大鼠心梗模型
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• 关胸过程中于切口内放置排气管(用小儿头 皮针的软管自制)，关胸毕，抽空胸腔积气 后拨除。
• 试停呼吸机，大鼠恢复自主呼吸后，拨出 气管插管，充分清除气管内分泌物。
• 根据文献[l”一]和本实验室条件建立模型:健康成年雄性sD大鼠，体重 200一2509，术前禁食12h，不禁饮。3%戊巴比妥钠30m叭g腹腔注 射麻醉大鼠，起效后仰卧位固定于鼠板。用0号婴儿喉镜片经口气管 插管，插入16G静脉留置针，接小动物呼吸机控制呼吸。确定插管位 置深度正确后，口角挂线固定导管，根据血气结果，呼吸参数设定为 潮气量4一6ml，频率60一70次/分，吸呼比1:1。
• 备皮，消毒，铺单后，在左侧腋下和剑突连线偏上Icm做一斜切口， 长度约为2.scm，以心脏搏动最强点为中心。依次钝性分离深浅筋膜 、胸大肌、前锯肌，显露肋骨，可见心脏暗影。
• 将皮肤与各层肌肉做一个荷包缝合备用。充分止血后，由第3、4肋间 入胸(心搏最强点偏上一肋)，钝性分离肋间肌，分离肋间肌范围应适 当，不能太接近胸骨以免造成大出血。
• 待大鼠出现吞咽动作时，拔除气管插管。 术毕肌肉注射青霉素10
• 活体取出心脏，迅速取材，去除左、右心 房及右心室，冲洗后4%多聚甲醛溶液固定 ，沿左室长轴由心尖至心底做厚切片，将 左室分为6片，石蜡包埋切片
• 用6一OProlene线缝针在距左心耳下缘 1mm处，左冠状静脉主干附近的室间沟内 ，将LAD连同少量心肌组织一起缝扎，进针 深度控制在1~2mm，宽度为2~3mm
• 用0号婴儿喉镜片经口气管插管，插入16G 静脉留置针，接小动物呼吸机控制呼吸。
• 动物的选则： 健康雄性SD大鼠，建议使用250g左右体重的，耐受力强。而且小一点的胸壁较薄，开胸容易。 麻醉： 我用的是10% 水合氯醛，感觉效果还不错，20分钟左右待大鼠呼吸平稳即可手术，2~3个小时后苏醒。剂量 0.4~0.45ml/100g体重，这个也有个体差异，要大家自己摸索一下。 这里给大家一些建议：1.麻药刚发挥作用的时候大鼠状态不平稳，这时候不要急于作手术，多观察一会儿。2. 麻醉程度宜浅不易深，如果麻药打浅了，只要大鼠没有过分挣扎，可适当局麻，千万不可反复补麻药，我的经 验这样的情况即使手术成功大鼠也活不长。 关于呼吸： 这是关系到手术成功与否的最主要因素。麻醉药会使大鼠呼吸道产生分泌物，我一般都是在麻醉大鼠后腹腔注 射阿托品0.1mg/只，但据我观察我们学校动物中心的大鼠分泌物不多，不用药也行，曾经买过河南一批大鼠， 分泌物极多，必须用药。 气管插管我用的是临床上的静脉输液套管针，创伤小，目前术后没发生过呼吸道感染情况。 关于呼吸机： 我也用过江西特力公司的小动物呼吸机，但发现不太适用于大鼠这样的小动物，潮气量的调节非常粗略，不好 控制。现在我用的是我们学校自己生产的呼吸机，其实就是一个简易的空气泵，我自己又改装了一下，现在是 医用氧和空气的混合气，呼吸频率60/分钟，潮气量3ml/100g。这里由于条件限制，所以潮气量是比较粗略的， 而且氧气含量也无法测量，但是据我的经验，给纯氧对大鼠的损伤比不上呼吸机还大，只要有呼吸肌支持，适 当给些氧气辅助一下，大鼠成活不成问题。 关于手术切口： 我是在胸壁正中剪开皮肤，然后在胸骨左侧1CM左右钝性分离皮下组织和肌肉，最后用血管钳撑开胸腔，助手 用自制小拉钩拉开胸壁。这样的好处是每一层的开口不在一个位置，关胸后胸腔自然就闭合，不会漏气。我是 在心脏搏动最明显处打开胸腔，一般就是从剑突向上两个肋间。 关于心包膜： 有的时候不破心包膜心脏也能挤出来，但大部分时候还是要破的，打开胸腔后会看到在心脏下方有脂肪样东西 随着心脏跳动而活动，用眼科弯镊夹起这层膜一拽心包膜就开了，这时候助手从胸部的左右压迫胸壁，术者从 腹部轻轻一压心脏就出来了。 关于结扎： 针和线都是以前的师兄传给我的，总之是很细的那种，型号我就说不太清楚了，结扎方法也和坛子里其他人写 的一样，找到冠状静脉前降支，针穿过心肌一起结扎住，这里就不再罗嗦了。 关于感染的问题： 大鼠抗感染能力还是很强的，所以术前术中的消毒问题一般注意就行，术后抗生素在天气不热的情况下不给也 行，但是还是给些抗生素好，可以减少炎症造成的胸腔粘连。 以上是我想到的一些体会，如果有不明白的地方，愿意和大家交流。
• 开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸 没有什么大血管，一些小的血管可以把组 织先用止血钳夹一下再剪开，那样不会出 血。
• 呼吸机→浅麻醉→右侧卧位→胀肺
• 引流管→缝合肋间→对合胸大肌与前锯肌 →缝合皮肤→抽吸胸腔积气、积液→拔除 引流管→碘附消毒术野，对合肌肉及皮下
• 1.用套管针气管插管的话，消毒后剪开皮肤，钝性分离 皮下组织及肌肉暴露气管，插套管针，只会留下一个针 眼，术后缝合皮肤就行了，不会有什么危险，你的问题 可能出在大鼠自主呼吸还不平稳就拔管缝合了，这时候 大鼠会窒息死亡。 2.开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸没有什么大 血管，一些小的血管可以把组织先用止血钳夹一下再剪 开，那样不会出血。 3.心脏挤出后用棉签翻过来就看到很明显的一条血管， 是ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ状静脉前降支，考下还有一条旋支。前降支起始处 就在肺动脉圆锥和左心耳之间，具体结扎的高低还要看 你需要的心梗面积是多大，自己要摸索。左心室的壁还 是很厚的，差不多有2~3毫米，你可以解剖一只大鼠看 看，我用的就是普通持针器，进针深度尽可能深一点 吧，〉1毫米。 4.关胸的时候捏一下胸部排气就行了，也有人说拿针管 抽气，但我觉得这种方法力度不好掌握。 5.没有二次开胸过，请其他高人给你指点吧。 祝你早日成功
大鼠心梗模型
• 沿左侧胸骨旁斜行切口，上界为两前肢后 缘连线，下界为第5肋间，依次切开皮肤、 浅筋膜和深筋膜，并用止血钳钝性分离胸 大肌和前锯肌交界处，
• 在靠胸骨缘处用止血钳钝性分离第3、4肋 间进胸，用专用开胸器撑开3、4肋间暴露 心脏，将棉纱放置在肺组织旁边，防止损 伤肺组织。
• ，潮气量约 3ml/100g，频率为70次/min
• 试停呼吸机，大鼠恢复自主呼吸后，拨出 气管插管，充分清除气管内分泌物。
• 根据文献[l”一]和本实验室条件建立模型:健康成年雄性sD大鼠，体重 200一2509，术前禁食12h，不禁饮。3%戊巴比妥钠30m叭g腹腔注 射麻醉大鼠，起效后仰卧位固定于鼠板。用0号婴儿喉镜片经口气管 插管，插入16G静脉留置针，接小动物呼吸机控制呼吸。确定插管位 置深度正确后，口角挂线固定导管，根据血气结果，呼吸参数设定为 潮气量4一6ml，频率60一70次/分，吸呼比1:1。
• 备皮，消毒，铺单后，在左侧腋下和剑突连线偏上Icm做一斜切口， 长度约为2.scm，以心脏搏动最强点为中心。依次钝性分离深浅筋膜 、胸大肌、前锯肌，显露肋骨，可见心脏暗影。
• 将皮肤与各层肌肉做一个荷包缝合备用。充分止血后，由第3、4肋间 入胸(心搏最强点偏上一肋)，钝性分离肋间肌，分离肋间肌范围应适 当，不能太接近胸骨以免造成大出血。
• 待大鼠出现吞咽动作时，拔除气管插管。 术毕肌肉注射青霉素10
• 活体取出心脏，迅速取材，去除左、右心 房及右心室，冲洗后4%多聚甲醛溶液固定 ，沿左室长轴由心尖至心底做厚切片，将 左室分为6片，石蜡包埋切片
• 用6一OProlene线缝针在距左心耳下缘 1mm处，左冠状静脉主干附近的室间沟内 ，将LAD连同少量心肌组织一起缝扎，进针 深度控制在1~2mm，宽度为2~3mm
• 用0号婴儿喉镜片经口气管插管，插入16G 静脉留置针，接小动物呼吸机控制呼吸。
• 动物的选则： 健康雄性SD大鼠，建议使用250g左右体重的，耐受力强。而且小一点的胸壁较薄，开胸容易。 麻醉： 我用的是10% 水合氯醛，感觉效果还不错，20分钟左右待大鼠呼吸平稳即可手术，2~3个小时后苏醒。剂量 0.4~0.45ml/100g体重，这个也有个体差异，要大家自己摸索一下。 这里给大家一些建议：1.麻药刚发挥作用的时候大鼠状态不平稳，这时候不要急于作手术，多观察一会儿。2. 麻醉程度宜浅不易深，如果麻药打浅了，只要大鼠没有过分挣扎，可适当局麻，千万不可反复补麻药，我的经 验这样的情况即使手术成功大鼠也活不长。 关于呼吸： 这是关系到手术成功与否的最主要因素。麻醉药会使大鼠呼吸道产生分泌物，我一般都是在麻醉大鼠后腹腔注 射阿托品0.1mg/只，但据我观察我们学校动物中心的大鼠分泌物不多，不用药也行，曾经买过河南一批大鼠， 分泌物极多，必须用药。 气管插管我用的是临床上的静脉输液套管针，创伤小，目前术后没发生过呼吸道感染情况。 关于呼吸机： 我也用过江西特力公司的小动物呼吸机，但发现不太适用于大鼠这样的小动物，潮气量的调节非常粗略，不好 控制。现在我用的是我们学校自己生产的呼吸机，其实就是一个简易的空气泵，我自己又改装了一下，现在是 医用氧和空气的混合气，呼吸频率60/分钟，潮气量3ml/100g。这里由于条件限制，所以潮气量是比较粗略的， 而且氧气含量也无法测量，但是据我的经验，给纯氧对大鼠的损伤比不上呼吸机还大，只要有呼吸肌支持，适 当给些氧气辅助一下，大鼠成活不成问题。 关于手术切口： 我是在胸壁正中剪开皮肤，然后在胸骨左侧1CM左右钝性分离皮下组织和肌肉，最后用血管钳撑开胸腔，助手 用自制小拉钩拉开胸壁。这样的好处是每一层的开口不在一个位置，关胸后胸腔自然就闭合，不会漏气。我是 在心脏搏动最明显处打开胸腔，一般就是从剑突向上两个肋间。 关于心包膜： 有的时候不破心包膜心脏也能挤出来，但大部分时候还是要破的，打开胸腔后会看到在心脏下方有脂肪样东西 随着心脏跳动而活动，用眼科弯镊夹起这层膜一拽心包膜就开了，这时候助手从胸部的左右压迫胸壁，术者从 腹部轻轻一压心脏就出来了。 关于结扎： 针和线都是以前的师兄传给我的，总之是很细的那种，型号我就说不太清楚了，结扎方法也和坛子里其他人写 的一样，找到冠状静脉前降支，针穿过心肌一起结扎住，这里就不再罗嗦了。 关于感染的问题： 大鼠抗感染能力还是很强的，所以术前术中的消毒问题一般注意就行，术后抗生素在天气不热的情况下不给也 行，但是还是给些抗生素好，可以减少炎症造成的胸腔粘连。 以上是我想到的一些体会，如果有不明白的地方，愿意和大家交流。
• 开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸 没有什么大血管，一些小的血管可以把组 织先用止血钳夹一下再剪开，那样不会出 血。
• 呼吸机→浅麻醉→右侧卧位→胀肺
• 引流管→缝合肋间→对合胸大肌与前锯肌 →缝合皮肤→抽吸胸腔积气、积液→拔除 引流管→碘附消毒术野，对合肌肉及皮下
• 1.用套管针气管插管的话，消毒后剪开皮肤，钝性分离 皮下组织及肌肉暴露气管，插套管针，只会留下一个针 眼，术后缝合皮肤就行了，不会有什么危险，你的问题 可能出在大鼠自主呼吸还不平稳就拔管缝合了，这时候 大鼠会窒息死亡。 2.开胸一定要钝性分离从心跳最明显处开胸没有什么大 血管，一些小的血管可以把组织先用止血钳夹一下再剪 开，那样不会出血。 3.心脏挤出后用棉签翻过来就看到很明显的一条血管， 是ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ状静脉前降支，考下还有一条旋支。前降支起始处 就在肺动脉圆锥和左心耳之间，具体结扎的高低还要看 你需要的心梗面积是多大，自己要摸索。左心室的壁还 是很厚的，差不多有2~3毫米，你可以解剖一只大鼠看 看，我用的就是普通持针器，进针深度尽可能深一点 吧，〉1毫米。 4.关胸的时候捏一下胸部排气就行了，也有人说拿针管 抽气，但我觉得这种方法力度不好掌握。 5.没有二次开胸过，请其他高人给你指点吧。 祝你早日成功
大鼠心梗模型
• 沿左侧胸骨旁斜行切口，上界为两前肢后 缘连线，下界为第5肋间，依次切开皮肤、 浅筋膜和深筋膜，并用止血钳钝性分离胸 大肌和前锯肌交界处，
• 在靠胸骨缘处用止血钳钝性分离第3、4肋 间进胸，用专用开胸器撑开3、4肋间暴露 心脏，将棉纱放置在肺组织旁边，防止损 伤肺组织。
• ，潮气量约 3ml/100g，频率为70次/min