拟南芥MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析(1)

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植物学报Chinese Bulletin of Botany 2009, 44 (1): 52−58, www.chinbullbotany.com

收稿日期: 2008-06-22; 接受日期: 2008-06-26

基金项目: 国家自然科学基金(No. 30625002和No. 30628012)†共同第一作者。* 通讯作者。E-mail: qulj@pku.edu.cn

.研究论文.

拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析

侯仙慧1†, 丁茂予1†, 刘赛男1, 李林川1, 瞿礼嘉1, 2*

北京大学生命科学学院, 北京大学-耶鲁大学植物分子遗传和农业生物技术联合研究中心, 蛋白质工程和植物基因工程国家重点实验

室, 北京100871; 2国家植物基因研究中心(北京), 北京100101

摘要 生长素是最重要的植物激素之一, 参与了植物生长发育的各个方面。植物体内游离的IAA是生长素的主要活性形式,在IAA甲基转移酶1(IAMT1)的作用下, IAA可以转变为IAA甲酯 (MeIAA)。MeIAA本身没有活性, 在植物体内的MeIAA酯解酶作用下可以重新转变为IAA。 MeIAA是非极性分子, 能够在植物体内自由扩散。利用MeIAA的这种特殊性质筛选突变体, 可以分离到MeIAA代谢途径或者IAA途径中新的成分。我们对拟南芥种子进行EMS诱变, 通过观察黑暗下下胚轴的生长情况, 筛选MeIAA的抗性突变体。我们成功分离到了8株可能的抗性突变体, 并对其中的一个Methyl-IAA resistant 1 (mir1) 突变体进行了深入分析。MeIAA抗性突变体的筛选将为进一步了解MeIAA的代谢、IAA稳态调控和响应机理提供新的材料。

关键词 生长素, 图位克隆, MeIAA, 抗性突变体

侯仙慧, 丁茂予, 刘赛男, 李林川, 瞿礼嘉 (2009). 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析. 植物学报 44, 52−58.

生长素(auxin)是由荷兰科学家F. W. Went通过燕麦胚芽鞘弯曲实验法 (Avena curvature test) 首次分离出来的(Went, 1926)。随后人们提取并鉴定得到了第1种生长素——吲哚-3-乙酸(IAA)。大量的实验表明IAA在高等植物中广泛存在, 是植物体内主要的生长素(Teale et al., 2006)。IAA调控植物体内生长发育的许多过程, 如促进侧根形成、维管组织分化、胚胎发育、顶端优势及植物向性反应等(Woodward and Bartel,2005a)。 生长素在体内主要通过色氨酸依赖途径进行生物合成, 可以与糖、氨基酸、肽以及醇形成缀合物进行贮存或运输, 也可以通过氧化失去激素活性 (Ljung etal., 2001)。 生长素是一种极性分子, 是目前发现的唯一需要极性运输的激素, PIN蛋白家族是主要的生长素输出载体, 而AUX1蛋白是生长素输入载体, PIN和AUX1蛋白在细胞膜上具有不对称分布, 受到囊泡运输的调控(Leyser, 2003; Hobbie, 2006)。 生长素信号转导主要是由SCFTIR1介导的蛋白泛素降解途径, 高浓度的IAA促进其受体TIR1和转录抑制因子AUX/IAA家族蛋白的

结合而使AUX/IAA家族蛋白泛素化降解, 从而解除了对转录因子ARF家族蛋白的转录抑制, 进而激活或者抑制下游基因的表达 (Woodward and Bartel, 2005b; Tanet al., 2007)。

本实验室发现拟南芥IAA carboxyl methyltran-sferase1(IAMT1)基因的一个功能获得性突变体iamt1-D具有叶片上卷表型 (Qin et al., 2005)。 当通过RNAi降低IAMT1的表达时, 转基因植株叶片下卷。而且,IAMT1的表达在叶片发育过程中受到严格的时空调控。叶片卷曲程度和IAMT1表达水平相关表明, 生长素的稳态调控对于扁平叶片的形成起重要作用 (Qin et al.,2005)。 在体外, IAMT1蛋白能够把IAA转化为IAA甲酯 (MeIAA)。Li等通过研究auxin resistant 1 (aux1)突变体对MeIAA、IAA和NAA的不同响应, 发现MeIAA与其它IAA缀合物一样, 也是没有活性的。但是由于MeIAA是非极性的, 所以其进入细胞同NAA一样不需要载体协助 (Li et al., 2008a)。MeIAA的运动性暗示它与IAA糖、氨基酸缀合物不同, 不是作为贮存或者降

53侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析

解的形式, 而是通过微调IAA的分布, 从而影响植物发育过程, 如叶片的形态等 (Li et al., 2008a)。Yang等研究表明MeIAA进入细胞后, 通过细胞内的一个或几个可能的酯解酶酯解后重新转变为IAA起作用(Yang etal., 2008)。他们鉴定了拟南芥AtMES17基因, 其编码一个MeIAA酯解酶, 在体外该蛋白能够将MeIAA转变为IAA。AtMES17的缺失突变体表现出对MeIAA的显著抗性, 而过量表达AtMES17的转基因植株则对MeIAA具有更强的敏感性, 同时这两种株系对IAA的响应正常 (Yang et al., 2008)。

利用激素突变体来研究激素代谢及其分子机制已有不少成功的范例, 突变体分析不仅可以对某一复杂生物学过程提出合理的假设, 而且可更进一步精确找出研究生理和发育问题的新方法。由于在黑暗下MeIAA比IAA具有更强的下胚轴抑制能力, 利用MeIAA筛选生长素抗性突变体将更加简单易行。本实验通过筛选经EMS诱变产生的拟南芥突变体种子, 外源施加一定浓度的MeIAA, 在黑暗下观察下胚轴生长, 筛选对MeIAA具有抗性的突变体, 并做进一步的遗传和基因定位分析, 为深入了解IAA的甲基化过程在IAA信号转导和稳态调控中的作用提供新的方法。

1 材料与方法

1.1 植物材料和培养条件

本研究中所用的拟南芥(Arabidopsis thaliana)除用于图位克隆的为Landsberg (Ler) 野生型外, 其余的都为Co-lumbia (Col-0) 背景。处理方法和培养条件见Li等论文 (Li et al., 2008b)。

1.2 EMS诱变

将2.5 g拟南芥种子均分在2个50 mL的Falcon试管中, 加入40 mL去离子水室温过夜。向每个试管中加入120 µL EMS (Sigma), 使EMS终浓度为0.3%。在通风橱内翻转摇匀15个小时。再用40 mL去离子水漂洗种子6次以上, 最后将种子用0.1% 琼脂均匀悬浮, 铺在约20个培养箱中。单箱收获得到M2代种子, 编号,室温保存。

1.3 MeIAA抗性突变体的筛选

将表面消毒后的种子点播在含有2.5 µmol

.L-1 MeIAA(Sigma)的MS培养基上, 用锡箔纸包裹避光。4°C春化2天, 然后放入22°C培养箱中培养4天, 挑取下胚轴长度远远超过平均值的小苗(图1), 转移到MS培养基上,恢复培养5天, 再转移到土中。一个月后单收种子, 在MeIAA培养基上鉴定该抗性是否可以遗传。

1.4 突变体温度转移实验

将种子表面消毒后, 铺在MS培养基上, 4°C春化2天,然后转到22°C, 水平萌发3天。转移大约20棵小苗到新的MS平板上, 共转移2块。将其中一块仍然放在22°C条件下, 另一块转至29°C, 垂直培养3天。比较2个生长条件下的植株下胚轴长度, 并统计。

1.5 图位克隆

图位克隆(map-based cloning)参考Lukowitz 等(2000)描述的方法。实验中所用Marker均来自拟南芥网站(www.arabidopsis.org)。

2 结果与分析

2.1MeIAA抗性突变体筛选条件的确定

在进行大规模突变体筛选之前, 我们首先比较了IAA和MeIAA对黑暗下生长的拟南芥幼苗的下胚轴抑制程度。在0.1-25 µmol

.L-1浓度范围内, 随着激素浓度的升高,IAA和MeIAA对下胚轴的抑制程度都增强, 但是MeIAA的抑制能力更强, 两者在2.5-10 µmol

.L-1范围内差异最为显著(图1A)。在2.5 µmol

.L-1 MeIAA浓度下, 拟南芥幼苗下胚轴长约为MS培养基上的10%。在大于2.5 µmol

.L-1的浓度下, MeIAA对下胚轴的抑制程度随浓度变化很小(图1A)。综合上述两种现象, 我们选取2.5 µmol

.L-1的MeIAA处理经EMS诱变的M1代种子进行筛选。

野生型幼苗在2.5 µmol

.L-1 MeIAA培养基上暗培

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