组织病理技术(完整版)

切取组织时，应用锋利的刀、剪，刀刃 宜薄，足够长。一般标本切取的组织块 厚以0.2~0.3cm为宜，对于冰冻切片，取 材组织块略厚度可达0.3~0.4cm，也可根 据情况略作调整。若过厚则固定不好， 组织结构不佳，过薄则切片张数有限， 有漏掉病变部位的可能性。一般来讲， 常规组织病理染色，组织块大小以 1.5cm×1.5cm×0.2～0.3cm为宜
第二节、染色程序与方法


常规石蜡切片HE染色大体分三个步骤： 一、染色前切片脱蜡水洗 1.梯度二甲苯脱蜡； 2.梯度酒精脱二甲苯； 3.自来水洗 4.蒸馏水洗 二、染色




1.苏木精染5-15min 2.自来水洗3-5min 3.1%盐酸酒精1-5秒 4.自来水洗1-5min 5.弱碱性溶液30-60秒 6.自来水洗5-10min 7.蒸馏水洗1-2次 8.伊红溶液染5-10min 9.蒸馏水洗1-2次

用于免疫组织化学染色的组织块，以 1cm×1cm×0.2cm为好；用于电镜观察 的组织块要小，以1mm×1mm×1mm为 宜。 动物标本在取材前要尽量避免动物过度 疲劳，迅速将动物杀死。实验室中多采 用麻醉法，动物麻醉后即可根据实验的 目的要求进行取材。



四、脱水、透明、浸蜡、包埋 固定好的标本需流水冲洗12-24h。 1.脱水：组织固定好后，在透明、浸蜡 前应先将组织中的固定剂以流水冲洗数 小时，由于水不能与二甲苯及石蜡相结 合，所以需先脱去组织中的水分。 常用脱水剂：酒精、丙酮、正丁醇等， 但酒精既能脱水又可与透明剂二甲苯互 溶，使组织硬化。故常用酒精。
一.标本的采集和处理 在组织病理学研究中，制做高质量的组 织切片是关键性的一步，切片质量的好 坏直接影响着病理诊断结果的准确性和 可靠性，而一张好的切片与标本的采集 和处理过程有着密切的关系。



二、标本的固定 将组织浸入某些化学试剂中，使组织、细胞尽 量保持其生活状态时的形态结构和位置，称为 固定。 理论上，凡需要进行病理检验的各种组织都应 该进行固定。组织离开机体或机体死亡后，若 不固定，细胞在自身酶的作用下会溶解破坏， 结构消失，无法进行形态学检查。 正确的病理诊断是建立在对病理标本正确的 肉眼形态观察和显微镜形态观察之上的，切片 的质量直接影响形态学观察的准确性，而一张 好的切片与组织的固定和取材质量密切相关。

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.脱水步骤和时间 70% 1-2h 80% 2-4h 90% 2-4h 95% 2-4h 99.9%2-4h 99.9%2-4h 脱水应彻底干净，组织脱水是否彻底， 与酒精浓度，特别是最后两次无水酒精 浓度直接相关。
2、透明 组织经酒精脱水后，还必须经过一个浸 蜡的媒剂透明过程。因为酒精不能溶解 石蜡，所以在浸蜡前需要既能结合酒精 又能与石蜡相溶的媒剂，以便石蜡渗入 到组织中去。 笨和二甲苯都可使组织透明，常用二甲 苯。 透明步骤：低 高梯度透明。



3、浸蜡 经过透明的组织块，进一步移入熔化的 石蜡内浸渍，其目的是以石蜡置换组织 块中的二甲苯，使较软的组织块变成有 一定硬度的组织蜡块，一边切成薄片。 浸蜡步骤： 熔化的软蜡 中等硬度石蜡 熔化的硬蜡。



4、包埋 组织包埋的方法有多种，如石蜡包埋法、火棉 胶包埋法等；常用的为石蜡包埋法。 步骤： 1）.金属包埋框（模具）置入温箱内烘热待用 2）.将石蜡放入恒温烤箱内熔化 3）.取出烘热了的包埋框，迅速将烤箱内的溶 蜡倒入框内，再用加热的镊子取组织块，将其 置入框底，用镊子轻轻压平。


3酒精-乙醇 易被氧化为乙醛、乙酸。用 于固定时以80%-95%的浓度为好。具有 硬化、固定、脱水等作用，渗透力较弱。 70%的酒精可较久保存组织。 注意：50%以上浓度的酒精可溶解脂 肪及类脂质，又能溶解血红蛋白及其他 色素，慎用为好。

三、取材 在具体实验过程中，我们不可能将所有 的病理组织都做成切片进行观察，所以， 为达到正确观察或诊断的目的，必须采 集适量的病例组织，这不仅要求标本材 料要尽可能新鲜，而且要有一定的数量 和质量，根据需要确定取材的部位和块 数。
组织病理技术
组织处理的一般程序 固定脱水浸蜡与包埋 切片与染色 骨和含钙组织脱钙法
第一节 、组织处理的一般程序

迄今为止，在众多医学科学实验技术中， 机体器官、组织或细胞以及亚细胞结构 的形态学变化仍然是最直观和最可靠的 观察指标。也是最基本的医学技术方法。 本章主要介绍组织病理学技术的一般常 识和常用染色方法做简要地介绍。



五、石蜡切片 将包买好的蜡块固定在切片机头上。 切片厚度一般不超过5微米； 将切下的薄片用毛笔和镊子摊于40度左右的热 水容器中，含石蜡的切片即行展开。 用载玻片插入其下，将组织片轻轻捞起，最后 将切片置于60度的温箱烤30-60min，使切片牢 贴与载玻片上，同时将蜡熔化。 为了防止脱片，捞片前可用蛋白甘油涂片后再 捞。



常用固定液 1.甲醛-福尔马林 市面上所售的甲醛原液浓度的实际含 量为40%。平常用作固定的甲醛浓度为10%，即以 10ml甲醛原液加90ml水配成的，实际上只有4%的甲 醛浓度。 甲醛是最常用的固定液，其优点是对固定组织的穿透 力强（4h穿透2.7mm;12h为5mm）. 2性甲醛 是人体组织、实验动物组织常用的固定液， 效果优于甲醛。 构成：甲醛原液120ml 蒸馏水880ml 磷酸二氢钠4g 磷 酸氢二钠13g，使PH达7.0.

三、脱水、透明、封固 1.梯度酒精脱水 2.梯度二甲苯脱去酒精 3.中性树胶封固。
骨和含钙组织脱钙法


一、硝酸脱钙法 1、固定 组织大小 固定液 2、1%硝酸和70%酒精 3、每天换液两次，24—36H 4、流水冲洗 12—24H



二、甲醛缓冲液、减缓液脱钙法 1、甲醛缓冲液 40%甲醛90ml 磷酸氢二钠3、6克 加蒸馏水至300ml； 2、减缓液 缓冲液275ml 90%甲酸13ml 37%Hcl 13ml； 用时每100ml加0、5g亚铁化钾 方法；将骨片置于甲醛缓冲液、减缓液 内1、5H ；用法70%酒精洗三次 脱水、透明、浸蜡、染色