RNAi技术在植物功能基因组学中的研究进展
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目前, 植物功能基因组学中通过反向遗传学 获得功能缺失突变体鉴定基因功能的方法主要包 括反义、共抑制、转座子诱变技术等 [1]。虽然通过 这些技术已经成功鉴定了许多基因的功能, 但是 却存在着工作量大、非定向性和对多拷贝基因无 效等缺点, 限制了在植物功能基因组研究中的广 泛应用。因此, 急需开发新的快速简便、通用性 强、定向性强的获得功能缺失突变体的技术。以 RNA 干 扰 为 机 理 的 转 基 因 RNAi 技 术 和 病 毒 介 导 的 基 因 沉 默 技 术( Virus- induced gene silencing, VIGS) 应运而生。
1 RNA干扰技术概述
RNA 干扰( RNA interference, RNAi) 是指 dsRNA 分子引起的序列特异性降解靶基因 mRNA, 从而导 致内源靶基因沉默的机制。RNAi 首先发现于秀丽 隐杆线虫( C. elegans) 中, 将 dsRNA 注入线虫体内 后发现可抑制序列同源基因的表达, 抑制主要作
第 38 卷 第 1 期 2007 年 2 月 文章编号 1005- 9369( 2007) 01- 0119- 06
东北农业大学学报 Journal of Northeast Agricultural University
38(1): 119 ̄124 February 2007
RNAi 技术在植物功能基因组学中的研究进展
图 2 pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 载体的克隆策略 Fig. 2 Map and cloning str ategies for pHANNIBAL and pHELLSGATE
由图 2 可知, 来自于靶基因的 PCR 产 物 克 隆 至 pHANNIBAL 的多克隆位点上, 通过引物增加的 限制性酶切位点确保正义链及反义链臂部序列按着 正 确 的 方 向 构 建 到 载 体 上 。pHELLSGATE 载 体 上 的 attB1 和 attB2 序 列 使 正 义 及 反 义 序 列 的 重 组 过 程更加方便、快捷。pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 的 全 序 列 及 注 释 可 在 EMBL 上 查 询 。( Acc No: AJ311872 and AJ311874) 。
构在较多情况下都具有高效性。若靶基因序列两臂 的 长 度 不 一 致 , ihpRNA 结 构 末 端 有 未 配 对 碱 基 , 则不影响基因沉默效率[3,10]。 2.1.2 高通量载体的构建
为了高通量利用植物转基因 RNAi 技术, 研究者 构建了 pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 载体, 见图2。
由于小至 21 bp 的碱基同源就能引发 RNAi 机 制, 因此靶基因序列的位置选取至关重要, 如果根
据此规则, 想要沉默一个基因家族中的单独某个基 因须经过生物信息学方法进行同源性比对, 选取其 序列内部没有与其他基因具有同源性序列的片段, 或者同源片段的长度不超过 20 个以上碱基来作为 ihpRNA 臂部序列; 若要沉默整个基因家族的基因, 只需构建一个载体, 选取这一基因家族的一段共有 的保守区序列片段作为 ihpRNA 臂 部 序 列 。 然 而 , 这个规则仍然需要更多证据证实。若设计产生的 dsRNA 序列较短, 则可以从靶基因转录本起始密码 子 AUG 开始, 向下游寻找 AA 双核苷酸序列, 将此 双核苷酸序列和其下游相邻 19 个核苷酸作为序列 设计模板; 每个基因可选择特异性最强的 4~5 个 序列, 通过人工合成的方法作为载体的臂部结构。
收稿日期: 2005- 11- 28 基金项目: 国 家 自 然 科 学 基 金( 30471050) 作者简介: 李丽文( 1978-) , 女, 黑龙江人, 博士研究生, 研究 方向为植物分子生物学与植物 基 因 工 程 。E- mail: liliwen007@sohu. com * 通讯作者 E- mail: ymzhu@hotmail.com
因的表达产物对于大肠杆菌是致命的, 例如 DH5α( 但不包括 DB3.1) 可确保两个 ccdB 基因都 被两个臂部序列置换的质粒才能存活。氯霉素抗性 基因确保重组质粒内含子被保留, 筛选阳性克隆更 加快捷。正向及反向引物进行 PCR 扩增 EST 数据 库中的靶基因可模式化构建一些未知基因的 ihpRNA 结构载体。pHELLSGATE 是一个具高拷贝 数的双元载体, 重组体可直接转化农杆菌, 便于遗 传转化。此载体将被广泛作为一种高通量的构建 ihpRNA 结构模式系统[6,13-14]。 2.1.3 转基因 RNAi 技术的优缺点
pHANNIBAL 能 作 为 构 建 高 通 量 载 体 的 基 础 , 但用 pHANNIBAL 载体构建大量已知基因或未知基 因文库的载体就必须将每一个基因都按照正确的方 向 克 隆 到 发 夹 臂 序 列 位 置 , 非 常 繁 锁 。 pHELL- SGATE 克 服 了 pHANNIBAL 载 体 的 缺 点 。 它 可 使 PCR 产 物( 两 端 带 有 attB1 和 attB2 识 别 位 点) 通 过 同 源 重 组 的 方 式 直 接 整 合 到 含 attP1 和 attP2 位 点 的质粒上, 构建成 ihpRNA 结构的两个臂。ccdB 基
技术方面, 包括载体结构的优化策略、高通量载体的构建方法以及该技术的优缺点。病毒介导的基因沉默技术方
面包括病毒载体及宿主种类, 病毒感染方法, 试验对照的建立、环境因素的影响以及该技术的优缺点。
关键词: RNAi; 转基因 RNAi; 病毒介导的基因沉默
中图分类号: Q522
文献标识码: A
功能基因组计划的最主要目的是鉴定基因组 中每一个基因的生物学功能。研究基因功能的方 法主要分为两类: 通过分析基因差异表达鉴定基 因功能和通过反向遗传学鉴定基因功能。
转基因 RNAi 技术是一种转录后水平的基因沉 默技术。通过构建可转录为 dsRNA 的植物表达载 体, 获得表达构建序列的转基因植株, 分析目的基 因的功能。相对于反义及共抑制技术, 可获得更高 的基因沉默效率。转基因 RNAi 技术的表型观察以 及相关基因的功能分析常依赖于完整的个体, 因此
在植物功能基因组学中必须通过构建植物表达载 体, 进而获得转基因植株。 2.1.1 转基因 RNAi 技术载体结构的优化
它只降解与之序列相应的单个内源基因。 siRNA 除 正 义 链 上 3' 端 的 两 个 碱 基 在 序 列 识 别 上 不起作用外, 其它碱基中任何一个改变都可能引起 RNAi 效应失效。 1.2.2 高效性
1998 年 Fire 等发现少量的 dsRNA 就能够导致 线虫大量的靶 mRNA 降解, 表明 RNAi 机制中存在 信号放大的步骤, 且证明扩增机制由靶序列指导, 具有高效性和持久性 [4]。 1.2.3 信号的可传递性
李丽文, 朱延明*, 李 杰, 柏 锡, 才 华
( 东北农业大学生命科学学院, 黑龙江 哈尔滨 150030 )
摘 要: 文章主要综述了 RNA 干涉( RNAi) 技术在植物功能基因组学中的研究策略及研究现状, 包括 RNA 干
涉的作用机制及技术特征, 引发植物 RNAi 机制的转基因 RNAi 技术以及病毒介导的基因沉默技术。转基因 RNAi
RNAi 信号在植物中可以通过两种途径在细胞 间传递, 主要有通过胞间连丝在细胞间短距离传递
· 120 ·
东北农业大学学报
第 38 卷
和通过植物维管系统进行长距离的传送[5]。
2 RNAi 技 术 在 植 物 功 能 基 因 组 学 中 的研究进展
RNAi 机制中 dsRNA 最初的起源, 在病毒感染 植物的情况下, 认为 dsRNA 与 RNA 病毒核酸复制 密 切 相 关 ; 对 于 转 基 因 , dsRNA 可 能 通 过 宿 主 RNA 依赖的 RNA 聚合体的活动产生, 转基因的插 入或者重排形成的转录后 RNA 序列一前一后的反 向重复插入也可能会产生 dsRNA; 或被特殊设计成 产生 dsRNA 也可能会引发 PTGS。目前, 在植物中 根据不同的实验情况及不同的 dsRNA 的来源, 主 要有两种技术方法引发 RNAi 机制, 其一是转基因 RNAi 技术, 其二是病毒介导的基因沉默( VIGS) 。 2.1 转基因 RNAi 技术在植物中的研究进展
优化载体对于转基因 RNAi 技术是否能够获得 有效沉默效率至关重要。将载体设计成反向重复序 列 可 使 表 达 的 单 链 RNA 自 我 配 对 形 成 发 夹 结 构 RNA( hpRNA) , hpRNA 具 有 引 发 RNAi 机 制 的 dsRNA 结构 [6]。hpRNA 载体设计策略是将要沉默的 靶基因的一段序列反向重复连接在启动子和终止子 之间。预测其表达的 RNA 形成 hpRNA 结构, 即形 成 dsRNA 结构。hpRNA 结构的正反向重复序列之 间需存在一段间隔区, 通常转录正义链及反义链其 沉 默 效 率 仅 为 10%左 右 , 但 是 带 有 间 隔 区 结 构 的 hpRNA 载 体 , 其 沉 默 效 率 可 达 到 50%[7-8]。 而 用 正 义方向连接的内含子序列替代 hpRNA 间隔区, 形 成带有内含子结构的 ihpRNA 载体, 其沉默效率可 达 到 90%以 上 , 甚 至 是 100%[9]。 说 明 内 含 子 能 够 增强转基因沉默效率, 原因可能是内含子在经过转 录后被剪切掉, 使具有反向 重 复 序 列 的 单 链 RNA 在空间上更加接近, 更 易 配 对 形 成 双 链 , ihpRNA 结构比 hpRNA 结构更具稳定性( 见图1) 。
用 于 转 录 之 后 [2]。 随 后 陆 续 在 果 蝇 、 拟 南 芥 和 人 体 内发现了 RNAi 现 象 。RNAi 是 真 核 生 物 中 一 种 普 遍存在且非常保守的机制, 与许多重要生物学过程 密切相关。 1.1 RNAi 作用机制
RNAi 是 一 个 依 赖 ATP 的 过 程 , 首 先 dsRNA 被一种称为 Dicer 的核酸酶降解为长 21 ̄23 bp 小干 扰 RNA( siRNA) , siRNA 5' 末端具有单磷酸、3' 末 端有一个 2 ̄3 nt 的单链突出, siRNA 形成之后, 与 一 系 列 特 异 性 蛋 白 结 合 形 成 siRNA 诱 导 干 扰 复 合 体( siRNA induced interference complex, RISC) , 通过 碱基互 补 配 对 识 别 具 同 源 序 列 的 靶 mRNA 并 使 其 降解, 从而导致特定基因的沉默[3]。 1.2 RNAi 技术特征 1.2.1 高度特异性
mRNA 的 5' 端和 3' 端非翻译区及起始密码子
第1期
李丽文等: RNAi 技术在植物功能基因组学中的研究进展
· 121 ·
附近序列作为 ihpRNA 载体的臂部结构, 可能会因 为 这 些 区 域 的 调 节 蛋 白 与 RISC 竞 争 结 合 靶 序 列 , 而 降 低 siRNA 的 基 因 沉 默 效 应 。 但 仍 有 许 多 研 究 结果显示, ihpRNA 载体对于靶基因序列的位置的 选取无论是靶基因的编码保守区, 3' 非翻译区, 还 是 5' 非 翻 译 区 序 列 都 同 样 有 效 , 表 明 ihpRNA 结
图 1 ihpRNA 载体结构 Fig. 1 Str uctur e of ihpRNA vector
ห้องสมุดไป่ตู้
报道表明, 在植物中, ihpRNA 载体在靶序列 臂长度为 98~853 bp 范围内 可 达 到 较 高 的 沉 默 效 率 , 其 转 化 体 沉 默 效 率 可 达 66% ~100%( 平 均 90%) [10]。在果蝇中 RNAi 机制可以被 21 bp 长度的 dsRNA 所引发, 植物中也发现类似的 21~25 bp 长 度的 dsRNA。分析 推 测 mRNA 之 间 同 源 性 的 最 小 长度也就是引发的 RNAi 机制有效的 ihpRNA 结构 的臂长是 21~25 bp[11]。虽小至 21 bp 的长度有时就 可引发沉默, 但通常更长的特异序列才能保证引发 基因沉默, 可能存在几种因素: 靶序列的核酸组 成 ; siRNA 的 热 力 学 性 质[12]; 靶 序 列 的 热 力 学 性 质。对有效引发基因沉默都起着至关重要的作用。
1 RNA干扰技术概述
RNA 干扰( RNA interference, RNAi) 是指 dsRNA 分子引起的序列特异性降解靶基因 mRNA, 从而导 致内源靶基因沉默的机制。RNAi 首先发现于秀丽 隐杆线虫( C. elegans) 中, 将 dsRNA 注入线虫体内 后发现可抑制序列同源基因的表达, 抑制主要作
第 38 卷 第 1 期 2007 年 2 月 文章编号 1005- 9369( 2007) 01- 0119- 06
东北农业大学学报 Journal of Northeast Agricultural University
38(1): 119 ̄124 February 2007
RNAi 技术在植物功能基因组学中的研究进展
图 2 pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 载体的克隆策略 Fig. 2 Map and cloning str ategies for pHANNIBAL and pHELLSGATE
由图 2 可知, 来自于靶基因的 PCR 产 物 克 隆 至 pHANNIBAL 的多克隆位点上, 通过引物增加的 限制性酶切位点确保正义链及反义链臂部序列按着 正 确 的 方 向 构 建 到 载 体 上 。pHELLSGATE 载 体 上 的 attB1 和 attB2 序 列 使 正 义 及 反 义 序 列 的 重 组 过 程更加方便、快捷。pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 的 全 序 列 及 注 释 可 在 EMBL 上 查 询 。( Acc No: AJ311872 and AJ311874) 。
构在较多情况下都具有高效性。若靶基因序列两臂 的 长 度 不 一 致 , ihpRNA 结 构 末 端 有 未 配 对 碱 基 , 则不影响基因沉默效率[3,10]。 2.1.2 高通量载体的构建
为了高通量利用植物转基因 RNAi 技术, 研究者 构建了 pHANNIBAL 和 pHELLSGATE 载体, 见图2。
由于小至 21 bp 的碱基同源就能引发 RNAi 机 制, 因此靶基因序列的位置选取至关重要, 如果根
据此规则, 想要沉默一个基因家族中的单独某个基 因须经过生物信息学方法进行同源性比对, 选取其 序列内部没有与其他基因具有同源性序列的片段, 或者同源片段的长度不超过 20 个以上碱基来作为 ihpRNA 臂部序列; 若要沉默整个基因家族的基因, 只需构建一个载体, 选取这一基因家族的一段共有 的保守区序列片段作为 ihpRNA 臂 部 序 列 。 然 而 , 这个规则仍然需要更多证据证实。若设计产生的 dsRNA 序列较短, 则可以从靶基因转录本起始密码 子 AUG 开始, 向下游寻找 AA 双核苷酸序列, 将此 双核苷酸序列和其下游相邻 19 个核苷酸作为序列 设计模板; 每个基因可选择特异性最强的 4~5 个 序列, 通过人工合成的方法作为载体的臂部结构。
收稿日期: 2005- 11- 28 基金项目: 国 家 自 然 科 学 基 金( 30471050) 作者简介: 李丽文( 1978-) , 女, 黑龙江人, 博士研究生, 研究 方向为植物分子生物学与植物 基 因 工 程 。E- mail: liliwen007@sohu. com * 通讯作者 E- mail: ymzhu@hotmail.com
因的表达产物对于大肠杆菌是致命的, 例如 DH5α( 但不包括 DB3.1) 可确保两个 ccdB 基因都 被两个臂部序列置换的质粒才能存活。氯霉素抗性 基因确保重组质粒内含子被保留, 筛选阳性克隆更 加快捷。正向及反向引物进行 PCR 扩增 EST 数据 库中的靶基因可模式化构建一些未知基因的 ihpRNA 结构载体。pHELLSGATE 是一个具高拷贝 数的双元载体, 重组体可直接转化农杆菌, 便于遗 传转化。此载体将被广泛作为一种高通量的构建 ihpRNA 结构模式系统[6,13-14]。 2.1.3 转基因 RNAi 技术的优缺点
pHANNIBAL 能 作 为 构 建 高 通 量 载 体 的 基 础 , 但用 pHANNIBAL 载体构建大量已知基因或未知基 因文库的载体就必须将每一个基因都按照正确的方 向 克 隆 到 发 夹 臂 序 列 位 置 , 非 常 繁 锁 。 pHELL- SGATE 克 服 了 pHANNIBAL 载 体 的 缺 点 。 它 可 使 PCR 产 物( 两 端 带 有 attB1 和 attB2 识 别 位 点) 通 过 同 源 重 组 的 方 式 直 接 整 合 到 含 attP1 和 attP2 位 点 的质粒上, 构建成 ihpRNA 结构的两个臂。ccdB 基
技术方面, 包括载体结构的优化策略、高通量载体的构建方法以及该技术的优缺点。病毒介导的基因沉默技术方
面包括病毒载体及宿主种类, 病毒感染方法, 试验对照的建立、环境因素的影响以及该技术的优缺点。
关键词: RNAi; 转基因 RNAi; 病毒介导的基因沉默
中图分类号: Q522
文献标识码: A
功能基因组计划的最主要目的是鉴定基因组 中每一个基因的生物学功能。研究基因功能的方 法主要分为两类: 通过分析基因差异表达鉴定基 因功能和通过反向遗传学鉴定基因功能。
转基因 RNAi 技术是一种转录后水平的基因沉 默技术。通过构建可转录为 dsRNA 的植物表达载 体, 获得表达构建序列的转基因植株, 分析目的基 因的功能。相对于反义及共抑制技术, 可获得更高 的基因沉默效率。转基因 RNAi 技术的表型观察以 及相关基因的功能分析常依赖于完整的个体, 因此
在植物功能基因组学中必须通过构建植物表达载 体, 进而获得转基因植株。 2.1.1 转基因 RNAi 技术载体结构的优化
它只降解与之序列相应的单个内源基因。 siRNA 除 正 义 链 上 3' 端 的 两 个 碱 基 在 序 列 识 别 上 不起作用外, 其它碱基中任何一个改变都可能引起 RNAi 效应失效。 1.2.2 高效性
1998 年 Fire 等发现少量的 dsRNA 就能够导致 线虫大量的靶 mRNA 降解, 表明 RNAi 机制中存在 信号放大的步骤, 且证明扩增机制由靶序列指导, 具有高效性和持久性 [4]。 1.2.3 信号的可传递性
李丽文, 朱延明*, 李 杰, 柏 锡, 才 华
( 东北农业大学生命科学学院, 黑龙江 哈尔滨 150030 )
摘 要: 文章主要综述了 RNA 干涉( RNAi) 技术在植物功能基因组学中的研究策略及研究现状, 包括 RNA 干
涉的作用机制及技术特征, 引发植物 RNAi 机制的转基因 RNAi 技术以及病毒介导的基因沉默技术。转基因 RNAi
RNAi 信号在植物中可以通过两种途径在细胞 间传递, 主要有通过胞间连丝在细胞间短距离传递
· 120 ·
东北农业大学学报
第 38 卷
和通过植物维管系统进行长距离的传送[5]。
2 RNAi 技 术 在 植 物 功 能 基 因 组 学 中 的研究进展
RNAi 机制中 dsRNA 最初的起源, 在病毒感染 植物的情况下, 认为 dsRNA 与 RNA 病毒核酸复制 密 切 相 关 ; 对 于 转 基 因 , dsRNA 可 能 通 过 宿 主 RNA 依赖的 RNA 聚合体的活动产生, 转基因的插 入或者重排形成的转录后 RNA 序列一前一后的反 向重复插入也可能会产生 dsRNA; 或被特殊设计成 产生 dsRNA 也可能会引发 PTGS。目前, 在植物中 根据不同的实验情况及不同的 dsRNA 的来源, 主 要有两种技术方法引发 RNAi 机制, 其一是转基因 RNAi 技术, 其二是病毒介导的基因沉默( VIGS) 。 2.1 转基因 RNAi 技术在植物中的研究进展
优化载体对于转基因 RNAi 技术是否能够获得 有效沉默效率至关重要。将载体设计成反向重复序 列 可 使 表 达 的 单 链 RNA 自 我 配 对 形 成 发 夹 结 构 RNA( hpRNA) , hpRNA 具 有 引 发 RNAi 机 制 的 dsRNA 结构 [6]。hpRNA 载体设计策略是将要沉默的 靶基因的一段序列反向重复连接在启动子和终止子 之间。预测其表达的 RNA 形成 hpRNA 结构, 即形 成 dsRNA 结构。hpRNA 结构的正反向重复序列之 间需存在一段间隔区, 通常转录正义链及反义链其 沉 默 效 率 仅 为 10%左 右 , 但 是 带 有 间 隔 区 结 构 的 hpRNA 载 体 , 其 沉 默 效 率 可 达 到 50%[7-8]。 而 用 正 义方向连接的内含子序列替代 hpRNA 间隔区, 形 成带有内含子结构的 ihpRNA 载体, 其沉默效率可 达 到 90%以 上 , 甚 至 是 100%[9]。 说 明 内 含 子 能 够 增强转基因沉默效率, 原因可能是内含子在经过转 录后被剪切掉, 使具有反向 重 复 序 列 的 单 链 RNA 在空间上更加接近, 更 易 配 对 形 成 双 链 , ihpRNA 结构比 hpRNA 结构更具稳定性( 见图1) 。
用 于 转 录 之 后 [2]。 随 后 陆 续 在 果 蝇 、 拟 南 芥 和 人 体 内发现了 RNAi 现 象 。RNAi 是 真 核 生 物 中 一 种 普 遍存在且非常保守的机制, 与许多重要生物学过程 密切相关。 1.1 RNAi 作用机制
RNAi 是 一 个 依 赖 ATP 的 过 程 , 首 先 dsRNA 被一种称为 Dicer 的核酸酶降解为长 21 ̄23 bp 小干 扰 RNA( siRNA) , siRNA 5' 末端具有单磷酸、3' 末 端有一个 2 ̄3 nt 的单链突出, siRNA 形成之后, 与 一 系 列 特 异 性 蛋 白 结 合 形 成 siRNA 诱 导 干 扰 复 合 体( siRNA induced interference complex, RISC) , 通过 碱基互 补 配 对 识 别 具 同 源 序 列 的 靶 mRNA 并 使 其 降解, 从而导致特定基因的沉默[3]。 1.2 RNAi 技术特征 1.2.1 高度特异性
mRNA 的 5' 端和 3' 端非翻译区及起始密码子
第1期
李丽文等: RNAi 技术在植物功能基因组学中的研究进展
· 121 ·
附近序列作为 ihpRNA 载体的臂部结构, 可能会因 为 这 些 区 域 的 调 节 蛋 白 与 RISC 竞 争 结 合 靶 序 列 , 而 降 低 siRNA 的 基 因 沉 默 效 应 。 但 仍 有 许 多 研 究 结果显示, ihpRNA 载体对于靶基因序列的位置的 选取无论是靶基因的编码保守区, 3' 非翻译区, 还 是 5' 非 翻 译 区 序 列 都 同 样 有 效 , 表 明 ihpRNA 结
图 1 ihpRNA 载体结构 Fig. 1 Str uctur e of ihpRNA vector
ห้องสมุดไป่ตู้
报道表明, 在植物中, ihpRNA 载体在靶序列 臂长度为 98~853 bp 范围内 可 达 到 较 高 的 沉 默 效 率 , 其 转 化 体 沉 默 效 率 可 达 66% ~100%( 平 均 90%) [10]。在果蝇中 RNAi 机制可以被 21 bp 长度的 dsRNA 所引发, 植物中也发现类似的 21~25 bp 长 度的 dsRNA。分析 推 测 mRNA 之 间 同 源 性 的 最 小 长度也就是引发的 RNAi 机制有效的 ihpRNA 结构 的臂长是 21~25 bp[11]。虽小至 21 bp 的长度有时就 可引发沉默, 但通常更长的特异序列才能保证引发 基因沉默, 可能存在几种因素: 靶序列的核酸组 成 ; siRNA 的 热 力 学 性 质[12]; 靶 序 列 的 热 力 学 性 质。对有效引发基因沉默都起着至关重要的作用。