土壤放线菌分离方法的初步研究
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土壤放线菌分离方法的初步研究
摘要:为了提高从土壤中分离放线菌的效率,解决土壤中的细菌对放线菌分离培养中的污染问题,研究了自然风干、重铬酸钾、青霉素和干热处理4种方法对细菌及放线菌的作用,并对其细菌和放线菌菌落数进行统计。结果表明: 土样放置6 d和21d适合放线菌的分离;用加50 mg/L的重铬酸钾或1 mg/L的青霉素的培养基,可以选择性地从土壤中分离放线菌;土样在80℃下干热处理也可提高放线菌的分离效率。
关键词:土壤放线菌;分离;风干时间;重铬酸钾;青霉素;干热处理
Preliminary Studies on the Isolation Methods of Actinomycetes from Soil Abstract:In order to improve the efficiency of isolating actionmycetes from soil and solve the problem of contamination by bacteria when actionmycetes were isolated and cultivated, the effect of natural air-dry time, potassium dichromate(K2Cr2O7), penicillin and heat treatment of fabrics on bacteria and actionmycetes was studied in this article, and the number of bacteria and actinomycetes colonies separated f rom soil samples.The result showed tha:6 or 21 days of air-dry is optimal for actionmycetes separation from soil sample; The numder of actionmycetes can be selectively isolated by using a special medium contanting 50 mg/L potassium dichromate or 1 mg/L penicillin; Treating the soil samples with at 80℃ can also promote the efficiency of isolating actinomycetes. Keywords: soilactinomyeetes; isolation; air-drytime; potassiumdichromate(K2Cr2O7); penicillin;heat treatment of fabrics
引言
土壤放线菌是具有巨大应用价值的微生物类群。自Wakksman和Umezwa发现放线菌用途的多样性后,人们还发现放线菌可作为抗生索、维生素、酶和酶抑制剂的产生菌[1]。迄今为止,微生物产生的2万多种生物活性物质(如抗生素等),有近60%~80%是放线菌产生的。此外,放线菌还可用于甾体转化、烃类发酵、石油脱蜡和污水处理等方面。从放线菌中筛选新抗生素已成为目前研究的重要课题之一。放线菌大量存在于土壤中,从土壤中分离、纯化、快速筛选目标放线菌是抗生素开发、应用的基础。对于刚采集的土壤样品,细菌和真菌的含量多而放线菌又长势缓慢,不利于放线菌的分离[2]。所以,应尽可能从土壤中分离出放线菌,排除其他微生物如细菌的干扰,创造有利于放线菌生长的条件[3]。为此,笔者就如何抑制土壤其它杂菌的污染
和如何选择抑制剂进行了初步研究,以寻求既能抑制细菌生长,同时又不影响放线菌生长的分离方法。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1土壤样品2010年7~9月采集于河南农业大学小花园10~20cm深层土[4],混合,过筛。
1.1.2供试药品与试剂重铬酸钾、青霉素、可溶性淀粉、琼脂、KNO3、KH2PO4、MgSO4·7H2O、NaCl、FeSO4·4H2O。
1.1.3 仪器全自动蒸汽灭菌器(日本AL P ,CL-32L) ;电热恒温鼓风干燥箱(上海一恒科技有限公司,DHG-9240A);超净工作台(苏州净化设备有限公司, SW-CJ- 2FD);智能生化培养箱(宁波海曙赛福实验仪器厂,SP-150);托盘电子分析天平(岛津国际贸易有限公司,A Y-220) 。
1.1.4培养基(高氏一号合成培养基)
可溶性淀粉20g/L、KNO31g/L、KH2PO40.5g/L、MgSO4·7H2O 0.5g/L、NaCL0.5g/L、10% FeSO4·4H2O溶液2滴、琼脂15~20g。用少量蒸馏水将淀粉溶解并加热至60~70℃使淀粉呈透明状,然后倒入煮沸的培养基中,调pH 至7.4~7.6[5]。
1.2方法采用稀释平板法:将土样制成10-2、10-3、10-4 、10-5 的土壤稀释液。分别取10-2、10-3、10-4 、10-5的土壤稀释液0.2 mL加入已做好的培养基平板上,用灭菌的涂布棒将稀释液均匀地涂布整个平板,放入28 ℃恒温培养箱中培养,每个浓度设2个重复,对照为不作任何处理的土壤样品[2]。
2 结果与分析
2.1 土样自然风干对放线菌计数的影响
土样一般都要放置一定时间,再做分离,这样可以减少耗费、提高放线菌检出的效率[2]。按照上述放线菌的分离与纯化的方法做土样放置第0d、3d、6d、9d、12d、15d、18d、21d、24d、27d的重复试验,统计出各时间段土样各稀释度平板上的细菌、放线菌菌落数。
在高氏一号培养基上,采用稀释平板法分离土壤样品,观察各类微生物出现的情
况:10-2稀释度平板上分离到的菌株多,但生长密集或连成片的较多,挑菌有些困难;10-3稀释度的土壤稀释液放线菌分离效果好,平板上的菌落数适中,细菌生长密集;10-4稀释度的土壤稀释液细菌分离效果好,平板上的菌落数适中;10-5稀释液平板上很少甚至没有。以10-4稀释度平板上的细菌作统计,10-3 稀释度平板上的放线菌作统计,结果见表1。
表1 土样放置不同时间对微生物菌落数的影响
细菌(10-4)340 88 97 171 151 212 139 91 127 114 放线菌(10-3)32 23 53 75 56 60 57 54 31 27 从放置0d的新鲜土样到放置27d的土样统计结果来看,放置0d细菌菌落很多,平板菌落密度过高,相邻菌落相连甚至形成片状菌落,严重影响了放线菌菌种的挑取。放置6d的放线菌菌落较多,种类也较齐全,而细菌数量下降较快。土样放置21d ,培养皿内的细菌非常少,且放线菌种类下降不明显,非常适合放线菌分离。而放置27d的土样,细菌非常少,但是放线菌数量也大量减少,所以不适合放线菌的分离。由此可见,土样放置6d和21d均适合放线菌的分离,但放置6d的放线菌的种类更多更全,而放置21d的放线菌单菌落更突出。
2.2 重铬酸钾对放线菌计数的影响
按照放线菌的分离与纯化的方法,在高氏一号培养基中加入25mg/L、50mg/L、75mg/L、100mg/L、125mg/L的重铬酸钾,统计出土样各稀释度平板上的细菌、放线菌菌落数。以10-4稀释度平板上的细菌作统计,10-3 稀释度平板上的放线菌作统计,结果见表2。
表2 重铬酸钾对微生物菌落数的影响
从土样各稀释度平板上的细菌、放线菌菌落数的统计结果来看,无论是任何含量的重铬酸钾,细菌、放线菌菌落数基本呈逐渐减少状。在含25mg/L重铬酸钾的平板上放线菌菌落较多,但细菌菌落也很多,平板菌落密度过高,影响了放线菌菌种的挑