第五章 核酸的分离纯化
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第五章核酸的分离纯化
核酸分离纯化的原则:
保持核酸一级结构的完整性
尽可能提高核酸制品的纯度
DNA与RNA在分子大小、理化性质等方面不同分离方法存在差异。
DNA和RNA是生物体中最重要的核酸分子,是分子生物学和分子诊断的研究对象
DNA和RNA的分离与纯化技术是分子生物学研究中重要的基本技术。
核蛋白:核酸+蛋白质
DNP:DNA+蛋白质
RNP:RNA+蛋白质
第一节核酸分离纯化的设计及原则
(一)材料与方法的选择
不同的研究目的对核酸的完整性、纯度、
产量及浓度有不同的要求。
⏹需考虑制备核酸所需的时间与成本
⏹应选择安全的试剂与制备方案
(二)选择原则
1.保持核酸碱基序列的完整性
2.尽量清除其它分子的污染,保证核酸纯度
3.保持核酸的完整性
尽量简化分离纯化步骤,缩短提取时间
尽量避免各种有害因素对核酸的破坏
二、技术路线的设计
(一)核酸的释放
DNA和RNA均位于细胞内(病毒除外),因此核酸分离与纯化的第一步即是裂解细胞、释放核酸。
(二)核酸的分离与纯化
应该清除的杂质主要包括:
1.非核酸的大分子污染物
蛋白质、多糖及脂类物质等
2.非需要的核酸分子
分离某一核酸分子时,其它核酸皆为杂质
3.加入的有机溶剂和某些金属离子
(三)核酸的浓缩、沉淀与洗涤
沉淀是浓缩核酸最常用的方法
常用的盐类:醋酸钠、醋酸钾、醋酸铵、氯化钠、氯化钾及氯化镁
常用的有机溶剂:乙醇、异丙醇和聚乙二醇
核酸沉淀常常含有少量共沉淀的盐,需用70%~75%的乙醇洗涤去除
三、核酸的鉴定与保存
(一)核酸的鉴定
1.浓度鉴定
(1)紫外分光光度法:
核酸分子中的碱基具有共轭双键结构,可以吸收紫外线,其最大吸收波长为260nm。
DNA或RNA的定量
OD260=1.0相当于:
50μg/ml双链DNA
40μg/ml单链DNA(或RNA)
33μg/ml寡核苷酸
适用于>0.25μg/ml的核酸溶液
(2)荧光光度法:
A:溴化乙锭(EB)
核酸的荧光染料溴化乙锭(EB)嵌入碱基平面后,本身无荧光的核酸在UV 激发下发出红色荧光。凝胶电泳中荧光强度的积分与溶液中核酸的含量呈正比。该法灵敏度可达1ng~5ng,适合低浓度核酸溶液的定量分析。
注:溴化乙锭(EB)是一种强致癌剂。使用时必须戴手套操作。
B、Sber Green I
与dsDNA亲和力较高,结合后荧光强度大大增强,特别适用于对溶液dsDNA 的检测、分析。特点为:
灵敏度高,至少可检出20pg dsDNA分子。高于EB 25~100倍。
受ssDNA、RNA及其他物质的影响小。
对Taq酶、逆转录酶、内切酶、T4连接酶没有抑制作用。
C、GoldView(GV)
GoldView(GV)作为一种新的超灵敏荧光染料,可以从琼脂糖凝胶中检出低于
20pg的双链DNA。
GoldView(GV)是一种可代替溴化乙锭(EB)的新型核酸染料,使用方法与之完全相同,在100ml琼脂糖胶溶液中加入5µl GoldView™即可。在紫外透射光下双链DNA呈现绿色荧光,也可用于染RNA。
通过Ames试验、小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验、小鼠睾丸精母细胞染色体畸变试验,致突变性结果均为阴性。
通过凝胶电泳回收DNA片段时,建议使用GoldView染色,在自然光下切割DNA条带,避免紫外线与EB对目的DNA产生的损伤,可明显提高克隆、转化、转录等分子生物学下游操作的效率。
虽然未发现GoldView有致癌作用,但对皮肤、眼睛会有一定的刺激,操作时应戴上手套。
2.纯度鉴定
(1)紫外分光光度法:
主要通过A260与A280的比值来判定有无蛋白质等的污染。比值升高或降低均提示制备的核酸纯度不佳。
判断核酸样品的纯度
DNA纯品: OD260/OD280 = 1.8
RNA纯品: OD260/OD280 = 2.0(1.8~2.1)
当DNA样品中含有蛋白质、酚或其他小分子污染物时,会影响DNA吸光度的准确测定。一般情况下同时检测同一样品的OD260、OD280,计算其比值来衡量样品的纯度。
经验值:
纯DNA:OD260/OD280≈1.8(>1.9,表明有RNA污染;<1.6,表明有蛋白质、酚等污染)
纯RNA:1.7 <OD260/OD280<2.0(<1.7时表明有蛋白质或酚污染;>2.0时表明可能有异硫氰酸残存)
若样品不纯,则比值发生变化,此时无法用分光光度法对核酸进行定量,可使用其他方法进行估算。
另外,鉴定RNA纯度所用溶液的pH值会影响A260/A280的读数。如RNA在
水溶液中的A260/A280比值就比其在Tris缓冲液(pH 7.5)中的读数低0.2~0.3。荧光光度法:
EB等荧光染料示踪的核酸电泳可判定核酸制品的纯度。
3.完整性鉴定
琼脂糖凝胶电泳:
以EB为示踪剂的核酸凝胶电泳可判定核酸制品的完整性
基因组DNA如果发生降解,电泳图呈拖尾状
完整的或降解很少的总RNA电泳图谱
中,三条带荧光强度应呈特定的比值。
⏹沉降系数大,电泳迁移率低,
荧光强度高
⏹沉降系数小,电泳迁移率高,
荧光强度低
⏹28S(或23S)RNA的荧光强度
一般约为18S(或16S)RNA
的2倍,否则提示有RNA的降解
⏹若在点样孔附近有着色条带,提示可能存在DNA的污染
(二)核酸的保存
1.DNA的保存
溶于TE缓冲液中的DNA在-70℃冰箱可保存数年。
TE的pH值为8.0时,可减少DNA的脱氨反应;
低于7.0时DNA容易降解。
EDTA:螯合Mg2+、Ca2+等可抑制DNA酶的活性;
低温保存:-4 ℃;-20 ℃;-70 ℃
加少量氯仿:有效避免细菌与核酸的污染。
2.RNA的保存
RNA溶于H2O或0.3mol/L的NaAc溶液中,-70℃保存
RNA溶液中加入RNasin或VRC,可延长保存时间
用于配置试剂及溶解RNA的H2O均应经DEPC处理