酿酒酵母的发酵过程优化
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酿酒酵母的发酵过程优化
摘要:分批培养是指在一个密闭系统内投入有限数量的营养物质后,接入少量微生物菌种进行培养,使微生物生长繁殖,在特定条件下完成一个生长周期的微生物培养方法。补料分批培养则是在培养过程中间歇或连续的添加新鲜培养基。
本次实验分别通过补料分批培养与分批培养,测定相应的pH值、溶氧量、生物量、残糖量等,并比较分批培养和分批补料培养酵母细胞发酵过程的过程规律,从而达到优化酵母的发酵过程的目的。
关键字:分批培养;补料分批培养;酵母发酵过程
Optimiztion of the yeast fermentation process
Mo Xiaoyu
(Changshu Institute of Technology Jiangsu Province Changshu 215500 )
Abstract:Batch culture is a method to culture microorganism by put limited nutrient substance into closed-system.Then access to culture a few microorganism strains, make microbes grow, let them to complete a growth cycle of microorganism training method in particular conditions. Fed-batch cultivation is a method to culture microorganism by adding fresh medium in the process of cultivation intermittently or continuously.
This experiment was through the batch culture and fed-batch cultivation,determination of the corresponding pH value, oxygen, biomass, residual sugar content, and more partial training and fed-batch culture training yeast cells of the fermentation process rules, so as to optimize the yeast fermentation process.
Keywords:batch culture; fed-batch cultivation; yeast fermentation process
酵母菌为单细胞微生物,属真菌类。从酵母菌分类系统来讲属于真酵母属。酿酒酵母具有安全性好,高产量和高的抑制剂耐受性等优点,故一直在生物乙醇工业中有重要作用[1]。通常以出芽繁殖。繁殖速度较霉菌快,与原生动物不同,有坚韧的细胞壁,菌体比细菌大且形态复杂。繁殖时有的能进行二等份分裂,有的种类能产生于囊孢子。其形态因培养基种类及培养时间的长短而异,分别为圆形、卵形、椭圆形或腊肠形等,内有细胞核、液泡和颗粒物质[2]。
酵母菌在自然界分布甚广,为发酵工业酿酒酵母为兼性厌氧型微生物,利用酵母菌发酵生产工业乙醇具有辽阔的应用前景。发酵培养基是酿酒酵母营养和能量的来源,其组分在发酵过程中无疑起着更为关键的作用[3]。从普通酿酒酵母菌株的营养条件出发进行研究,在其他的条件均相同的情况下,通过分批培养与补料分批培养(补料分批培养在培养至残糖量最低时进行补料)培养相同的普通酵母菌株。由于在分批培养中菌体生长无法控制,容易有副产物形成,因而影响发酵产率。补料培养在有效地利用原料、减少副产物、提高产物生产水平方面均有显著的效果,而且也是生产中比较切实可行的方法[4]。通过发酵培养过程中得到的pH值、溶氧量、生物量、残糖量等数据,进行处理与分析,以期得到优化酿酒酵母发酵过程的方法。
1材料与方法
1.1菌种
实验室自备的酿酒酵母
1.2 培养基
PDA(斜面、平板培养基):马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂15-20g,水1000ml,自然pH。制法:马铃薯去皮后,切成小块,加水煮烂(煮沸20-30min,能被玻璃棒戳破即可),用4层纱布过滤,再加糖和琼脂,加热溶化后在补足水分至1000 ml,121℃灭菌20min。
种子培养基(YEPD培养基):酵母粉10g,蛋白胨20g,葡萄糖20g,蒸馏水1000mL,pH6.0,121℃湿热灭菌20min。
发酵培养基:YEPD培养基。酵母粉10g,蛋白胨20g,葡萄糖20g,蒸馏水1000mL,pH6.0,121℃湿热灭菌20min。
1.3仪器与设备
发酵罐、高压蒸汽灭菌锅、移液管、试管架、电子天平,烧杯,锥形瓶,量筒,试管,玻璃棒,培养皿,移液管、注射器(取样用)、离心管等。
1.4试剂
3,5-二硝基水杨酸等。
1.5方法
1.5.1 培养基配制、分装和灭菌
1.5.1.1 配制PDA培养基,121℃灭菌20min,倒无菌平板活化菌种。配制YEPD培养基,并进行分装灭菌。
1.5.1.2 10ml培养基分装到50ml三角瓶中(培养一级种子),20ml培养基分装到100ml三角瓶中,(培养二级种子,作为分批培养种子液)。20ml培养基分装到100ml三角瓶中,(培养二级种子,作为补料分批培养种子液)。121℃灭菌20min。
1.5.1.3 发酵罐培养基分装及灭菌
将发酵罐中加入2000ml培养基,盖好盖子,pH电极、溶氧电极等经校正后插入发酵罐中,取样口、进气口用牛皮纸扎好,用夹子把每个直通液面以下的管子夹紧,121℃灭菌20min。
1.5.2 玻璃器皿包装及灭菌
将培养皿、移液管包装好121℃灭菌20min。
1.5.3 种子液的制备
自斜面菌种挑取酵母菌体,接入装有10 ml培养基的50ml三角瓶中,30℃,180r/min培养18h。将上述培养好的种子液分别接入两个装有20ml培养基的100ml三角瓶中,接种量10%,30℃,180r/min培养18h。
1.5.4 接种
将培养好的种子液以10%(v/v)接种量接种到发酵罐培养基中,180r/min,30℃培养48h,调节通气量为3L/min。
1.5.5 实时监测pH和溶氧量
从发酵开始,每隔2h在线读取发酵罐中发酵液pH,及溶解氧量。
1.5.6 补料
在细胞生长的对数生长期中后期一次性添加20g葡萄糖到发酵罐中。
1.5.7 葡萄糖标准曲线的测定
葡萄糖标准曲线的测定用DNS法。
3,5-二硝基水杨酸试剂:
甲液:溶解6.9g结晶酚于15.2ml10%氢氧化钠溶液中,并用水稀释至69ml,在此溶液中加6.9g亚硫酸氢钠。
乙液:称取255g酒石酸钾钠加到300ml10%氢氧化钠溶液中,再加入880ml1%3,5二硝基水杨酸溶液。
将甲乙二溶液混合既得黄色试剂,储于棕色瓶中备用。在室温放置7-10天以后使用。
葡萄糖标准溶液的配制:
准确称取100mg分析纯的无水葡萄糖(预先在105℃干燥至恒重),用少量蒸馏水溶解后,定