转抗仔猪腹泻基因_1_盐藻糖转移酶克隆猪的胰岛素样生长因子2表达分析
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转抗仔猪腹泻基因α1-盐藻糖转移酶克隆猪的
胰岛素样生长因子2表达分析
窦金焕1,
2,李钟淑2,王雅春1,董易春1,周传丽1,刘铮铸1,3,张勤1,俞英1(1.中国农业大学动物科技学院,
北京 100193;2.延边大学农学院,吉林延吉 133000;3.河北师范科技学院,
河北秦皇岛 066004)摘要:为探求转基因克隆猪存在早期死亡率高及生长发育异常等原因,本研究首次以转抗仔猪腹泻基因α1-盐藻糖转移酶(fucosyl transferase 1,FUT1)阳性及阴性克隆猪的脾脏、肝脏及腿肌组织为试验材料,利用qRT-PCR技术定量检测影响胎儿及仔猪早期生长发育的印记基因胰岛素样生长因子2(insulin-like growth factor 2,IGF2)的表达情况,并以普通妊娠分娩猪为对照,分析其差异及变化。结果显示,IGF2基因在3类仔猪中均存在组织表达差异性,其中肝脏组织中表达量最高,腿肌组织中表达量最低。分析发现,IGF2基因在转FUT1阳性克隆猪脾脏组织中的表达量显著高于转FUT1阴性克隆猪(P<0.05),在腿肌组织中则显著低于阴性克隆猪(P<0.05)。此外,转FUT1阴性克隆猪的脾脏、肝脏组织IGF2表达量分别极显著低于、高于普通猪(P<0.01)。提示IGF2基因的表达变化可能与克隆猪早期生活力弱有关,但与转FUT1基因克隆猪早期死亡率高的关系还需进一步研究。
关键词:转FUT1基因克隆猪;抗仔猪腹泻;印记基因IGF
2;表达差异中图分类号:S814.8 文献标识码:A 文章编号:1671-7236(2014)12-0001-
06收稿日期:2014-04-
04作者简介:窦金焕(1
990-),女,内蒙古人,硕士生,研究方向:动物遗传育种。
通信作者:李钟淑,博士,教授,研究方向:动物遗传育种。
E-m
ail:lizs1962@yahoo.com俞英,博士,副教授,博士生导师,研究方向:动物疾病抗性的表观遗传调控及动物分子抗病育种。
E-mail:yuying
@cau.edu.cn基金项目:国家农业部转基因重点项目资金(2009ZX08009-
146B);长江学者与创新团队发展计划(I
RT1191)。 1
980年Gordon等采用受精卵原核微注射方法将外源基因成功导入小鼠(Mus musculus),并获得携带该导入基因的小鼠后代。之后,转基因动物得到越来越多的关注,并相继成功应用于大鼠(Rattusnorvegicus)、绵羊(Ovis aries)及猪(Sus scrof
a)等物种(Hammer等,1985)。1997年,Dolly羊的诞生带动了体细胞克隆技术日新月异的发展(Mclaren,2000);同年7月,Wilmut等获得了胚胎细胞克隆与转基因技术相结合的转基因克隆绵羊Polly
(Schnieke等,1997;Wilmut等,1997)。至此,转基因克隆技术为高效、低成本获得大量动物提供了可能。尽管如此,目前获得的大部分转基因克隆动物早期生长发育有异于常规生产的动物,突出表现为孕期流产率高、围产期死亡率高、出生后发病率和死亡率高等现象。对于体细胞克隆猪而言,其成活率仅2%~4%。研究发现,印记基因(imprinting
g
ene)胰岛素样生长因子2(insulin-like growth fac-tor 2,IGF2)的异常表达可能会影响克隆动物胚胎期的生长发育,甚至导致死亡(L
amberson等,1996)。IGF2基因位于猪的2号染色体上,是一种母源印记、父源表达的印记基因。IGF2编码的蛋白是一种重要的内源性胚胎因子,影响胎儿的生长发育,在细胞增殖、分化及细胞程序性死亡过程中发挥着关键作用(Lamberson等,1996)。已有研究结果表明,克隆猪IGF2基因内含子3的碱基突变、印记控制区的DNA甲基化变化等原因,可能影响该基因在克隆猪体内的表达,进而影响胎儿和仔猪阶段的生长发育(F
ontanesi等,2010;Zhao等,2013)。仔猪腹泻是猪的常见病及多发病,严重影响现代养猪业的健康发展。研究结果发现,α1-盐藻糖转移酶(fucosyl transferase 1,FUT1)基因编码区第307位的单碱基突变(G→A)
是引起仔猪断奶后腹泻与否的致因突变(Mainil等,2002)。针对FUT1基因,本课题组前期将其抗性基因型AA型转入易感基因型GG型猪的基因组内,并利用体细胞克隆技术成功获得13头转FUT1基因AA基因型的阳性克隆猪(简称转FUT1基因阳性克隆猪)及2头未导入该基因型的阴性克隆猪(简称阴性克隆猪)。鉴于13头转FUT1基因阳性克隆猪至断奶时仅存活1头,2头阴性克隆猪1头正常、1头较弱,
本研究以此15头转·
1·中国畜牧兽医 2014年第41卷第12期生物技术
FUT1基因克隆猪为试验材料,并以自然妊娠分娩仔猪(简称普通猪)为对照,检测印记基因IGF2在3类猪不同组织中的表达差异,为分析转基因克隆猪成活率低及生长发育异常寻找原因。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 试验动物 试验动物为分娩后30日龄内的19头大白仔猪(表1),具体为本课题组前期在北京大兴区某种猪场获得的(Ⅰ)13头转FUT1基因阳性克隆猪(1-1号至1-13号)、(Ⅱ)2头转基因阴性克隆猪(2-1号、2-2号)、(Ⅲ)对照用的4头普通大白仔猪(3-1号至3-4号)(北京顺义区某种猪场)。宰后立即取脾脏、腿肌及肝脏组织样,-80℃保存备用。
表1 试验大白猪采样时间表
转基因阳性克隆猪转基因阴性克隆猪普通猪编号存活/采样日龄(d)编号采样日龄(d)编号采样日龄(d)1-1 20 2-1 29 3-1 21-3 22 2-2 20 3-2 21-5 30 3-3 21-6 18 3-4 21-2、1-9、1-10、1-11、1-12 0
1-4、1-7、1-8、1-13 2
注:转FUT1基因阳性克隆猪中,除1-5号为采样日龄外,其余均为存活时间并即时采样;阴性克隆猪及普通猪均为采样日龄。
1.1.2 试剂及仪器 组织样总RNA提取试剂盒(Trizol)购自Invitrogen公司;反转录试剂盒购自
TaKaRa公司;荧光定量PCR SYBR GreenⅠ试剂盒购自Roche公司。离心机(Eppendorf公司);Al-pha Innotech凝胶成像系统(Alphalmagen公司);PCR仪(Bio-Rad公司)。其他常规试剂及试验用设备均由中国农业大学材料供应科提供。
1.2 方法
1.2.1 组织样总RNA提取及反转录 采用Trizol试剂盒提取19头试验用猪的脾脏、腿肌及肝脏组织的总RNA,每份样本取等量总RNA,用反转录试剂盒将其中的mRNA反转录为cDNA。
1.2.2 PCR引物 猪IGF2基因(GenBank登录号:396916)及内参基因GAPDH(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase)的序列从GenBank数据库获得,使用Oligo 6.0软件设计并检测引物质量,引物序列见表2。引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。
表2 引物序列信息
基因引物序列(5′→3′) 片段长度(bp)退火温度(℃)IGF2F:CGTGGCATCGTGGAAGAG 146 58
R:AGGTGTCATAGCGGAAGAAC
GAPDH F:GAAGGTCGGAGTGAACGGAT 104 58
R:GGTGGAATCATACTGGAACAT
1.2.3 引物扩增效率检测 将cDNA模板以1/2至(1/2)5成倍比稀释,共5个浓度梯度,以每个梯度的cDNA作为模板进行实时荧光定量PCR,每个梯度重复3次。反应结束后,根据Ct值及稀释梯度制作标准曲线,检测IGF2基因引物对的扩增效率。1.2.4 实时荧光定量PCR扩增及相对表达量计算 实时荧光定量PCR反应采用SYBR GreenⅠ试剂盒,扩增反应体系为20μL:SYBR Green Master Mix10μL,Nuclease-free H2O 6μL,上、下游引物(10μmol/L)各1μL,稀释10倍的cDNA 2μL。扩增程序为:95℃预变性5min;95℃变性10s,60℃退火10s,72℃延伸15s,40个循环;熔解曲线形成:95℃5s,65℃1min,97℃10s;最后40℃10s。PCR扩增结束后,根据目的基因及内参基因的荧光曲线Ct值,利用公式2-ΔΔCt计算IGF2基因的相对表达量。2 结果与分析
2.1 总RNA提取及反转录 提取19头试验猪脾脏、肝脏及肌肉组织的总RNA后,分别溶入无RNA酶的ddH2O中,电泳检测结果显示,总RNA的28S、18S和5S3条带清晰整齐,表明没有降解,其中转基因阳性克隆猪部分个体脾脏组织的总RNA电泳检测图见图1A。NANODROP 2000紫外分光光度计检测表明,所有样品D260nm/D280nm均在1.8~2.0之间,D260nm/D230nm在2.0~2.2之间,
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·生物技术中国畜牧兽医 2014年第41卷第12期