DNA提取和制备

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DNA检测方法－电泳检测
电泳检测要控制上样量。上样量过大会导致泳道过亮、拖尾等现象，影响 正确判断。 如果加样孔里有亮带，说明有蛋白污染。 若上样量合适，泳道有弥散、拖尾现象，说明书基因组DNA有降解。
取2μl 洗脱液1% 琼脂糖凝胶电泳, 检测 DNA分子大小，纯度以及完整性 TIANamp 血液基因组DNA提取试剂盒提取 相同血样不同起始体积的DNA电泳图
样本保存和前处理－抗凝血液
保存 柠檬酸、EDTA、肝素三种抗凝剂均可使用。但肝素对酶反应有可能起阻害 作用,采血时如没有特殊要求,请使用柠檬酸或EDTA处理血样。 加入抗凝剂混匀后2-8℃保存一周；－20℃保存一个月；－70℃长期保存。 尽可能保证样本不经过反复冻融。
样本前处理
1. 冻存的抗凝血液使用前溶解应在37℃水浴迅速溶解。 2. 抗凝血提取前需要彻底混匀后再吸取实验所需的体积。
核酸洗脱或溶解
硅胶膜吸附法 1. 用去蛋白液、漂洗液将膜上的核酸漂洗后，将不加溶液的吸附柱离心 以去除残留的液体及挥发乙醇成分。加入适量洗脱液TB buffer（或自己 配制的buffer）后放置5-10 min后再进行离心得到基因组DNA。 溶液法
1. 使用70-75％乙醇对核酸沉淀进行洗涤。溶解DNA前需要室温或37℃放
保存 微量血液：抗凝血液-20或-70℃保存；
干血点：干燥后室温或4℃保存；
羊水： -20或-70℃保存。 样本前处理 1. 微量血液处理同抗凝血液，不同之处是无需进行红细胞裂解步骤。 2. 干血点加入缓冲液直接进行提取。 3. 羊水/胸水提取时先离心得到沉淀，再进行裂解提取核酸。
样本保存和前处理－口拭子/漱口水
DNA检测方法－紫外分光光度法
纯度（ OD260-320 /OD280-320 ） 紫外分光光度计进行测量（选择正确的稀释倍数，确保OD260 值在0.1~1.0 之间，通常离心柱法稀释4－5倍；溶液裂解法稀释20－30倍） OD260-320 /OD280-320 < 1.7 OD260-320 /OD280-320＝1.7～1.9 说明有蛋白的污染 说明纯度很好
采用细胞裂解液进行裂解（TIANGEN的细胞裂解液CL是按照2.5倍全血
体积），细胞裂解液将红细胞裂解的同时可以裂解白细胞，得到的为 细胞核沉淀，更方便基因组DNA的提取。
红细胞裂解充分的现象： 得到的沉淀应为白色沉淀或淡粉色沉淀。有时血液需要进 行两次裂解，注意第二次加入裂解液后需要将沉淀votex 彻底混匀。
DNA检测方法－荧光定量PCR检测
微量样本基因组DNA的检测通常采用荧光定量PCR检测，例如：干血 点、微量血液等。
TIANamp微量样本基因组DNA提取试剂盒 样本来源一致，分别取1μl，10μl，50μl，
100μl为起始样本提取基因组 。各取
2μ l基因组DNA为模板，扩增GAPDH基因， 荧光定量PCR分析实验结果。
保存 口拭子：干燥后室温保存 漱口水：4℃保存或离心得到沉淀-20℃或-70℃保存 样本前处理 1. 拭子将拭子棉头剪入到离心管里，加入缓冲液直接进行提取。
2. 有些拭子的棉头剪不下来，可以将拭子在生理盐水里漂洗几次，离心
得到沉淀再进行核酸提取。 3. 漱口水先进行离心得到沉淀再进行核酸提取。
基因组提取流程
血凝块前期破碎程度越高，提取基因组就越容易！
样本保存和前处理－白膜层
保存 全血分离得到的白膜层放置-20℃或-70℃长期保存。尽可能保证样本不经 过反复冻融。 样本前处理
1. 白膜层是将全血离心取中间层所得。白细胞则是用红细胞裂解液裂解
红细胞后得到的沉淀。 2. 冻存的白膜层使用前应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。
应用： 下游实验所需 DNA量较大，例 如SNP 适合样本：全血、 白膜层、血细胞、 血凝块、白细胞 等
应用： 微量样本DNA 提取，可配合工 作站使用。 适合样本：微量 血液、干血点、 微量组织
溶液法（盐析法）
吸附柱法
样本裂解 纯化去蛋白 沉淀核酸
样本裂解
加入吸附柱
缓冲液漂洗 洗涤去盐 DNA洗脱收集
溶解DNA沉淀
红细胞裂解
哺乳动物血液的红细胞中没有细胞核且核酸酶含量丰富，所以裂解红细胞 对核酸提取非常重要。红细胞裂解有两种方式： 采用红细胞裂解液进行裂解（通常红细胞裂解液按照3倍全血体积加 入进行裂解).
OD260-320 /OD280-320 > 1.9
得率 紫外分光光度计进行测量
Baidu Nhomakorabea
说明有部分降解或有RNA污染
Yield＝ OD260×50ng/ul×稀释倍数
Tiangen 产品提取得率
样本 处理量 100μl
200μl 哺乳动物全血 600μl DNA/RNA得率 （μg）
推荐试剂盒
DP327-磁珠法基因组提取试剂盒 DP316-微量样品基因组DNA提取试剂盒
核细胞裂解
如果有裂红的步骤，请尽量将上清去除再加入裂解液。 加入裂解液（如：TIANGEN试剂盒中的GB或FG）和蛋白酶K需要彻底混匀。 将沉淀打散混匀后再进行水浴。 水浴时看到溶液变清，没有粘稠物或沉淀时即可进行下步操作，通常水 浴时间10-30min.
若采用有机（酚/氯仿）抽提时应充分混匀，动作要轻柔。离心分离两相
五、DNA提取试验中常遇到的问题

基因组DNA收率较低或无基因组DNA
样本材料太少 细胞破裂不够充分，DNA释放不完全 离心力偏小 两相分离不完全… …

DNA降解的原因 样本不够新鲜，采集材料过陈旧 样本本身存在大量DNA酶

提取DNA的生物活性差的原因？ 提取的基因组DNA盐浓度过高 基因组DNA中乙醇未清除净 基因组DNA中可能存在其他抑制因素
抗凝剂处理血 肝素 柠檬酸* EDTA*
第四天收率90%
-80℃ 4℃
保存2个月，第10天收率90%
或枸橼酸钠
作为抗凝剂 不宜使用肝素
第10天提取效 果差 提取效果差
第十天收率85% 第四天收率90% 第十天提取效果差
室温
（二）血浆和血清

血浆和血清是检测释放入血的游离核酸最主要的
标本来源，用来检测病毒、细菌，以及肿瘤细胞
可以提取DNA

样本选择取决于试验目的
全血是基因组提取最常见的样本

血清、血浆、外周血有核细胞、痰液、体
液、棉拭子采集的各种分泌物、组织（包 括骨髓）和羊水等都是分子诊断的检验材 料，其中全血、血浆（血清）标本占分子 诊断的60%以上
DNA提取前样本采集、预处理和保存：
（一）全血
1.抗凝剂
EDTA-Na2
等等释放出来的游离核酸和蛋白质产物，在临床
上被广泛应用于病原微生物和肿瘤标志基因的检
测.
三、DNA的收率
样本类型
20mg肝脏组织
基因组DNA收率
8 g
100mg豆苗
100l全血 2106培养细胞
10 g
2 g 10 g
四、DNA提取的基本步骤
1、核酸的释放： 破裂细胞 2、核酸的分离与纯化 3、核酸的浓缩、沉淀与洗涤 4、DNA鉴定：浓度鉴定 纯度鉴定 完整性鉴定 释放核酸（机械法与非机械法）
时，应保证一定的转速和时间，且吸取上清时注意不要吸取到中间层及 有机相。
核酸吸附或沉淀
硅胶膜吸附法 1. 加入乙醇颠倒混匀后可能会出现絮状沉淀，动作要轻柔。 2. 将裂解的溶液和絮状沉淀全部加入到吸附柱里，此时的溶液应是高盐 低pH值的。通过硅胶膜特异吸附核酸的特性将裂解溶液中的核酸吸附到 硅胶膜上。 溶液法 1. 当沉淀时间有限时，用预冷的异丙醇沉淀，沉淀会更充分。 2. 加入异丙醇颠倒混匀后应出现丝状沉淀，动作要轻柔，避免基因组因 过于猛烈的外力而降解。 3. 分离沉淀的方法：a.用枪头小心地将丝状沉淀挑出；b.离心分离，应 保证一定的转速和时间。
置几分钟晾干核酸（使乙醇挥发），然后再加入适量的TB buffer（或自 己配制的buffer）溶解DNA。
核酸保存
浓度：100－300ng/ul 纯度：任何杂质都可能导致DNA在储存过程中的降解，因此要确保纯化得 到的核酸的纯度。 温度：纯化得到基因组DNA之后需将DNA溶液分装保存到-20℃，反复冻溶 会导致DNA的降解。 溶解DNA Buffer：纯化得到的基因组DNA最好溶解在TB Buffer (TIANGEN) 或者Tris缓冲液里，因为大片段的基因组DNA在酸性水溶液中不稳定，易 水解。
第一部分 DNA提取 总论
一、提取DNA总的原则：
1 保证核酸一级结构的完整性；
2 其他生物大分子如蛋白质、多糖和脂类 分子
的污染应降低到最低程度；
3 核酸样品中不应存在对酶有抑制作用的有机溶
剂和过高浓度的金属离子； 4 其他核酸分子，如RNA，也应尽量去除。
二、样本来源：

理论上所有有核真核细胞、细菌、病毒都
试剂选择指南
硅胶膜吸附法
0.2-1ml血液 (DP318) 口拭子 （DP322） 微量样本 （DP316）
溶液法 (DP319)
磁珠法 (DP327)
应用： 1. HLA分型、亲子鉴定及芯片检测实验： 对DNA的纯度、浓度均有要求。 2. 口拭子等特殊样本的提取 适合样本：全血、白膜层、血细胞、 血凝块、白细胞、口拭子、干血点、 羊水、血清/血浆、漱口水、微量组织 等

提取基因组DNA，有时加入蔗糖的原因 加入多糖，保护DNA长度
不可忽视的细节
—血液基因组提取
天根生化科技（北京）有限公司
DNA提取原则1：DNA片段长度
DNA Length
严格要求片段长度: 构建文库 PFGE(脉冲场凝胶电泳) 没有严格要求: PCR Southern Blots RFLP
样本保存和前处理－非抗凝血
保存 非抗凝血即血凝块。-20℃保存一个月；-70℃长期保存。尽可能保证样本 不经过反复冻融。 样本前处理 1. 冻存的血凝块使用前应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。 2. 血凝块取出后先采取机械破碎的方法（例如：放入无粉橡胶手套中捏 碎或匀浆）将血凝块破碎，然后再根据自己的实验取适量样本。
分离得到的血清/血浆放置-70℃保存。尽量避免样本反复冻融。
样本前处理 1. 冻存的血清/血浆使用前溶解应在37℃水浴溶解，轻柔颠倒混匀。 2. 血清/血浆核酸提取时无需红细胞裂解。 3. 只需100-200ul样本，基本能满足下游常规PCR或荧光定量PCR检测。
样本保存和前处理－微量血液/干血点/羊水/胸水
2
4-12 12-20
DP318-血液基因组提取试剂盒(0.1-1ml)
1ml
5ml 20ml 禽类、两栖类全血 5-20 200-500ul 血凝块 500-1000ul 1ml-5ml 口腔拭子 1个
4-30
100-200 300-700 5-40 1-8 8-15 5-150 0.5-3.5 DP318-血液基因组提取试剂盒(0.1-1ml) DP318/ DP319 DP318/ DP319 DP319 DP322-口腔拭子基因组提取试剂盒 DP319-血液基因组提取试剂盒(0.1-20ml)
3. 虽然得到的是白膜层，但是会有少量红细胞存在，所以红细胞裂解液
还是必要的，但用量减半。 4. 采用白膜层提取核酸时，所用到的提取溶液体积需按照全血体积进行 操作。即：1ml全血得到的白膜层提取时需要加入提取1ml全血的试剂量。
样本保存和前处理－血清/血浆
保存 现在很多科研者使用血清/血浆提取游离核酸进行研究，例如：肿瘤研究。
DNA提取原则2：DNA产物纯度
• 严格要求产物纯度
存档、产物长期保存 Southern杂交 荧光定量PCR SNP Microarray CGH (比较基因组杂交)
• 没有严格要求
常规PCR
基因组提取方法
溶液盐析法：无需酚氯仿，样本量灵活可变，得率高 硅胶膜吸附法：利用硅胶膜特异吸附核酸的原理来纯化核酸 磁珠法：独特包埋的磁珠，在一定条件下对核酸具有很强的亲和力，而 当条件改变时，磁珠释放吸附的核酸，能够达到快速分离纯化核酸的目 的。 传统酚氯仿法：传统方法，抽提时间长，成本低。但酚氯仿有毒，危害 身体健康。