涂膜保鲜实验方案

涂膜处理对萝卜保鲜效果的研究

一、实验目的

通过实验对萝卜在常温下进行贮藏保鲜的研究，对于菜农经济效益的增长，人们生活的方便和萝卜保质期的延长，具有重要的实际应用意义。本实验以青萝卜为实验材料，用壳聚糖为涂膜材料，研究常温下青萝卜在贮藏保鲜期间各种生理生化的变化，探讨出萝卜保鲜效果最佳时所涂壳聚糖膜浓度，尽可能延长萝卜的货架期和保鲜时间。

二、实验假设与理论依据

1.实验假设：壳聚糖对青萝卜的保鲜与萝卜的失水率、糠心率、腐烂率、呼吸强度、可溶性糖含量、Vc含量呈显著的相关。不同浓度的壳聚糖保鲜液对萝卜的保鲜程度有明显的影响。

2.理论依据：不同浓度的壳聚糖涂膜保鲜液形成的膜不同，对萝卜的保鲜效果不同。

三、实验对象、方法及手段

1.实验对象：青萝卜、壳聚糖（脱乙酰度95%）

2.实验方法：通过不同的实验处理组检测出的各种指标进行比较总结

3.检测手段（数据统计）：观察分析图对实验数据进行分析比较，得出实验结论。

四、实验过程

1.材料与方法

1.1实验材料

1.1.1青萝卜

实验材料选用无病虫害、无机械损伤、果形均匀、大小均等的青萝卜为实验材料，用自来水清洗干净，削去顶芽，晾干涂抹。

1.1.2壳聚糖

从虾壳中提取的脱乙酰度为95%的壳聚糖。

1.2主要实验试剂及仪器

1.2.1试剂

壳聚糖、1.0%醋酸溶液（w/w）、0.2mol/L的NaOH、饱和BaCl2、1%的酚酞、0.1mol/l草酸溶液、无水葡萄糖、蒽酮、乙酸乙酯、浓硫酸（比重1.84）、10µg/mLVc

标准溶液、10g/L草酸溶液、2,6-二氯酚靛酚、20 g/L草酸溶液、醋酸锌、亚铁氰化钾

1.2.2仪器

100ml容量瓶、25ml容量瓶、20ml刻度试管、1000ml棕色容量瓶、150ml 有塞三角瓶、250ml锥形瓶、水浴箱、分析天平、酸碱式滴定管、722型分光光度计、移液管、硬度测定仪

1.3实验具体方法

1.3.1原材料处理方法

1.3.1.1涂膜保鲜液的配制

该实验选择3种不同浓度的壳聚糖涂膜保鲜液，即将壳聚糖溶解于1.0%的醋酸溶液（w/w）中制备而成的0.5%、1.0%、1.5%的壳聚糖保鲜液。将上述三种不同浓度的处理液处理分别编号为A、B、C，清水处理为对照组CK。

1.3.1.2青萝卜的处理

将挑选合格的青萝卜分别在三种不同浓度的涂膜保鲜液中浸泡3min后取出沥干。

1.3.2包装及贮藏

将处理晾干后的青萝卜分别定量地用保鲜袋封装，每袋装0.7㎏，且置于常温下贮藏，在贮藏的过程中每隔5d检测失水率、糠心率、腐烂率、呼吸强度、可溶性糖含量、Vc含量等指标。

1.4测定方法

1.4.1失水率

采用称重法失水率（%）=（贮藏之前重量—贮藏之后重量）/贮藏之前重量×100%

1.4.2糠心率

采用个数法：萝卜糠心直径为整个萝卜直径的四分之一则可将其看作为糠心。糠心率（%）=（糠心个数/检查总数）×100%

1.4.3腐烂率

采用个数法腐烂率（%）=（腐烂个数/检查总数）×100%

1.4.4呼吸强度

采用静置法[1]江西农业大学食品学院食品科学与工程专业教研室编.果蔬贮藏加工学实验指导教程[M].江西农业大学，2006-9.

用移液管吸取0.4N的NaOH20.0mL放入培养皿中并将其立即放入干燥器中，然后把待测青萝卜样品放到干燥器上面的隔板上，立即密封。计时1h后，立即将培养皿取出，把NaOH溶液转移至三角瓶中，向三角瓶中加入饱和BaCl2溶液5.0mL及1%的酚酞2滴，用0.2N的草酸溶液滴定，直至红色完全褪去，记录草酸用量。用不加青萝卜样品但仍加入饱和BaCl2溶液和酚酞试剂的NaOH 溶液作空白对照。以上操作均平行进行3次。

呼吸强度（CO

2mg·(kg(鲜重)·h)-1）=(V

1

-V

2

)N×22/(W×t)

式中：V1---滴定空白对照消耗的草酸溶液体积，ml；

V2---滴定NaOH消耗的草酸溶液体积，ml；

N---H2C204当量浓度，N；

W---实验样品质量,ɡ；

t---测定时间，h；

22---CO2的毫克当量.

1.4.5可溶性糖含量

采用蒽酮法

葡萄糖标准溶液（ 100 μg/mL ）：准确称取 100 mg 分析纯无水葡萄糖，溶于蒸馏水并定容至 100 mL ，使用时再稀释 10 倍（ 100 μg/mL ）。

蒽酮乙酸乙酯试剂：取分析纯蒽酮1g，溶于50mL乙酸乙酯中，贮于棕色瓶中，在黑暗中可保存数周，如有结晶析出，可微热溶解。

浓硫酸（比重1.84）

1.4.5.2标准曲线的制作：取20mL刻度试管11支，从0－10分别编号，按表1加入标准的葡萄糖溶液和水，然后按顺序向试管中加入0.5mL蒽酮乙酸乙酯试剂和5mL浓硫酸，充分振荡，立即将试管放入沸水浴中，逐管准确保温1min取出后自然冷却至室温，以空白作参比，在630nm波长下测其光密度，以光密度为纵坐标，以糖含量为横坐标，绘制标准曲线，并求出标准线性方程。

表1 蒽酮法测可溶性糖制作标准曲线的试剂量

试剂

管号

0 1 、 2 3 、 4 5 、 6 7 、 8 9 、 10

100μg/mL 葡萄糖标准液

（ mL ）

0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0

蒸馏水（ mL ） 2.0 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0 葡萄糖量（μg ）0 20 40 60 80 100 1.4.5.3可溶性糖的提取：取新鲜样品，破碎混匀，称取0.1－0.3g，共3份，分别放入3支刻度试管中，加入5-10mL 蒸馏水，塑料薄膜封口，于沸水中提取30min （提取2次），提取液过滤入25mL容量瓶中，反复冲洗试管及残渣，定容至刻度。

1.4.5.4显色测定：吸取样品提取液0.5mL于20mL刻度试管中（重复2次），加蒸馏水1.5mL，以下步骤与标准曲线测定相同，测定样品的光密度。

1.4.5.5计算可溶性糖的含量，计算公式如下：

可溶性糖含量（%）=（C×V）/（W×106）×100%

式中：C---标准方程求得糖量,ug;

V---提取液量,mL;

W一组织重量,g.