家兔失血性休克模型

家兔失血性休克的模型

班级：2014级临床专升本班

组别：第2实验室第1组

组长：郭财进

组员：徐冰孙荣贺顾春晓

杨飞飞周志豪

家兔失血性休克的模型

郭财进徐冰孙荣贺顾春晓杨飞飞周志豪

（吉林医药学院：临床医学院2014级临床专升本班，吉林132013）

【摘要】学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其代偿机制，方法：家兔麻醉后，分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管，正确连接管道并用肝素冲洗，进入电脑程序，描记正常血压，快速放血，使血压维持60mmHg，血压稳定后，夹闭右颈总动脉，记录并观察血压变化。待血压稳定后，再放血，使血压降至40mmHg并维持，在维持期间的20min 内记录并观察血压变化。

【关键词】失血性休克、抢救。

【实验目的】

1.观察失血性休克发生后机体变化；

2.掌握急性失血性休克模型复制方法；

【实验原理】

动脉放血是循环血量减少，当少量失血时，有效循环血量减少可通过机体的一系列代偿措施（包括微循环的灌流量明显减少），使血压不出现明显的降低。但当快速失血量超过30%或大量失血时，有效循环血量急剧减少，超出机体的代偿能力，引起心输出量减少，血压降低和微循环严重和长时间缺血与缺氧，引起休克。

休克分为三期：微循环缺血期（缺血性缺氧期）；

微循环淤血期（淤血性缺氧期）；

微循环凝血期（播散性血管内凝血）；

【实验材料】

1.实验对象：成年健康家兔1只，体重

2.5kg左右。

2.实验药品：20%乌拉坦溶液，0.7%肝素，台式液。5%葡萄糖生理盐

水，

兔手术台，电子秤，微循环生物信号处理系统，静脉输液及中心静脉压测量装置一套，微循环观察装置，手术器械一套，动脉插管2个，气管插管、静脉插管各一个，5ml、20ml、50ml注射器各2支。

【实验步骤】

1. 麻醉与固定

（1.1）取成年家兔一只，称重，于耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦（以5ml/kg 体重计算麻醉剂总量），作全身麻醉。

（1.2）动物固定：将动物仰卧固定于兔手术台上，颈前部和腹部等手术部位剪毛备皮。

2. 气管插管颈部剪毛，正中切口，切口长约5~7cm，在气管上剪一“V”形切口，插入气管插管并结扎固定。气管插管一端通过压力换能器

3. 动脉插管

（3.1）逐层钝性分离颈前部组织，在胸锁乳突肌内侧下方分离出左侧颈总动脉，分离的长度约2.5～3cm。

（3.2）动脉插管前，远心端必须先结扎，用动脉夹夹住近心端。

（3.3）然后在颈总动脉远心端结扎部位用眼科剪刀剪开动脉，开口大小约为动脉壁的三分之一（注意遮掩，小心喷血）。该动脉导管已充满0.7％肝素溶液，并经三通开关与血压的压力换能器相连接。记录一段正常呼吸、血压曲线。

（3.4）少量放血，打开颈动脉插管，用肝素化的烧杯收集流出血液，并使放出血量为总血量的1/10（家兔的血量按80ml/kg计算，2.5kg家兔大概放20ml）关闭动脉夹，观察机体变化。

（3.5）大量放血；少量放血10分钟后开始大量放血，放血量大概为总血量的1/5或1/4，放血需缓慢进行（切勿过快），家兔正常血压为90mmHg,大量放血后血压维持在30mmHg~40mmHg（即失血性休克状态），观察家兔机体变化。

（3.6）比较两次放血后机体的血压、呼吸、心率有何变化。

（3.7）将注射器内的血液从颈外静脉输回原血。输血后，观察血压是否恢复正常。然后再输入生理盐水进行抢救，直至血压恢复正常。

失血性休克发生前后机体的各项指标变化

项目时间（min）心率（/min）呼吸（/min）血压（mmHg）

正常—280 51 90

小量放血0 283 49 79

5 281 50 80

10 276 54 88

大量放血0 247 67 32

5 253 77 35

10 264 72 37

【实验结果】机体少量失血时，可通过自身的代偿功能使血压和组织灌流不足保持基本正常，但当机体快速大量失血时，组织有效血液灌流不足而发生休克。随着失血量的加大，家兔的心率下降，血压下降，呼吸频率增加，后面在随着失血量的进一步加大，反射性的心率增快，呼吸频率增加，血压开始回升，即家兔对自己的血压有一定的代偿能力。最后把原来抽出来的血输回给家兔，家兔血压恢复正常。

【参考文献】

1、李韬，《医学功能学科—实验原理与方法》，人民卫生出版社，2010

年1月第1版第2次印刷；

2、李悦山，董伟华，梁仲培，《机能实验学》，北京大学医学出版社，

2005年8月第1版第1次印刷；