农杆菌转化法原理

农杆菌转化法原理：

农杆菌是普遍存在于土壤中的一种革兰氏阴性细菌,它能在自然条件下趋化性地感染大多数双子叶植物的受伤部位（受伤处的细胞会分泌大量酚类化合物，从而使农杆菌移向这些细胞），并诱导产生冠瘿瘤或发状根.

根癌农杆菌和发根农杆菌中细胞中分别含有Ti质粒和Ri质粒，其上有一段T-DNA，农杆菌通过侵染植物伤口进入细胞后，可将T-DNA插入到植物基因组中，并且可以通过减速分裂稳定的遗传给后代，这一特性成为农杆菌介导法植物转基因的理论基础。

人们将目的基因插入到经过改造的T—DNA区,借助农杆菌的感染实现外源基因向植物细胞的转移与整合，然后通过细胞和组织培养技术，再生出转基因植株。农杆菌介导法起初只被用于双子叶植物中，近年来，农杆菌介导转化在一些单子叶植物（尤其是水稻）中也得到了广泛应用。

农杆菌转化植物细胞涉及一系列复杂的反应，主要包括:①受伤的植物细胞为修复创伤部位，释放一些糖类、酚类等信号分子。②在信号分子的诱导下，农杆菌向受伤组织集中,并吸附在细胞表面。③转移DNA上的毒粒基因被激活并表达，同时形成转移DNA的中间体。④转移DNA进入植物细胞，并整合到植物细胞基因组中。

方法:（根据不同受体环境基因要求而不同）

1．农杆菌准备

2．外植体的准备(愈伤组织、悬浮细胞系、幼嫩茎段或叶片）;

3．用MS—AS液体培养基稀释原菌液15倍(1.5ml / 20ml）或离心后稀释3倍;

4．外植体与菌液共培养20 分钟;

5．放置在带滤纸的培养皿上(注意充分吸干多余的菌液)；

6．将外植体接种到MS-AS固体诱导培养基，培养2－3天;

7．移至含卡那霉素（Kan）300mg/L和羧苄青霉素（Cb 300mg/L）的固体筛选培养基上进行Kan抗性愈伤组织的筛选;

8．隔20天，进行第二次筛选;

9．抗性愈伤组织在固体筛选培养基上分化成苗；

10 在生根培养基上生根，获得完整的再分化植株。