大花蕙兰组织培养和快速繁殖方法
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大花蕙兰组织培养和快速繁殖方法
大花蕙兰采用传统的分株繁殖,繁殖速度慢、周期长,尤其对国外新引进的优良品种,难以迅速占领市场、满足需求。大花蕙兰类组培快繁国内公开报道的仅限于虎头兰和‘水晶多芭’等个别品种,因其各种、品种间培养有很大差异,对于新品种‘西维亚’、‘玛利莲梦露’、‘蒙米拉丝’、‘女皇’的培养国内尚无报道,对大花蕙兰的系统研究也远远跟不上市场的发展速度,我们于1998年以新引进的优良大花蕙兰品种为材料,利用组织培养和快速繁殖技术,开展了大规模工厂化育苗的系统研究,提高了诱导成苗率和繁殖速度,大大降低了成本,使本项技术在市场中更具竞争能力和推广价值,并繁育出大量种苗,批量供应市场,为大花蕙兰工厂化育苗提供了科学依据与参考。
把母株放在温室内盆栽培养,于2月底~4月初陆续从母株上取8cm左右的新芽,从基部切离,用自来水冲洗,再用洗洁净溶液浸泡5min,自来水冲洗10min,剥去最外几层叶片,并剪去芽的上半段。然后在超净工作台上采用3步灭菌处理法处理:先在70%的酒精中处理6s,立即投入10%次氯酸钠溶液中10min,稍加摇动,取出后用无菌水冲洗,剥去外层2~3片叶;再放入5%的次氯酸钠溶液5min,取出后无菌水冲洗,剥至最后一枚叶片;再放入1%的次氯酸钠溶液1min,取出后无菌水冲洗数次。以上次氯酸钠溶液中均加入Tween-60以利杀菌剂更有效地发挥作用。在无菌条件下剥出约5mm长的茎尖,以生长点为中心,用解剖刀把茎尖切成4个小方块,分别接入已准备好的培养基上。pH 5.2~5.6,蔗糖2%,琼脂条0.6%~0.85%,温度22~25℃,光照强度2000Lx,每日光照12h。
外植体接在附加一定激素配比的培养基上,20d左右外植体周围出现许多白色颗粒状愈伤组织,继续培养逐渐转为绿色,25d可形成大量原球茎,以后每隔20d进行一次继代培养,若继代不及时易形成不定芽,需在继代时切去,影响原球茎增殖,造成浪费。继代前观察统计试验结果。大花蕙兰对KT的敏感程度高于对6 BA的敏感程度,相同浓度的NAA下,KT用量稍微增减即会产生明显差异,低浓度的KT对原球茎增殖有明显促进作用,高于0.1mgL则会抑制其生长。最佳激素配比为KT0.05mg/L,NAA0.5mg/ L。
随机分切法虽操作快捷,但有大量切割过于碎小的培养块死亡;纵切法操作需细致、费时,但原球茎增殖数多,大小一致;碾压和井字型切割(底部不分开)原球茎增殖时间可缩短、可加快继代,但单个继代原球茎增殖倍数减少。
通过前期初步筛选后,选择以附加KT0.05mgL,NAA0.5mgL的最佳激素配比,把原球茎切块分别接种MS,1 2MS,VW,KC为基本培养基的培养基上,测试不同培养基种类对原球茎增殖的影响。结果表明:MS,1/ 2MS,VW,KC均可应用于原球茎增殖,但以KC效果最佳。MS,1 /2MS,VW也能分化和增殖原球茎,但增殖缓慢、色淡。附加香蕉泥对原球茎增殖有明显促进作用,使增殖倍数提高到4.22,且生长健壮,色泽深绿。
用固体培养基培养最差,增殖速度慢,且易导致原球茎块死亡,继代不及时易分化出芽,但适合芽和根的分化培养;液体培养增殖较快,但生长不够健壮,色黄绿,质地较疏松;半固体培养基(减少琼脂用量)最佳,原球茎增殖量大,
色深绿,健壮。每隔4~5d对半固体培养基的培养瓶震荡,摇动一次,生长增殖效果更好。
生长健壮的原球茎不切割接种在固体分化培养基上,10~15d可诱导出丛生芽,继续培养30d左右可发育成小苗,当培养瓶内丛生芽长出5cm左右时,将苗与新增殖的原球茎分开,原球茎继续增殖培养,苗转入生根壮苗培养基中,每瓶8~10个小苗,当苗长出5~6片叶,根长到3cm左右时,即可开盖于温室内炼苗。通过添加不同水平的NAA比较,以NAA0.2mg/L为最佳。
炼苗2d后即可将苗取出,用清水洗净根部的琼脂,植于温室苗床内,栽培基质为松针+苔藓+粗砂,苗床底部垫以碎石、碎砖块,用稀薄的营养液喷雾,每隔1周喷1次800倍的多菌灵溶液,温度保持在10~25℃,在大棚里亦可生长良好,1个月后统计移栽成活率可达98%以上。1年后上盆,栽培基质用泥炭土+蕨根+树皮,每周浇1次液肥。
分析讨论
(1)大花蕙兰属热带气生兰,靠根系附着在林中树木及岩石上生长,多数种类有内生菌共生。因此,外植体灭菌采用3步处理。据笔者经验,大花蕙兰外植体灭菌比其它植物有一定难度。我们曾采用抗生素处理,效果不佳。对于供试品种是否由于存在内生菌而引起外植体灭菌处理困难,以及内生菌在植物体内的分布传播情况有待进一步研究。(2)培养基添加香蕉泥对大花蕙兰增殖和分化有明显的促进作用,这与香蕉泥中的有机质和天然激素有关,同时能使培养物在适宜的酸性条件下生长。
(3)培养过程中,不同品种增殖、成苗及幼苗分生情况有一定差异。其中‘梦露’明显比其它品种增殖快且易分生子苗,‘索菲亚’增殖最慢,很少分生子苗,这可能与品种固有特性有关。(4)原球茎切块细小、稀疏的培养瓶内,群体生长较慢,而切块较大且密集的瓶内,生长十分健壮,表现类似于群体生长效应。因此切割时不可过细,直径要在2mm以上,每瓶可接种30多个培养块,可使瓶内营养得以充分利用。(5)接种时,采用大罐头瓶把培养块1次夹入或铲入,稍加晃动半固体培养基即可使培养块分散开来,既节约时间、成本,又降低了污染率。(6)用改良KC(无机盐减半)培养大花蕙兰,无机盐用量比其它报道用MS 培养基大大减少,增殖分化效果均佳。采用降低琼脂用量制成半固体培养基可简化接种步骤,而且培养块浸在培养基内,降低了培养块黄枯和切口褐化的机会。定期摇动培养瓶,能使培养瓶内营养得以充分利用。无机盐和琼脂在培养成本中占有很高的比例,采用以上技术可大大节约成本,利于大规模生产应用。(7)生产过程中,我们用自来水代替蒸馏水,用绵白糖代替蔗糖,用廉价的琼脂条代替琼脂粉,降低了成本,效果没有丝毫降低。由于大花蕙兰原球茎增殖不必用小容器和相对较高的罐头瓶,可用透光性好的大容器代替。(8)采用1次定植,不经移栽,可以减少对幼苗根系的损伤和节约人力。只要保证温室内相对湿度,对成活率无显著影响,但组培苗前期生长缓慢。根据赵杨景对3种内生菌与大花蕙兰共生对矿质营养吸收影响的研究,内生菌对吸收矿质营养、促进幼苗生长有明显的作用。我们拟对大花蕙兰内生菌的分离与再接种,以及如何缩短幼苗期、提早开花等进行进一步研究。