植物染色体标本的制备
植物细胞染色体标本的制作与观察-教案
植物细胞染色体标本的制作与观察-教案第一篇：植物细胞染色体标本的制作与观察-教案植物细胞染色体标本的制作与观察1.实验背景与原理染色体的研究在生物进化、发育、遗传和变异中都有十分重要的作用。
因此，染色体标本的制备技术是遗传学、细胞生物学、染色体工程、分类学等众多学科的基本实验技术。
物种细胞内染色体数目、形态、长度等信息的总和根据实验的观察和测量绘制成的模式图称为核型（karyotype）。
核型分析在物种亲缘鉴定，染色体变异分析，杂种分析，细胞分裂过程分析，孤雌生殖等研究中均有重要的作用。
染色体标本的常规制片方法有切片法、涂片法、压片法、滴片法（空气干燥法）等。
压片法操作简单，是常用的植物染色体标本制备的方法。
不过，该法在制备中要注意避免压片所造成的染色体的扭曲、变形和丢失的现象。
染色体制备的重要环节如下：（1）取材：应取分生旺盛的组织或细胞。
在植物中通常取根尖，在分裂高峰时取材，可得到大量分裂相细胞。
而在动物细胞中通常选取骨髓等分裂活跃的细胞，或是植物血球凝集素等刺激下的淋巴细胞，也可选取分裂旺盛的体外培养的癌细胞或转化细胞等。
（2）预处理：使用秋水仙胺等药品破坏纺锤体形成，不但可得到大量分裂相细胞，而且可使染色体缩短变粗，有利于观察。
（3）固定：渗透力强的固定液将细胞迅速杀死，蛋白质沉淀，并可尽量保持细胞原有状态。
（4）解离或低渗：植物细胞要除去细胞间的果胶层，并使细胞壁软化，从而使细胞得以膨胀，为染色体的分散提供了空间。
常用解离方法有酸解法和酶解法。
动物细胞无细胞壁，通常不需解离，而是用低渗液使细胞膨胀。
（5）染色体分散：通过压片、滴片等机械力量使染色体分散, 有利于观察。
2.实验目的（1）掌握常规压片技术制作植物染色体标本的一般方法。
（2）了解显微镜下常规显色的植物细胞染色体的形态特点,熟练掌握显微镜的使用。
（3）理解染色体与生命遗传的意义及染色体核型检查的应用。
3.实验材料与试剂（1）材料：市售大蒜、洋葱。
矿产
矿产资源开发利用方案编写内容要求及审查大纲
矿产资源开发利用方案编写内容要求及《矿产资源开发利用方案》审查大纲一、概述
㈠矿区位置、隶属关系和企业性质。
如为改扩建矿山, 应说明矿山现状、
特点及存在的主要问题。
㈡编制依据
(1简述项目前期工作进展情况及与有关方面对项目的意向性协议情况。
(2 列出开发利用方案编制所依据的主要基础性资料的名称。
如经储量管理部门认定的矿区地质勘探报告、选矿试验报告、加工利用试验报告、工程地质初评资料、矿区水文资料和供水资料等。
对改、扩建矿山应有生产实际资料, 如矿山总平面现状图、矿床开拓系统图、采场现状图和主要采选设备清单等。
二、矿产品需求现状和预测
㈠该矿产在国内需求情况和市场供应情况
1、矿产品现状及加工利用趋向。
2、国内近、远期的需求量及主要销向预测。
㈡产品价格分析
1、国内矿产品价格现状。
2、矿产品价格稳定性及变化趋势。
三、矿产资源概况
㈠矿区总体概况
1、矿区总体规划情况。
2、矿区矿产资源概况。
3、该设计与矿区总体开发的关系。
㈡该设计项目的资源概况
1、矿床地质及构造特征。
2、矿床开采技术条件及水文地质条件。
植物染色体标本的制备和观察
植物染色体标本的制备和观察摘要：目的1、掌握常规压片法制备植物染色体标本的基本原理和方法；2、学会观察和统计植物细胞的染色体数目；3、了解和学习去壁低渗法进行植物染色体制片的基本原理和方法。
方法大蒜的根尖是分裂比较旺盛的，我们可以利用秋水仙素处理根尖使得大蒜根尖的细胞分裂处于分裂中期，然后经固定染色等处理将染色体染色固定，以便观察。
结果大蒜的染色体有16条，都被染色成红色的条状或细丝状物质。
结论大蒜染色体有16条。
关键词：植物染色体；大蒜；秋水仙素前言染色体是遗传物质的载体，本实验便是观察染色体的形态和数目。
植物染色体标本的制备，常用分生组织，如根尖、茎尖和嫩叶做材料。
常规压片法仍是当今观察植物染色体常用的方法。
其程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等步骤，即可观察到较多的、处于有丝分裂中期的细胞和染色体。
由于现在洋葱发根较难，我们采用的是大蒜根尖进行相关实验。
材料与方法1.实验材料大蒜根尖、白姜花的根尖、野百合的根尖等。
2.实验试剂：0.02%秋水仙素；改良苯酚品红染液；卡诺氏固定液，1N盐酸，浓盐酸：95%乙醇（1:1）解离液。
3. 实验用具显微镜、剪刀、镊子、刀片、培养皿、吸水纸、滴管、载玻片、盖玻片。
4.实验植物和试剂大蒜根尖、 0.02%秋水仙素；改良苯酚品红染液；卡诺氏固定液，1N盐酸；70%酒精；95％乙醇；85％乙醇；蒸馏水5.实验方法和步骤5.1 取材先将大蒜浸泡若干小时，然后转入一个垫有湿润滤纸的培养皿中，置25℃恒温培养箱中萌发，待幼根长至1~2cm时，于上午9~11时剪下根尖。
5.2 预处理将剪下的根尖放进装有0.02%秋水仙素溶液的烧杯中，浸泡处理3～4小时。
5.3 固定将经过预处理或没有预处理的材料，放到卡诺氏固定液中固定（固定液的量约为材料的10倍，要求一个容器中所装的材料不能太多，温度不能太高）。
固定2～24h后分别在95％和85％乙醇中各30min ，再转入70%酒精中，于4℃冰箱内保存，保存时间最好不超过二个月。
植物染色体标本制备的注意事项
植物染色体标本制备的注意事项哟，做植物染色体标本制备可真是个不容易的活儿嘿！得确保使用的植物标本新鲜嘿，不然染色体可能已经破损或者变形了，那可就没法制备出好的标本来了唉。
得小心翼翼地处理植物组织咯，不能随便乱动，要避免在处理过程中让染色体受到损伤，否则后面的工作就得从头再来了咦。
接着，制备标本的时候要特别注意染色体的展平嘿，为了确保染色体在显微镜下能清晰可见，得用一些特殊的技术让它展开嘿，可不能偷懒哟，不然看不清楚的话也白搭了。
嘿，还得注意染色体的染色过程呢，得用适当的染色液来染色，而且时间和温度都得控制得宜，这样才能让染色体呈现出鲜明的颜色来，哎，一不小心就可能把染色搞砸了，到时候可得重新来过呀。
嗨，最后一步要对染色后的标本进行配浆和封片，这个过程又得小心翼翼，不能让标本弄得太干或者太滴水不留，这样才能保证标本的保存质量呢。
植物染色体标本制备是一项需要细心、耐心和技术的工作咯，不过只要注意好每一个步骤，相信大家都能成功制备出漂亮的标本来，加油哟！。
植物染色体的标本制备
植物染色体的标本制备目前，国内外常用的植物染色体制片技术可以分为两种，即压片技术和去壁低渗技术。
Belling(1921)提出植物染色体压片技术后，压片已成为植物染色体研究中最广泛应用的常规技术；但是由于植物细胞有坚实的细胞壁，染色体很难象动物染色体那样平整地贴在载玻片上，Omura 和Kurata(1978)把植物原生质体技术应用到水稻染色体研究之中，用纤维素酶、果胶酶和0.075mol.L-1氯化钾处理取得了一定的进展，陈瑞阳等人（1979、1982）提出了植物染色体标本制备的酶解去壁低渗技术，并在多种植物上得到广泛应用，成为当今植物染色体研究中的重要方法。
压片技术和去壁低渗技术在取材和预处理要求及其操作都是相同的，即两者的材料基础条件是相同的，但它们所采用的染色体分散方法是不同的。
压片法是以人工外加机械压力使染色体分散，而去壁低渗法是用酶分解细胞壁，低渗液使细胞膜吸胀、水表面张力使染色体分开。
两种技术各有其优缺点，前者操作快速简便、省材省时，后者染色体易于展开、且真实不变形，尤其是对成熟细胞多的植物组织，如芽、愈伤组织等材料有独到效果，本实验主要介绍去壁低渗染色体制片技术。
一、实验原理植物根尖的分生细胞的有丝分裂，每天都有分裂高峰时间，此时把根尖固定，经过染色和压片，再置放在显微镜下观察，可以看到大量处于有丝分裂各时期的细胞和染色体。
二、实验目的根尖染色体压片法，是观察植物染色体最常用的方法，也是研究染色体组型、染色体分带、染色体畸变和姊妹染色单体交换的基础。
学习醋酸洋红染色的具体操作方法，掌握植物有丝分裂制片技术，通过大量的制片观察，能比较快速准确地判断细胞有丝分裂前、中、后、末期的染色体图象，并对其典型制片照像。
三、实验材料大蒜（Aillumsativum）、洋葱（Aillumcepa）的鳞基或蚕豆（Viciafaba）的种子。
四、实验内容1、植物染色体制片技术训练，独立完成植物根尖、茎尖及幼叶的取材、预处理、固定、制片、染色等染色体制片全过程，并获得图象清晰、完整、高度分散的染色体典型图象制片；2、染色体显微照相技术训练，用生物摄影显微镜，摄制某新资源植物种典型的染色体图象照片40张，并从中挑选确定清晰的图片；3、细胞有丝分裂典型时期识别技能训练，通过大量的染色体图象观察，能比较快速准确地判断细胞有丝分裂前、中、后、末各个时期的。
植物染色体制片
实验结果
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实验报告
❖ 在制片的过程中有哪些需要注意的问题？ ❖ 为什么在压片前需要先经过酸水解？ ❖ 植物染色体制备和动物染色体制备的相同
点和主要区别。
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植物根尖染色体标本的制备
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Hale Waihona Puke 目的要求❖ 掌握植物染色体标本的制备技术
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实验原理
❖ 制备植物细胞的染色体标本，在取材上必 须选择细胞分裂较旺盛，而且取材较方便 的组织作为实验材料。如植物的根尖。
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实验用品
1、器材：显微镜、水浴锅、载玻片、盖玻片、 镊子、刀片、烧杯等。
2、试剂： 0.1%秋水仙素；Carnoy固定液；1mol/L HCL；
改良苯酚品红 3、实验材料： 洋葱根尖
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预处理：切取长约5mm的植物根尖，浸入 0.1%秋水仙素中，室温下处理3~6小时
将根尖放入1mol/L的盐酸中，60℃水浴， 恒温条件下解离10~15min。
解离后倒出HCl，水洗2次，每次3~5min。将 材料直接浸入改良苯酚品红中，盖上盖玻片。
用镊子或铅笔轻轻敲打，使根尖细胞分散开。
实验四 植物染色体标本的制备与观察
实验四植物染色体标本的制备与观察一、实验目的1、掌握常规压片法制备植物染色体标本。
2、了解中期染色体的形态和结构以及染色体的生物学意义。
二、实验原理染色体是细胞分裂时期遗传物质存在的特定形式，是染色质紧密包装的结果，对染色体的观察在研究生物进化、发育、遗传和异变中有十分重要的作用。
植物染色体标本的制备，常用分生组织如根尖、茎尖和嫩叶做材料。
常规压片法仍是当今观察植物染色体常见的方法，其程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等步骤，简单易操作，但是染色体易变形、难分散开。
三、实验仪器、材料和试剂（一）仪器、用具：显微镜、剪刀、镊子、刀片、培养皿、滤纸、吸水纸、青霉素瓶、染色缸、载玻片、盖玻片、玻璃板、酒精灯。
（二）材料：蚕豆(Vicia faba, 2n=2x=12)、黑麦(Secale cereale, 2n=2x=14)、大麦(Hordeum sativum, 2n=2x=14)、普通小麦(Triticum aestivum, 2n=2x=42)、玉米(Zea mays, 2n=2x=20)、豌豆(Pisum sativum, 2n=2x=14)、洋葱（Aillum cepa，2n＝16）等根尖。
（三）试剂1、Carnoy固定液、1%秋水仙素(或对二氯苯)。
2、苯酚品红染色液。
四、实验方法与步骤压片法制备染色体标本：(1) 取材：把蚕豆种子预先浸泡12h，然后转入垫有湿润滤纸的培养皿中上面蒙上湿纱布，置25℃温箱中暗培养发根，经过48h后幼根长至1—2cm左右，于上午9—11时剪下根尖。
(2) 预处理：将剪下的根尖置于对二氯苯饱和水溶液或0.1％秋水仙素溶液中，浸泡处理2-4 h。
(3) 固定：用水洗净处理过的根尖，经Carnoy固定液中固定2-4h，转入70％乙醇中，4℃保存备用。
(4) 解离：取出根尖，用蒸馏水洗净，放入l M HCl中60℃解离8－10min，再用蒸馏水洗净。
(5) 染色：改良苯酚品红染色5—10min。
植物染色体标本制备的去壁、低渗法及其在细胞遗传学中的意义
植物染色体标本制备的去壁、低渗法及其在细胞遗传学中的意
义
植物染色体标本制备的去壁、低渗法是通过去除细胞壁，使得细胞内的染色体能够在液态介质（通常是醋酸或者醋酸-乙醇混合液）中自由展开，并与染色剂染色，从而得到适合观察和分析的染色体标本。
这种制备方法在植物细胞遗传学中得到广泛应用。
首先，通过去除细胞壁，可使得染色体得以展开成线性或环形的形式，方便进行观察和分析。
其次，在去壁液中低渗透压下染色质水肿膨胀，使染色体的结构更加明晰，染色效果更佳。
同时，去壁液中还含有某些成分，如乙酸和染色剂，可促进染色体的凝聚和染色，从而也有助于染色体的分析和研究。
植物染色体标本制备的去壁、低渗法在植物细胞遗传学中有着重要的应用价值，可用于染色体数目和形态的分析、基因定位和标记、染色体变异的检测和研究等。
特别是在遗传改良中，该方法也被广泛应用于植物杂交和基因转移等研究领域。
植物染色体标本制备的去壁、低渗法及其在细胞遗传学中的意义
植物染色体标本制备的去壁、低渗法及其在细胞遗传学中的意义植物染色体是进行细胞有丝分裂和有性生殖的关键结构，因此其研究对于揭示植物遗传学的基本原理至关重要。
而植物染色体的标本制备是进行细胞遗传学研究的重要前提。
本文将介绍植物染色体标本制备的去壁、低渗法及其在细胞遗传学中的意义。
1. 去壁法去壁是制备植物染色体标本的一种重要方法。
在该方法中，通过化学物质的去壁作用，将细胞质与胞壁分离，使得染色体自身单独显示在显微镜下。
实际操作中，可以选择使用酸性酶、酶解剂、酸、碱等化学物质进行去壁处理。
其中，常用的去壁剂包括5%酸性酶、10%酶解剂、0.2M HCl、0.5M NaOH等。
去壁法的优点是使用简便快速，并且对大多数植物都适用。
但对于一些富含淀粉或黏性胶质的细胞来说，由于某些因素，如低温、压力等的作用，有可能导致壁面突出，造成染色体复杂度上升，影响染色体的观察和解析。
2. 低渗法低渗法是制备植物染色体标本的另一种重要方法。
在该方法中，通常采用甘油、尿素、EDTA等化学剂对细胞进行胞浆溶解，使得染色体在细胞浸润后，以单独的形式出现。
此外，低渗法的操作步骤相对简单，且对于密封度较高的细胞比较适用。
低渗法的优点是可以在不破坏细胞形态结构的前提下，使得染色体以单独的形式显示出来，使得对于染色体结构、染色体数量、染色体结构异变等方面的分析更具可靠性。
缺点则是较容易出现染色体陷入一些黏性物质中，难以单独显示，从而影响观察。
3. 在细胞遗传学中的意义制备植物染色体标本是进行细胞遗传学研究的关键步骤。
通过观察染色体特征，可以判断染色体数量、形态、结构等信息，从而更深入地研究植物生物学的机制，深入探究其遗传变异的规律。
同时，标本制备方法的选择和处理也会影响到对遗传信息的解析。
因此，在进行植物细胞遗传学研究时，需要根据具体情况进行合理的标本制备方法选择和处理，以确保研究结果的准确性和可靠性。
此外，植物染色体标本制备的去壁、低渗法也可以应用到其他生物的细胞遗传学研究中，为后续的研究提供基础和参考。
植物染色体标本的制备与观察 实验报告
实验七植物染色体标本的制备与观察一、实验目的
学习植物染色体标本的制备技术，掌握染色体的技术方法，了解染色体的生物学意义。
二、实验用品
Carnoy固定液、0.1%秋水仙素溶液、1mol/HCL、Schiff溶液、亚硫酸水溶液（漂洗液）、混合酶液（纤维素酶、果胶酶各1%-2%）、Carbor fuchsin(卡宝品红)染液配方1、配方2
三、实验方法
1.取材：将大蒜培养，待胚根长达1-2cm时。
窃取0.5cm
长的根尖部分。
2.预处理：将切下的根尖浸入0.1%秋水仙素液中，室温下
处理3-4h
3.固定：取出根尖，投入Carnoy 液固定2-24h,换入70%
酒精，暂时保存
4.水解：把根尖投入预热的58-60℃1mol/HCL中，恒温下
水解14-15min.
5.染色：用配方2染5-10min
6.用蒸馏水西区多余染液
7.酶解:酶解20min左右
8.洗涤：用蒸馏水洗涤，除去残留酶液后加45%醋酸。
9.压片：将根尖置于载玻片上，滴半滴45%醋酸，盖上盖
玻片，压片
10.镜检
四、实验结果及分析
这是用大蒜根尖所制的玻片观察到的，只能看到被染色的核，但未能清晰观察搭配中期分裂相中染色体的排列。
分析实验失败原因如下：
1.处理时间不对，处理时细胞未处于分裂
中期
2.所用试剂配的有问题，导致最终只能看
到核被染色，但看不到中期染色体的清晰排布。
实验三 植物染色体标本制备与观察
实验三植物染色体标本制备与观察孚尔根反应（Feulgen Reaction）一、实验目的1. 熟悉并掌握Feulgen反应的原理及其实验操作方法2. 掌握植物染色体标本的制备技术二、实验原理Feulgen反应(Feulgen reaction)是显示DNA的最典型的组织化学反应，为学者Feulgen和Rossenbeck于1924年发明，简称为Feulgen法。
因对DNA的显示反应具有高度专一性，故常被用来显示细胞内DNA的分布情况。
自Feulgen反应法问世以来，其作用机制也久经研究和讨论，目前认为其具体反应原理是：标本经稀盐酸水解后，DNA分子中的嘌呤碱基被解离，从而在核糖的一端出现了醛基。
Schiff试剂中的无色品红可与醛基反应，形成含有醌基的化合物分子, 因醌基为发色团，故可呈现出紫红色。
也就是说，DNA经稀酸水解后产生的醛基，具有还原作用，可与无色品红结合形成紫红色化合物，从而显示出DNA的分布。
其反应机制如下所示。
2HCl+Na2S2O5→2NaCl+SO2+H2SO3三、实验用品（一）、器材：显微镜、水浴锅、烧杯、镊子、刀片、载玻片、盖玻片（二）、材料：小麦根尖。
（三）、试剂：1. schiff氏试剂：将0.5g碱性品红置入三角烧瓶内沸腾的蒸馏水中，时时摇动玻璃瓶，煮沸5min使之充分溶解，冷却至50℃时过滤，加入10ml 1mol/L HCl，冷至25℃时，加入0.5g偏重亚硫酸钠(Na2S2O3)无水亚硫酸钠(NaHSO3)，在室温冷暗处至少放置24h(有时需2~3天)，使其颜色退至淡黄色，密封瓶口，藏于暗处，最好保存于4℃冰箱中(可保存数月或更长时间)。
在使用前加入0.5g活性碳，摇1min, 用粗滤纸过滤，滤液应为无色；若液体颜色变为粉红色，便不能再用。
2. 亚硫酸水(漂洗液) 用200ml普通自来水(不要用蒸馏水, 以免引起误差)、10ml 10%的偏重亚硫酸钠水溶液和10ml 1mol/L HCl，三者在使用前混合，现用现配。
植物有丝分裂及染色体标本制备
xx学院xx系《细胞生物学》课程实验报告
有丝分裂原理
细胞周期基础：植物细胞的有丝分裂是一个连续的过程，但为了便于研究，可以将其划分为间期、前期、中期、后期和末期。
间期是细胞进行物质准备的阶段，包括DNA 复制和有关蛋白质合成。
此时染色体呈细丝状的染色质状态。
前期变化：前期，染色质开始螺旋化缩短变粗，形成染色体。
每个染色体包含两条姐妹染色单体，它们由一个着丝粒相连。
同时，核仁逐渐解体，核膜逐渐消失，纺锤体开始形成。
纺锤体由微管组成，它的作用是牵引染色体运动。
中期特征：中期时，染色体的着丝粒排列在赤道板上，这是一个假想的平面，与纺锤体的中轴相垂直。
此时染色体的形态比较固定，数目比较清晰，是观察染色体形态和数目的最佳时期。
后期动态：后期，着丝粒分裂，姐妹染色单体分开，成为两条子染色体，分别向细胞的两极移动。
这一过程是由于纺锤体微管的牵引作用，使得染色体能够均匀地分配到细胞的两极。
末期变化：末期，到达两极的染色体逐渐变成染色质丝，核膜、核仁重新出现，形成两个新的细胞核。
同时，在赤道板的位置形成细胞板，细胞板向四周扩展，逐渐形成新的细胞壁，将细胞一分为二，完成有丝分裂。
实验十植物染色体标本的制备和观察优秀课件
二 实验原理
常规压片法仍是当今观察植物染色体常用的方法，其 程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等 步骤。但压片法的不足之处是染色体很难分散开，染 色体容易变形和断裂。
去壁低渗法是借助纤维素酶和果胶酶将细胞间的果胶 质和组成细胞壁的α-纤维素、半纤维素溶解掉，使植 物细胞只有质膜，然后按哺乳类动物染色体标本制备 的方法——低渗、火焰干燥法制备植物染色体标本。
4．水解 取出根尖，用蒸馏水洗净，放入1N HCl中60℃解离 14～15min，再用蒸馏水洗净
5 染色 改良苯酚品红染色液染色5-10min。 6 漂洗 漂洗液换洗2-3次，每次1-2min。 7 酶解 切取着色深的分生区放到小杯中，
加入混合酶液（2.5%纤维素酶+2.5%果胶 酶），25℃下酶解2～4小时。
四 实验方法（压片法制备染色体标本 ）
4 解离 取出根尖，用蒸馏水洗净，放入1N HCl 中60℃解离 8～10min，再用蒸馏水洗净。
5 染色 改良苯酚品红染色液染色5～10min 。 6 压片 把根尖放在载玻片上，切取分生区部分
，加一滴染液，用镊子捣碎，盖上盖玻片，然 后在盖玻片上放上一滤纸，用铅笔上的橡皮头 轻轻敲打盖片，使细胞和染色体分散。 7 镜检。
1 取材 把蚕豆种子预先浸泡6小时，然后转入 垫有湿润滤纸的培养皿中，置25℃温箱中发芽 ，幼根长至1～2cm左右，于上午13～14时剪 下根尖0.5cm。
2 预处理 将剪下的根尖置0.02%秋水仙素溶 液中，浸泡处理4小时。
3 固定 用水洗净处理过的根尖，经甲醇-冰醋 酸（3∶1）固定6～24小时，再经95%、85% 酒精各半小时，最后转入70%酒精中，4℃保 存备用。
实验三植物染色体标本制作
随着科学技术的发展，染色体制片技术将不断改进和完善， 未来有望实现更加准确、高效的染色体计数和形态分析。这 将有助于推动植物遗传学和进化生物学的研究进展。
THANKS
感谢观看
染色体数目
通过对大量细胞的观察和计数，我们确定了植物细胞的染色体数目为2n=46条 ，这与之前的研究结果一致。
染色体分组
我们还观察到了染色体按照大小和形态的不同被分为不同的组别，这些组别在 遗传学上具有重要意义。
染色体分析的结果
染色体长度
我们测量了每条染色体的长度，并发现不同染色体长度存在差异，这对于理解基 因组结构和功能具有重要意义。
植物染色体的结构
植物染色体的基本结构包括染色质纤维、核膜、着丝粒和染色体臂。染色质纤维是染色体的基本组成单位，由 DNA和蛋白质组成。核膜是包围着整个细胞核的双层膜结构，起着调节基因表达的作用。着丝粒是染色体上连接 两个染色单体的区域，而染色体臂则是由DNA和蛋白质组成的区域，上面排列着基因。
学习制作染色体标本的方法
染色体观察与计数
找到分裂相细胞
染色体计数
在显微镜下寻找处于分裂期的细胞， 这些细胞是观察染色体的最佳时期。
对每个分裂相细胞中的染色体进行计 数，确保计数的准确性和可靠性。
观察染色体形态
在找到分裂相细胞后，仔细观察染色 体的形态、数目和分布情况，并记录 下来。
染色体分析
染色体形态分析
分析染色体的形态特征，如长度、着丝粒 位置等，判断是否存在染色体结构变异。
染色体的形态和结构
染色体形态
染色体在细胞分裂过程中呈现特 定形态，包括染色质、染色粒和 着丝粒等。
染色体结构
染色体由DNA和蛋白质组成，具 有特定的序列结构和组织结构。
实验三植物染色体标本制作(共9张精选PPT)
五 实验步骤（3）
封片：从4号培养皿中取出载玻片和盖玻片置于滤 纸上吸去多余的溶剂，在载玻片中央载有材料处 滴上1~2滴中性树胶，将盖玻片盖回原来位置进行 封片。覆盖盖玻片时，要注意用鸭嘴镊子夹住盖 玻片，轻轻地倾斜覆盖，使之随着树胶的扩展自 然下滑，切不可施加压力或移动盖玻片。如发现 封片中树胶有气泡，应让其自行逸出或用针尖烧 热后烫一下，使气泡逸出。如数胶滴得过多溢出 玻片四周，应待树胶晾干后，用脱脂棉蘸二甲苯 轻轻擦净溢出的树胶。封片后平放晾干，进行镜 检，物像清晰符合要求的保存，并贴上标签，注 明标本名称、作者姓名和制作日期。
五 实验步骤（2）
脱水、透明：取三只培养皿，分别编号2、3、4， 在其中各放一根短粗玻璃棒，顺序加入下列脱水 剂：2号培养皿加2份95%酒精+1份正丁醇；3号培 养皿加1份95%酒精+2份正丁醇；4号培养皿加正 丁醇。操作时，用鸭嘴镊子把1号培养皿中已脱落 的盖玻片和载玻片从盖玻片液中取出，稍干后迅 速放入2号培养皿中。依次脱水、透明，最后放入 4号培养皿中，在各编号培养皿中分别浸泡5min左 右。整个脱水过程中，必须保持载玻片和盖玻片 原来相对的方向和位置，同时注意操作轻巧，以 免造成玻片上材料漂失。
六 实验结果
制作清洁完整的有丝分裂永久片1张。
镜检观察制作的有丝分裂永久片，记录永久片中 出现的分裂时期。
三 实验材料
经镜检物像清晰符合要求母 细胞减数分裂的临时片子。
四 实验用具与药品
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实验用品
一、 材料 蚕豆、豌豆（或玉米、水稻） 二、器材 显微镜，擦镜纸，剪子，镊子，小平皿，载玻片， 盖玻片。 三、试剂 Carnoy固定剂， 95%酒精 ，1mol/L HCl, Schiff 试剂，亚硫酸
实验方法
1、将植物种子放在潮湿的滤纸上，20℃使其发芽。
2、预处理：切取的0.5cm长的根尖浸入0.1%秋水仙 素液中，室温下处理3～4小时。
观察
蚕豆根尖2n=2x=12
豌豆根尖 2nபைடு நூலகம்2x=14
玉米根尖 2n=2x=20
水稻根尖 2n=2x=24
思考题
1、简述Feulgen反应的原理 2、欲得到一张好的Feulgen反应制片, 制片过程中应注意些什么 3、绘制细胞分裂图。
3、固定、水解及染色：
Carnoy固定剂固定10～30分钟→95%酒精10分钟 →70%酒精10分钟→蒸馏水→ 1mol/L HCl, 60 ℃ 15 分钟→ Schiff试剂40～60分钟 →亚硫酸水(1,2,3) → 换3次,每次5分钟自来水→将染色后的根尖漂洗干净, 选择染色效果好的材料→蒸馏水→压片→镜检
目的要求
学习植物染色体标本的制备技 术，了解Feulgen反应的基本原理, 学习其操作方法和压片法,初步掌握 细胞分裂各期的主要特点。
实验原理
Feulgen反应的原理是根据DNA经弱酸 (1mol/L)水解后,打开嘌呤和脱氧核糖连接的 键,在脱氧核糖的一端形成游离的醛基.这些醛 基就在原位与Schiff试剂结合,形成含醌基的化 合物,醌基是一个发色团所以具有颜色,因此凡 有DNA的部位,就呈现紫红色。