淀粉酶的分离纯化(上)——浸提、盐析、透析、浓缩

附录: 调整硫酸铵溶液饱和度计算表（25℃）
2、仪器：
离心机，量筒，研钵，
四、实验内容
（一）浸提
采用缓冲液从固态粗酶粉中浸提粗酶液。
称取粗酶粉2.5g，加入20ml缓冲液，研磨5-10min，
3500rpm离心分离10min，收集上清液。 为提高收率，沉渣可加入适量缓冲液再浸提1~2次， 离心，合并上清液，即为粗酶液，测定体积。 测定粗酶液的酶活力，计算总酶活1(酶活力×体积)
斥不易聚集沉淀，也可以起稳定颗粒的作用。
若去除蛋白质颗粒这两个稳定因素，蛋白质极易 从溶液中沉淀。
盐析是一种与蛋白质的沉淀的性质相关的分离方法：它用
硫酸铵、硫酸钠等中性盐来破坏蛋白质在溶液中稳定存在的 两大因素，故能使蛋白质发生沉淀。 不同蛋白质分子颗粒大小不同，亲水程度不同，故盐析所 需要的盐浓度不同，从而将蛋白质分离。
如果需要，可将采用更细的分级。 组分B的收率=（B的酶活力×B的体积）/ 总酶活1 ×100%
（三）透析
1、透析袋的预处理： 透析袋的处理主要是除去污染物，特别是重金属和蛋 白酶等对蛋白质有毒害作用的物质。可在0.1mol/l的EDTA 溶液中煮30min，再换用蒸馏水煮7次，每次20分钟。
2、透析：
（二）分级盐析
根据粗酶液体积，计算出达到相应饱和度需要加入的硫 酸铵的量。慢慢的向粗酶液中加入硫酸铵至30%饱和度，静 置20min后，在12000rpm的转速下离心20min，分别收集 上清液与沉淀A。
测量上清液体积，再慢慢向上清液中加入硫酸铵至70% 饱和度，静置20min后源自文库在12000rpm的转速下离心20min， 分别收集上清液与沉淀B。
淀粉酶的分离与纯化（上） 浸提、盐析、透析、浓缩
一、实验目的
1、掌握蛋白质分离纯化的一般程序。 2、掌握盐析、透析、浓缩的基本原理与操作。
二、实验原理
蛋白质作为溶液稳定存在的两大因素： 1. 蛋白质颗粒表面大多为亲水基团，可吸引水分
子，使颗粒表面形成一层水化膜，从而阻断蛋白质颗粒
的相互聚集，防止溶液中蛋白质的沉淀析出； 2. 蛋白质颗粒表面可带相同电荷颗粒之间相互排
将所收集的具有酶活力的组分（组分B），放入透析
袋，置于清水中，电磁搅拌，透析24h，中间换水3-4次。 为了防止酶失活，整个透析系统应低温放置。 铵离子是否除尽采用纳氏试剂检测。
（四）浓缩
透析后，透析袋中液体浓度低，体积较大，可用蔗糖
或PEG6000包埋浓缩至1-1.5ml。取出0.5ml测定酶活力， 其余的置于冰箱中备下次实验使用。 计算酶活力的收率。
如用硫酸铵分离清蛋白和球蛋白，在半饱和的硫酸铵溶液
中，球蛋白即可从混合溶液中沉淀析出除掉，而清蛋白在饱 和硫酸铵中才会沉淀。 盐析的优点是不会使蛋白质发生变性。
三、仪器与试剂
1、缓冲液：0.05M磷酸氢钠缓冲液（PH7.0），含5mmol/l
2-巯基乙醇，1mmol/lEDTA, 0.5mmol/l，PMSF。
按同样的方法再次调节硫酸铵饱和度100%，静置 20min后，在12000rpm的转速下离心20min，分别收集上 清液与沉淀C。
收集每一饱和度下沉淀出的蛋白质（沉淀A,B,C）， 分别用5ml的缓冲液溶解.
测定组分A,B,C的酶活力和蛋白质浓度，以确定淀粉 酶主要存在于哪一级的沉淀中，并计算组分B的收率。