2014-9 神经生物学实验报告-动物脑的立体定位技术

2. 切片 切片刀的安置：刀的刃面与组织切面之间应有一定的角度，称为余隙角 a。 余隙角一般在 2~5 组织冷冻：冷冻适度，过冷可致切片横向断裂 、冷冻不足，切片容易厚薄 不匀 切片：动作连贯
四、实验结果 了解了脑立体定位仪及切片制备基础知识，并在团队合作下完成了大鼠脑立
体定位（纹状体），以染料定位，以组学鉴定（切片）观察定位结果。本次试验 定位空间上深度稍微欠妥，染料着色正常，切片制备正常。
1. 组织固定（灌注固定） （1）减开胸腔，暴露心脏 （2）将注射针头插入左心室，减开右心耳 （3）放松输液管夹，先用生理盐水冲去血液，直至右心耳流出液体清亮无 色（一般原则灌洗量不宜过多，灌洗时间不宜长。大鼠一般 100ml） （4）换以固定液继续灌流，先快后慢，固定液的量，大鼠一般为 300-500ml 左右 （5）开颅取脑，固定→切片
三、实验步骤 Ⅰ 大鼠脑立体定位（纹状体）
1. 立体定位仪的一般校验 2. 动物麻醉：动物称重后，水合氯醛溶液按 3.6ml/kg 作腹腔注射麻醉。 3. 头部固定：
（1）插入耳棒：先将一侧耳棒轻轻插入外耳道，碰到骨性外耳道底后固定 耳棒，继之同样插入固定另一耳棒。检查大鼠头部固定是否稳定，松斜，两侧耳 棒刻度是否对称，轻移耳棒使两侧刻度一致头位完全居中，再次固定耳棒。三个 标准检测是否固定成功：鼻对正中，头部不动，提尾不掉。
5. 脑内核团定位: （1）根据脑图谱，确定所要纹状体的立体位置，（纹状体：前囟前 1 mm, 旁 开 2.5 mm, 深 3.5 mm）。 （2）用定位针参照中线和前后囟在颅骨上标记进针的部位后，在指定位置 钻孔，有突破（落空）感后，停止钻孔。
6. 定位标记及组织学鉴定： （1）定位标记：根据定位坐标，插入微量注射针，注入染料。 （2）组织学鉴定：动物处死后，大鼠用左心室—主动脉插管（右心室开孔， 便于灌洗液流出），先后用生理盐水和 4%多聚甲醛溶液灌流固定, 取脑作冰冻连 续切片，观察确定注射位置是否准确。（第二部分实验详述） Ⅱ 大鼠脑切片制备
五、讨论分析 立体定位技术指利颅骨的标志/参考点，确定皮层下某些神经结构的位置，
对脑进行定向的刺激、破坏、药物注射、引导电位等研究。为此，掌握这门技术 对于日后研究工作有非常大的帮助。
本次实验注意点有如下： ①大鼠固定：实验开始前，我们一直尝试用耳杆进行固定，但始终不能对齐。 最后在老师的指导下，我们使用了耳杆适配器，很轻松的便完成了固定。 ②游标卡尺在使用时一定注意记录读数，便于后期再次定位。 ③注射染料时，速度一定要慢，给予组织充分的时间去吸收，不然极易导致 染料冒出。 ④微量注射针刺入大脑时，应注以针尖中后段为准，避免插入深度不足。 ⑤取大脑时，为了不伤及脑组织，应从脊髓处入手；并在基本暴露大脑后， 用钳子一并取出脑组织。 ⑥切片时，镊子等工具使用完后应放回操作箱中保温；且切片取出后，应迅 速将切片放入指定位置，以免融化。 此外，本次试验也有一些小的疑惑需要进行讨论： ①介于大鼠露骨较脆，可否不进行钻孔直接通过微量注射针打入染料。此法 可以避免因移动坐标尺导致的误差，同时也可以保证颅骨处于封闭状态避免染料 冒出。 ②本次实验采用的取大脑方法极易损坏小脑，不利于小脑相关实验的使用。
（2）固定上颌：将大鼠的上门牙塞进上齿固定板的槽内，旋紧螺丝。从各 方向推压动物头部，均不应出现移动。通过定位针的测量调节前后囟在同一矢状 线上，并使前后囟在同一水平线上。
4. 开颅：剪去头部的毛，用 75%酒精棉球作头部皮肤的消毒，沿矢状缝作 切口，剥离筋膜及肌肉，推开骨膜，并用 3%双氧水洗净，用干棉球擦拭，暴露 骨缝，止血。
脑立体定位技术及切片制备
一、实验目的 通过本实验，了解动物脑立体定位及切片制备，并基本掌握动物脑立体定位
技术及切片制作。 二、实验设备及要求
实验分两部分： Ⅰ 大鼠脑立体定位（纹状体）
[器材和药品] 立体定位仪、10％水合氯醛溶液、1ml 注射器、手术刀、粗剪刀、组织剪、 止血钳、牙科钻或骨钻、金属定位针、脱脂棉花、3%双氧水（H2O2）、生理盐水、 75%酒精，墨水。 [实验动物] 雄性 SD 大鼠（200-300 g） Ⅱ 大鼠脑切片制备 [器材和药品] 器械：手术刀、组织剪、止血钳、咬骨钳、无齿钳、5ml 注射器、6 号针头、 灌注瓶、恒冷切片机 液体：4％多聚甲醛溶液
实验者：丁力 学号：14211220036
日期：2014-9-27