土贝母皂苷对人肝癌细胞HepG2增殖及细胞周期的影响

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·论著·
土贝母皂苷-Ⅱ对人肝癌细胞HepG2增殖及细胞周期的影响
晁旭 赵英永 魏敏慧 党琳 马晓军 王文娟
【摘要】 目的 探讨土贝母皂苷-Ⅱ对人肝癌细胞Hep
G2增殖、细胞周期的影响及其抗肿瘤效应。

方法 用不同浓度土贝母皂苷-Ⅱ0、2、4、6、8、10、12μg/ml处理HepG2细胞后,MTT法检测细胞生长的抑制率,荧光染色和流式细胞术分别观察凋亡细胞形态和细胞周期的变化。

同时,以H22
肝癌小鼠模型初步探讨土贝母皂苷-Ⅱ的抗肿瘤作用。

结果 土贝母皂苷-Ⅱ能剂量依赖性地抑制HepG2细胞生长,24-h半数抑制剂量(IC50)
为4.05μg/ml。

HepG2细胞经土贝母皂苷-Ⅱ处理后,呈现典型的凋亡细胞形态,G2/M期细胞数量增加,而G0/G1期细胞数明显减少。

体内抗肿瘤实验结果证明,土贝母皂苷-Ⅱ对肿瘤的生长有显著的抑制作用。

结论 土贝母皂苷-Ⅱ可能是通过使肿瘤细胞滞留于G2
/M期,从而抑制肿瘤细胞的增殖。

【关键词】 土贝母皂苷-Ⅱ;
细胞增殖;细胞周期【中图分类号】 R966 【文献标识码】 A 【文章编号】 0253-3685(2012)15-1740-03Effects of tubeimoside-Ⅱon proliferation and cell cycle of human hep
atocellular carcinoma cell lineHepG2 CHAO Xu,ZHAO Yingyong,WEI Minhui,et al.Shanxi College of 
Traditional ChineseMedicine,Xianyang 712046,CHINA【Abstract】 Obj
ective To investigate the effects of tubeimoside-Ⅱon proliferation and cell cycleof human hepatocellular carcinoma cell line Hep
G2and evaluate its anti-tumor effect in vivo.MethodsAfter Hep
G2cells were treated with different concentrations of tubeimoside-Ⅱ0,2,4,6,8,10,12μg/ml,the inhibitory 
rate of cell growth was measured by MTT assay,and the shape of apoptoticcells and cell cycle were detected by fluorescence staining 
and flow cytometry,respectively.Moreover,the anti-tumor effect of tubeimoside-Ⅱin vivo was primarily evaluated by establishing 
hepatocellularcarcinoma model of H22rats.Results Tubeimoside-Ⅱinhibited cell g
rowth in a does-dependentmanner and the IC50v
alue was 4.05μg/ml.After HepG2cells were treated with tubeimoside-Ⅱ,cellappearance presented typical apoptotic phenomenon with increasing 
cell number in G2/M phase anddecreasing 
cell number in G0/G1phase.Anti-tumor experiment in vivo showed that tubeimoside-Ⅱcould obviously 
suppress tumor growth.Conclusion Tubeimoside-Ⅱcan inhibit cell proliferationprobably 
via promoting tumor cells to stagnate in G2/M phase.【Key 
words】 Tubeimoside-Ⅱ;Cell proliferation;Cell cycle[Jiangsu Med J,Aug
ust 2012,38(15):1740-1742.] 基金项目:
陕西省教育厅科研计划项目(11JK0682)作者单位:712046 陕西中医学院基础医学院(
晁旭、魏敏慧、党琳、马晓军、王文娟);西北大学陕西省生物医药重点实验室
(赵英永)
土贝母是一种传统中药,
曾被用来治疗肿瘤、炎症和蛇虫叮咬等[
1]。

目前,已经从其中分离出多种三萜皂苷[2-
4],它们具有抑制多种癌细胞分化和增殖
的功能
[5,6]。

研究发现,土贝母皂苷-Ⅱ是最有希望
用于临床试验的化合物[7]。

许多抗肿瘤药物或具有肿瘤抑制作用的化合物是通过诱导肿瘤细胞的凋亡作用而达到抑制肿瘤发
生和进展的[8]。

土贝母皂苷-Ⅰ可以通过诱导HeLa细胞线粒体丧失功能而使其凋亡[5]。

然而,有关土
贝母皂苷-Ⅱ的抗肿瘤作用及其诱导细胞凋亡机制的研究还没有报道。

本课题开展了土贝母皂苷-Ⅱ对人源肝癌细胞HepG2的抑制作用及其诱导细胞凋亡的分子机制,并通过动物实验初步探讨了土贝母皂苷-Ⅱ的抗肿瘤作用机制。

材料与方法
一、材料
人源肝癌细胞Hep
G2购自第四军医大学;RPMI1640培养基购自Gibco公司;
小牛血清购自·0471·江苏医药2012年8月第38卷第15期 Jiangsu Med J,Aug
ust 2012,Vol 38,No.15
民海生物有限公司;二甲基亚砜(DMSO)、四甲基偶氮唑盐(MTT)、胰蛋白酶等试剂购自Sigma公司。

二、方法
1.细胞培养 HepG2细胞培养在含10%小牛血清的RPMI1640培养基中(含100U/L青霉素和100μg/ml链霉素),于在37℃、5%CO2的细胞培养箱中培养和传代。

2.MTT法检测土贝母皂苷-Ⅱ对肿瘤细胞生长的影响 取对数生长期癌细胞悬液180μl(含细胞5×103个)分别加入96孔培养板中。

培养12h后,分别加入20μl相应浓度的土贝母皂苷-Ⅱ,使培养液中最终药物浓度为0、2、4、6、8、10、12μg/ml。

细胞于37℃、5%CO2饱和相对湿度的培养箱中培养24h后,向每孔加入20μl MTT溶液5mg/ml。

继续培养6h后,小心地吸去培养液,向每孔加150μlDMSO,室温下在微孔板震荡器上震荡10min,在Elx-800型自动酶联检测仪λ=570nm下测定吸光值(A值),并计算细胞抑制率。

3.DNA琼脂糖凝胶电泳不同浓度的土贝母皂苷-Ⅱ处理细胞24h后,胰酶消化,离心、收集细胞。

用凋亡细胞DNA提取试剂盒提取细胞基因组;在1.5%水平琼脂糖凝胶中电泳,并用紫外分析仪观察DNA梯状条带。

4.荧光双染检测 用土贝母皂苷-Ⅱ6μg/ml处理HepG2细胞12h后,收集细胞,加入荧光染料HOTEST 33258及碘化丙啶,使其终浓度均达到10μg/ml,37℃避光染色15min。

然后用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤细胞1次并离心沉淀。

将细胞涂于载玻片上,荧光显微镜观察细胞形态。

5.流式细胞术分析细胞周期的变化 按每孔1×104个细胞将HepG2细胞悬液接种于6孔板培养,至对数生长期,加入相应浓度土贝母皂苷-Ⅱ溶液,继续培养12h。

然后收集细胞,用PBS洗涤后,将细胞重悬于0.3ml PBS,迅速注入-20℃预冷的75%乙醇固定。

用PBS洗涤去掉乙醇,将细胞重悬于0.3ml PBS中,加入0.6ml碘化丙啶溶液,4℃避光染色15min以上,经50μm尼龙网过滤后,用EPICScoulter流式细胞仪分析细胞DNA含量,并通过Multicycle软件分析细胞周期。

6.体内抗肿瘤实验 将30只H22荷瘤小鼠随机分为三组,每组10只。

对照组灌胃0.5ml无菌水,5mg/kg剂量组和10mg/kg剂量组分别按5mg/kg和10mg/kg剂量体重灌胃土贝母皂苷-Ⅱ,以上治疗每2天1次。

治疗后,每3天用游标卡尺测量肿瘤1次,记录最大径和最小径,并计算肿瘤体积。

三、统计学处理
采用SPSS 11.0统计软件进行数据处理,计量数据用均数±标准差(珚x±s)表示,并进行方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。

结果
一、土贝母皂苷-Ⅱ对HepG2细胞生长的抑制效果
经土贝母皂苷-Ⅱ处理后,HepG2细胞的生长受到抑制作用,且随着浓度的升高,抑制作用增强,呈明显的剂量依赖效应;半数抑制剂量(IC50)为4.05μg/ml(图1)。

图1 土贝母皂苷-Ⅱ对HepG2细胞的生长抑制作用
二、土贝母皂苷-Ⅱ对细胞形态影响
HepG2细胞经土贝母皂苷-Ⅱ处理后,随着浓度增大,细胞数量减少,细胞之间出现空隙;细胞形态变化,有的表面皱缩,有的变成圆球状;并且随浓度增加,这种趋势进一步明显(见内页4图2)。

三、DNA琼脂糖凝胶电泳
HepG2细胞经不同浓度的土贝母皂苷-Ⅱ处理,基因组DNA呈现典型的的梯形条带,有降解的现象,并且这种趋势随着浓度的增加更加明显。

四、荧光显微镜观察
土贝母皂苷-Ⅱ处理HepG2细胞并经双染色后,荧光显微镜下观察,土贝母皂苷-Ⅱ0μg/ml组细胞为浅蓝色,细胞核呈均匀的圆;而土贝母皂苷-Ⅱ6μg/ml组细胞着浅红色并可见核固缩、碎裂等典型的凋亡细胞形态(见封二图3)。

五、土贝母皂苷-Ⅱ对细胞周期的影响
流式细胞术分析显示,用土贝母皂苷-Ⅱ0、2、4、6μg/ml处理细胞后,G2/M期细胞数增加,G0/G1期细胞数明显减少,并且这种趋势随药物浓度增大而加强(表1)。

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江苏医药2012年8月第38卷第15期 Jiangsu Med J,August 2012,Vol 38,No.15
表1 土贝母皂苷-Ⅱ对HepG2细胞G

/M细胞周期的影响(珚x±s,%)
细胞分期
土贝母皂苷-Ⅱ浓度(μg/ml)
0 2 4 6
G165.95±4.32 61.07±5.98 53.01±2.76 49.30±3.87
S 15.53±3.34 16.71±2.46 15.08±1.02 11.46±2.78
G217.52±2.15 25.08±2.28 32.92±5.78 39.52±2.97
六、土贝母皂苷-Ⅱ体内抗肿瘤效果
不同剂量土贝母皂苷-Ⅱ治疗后荷瘤小鼠的相对肿瘤体积的变化如图4所示。

三组动物的肿瘤体积随着时间的延长都出现增大的趋势,从治疗后第9天开始,对照组动物肿瘤体积增大速率明显大于治疗组;第21天时,对照组、5mg/kg组和10mg/kg组动物的肿瘤体积分别为479.9、330.7和315.8mm3;第30天时,这种趋势更加显著。

 图4 经土贝母皂苷-Ⅱ治疗后H22肝癌小鼠模型的肿瘤
体积变化
讨论
本研究结果显示,土贝母皂苷-Ⅱ对HepG2细胞均有强烈的抑制作用,且随着浓度的增大,抑制作用增强,呈明显的剂量依赖效应。

体内药效学实验也证明,土贝母皂苷-Ⅱ对肿瘤的生长有显著的抑制作用。

细胞凋亡与肿瘤发生、发展与消退有密切关系,大多数抗肿瘤药物能诱导肿瘤细胞凋亡。

本研究结果显示,癌细胞经土贝母皂苷-Ⅱ处理后,数量大量减少,细胞核呈现固缩、碎裂等典型的凋亡细胞形态。

进一步研究发现,细胞DNA呈现典型的的梯形条带,并有降解的现象。

流式细胞仪分析显示,HepG2细胞经土贝母皂苷-Ⅱ处理后,细胞周期发生明显变化,G2/M期细胞数增加,G0/G1期细胞数明显减少。

以上结果均提示,土贝母皂苷-Ⅱ可能是通过使肿瘤细胞滞留于G2/M期,从而抑制肿瘤细胞的增殖。

综上所述,本研究结果提示,土贝母皂苷-Ⅱ对肿瘤的生长有显著的抑制作用,而且可能是通过使肿瘤细胞滞留于G2/M期,从而改变了肿瘤细胞的分裂过程,抑制了肿瘤细胞的增殖和生长。

参考文献
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[3] Liu WY,Zhang WD,Chen HS,et al.New Triterpenoidsaponins from bulbs of Bolbostemma paniculatum[J].PlantaMedica,2004,70(5):458-464.
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[5] Xu Y,Chiu JF,He QY,et al.Tubeimoside-1exerts cytotoxicityin HeLa cells through mitochondrial dysfunction andendoplasmic reticulum stress pathways[J].J Proteome Res,2009,8(3):1585-1593.
[6] Cheng G,Zhang Y,Zhang X,et al.TubeimosideⅤ(1),a newcyclic bisdesmoside from tubers of Bolbostemma paniculatum,functions by inducing apoptosis in human glioblastomaU87MG cells[J].Bioorg Med Chem Lett,2006,16(17):4575-4580.
[7] 杨萍,于廷曦,马润娣,等.土贝母皂苷诱导人宫颈癌HeLa细胞周期阻滞和细胞凋亡[J].癌症,2002,21(4):346-350.[8] Chen CN,Wu CL,Lin JK.Apoptosis of human melanoma cellsinduced by the novel compounds propolin A and propolin Bfrom Taiwenese propolis[J].Cancer Lett,2007,245(1-2):218-231.
(收稿日期:2012-01-06)(供稿编辑:杨郁)
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