Miseq标准化操作指南中文翻译版

DNA缓冲液Tagment DNA Buffer (TD)

DNA酶1 Tagment DNA Enzyme (TDE1)

目的DNA转移到冰上。缓冲液颠倒混匀、酶不适合旋涡，易损坏酶片段。 把样本纯化磁珠从2-8度冰箱取出，至温度升到室温。

确保终止连接缓冲液（ST）没有沉淀，如有沉淀要旋涡，直到所有颗粒物悬浮起来。

多试剂处理，使用排枪，分装洗脱缓冲液，目的DNA缓冲液，和DNA酶，分装到八连排管中，保证每个孔的体积一致。把样品纯化磁珠倾倒至多通道反应管中。

将深孔板插入到加热体模块中，预加热垂直混匀仪至58度。

取一个深孔板，用记号笔签字。

操作

确保反应试剂分装时，为了最好的描述试剂盒信息，反应液分装不需要再冰上操作。

1. 按照以下步骤标准化

a)检测目的DNA样本的质量，使用紫外分光光度计或者Qubit，

b)每个样品用10mM的Tris-HCl（pH8.5）稀释到10ng/μL。。

c)再次检测5ng/μL的目的DNA样本质量，使用紫外分光光度计或者Qubit。

d)在此基础上，每个样品用10mM的Tris-HCl（pH8.5）稀释到5ng/μL，取10μL

备用。配置方法：原DNA浓度为18 ng/μL，配置成体积为20 μL，浓度5ng/μL 的DNA，取原液的体积是20*5/18，取Tris-HCl体积为20-（20*5/18）。

2. 取一0.2mL的干净离心管，加入以下成分：

10μL（5ng/μL）gDNA + 25μL Tagment DNA Buffer + 15μL Tagment DNA Enzyme

涡旋振荡混匀，1800转1min，避免有气泡，58℃，10min。

注意：用普通PCR仪，先让机器预热到58℃，再放样品。

大样本可用深孔板操作。在垂直混匀仪上操作。

3. 结束后，向管中加15μL Stop Tagment Buffer，涡旋振荡，短暂离心。室温放

置反应4min。【此时体系共65μL】

（三）纯化：因为转座酶与DNA末端紧密结合，会干扰下游反应过程

准备

样品重悬洗脱液RSB，样品纯化磁珠SPB，80%乙醇取出，降温至室温。

1.配制80%的乙醇，（8mL无水乙醇+2mL纯水）共10mL，备用。

2.纯化试剂提前取出，室温平衡放30min，充分混匀（平时4℃保存）。

3.取一0.5mL的干净离心管，分装SPB磁珠（红色盖子，棕色液体），每管65μL。

把上述体系每管样品(65μL)转移到分装好的磁珠液（65μL）中，充分振荡混匀，1800转离心1分钟，室温放置反应8min。【此时体系共130μL】

4.把样品管放到磁力架上2min，直到液体澄清。

5.把管中的上清液吸弃（使用200微升的枪和排枪），尽量不要避开磁珠，不

要吸走磁珠。[再把上清打回管中，把磁珠冲洗一次——此步骤可选做]。目的是让磁珠充分结合buffer，和双链DNA结合。

6.沿管壁缓慢加入200μL新鲜配制的80%乙醇，尽量不要碰到磁珠，要让乙醇

完全浸没磁珠，反应30s。

7.30s后吸弃上清，注意不要吸走磁珠（去乙醇）。

8.重复上述两步骤，二次清洗，操作同上，短暂离心，把残留乙醇离到管底，

使用20μL吸弃底部乙醇。

注意：离心时把有磁珠的一面朝外，不要把磁珠离下来。

9.把管放回磁力架上，室温晾3-5分钟。

10.向管中沿壁加22.5μL的Resuspension Buffer（重悬缓冲液）（紫色盖子50mL

管），涡旋振荡充分混匀，室温反应2min。

11.短暂离心，把离心管放到磁力架上2min，直到液体变澄清。

12.取一0.2mL的干净离心管，转移上清20μL，尽量避免碰到磁珠。【此时每管

体系20μL】

13.用Agilent2100生物分析仪，检测管中剩余2.5μL样品，分析纯化产物的质

量——此步骤可选做。

（四）加样/加标签

准备：

Mix反应液从-15 to-25℃转移到冰上。

2+20μL Mix酶）

（提前预热仪器）

设置程序：72℃3min

98℃30s

10℃∞

5.把磁力架上管中剩余2.5μL液体，用ddH2O稀释至1ng/μL，用Agilent2100

生物分析仪检测片段质量。

（五）第一次洗脱，洗脱非特异性结合产物

准备：

Resuspension Buffer (RSB) 重悬洗脱液

Sample Purification Beads (SPB) 样品纯化磁珠

Freshly prepared 80% ethanol(EtOH) 新鲜的80%乙醇

确保以上三个试剂都降到室温。

多样本操作，准备排枪，把上述三个试剂都分装到储液器中，利于排枪操作。 标记一个新的96孔板

标记一个新的96孔硬座板

操作：

1.取12个干净的1.5mL离心管，管中分别加90μL磁珠（Sample Purification

Beads）。

2.取出PCR仪上的离心管，短暂离心，把每个管中的液体全部加到90μL磁珠

中，振荡混匀，室温静置反应10min。【此时体系共有140μL】

3.把离心管放到磁力架上，静置2min，直到液体澄清。

4.吸弃管中上清，避免吸到磁珠。

5.每管加190μL新鲜配制的80%乙醇，静置30s，吸弃上清（第一遍）。

6.步骤同上（第二遍）。

7.用小量程的移液枪把管底的乙醇吸净弃去。（注：此时管还在磁力架上）

8.把管从磁力架上取下，向其中加入27μL的Resuspension Buffer。充分振荡混

匀，室温放置反应2min，期间可用手指弹开磁珠，短暂离心。

9.把管放到磁力架上，静置2min，直到液体澄清。

10.取12个1.5mL的干净离心管，转移25μL上述液体到其中，充分振荡混匀，

短暂离心。

11.取Qubit专用Ep管，每管加190μL染液+1μL上述样品，充分振荡混匀，放

置反应2min。注意：避光。

12.用Qubit2.0检测每管浓度，按照40μL样品中500ng的标准稀释，即12.5ng/μL

（纯化后浓度按要求稀释，500ng是指样品和探针结合的饱和度）。

13.已测此时浓度A`，B`，C`………

250

= a`，b`，c`……(500/2=250,)

A`，B`，C`…

a`+b`+c`=X` 220- X`=Y`

14.取一1.5mL的干净离心管，把上述X`的体积全部转移到其中，加RSB（洗

脱液）Y`到上述体系中——DNA Library Sample。

15.提前取出Streptavidin Mggnetic 磁珠（室温平衡30min），捕获探针oligos

（CSO），杂交Buffer（EHB），轻柔振荡，短暂离心。