热板法观察药物的镇痛作用
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（早期，足量，反复给药） 胆碱酯酶复活药：碘解磷定，氯解磷定
28
阿托品化
阿托品中毒
神经系统 意识清醒或模糊
皮肤
颜面潮红、干燥
谵妄、幻觉、双手抓 空、昏迷
紫红、干燥
瞳孔
有小扩大不再小 极度扩大
体温
正常或轻度升高 高热
心率
增快≤120，脉搏快 心动过速、甚至室颤 而有力
29
实验动物
30
实验材料
测瞳尺 注射器 ５％精制敌百虫溶液 ０.２％硫酸阿托品溶液 ２.５％解磷定溶液
热板法观察药物的镇痛作用
机能实验室
25.05.2020
实验目的
了解热板法筛选新药或比较各种 药物镇痛效价的方法。
2
阿片（opium）
3
含脑啡肽的神经元
作 用 机 制 示 冲动→ 意 图 痛觉感受神经元
谷氨酸、SP
镇痛药
接受神经元
受体
4
实验动物
小鼠，雌性，18～ 25g
5
实验材料
智能热板仪 0.2%盐酸吗啡 苦味酸溶液 生理盐水 注射器
20
注意事项
醋酸溶液必须现配。 结果可以班统计，当给药组比对照组的
扭体发生率减少50%以上时，才毒及其解救
25.05.2020
实验目的
观察有机磷农药中毒的症状及阿托 品和解磷定的作用。
23
25
中毒机制
有机磷农药 — 胆碱酯酶 磷酰化胆碱酯酶
乙酰胆碱
乙酸 胆碱
6
实验方法
智能热板仪温度控制在(55±0.5℃)并要 保持热板仪表面干燥
筛选小鼠 小鼠放入热板仪→测定其痛觉反应时间 10只入选6只→并记录正常痛阈值
7
实验方法
筛选原则： 痛阈值为从小鼠放入热板到出现舔后足
现象的时间，用秒表计时。 放入热板后，若小鼠跳跃者剔除。 痛阈时间应在10～30S之间，否则剔除。 应测两次痛阈时间，取均值，但需注意
31
实验方法
取家兔一只，称重。观察记录：活动情 况、呼吸、瞳孔大小、唾液分泌、大小 便、肌张力及有无肌震颤。
耳缘静脉注射5%敌百虫 2.0ml/kg观察记 录各指标。
中毒明显后，耳缘静脉注射0.2%硫酸阿 托品溶液1.0ml/kg观察记录各指标。
耳缘静脉注射2.5 %解磷定溶液2.0ml/kg。
32
实验组和对照组痛阈提高百分率
10
不同时间所测得的痛阈平均值计算痛阈提高百分率。
痛阈提 高 用百 药分 用 后率 药 平 用 前 均药 平 痛前 均 阈平 痛 值 1均 0 阈 % 0痛
11
注意事项
避免实验周转环境的改变，如室温、光 线、声音。
小鼠应选雌性。 对给药后60秒没有出现疼痛表现的应按
60秒计，以防小鼠烫伤。
12
扭体法观察药物的镇痛作用
25.05.2020
实验目的
学习用腹腔注射刺激性物质引起扭体反应 来筛选镇痛药的方法。
14
实验动物
小鼠（18～25g)
15
实验材料
大烧杯 注射器 秒表 0.1%盐酸吗啡 4% 阿司匹林 0.6%醋酸 生理盐水 苦味酸溶液
16
实验方法
取3只小鼠—编号—称重 甲鼠—皮下注射吗啡0.15ml/10g
毒蕈碱样、烟碱样和中枢神经系统症状。 磷酰化胆碱酶酯酶72小时老化，不易复能。
26
急性中毒的治疗原则
清除毒物，避免继续吸收 脱离中毒现场，应用温水或肥皂水清洗
染毒皮肤；对经口中毒者，可用2%碳酸氢钠 或1%食盐水反复洗胃；再用硫酸镁导泻。 对症治疗减轻中毒症状
27
急性中毒的解救原则
药物解救 M受体阻断药：阿托品
两次测定的时间间隔应超过5min。
8
实验方法
实验组3只，腹腔注射吗啡0.1ml/10g 选取6只小鼠，编号
对照组3只，腹腔注射生理盐水0.1ml/10g 给药15，30，45，60分钟后分别测定小鼠痛阈值
9
实验结果
组别 体重 药量
痛觉反应时间（s）
（g）
用药前
用药后
15 30 45 60
实验组 1 2 3 平均 对照组 1 2 3 平均
实验结果
观察阶段 给药前
活动情况 呼吸情况 瞳孔 唾液 大小便次 肌张力 大小 分泌 数及形状 及震颤
给敌百虫后
给阿托品后
给解磷定后
33
注意事项
有机磷为剧毒药，切勿污染。 本实验为分析阿托品和解磷定的解救
机制而设计，临床上须将两药合用， 才有最好的效果。 有机磷农药静脉注射时中毒症状发生 快，抢救需及时。
乙鼠—灌胃4%阿司匹林0.15ml/10g 丙鼠—灌胃生理盐水0.15ml/10g 各小鼠30分钟后分别腹腔注射0.6%醋酸溶 液 0.1ml/10g 给药5-15分钟内各鼠有无扭体反应出现
17
18
实验结果
鼠号 体重（g） 药量
扭体次数
19
计算吗啡和阿司匹林的镇痛百分率
镇痛百 对 分照 率 对 组照 扭 给 组 体 药 扭 次 组 体 数 扭 1 次 0% 体 0 数
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阿托品化
阿托品中毒
神经系统 意识清醒或模糊
皮肤
颜面潮红、干燥
谵妄、幻觉、双手抓 空、昏迷
紫红、干燥
瞳孔
有小扩大不再小 极度扩大
体温
正常或轻度升高 高热
心率
增快≤120，脉搏快 心动过速、甚至室颤 而有力
29
实验动物
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实验材料
测瞳尺 注射器 ５％精制敌百虫溶液 ０.２％硫酸阿托品溶液 ２.５％解磷定溶液
热板法观察药物的镇痛作用
机能实验室
25.05.2020
实验目的
了解热板法筛选新药或比较各种 药物镇痛效价的方法。
2
阿片（opium）
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含脑啡肽的神经元
作 用 机 制 示 冲动→ 意 图 痛觉感受神经元
谷氨酸、SP
镇痛药
接受神经元
受体
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实验动物
小鼠，雌性，18～ 25g
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实验材料
智能热板仪 0.2%盐酸吗啡 苦味酸溶液 生理盐水 注射器
20
注意事项
醋酸溶液必须现配。 结果可以班统计，当给药组比对照组的
扭体发生率减少50%以上时，才毒及其解救
25.05.2020
实验目的
观察有机磷农药中毒的症状及阿托 品和解磷定的作用。
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中毒机制
有机磷农药 — 胆碱酯酶 磷酰化胆碱酯酶
乙酰胆碱
乙酸 胆碱
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实验方法
智能热板仪温度控制在(55±0.5℃)并要 保持热板仪表面干燥
筛选小鼠 小鼠放入热板仪→测定其痛觉反应时间 10只入选6只→并记录正常痛阈值
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实验方法
筛选原则： 痛阈值为从小鼠放入热板到出现舔后足
现象的时间，用秒表计时。 放入热板后，若小鼠跳跃者剔除。 痛阈时间应在10～30S之间，否则剔除。 应测两次痛阈时间，取均值，但需注意
31
实验方法
取家兔一只，称重。观察记录：活动情 况、呼吸、瞳孔大小、唾液分泌、大小 便、肌张力及有无肌震颤。
耳缘静脉注射5%敌百虫 2.0ml/kg观察记 录各指标。
中毒明显后，耳缘静脉注射0.2%硫酸阿 托品溶液1.0ml/kg观察记录各指标。
耳缘静脉注射2.5 %解磷定溶液2.0ml/kg。
32
实验组和对照组痛阈提高百分率
10
不同时间所测得的痛阈平均值计算痛阈提高百分率。
痛阈提 高 用百 药分 用 后率 药 平 用 前 均药 平 痛前 均 阈平 痛 值 1均 0 阈 % 0痛
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注意事项
避免实验周转环境的改变，如室温、光 线、声音。
小鼠应选雌性。 对给药后60秒没有出现疼痛表现的应按
60秒计，以防小鼠烫伤。
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扭体法观察药物的镇痛作用
25.05.2020
实验目的
学习用腹腔注射刺激性物质引起扭体反应 来筛选镇痛药的方法。
14
实验动物
小鼠（18～25g)
15
实验材料
大烧杯 注射器 秒表 0.1%盐酸吗啡 4% 阿司匹林 0.6%醋酸 生理盐水 苦味酸溶液
16
实验方法
取3只小鼠—编号—称重 甲鼠—皮下注射吗啡0.15ml/10g
毒蕈碱样、烟碱样和中枢神经系统症状。 磷酰化胆碱酶酯酶72小时老化，不易复能。
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急性中毒的治疗原则
清除毒物，避免继续吸收 脱离中毒现场，应用温水或肥皂水清洗
染毒皮肤；对经口中毒者，可用2%碳酸氢钠 或1%食盐水反复洗胃；再用硫酸镁导泻。 对症治疗减轻中毒症状
27
急性中毒的解救原则
药物解救 M受体阻断药：阿托品
两次测定的时间间隔应超过5min。
8
实验方法
实验组3只，腹腔注射吗啡0.1ml/10g 选取6只小鼠，编号
对照组3只，腹腔注射生理盐水0.1ml/10g 给药15，30，45，60分钟后分别测定小鼠痛阈值
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实验结果
组别 体重 药量
痛觉反应时间（s）
（g）
用药前
用药后
15 30 45 60
实验组 1 2 3 平均 对照组 1 2 3 平均
实验结果
观察阶段 给药前
活动情况 呼吸情况 瞳孔 唾液 大小便次 肌张力 大小 分泌 数及形状 及震颤
给敌百虫后
给阿托品后
给解磷定后
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注意事项
有机磷为剧毒药，切勿污染。 本实验为分析阿托品和解磷定的解救
机制而设计，临床上须将两药合用， 才有最好的效果。 有机磷农药静脉注射时中毒症状发生 快，抢救需及时。
乙鼠—灌胃4%阿司匹林0.15ml/10g 丙鼠—灌胃生理盐水0.15ml/10g 各小鼠30分钟后分别腹腔注射0.6%醋酸溶 液 0.1ml/10g 给药5-15分钟内各鼠有无扭体反应出现
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实验结果
鼠号 体重（g） 药量
扭体次数
19
计算吗啡和阿司匹林的镇痛百分率
镇痛百 对 分照 率 对 组照 扭 给 组 体 药 扭 次 组 体 数 扭 1 次 0% 体 0 数
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