脂肪间充质干细胞成瘤性分析

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脂肪间充质干细胞成瘤性分析
干细胞是具有增殖和分化潜能的细胞,具有自我更新复制的能力,能够产生高度分化的功能细胞。

目前,各类干细胞在临床治疗上的应用研究如火如荼,已有已有大量实验证实干细胞治疗的有效性。

由于干细胞具有较强的分化和增殖能力,人们对其在人体使用时的安全性产生了怀疑,其中最主要的是干细胞注射后的异常分化导致的致瘤性。

癌细胞是肿瘤的组成细胞,与干细胞的相同点在于具有增殖和多向分化的能力。

不同点在于癌细胞的增殖和分化不可控,而干细胞的增殖和分化受到了机体的调控,是有目的有方向的调控,用于补充机体所需的各种细胞。

因此,干细胞与癌细胞并不相同,人们所担忧的是注射干细胞后,不但造成干细胞所处的微环境改变,而且干细胞同样会造成机体的微环境改变,这样的改变对人体是否安全?
干细胞按照其分化潜能,可分为全能干细胞、多能干细胞和单能干细胞。

受精卵即为全能干细胞,当其在调控下可有序增殖,定向分化,最终发展成为一个正常的个体。

胚胎干细胞同样为全能干细胞,来源于胚胎囊胚时期的内细胞团。

由于其具有无限增殖全能分化的能力,同时对外界抵抗较弱,其基因容易受到外界影响而突变,在实验过程中发现其有潜在的致瘤性,注射至机体后可能会导致畸胎瘤。

目前另一种研究热门的干细胞为iPSC(诱导多能干细胞),是在体细胞中转入四个转录因子,使其去分化重新恢复全能干细胞的特性。

它的出现解决了干细胞的获得问题,但iPSC是将激活的癌基因转入细胞,致瘤性问题会较胚胎干细胞更为严重。

而多能干细胞和单能干细胞的分化方向已经固定,增殖能力有限,同时机体本身已大量存在,实验主要关注于体外扩增后回输体内,补充体内干细胞增殖较慢无法满足机体需求,并不会对细胞的基因型和转录组造成改变,理论上讲注射入机体后不存在致瘤性。

目前的干细胞注射治疗研究热点有神经干细胞对神经退行性疾病和外部损伤的治疗,软骨干细胞对软骨组织磨损及缺失的治疗,皮肤干细胞对烧伤或创伤的治疗,成纤维细胞在美容中的应用,以及临床上已广泛应用的造血干细胞对血液疾病的治疗。

这些大样本及长期的应用及研究,均未发现其对机体所造成的致瘤性等其他伤害,同时发现干细胞起到比药物更好的治疗效果或治疗传统药物无法应对的疾病。

间充质干细胞属于多能干细胞的一种,主要分布于成人的骨髓、外周血、脂肪和新生儿的脐血和脐带,可以分化为脂肪、骨、软骨、肌肉、肌腱、韧带、神经、肝、心肌、内皮等多种组织细胞。

目前研究较多的是从骨髓和外周血提取的间充质干细胞,而新生儿的脐血和脐带的间充质干细胞则有获得方面的伦理问题及使用时的异体移植所产生的免疫排斥问题,实验关注度不如骨髓和外周血。

已有大量实验证实,骨髓间充质干细胞可在体外诱导后从静脉回输或向病变部位移植,治疗脊髓损伤、阿尔兹海默、帕金森、心肌缺损、血管内皮缺损、软骨缺损等疾病,并在这些研究中未见到肿瘤发生。

同时也有实验关注于血液间充质干细胞的致瘤性,经体外和体内同时验证,也未发现肿瘤发生。

并有实验报道,间充质干细胞经静脉回输入有肿瘤的裸鼠后,会聚集在肿瘤附近,抑制肿瘤的生长,具有一定的抑癌作用。

目前国外也已有多家公家公司将骨髓间充质干细胞的产品申请专利及向药品管理部门或卫生部门申请临床化及药品化。

因此,通过大量的实验及权威部门的证实,均说明了骨髓间充质干细胞的安全性,当其在体外增殖及诱导分化回输至机体后,不会对机体产生致瘤性。

脂肪间充质干细胞与骨髓间充质干细胞同属于间充质干细胞,具有相同的表现型,对CD29、CD44、CD71、CD70、CD105/SH2和SH3为阳性反应,对CD31、CD34、CD45为阴性反应,说明了两类细胞在基因表达方面的一致性。

同时有实验证实,不同部位提取的间充质干细胞在自然分化条件下分化方向不同,主要向周围相同细胞分化。

但当在有相同外界因子的诱导下,可向同一种特定细胞分化,如软骨细胞、神经干细胞、内皮细胞等。

这些说明二者
在祖源上一致,由于所处部位的微环境不同,发生了一些细微的改变,但这些改变并不是对细胞的命运起决定性作用,二者仍可归为一类细胞。

因此,脂肪间充质干细胞的安全性与骨髓间充质干细胞一致,其对机体而言是安全的,不具备致瘤性。

参考文献
[1]苏约翰,卫超,吕品雷,曹蕴,邱云,郑青,萧树东,汪铮. 利用细胞外基质大规模扩增临床级人脂肪间充质干细胞[J]. 中国组织工程研究,2014,18(10):1521-1531.
[2]赵文秀,张磊,刘建明,尹震宇,王效民. 小鼠脂肪间充质干细胞的分离培养及其在肝内归巢[J]. 南方医科大学学报,2013,33(08):1151-1154.
[3]罗永慧,刘漪沦. 脂肪间充质干细胞研究应用进展[J]. 成都医学院学报,2015,10(03): 360-362
[4]秦秀军,张伟,李建国,魏锦萍,阚卫军,李荣荣. 人脂肪间充质干细胞的致瘤性研究[J].天津医药,2013,41(02):152-153+194.
[5]Zhao W, Ren G, Zhang L, et al. Efficacy of mesenchymal stem cells derived from human adipose tissue in inhibition of hepatocellular carcinoma cells in vitro. Cancer Biother Radiopharm,2012, 27(9): 606-13.
[6]Li KC,Chang YH,Lin CY,Hwang SM,Wang TH,Hu YC. Preclinical Safety Evaluation of ASCs Engineered by FLPo/Frt-Based Hybrid Baculovirus: In Vitro and Large Animal Studies.Tissue Eng Part A.2015 May;21(9-10):1471-82. doi: 10.1089/ten.TEA.2014.0465. Epub 2015 Mar 6.
[7] Chang H,Do BR,Che JH,Kang BC,Kim JH,Kwon E,Kim JY,Min KH. Safety of adipose-derived stem cells and collagenase in fat tissue preparation.Aesthetic Plast Surg.2013 Aug;37(4):802-8. doi: 10.1007/s00266-013-0156-7. Epub 2013 Jul 4.
[8] El Atat O,Antonios D,Hilal G,Hokayem N,Abou-Ghoch J,Hashim H,Serhal R,Hebbo
C,Moussa M,Alaaeddine N . An Evaluation of the Stemness, Paracrine, and Tumorigenic Characteristics of Highly Expanded, Minimally Passaged Adipose-Derived Stem Cells.PLoS One.2016 Sep 15;11(9):e0162332. doi: 10.1371/journal.pone.0162332. eCollection 2016.
[9] Ra JC, Shin IS, Kim SH, et al.Safety of intravenous infusion of human adipose tissue derivedmesenchymal stem cells in animals and humans[J]. Stem Cells Dev,2011,20(8):1297-1308.
[10] Arrizabalaga JH,Nollert MU. Properties of porcine adipose-derived stem cells and their applications in preclinical models. Adipocyte.2017 Jul 3;6(3):217-223. doi: 10.1080/21623 945.2017.1312040. Epub 2017 Mar 30.
[11] Arshad Z,Halioua-Haubold CL,Roberts M,Urso-Baiarda F,Branford OA,Brindley
DA,Davies BM,Pettitt D.Adipose-Derived Stem Cells in Aesthetic Surgery: A Mixed Methods Evaluation of the Current Clinical Trial, Intellectual Property, and Regulatory Landscape.Aesthet Surg J.2017 Jun 7.
[12] Ma T,Sun J,Zhao Z,Lei W,Chen Y,Wang X,Yang J,Shen Z. A brief review:adipose-derived stem cells and their therapeutic potential in cardiovascular diseases.Stem Cell Res Ther.2017 Jun 5;8(1):124. doi: 10.1186/s13287-017-0585-3.
[13] Vinarov A,Atala A,Yoo J,Slusarenco R,Zhumtaev M,Zhito A,Butnaru D. Cell therapy for stress urinary incontinence: Present-day frontiers.J Tissue Eng Regen Med.2017 May 8.
[14]Zollino I,Zuolo M,Gianesini S,Pedriali M,Sibilla MG,Tessari M,Carinci F,Occhionorelli S,Zamboni P. Autologous adipose-derived stem cells: Basic science, technique, and rationale for application in ulcer and wound healing. Phlebology.2017 Apr; 32(3):160-171.
[15] Park JS,Kim M. Reovirus safety study for proliferation and differentiation of human adipose-derived mesenchymal stem cells.J Microbiol.2017 Jan;55(1):75-79. doi: 10.1007/s12275-017-6542-0. Epub 2016 Dec 30.
[16] Bétous R,Renoud ML,Hoede C,Gonzalez I,Jones N,Longy M,Sensebé L,Cazaux
C,Hoffmann JS. Human Adipose-Derived Stem Cells Expanded Under Ambient Oxygen Concentration Accumulate Oxidative DNA Lesions and Experience Procarcinogenic DNA Replication Stress.Stem Cells Transl Med.2017 Jan;6(1):68-76.
[17] García-Arranz M,Herreros MD,González-Gómez C,de la Quintana P,Guadalajara
H,Georgiev-Hristov T,Trébol J,Garcia-Olmo D. Treatment of Crohn's-Related Rectovaginal Fistula With Allogeneic Expanded-Adipose Derived Stem Cells: A Phase I-IIa Clinical Trial.Stem Cells Transl Med.2016 Nov;5(11):1441-1446.
[18] Haahr MK,Jensen CH,Toyserkani NM,Andersen DC,Damkier P,Sørensen JA,Lund
L,Sheikh SP. Safety and Potential Effect of a Single Intracavernous Injection of Autologous Adipose-Derived Regenerative Cells in Patients with Erectile Dysfunction Following Radical Prostatectomy: An Open-Label Phase I Clinical Trial. EBioMedicine.2016 Jan 19;5:204-10.
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