微生物检测菌落总数测定方法

微生物学检验菌落总数的测定
1 原理
微生物活体数量的测定方法，常用平板培养计数法。

它是通过将样品制成均匀的一系列
不同稀释度的稀释液，再取一定的稀释液接种，使其均匀分布于培养皿中特定的培养基内，最后根据在平板上长出的菌落数计算出每克（或mL ）样品中的活菌数量。

2 材料和仪器
2.1 平皿：φ90mm 。

2.2 无菌锥形瓶：容量250mL ，500 mL 。

2.3 无菌吸管：1mL （具0.01mL 个度）,10mL （具0.1mL 刻度）或微量移液器及吸头。

2.4 灭菌锅。

2.5 恒温培养箱
2.6 涂棒。

2.7 酒精灯。

2.8 超净工作台。

2.9 磁力搅拌器。

2.10 漩涡振荡器
3 检验程序
菌落总数的检验程序见下图。

方法①↙ ↘方法②
↘ ↙
4 操作步骤
4.1 培养基和试剂的配制
4.1.1 平板计数琼脂培养基：LB培养基（最常用）
牛肉膏5g
蛋白胨10g
氯化钠5g
琼脂20g
蒸馏水1L
pH 7.0～7.2
将上述成分加于蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH值，分装锥形瓶中，121℃高压灭菌30分钟。

4.1.2 无菌生理盐水的配制：
称取8.5g氯化钠溶解于1000mL蒸馏水中，121℃高压灭菌30分钟。

4.2 样品的稀释：
4.2.1 固体样品：称取10g固体样品置于盛有90mL无菌生理盐水的无菌锥形瓶中（内装
数粒无菌玻璃珠），在旋转式摇床上200r/min充分振荡30min，制成1：10的样品均液，即10-1稀释液。

4.2.2用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1：10样品均液1mL（吸取前需要摇匀1：10稀
释液），缓慢加入盛有9mL无菌生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不能触及稀释液面），用漩涡振荡器振荡，混合均匀，制成1：100的样品稀释均液。

4.2.3按照4.2.2操作程序，制备10倍系列样品稀释液，每递增稀释一次，换用一次1mL
无菌吸管或吸头。

4.2.4 根据对样品活菌数量的估计，选择3~4个适宜稀释度的样品均液（比如10-6，10-7，10-8，10-9稀释液）。

4.2 平板接种与培养
接种方法1：
用1mL无菌吸管或微量移液器分别吸取不同稀释度的菌悬液1mL于一个无菌培养皿中（每个稀释度做三个重复），再在培养皿中分别倒入10～15mL已融化并冷却至45~50℃的培养基，盖好平皿盖子，趁热轻轻转动培养皿，使菌液与培养基充分混合均匀，冷凝后在恒温培养箱中倒置培养24～２８ｈ，培养温度为36℃±1℃。

同时以无菌水作空白对照。

注：比如1000亿CFU样品稀释梯度可选择为：10-8，10-9，10-10。

接种方法2：
用1mL无菌吸管或微量移液器吸取0.2ｍＬ稀释液均液于计数培养基平板上，将稀释液涂布均匀，吸附，在恒温培养箱中倒置培养24～２８ｈ，培养温度为36℃±1℃。

同时以无菌水作空白对照。

（计算时需要把0.2mL的倍数也计算在稀释倍数内）
注：比如1000亿CFU样品稀释梯度可选择为：10-7，10-8，10-9。

４.3 菌落计数
可用肉眼观察，必要时借用放大镜或菌落计数器，以防遗漏。

记录稀释倍数和相应的菌落数量。

菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units,CFU）表示
4.3.1 选取菌落数在30~300之间，无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。

低于30CFU的平板记录具体菌落数，大于300的可记录为多不可计。

每个稀释度的菌落数应采用3个平行平板的平均数。

4.3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半菌落分布又很均匀时，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。

4.3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。

4.3.4 若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效，需重新测定。

5 菌落总数的计算方法
5.1 若只有一个稀释度的菌落数30~100的适宜计数范围之间时，计算三个平行的平均值，再乘以相应稀释倍数，作为每克中菌落总数结果。

5.2若有2个稀释度，其平均菌落数在30~100的适宜计数范围之间，应按两者菌落数之比值来决定；若其比例小于2应计数两者的平均数；若大于2则计数其中稀释度较小的菌落总数。

5.3若所有稀释度的平板上菌落数均不在30~100之间时，其中一部分小于30或大于100时，则以最接近30或100的平均菌落数乘以相应的稀释倍数计算。

5.4 若所有稀释度的平板上菌落数离30~100范围较远时，建议选择适合的稀释倍数重新测定。

表1 样品活菌数量测定结果数据记录
注意事项：检测过程中尽量避免环境杂菌干扰，操作人员要用70％的酒精擦拭手和桌子。