重四极杆质谱联用法快速检测

尿液和血浆中鹅膏毒肽和鬼笔毒肽

张秀尧

*

蔡欣欣

（温州市疾病预防控制中心，温州325001）

摘

要

建立了同时快速检测尿液和血浆中3种鹅膏毒肽和2种鬼笔毒肽的超高效液相色谱三重四极杆质

谱联用分析方法。尿液样品直接进样，血浆样品经乙腈沉淀除蛋白后，在UPLC HSS T3色谱柱上分离，正离子电喷雾多反应监测（MRM ）模式检测，

基体匹配标准外标法定量。尿液和血浆样品的线性范围分别为2 100和1 100μg /L ；加标回收率分别在92.0% 108.0%和85.0% 100.0%的范围内；相对标准偏差为1.0% 22.0%和2.0% 22.0%（n =6）；样品的检出限为0.2 1.0μg /L 和0.1 0.5μg /L （S /N =3）。本方法灵敏，简单，快速，特异性强。关键词

超高效液相色谱三重四极杆质谱法；鹅膏毒肽；鬼笔毒肽；尿液；血浆

2009-04-30收稿；2009-08-20接受

本文系温州市医学重点学科、

温州市第三轮“311”工程建设项目基金（No.2008012）资助*E-mail ：xyzwz123@

1引言

毒蘑菇又称毒蕈，我国约有100种，有10多种可引起人类严重中毒。引起中毒的毒蘑菇毒素类型较多，

主要有鹅膏毒肽类（Amatoxins ）和鬼笔毒肽类（Phallotoxins ），它们分别属于双环八肽和双环七肽。目前，己经分离出9种鹅膏毒肽，其中α-鹅膏毒肽、β-鹅膏毒肽和γ-鹅膏毒肽毒性大，在毒蘑菇中含量高，为引起中毒的主要毒素。鹅膏毒肽属慢性毒素，对人的致死量大约为0.1mg /kg 体重，食用后至少15h 后才出现中毒症状，其毒性比鬼笔毒肽强20倍。它们能强烈抑制细胞RNA 聚合酶的活性，从而阻

碍了蛋白质的合成，引起多种脏器细胞特别是肝、肾细胞的坏死，9 12d 内死亡，死亡率高达90%。鬼笔毒肽共有7种，其中羧基二羟鬼笔毒肽和二羟鬼笔毒肽为主要毒性成分。鬼笔毒肽属速效毒素，动物静

脉或腹腔注射实验，2 5h 内死亡。该毒素能专一性地与细胞中肌丝蛋白（F-actin ）结合，从而打破肌丝蛋白与肌球蛋白（G-actin ）之间聚合和解聚的动态平衡，形成大量F-actin 毒肽复合体［1 3］。蘑菇中毒，特别是鹅膏毒肽引起的中毒，中毒症状在大量细胞被损坏后才出现，因此病死率高。建立快速、准确检测尿液和血液中毒蘑菇毒素的确证检测方法，对于疑似中毒病人的尽早诊断，降低死亡率具有重要意义。

目前，毒蘑菇毒素的检测多集中于鹅膏毒肽类的检测，检测方法主要有放射性免疫测定法［4］

、毛细

管区带电泳法

［5］

、反相液相色谱法［6 8］和液相色谱质谱联用法［9 11］

等，这些方法多针对毒蘑菇中鹅膏

毒肽的含量测定。由于鹅膏毒肽的毒性较大，

特别当中毒症状出现时大部分的毒素都己进入靶器官，尿液和血浆中浓度较低，常规的检测方法无法检出。Maurer 等［12］

采用免疫亲和柱净化液相色谱质谱联用

法测定尿液和血浆中α-鹅膏毒肽和β-鹅膏毒肽，检出限为2.5μg /L 。Filigenzi 等［13］

采用液相色谱-线性离子阱质谱联用法，以MS /MS /MS 模式测定中毒病人血清和肝脏中α-鹅膏毒肽，采用固相萃取法将

样品富集4倍，α-鹅膏毒肽的检出限分别为0.25ng /g 和0.5ng /g 。本研究采用超高效液相色谱三重四极杆质谱法同时测定了尿液和血浆中的α-鹅膏毒肽、β-鹅膏毒

肽、

γ-鹅膏毒肽、二羟鬼笔毒肽和羧基二羟鬼笔毒肽，特别适合于毒蘑菇中毒的确证分析。一次进样分析仅需9min 。本方法灵敏，快速，简便，选择性好。

2

实验部分

2.1

仪器与试剂Aquity UPLC-Quattro Premier XE 超高效液相色谱-串联质谱仪配有电喷雾源（美国Waters 公司），

第38卷2010年1月

分析化学（FENXI HUAXUE ）研究报告Chinese Journal of Analytical Chemistry

第1期39 44

Masslynx 4.1工作站；MS2旋涡混旋器（德国IKA 公司）；HUP-100手持式超声波细胞破碎仪（天津恒奥

科技发展有限公司）；TDZ5-WS 台式离心机（湘仪离心机仪器有限公司）；N-EVAP 氮吹仪（12孔，美国Organomation 公司）；2510超声波清洗机（美国Branson 公司）；Gradient A10Mill-Q 超纯水器（法国Milli-pore 公司）；针头过滤器（13mm GHP 0.2μm ，美国Pall 公司）。

乙腈和甲醇（HPLC 级，德国Merck 公司）；乙酸铵（HPLC 级，Fluka 公司）；α-鹅膏毒肽（≥90%）、

β-鹅膏毒肽（≥90%）、γ-鹅膏毒肽（≥90%）、二羟鬼笔毒肽（≥95%）和羧基二羟鬼笔毒肽（≥90%）均购自Alexis Biochemicals 公司，用甲醇配制成100mg /L 标准贮备溶液，保存于－35ħ冰箱中。表1梯度洗脱程序Table 1Ultra performance liquid chromatographic （UPLC ）gradient program

时间Time （min ）流速Flow rate （mL /min ）流动相A Mobile phase A φA （%）流动相B Mobile phase B φB （%）梯度曲线Gradient curve

00.2570303.500.25703065.000.25307067.000.25109019.00

0.25

70

30

1

2.2液相色谱条件ACQUITY UPLC HSS T3色谱柱（100mm ˑ

2.1mm ，

1.8μm ，Waters 公司）；VanGuard BEH C 18保护柱（5mm ˑ

2.1mm ，1.7μm ，Waters 公

司）；流动相A 为2mmol /L 乙酸铵水液，流动相B 为2mmol /L 乙酸铵甲醇液，采用梯度洗脱，梯度洗脱程序见表1；柱温：40ħ；进样10μL 。2.3

质谱条件

电喷雾离子源正离子多反应监测（MRM ）

模式。ESI +毛细管电压：3.5kV ；离子源温度：120ħ；锥孔反吹气流量：50L /h ，脱溶剂温度：350ħ，

脱溶剂气流量：600L /h ，碰撞室氩气压力：0.346Pa 。其它质谱参数见表2。

运行开始时，色谱柱流出液经六通切换阀切换至废液中，直到1.80min 。质谱从1.80min 开始采集数据直到4.70min 结束，同时六通切换阀又将柱流出液切换至废液中。

表2质谱的MRM 参数

Table 2MS parameters for multiple reaction monitoring

化合物Compounds 保留时间Retention time

（min ）

监测离子对Mass transitions

（m /z ）锥孔电压Cone voltage

（V ）

碰撞能Collision energy

（eV ）

β-鹅膏毒肽β-Amanitin 1.98920.7/86.1*920.7/259.1507045α-鹅膏毒肽α-Amanitin 2.60919.8/86.1*919.8/259.1507045γ-鹅膏毒肽γ-Amanitin 3.66903.7/86.1*903.7/259.1455045羧基二羟鬼笔毒肽

Phallacidin 4.15847.7/157.0*847.7/86.1356575二羟鬼笔毒肽Phalloidin

4.49

789.6/157.0789.6/86.1*

30

6575

*定量离子对（Quantificational ion pair ）。

2.4样品的前处理方法

2.4.1尿液取适量尿液过0.2μm 滤膜，待测。同时在6支试管中分别按标准曲线的浓度加入适量标准溶液，

加入空白尿液至1000μL ，混匀，过0.2μm 滤膜，制作工作曲线系列。2.4.2

血浆吸取1000μL 血浆于10mL 试管中，加入3.0mL 1%醋酸-乙腈，用手持式超声波细胞破

碎器均质2min ，以4000r /min 离心4min ，吸取2.0mL 上清液于10mL 试管中，

55ħ水浴氮气吹干，加入250μL 流动相，超声1min ，旋涡30s ，过0.2μm 滤膜，待测。

同时在6支试管中分别按标准曲线的浓度加入适量标准溶液，加入空白血浆至1000μL ，混匀，放置30min 后，加入3.0mL 1%醋酸-乙腈，与样品一起处理，制作工作曲线系列。

3

结果与讨论

3.1

质谱条件的优化

在电喷雾正离子MRM 检测方式下对质谱测定条件进行优化，使目标化合物的分子离子对信号达

4分析化学第38卷