不同标本留取方法对细菌培养结果的影响

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常见细菌培养标本的采集方法及注意事项

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前,或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间,保证在留取标本后1小时内送至检验科。

粪便标本：自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺。

液体粪便则取絮状物,一般取1～3ml，直接装入粪便容器中送检。

清洁中段尿标本：应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。

最好留取早晨清洁中段尿标本。

注意：容器内是无菌的,所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放。

留取方法：(1)患者睡前少饮水;(2）清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮,仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；(3）开始排尿,将前段尿排出，弃去，不要停顿,直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检。

自然咳痰标本：患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙。

先轻咳，咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，直接吐入清洁、无菌的容器中。

常见细菌培养标本的采集方法及注意事项所有标本应在未使用抗生素之前，或在抗生素停药三天后留取，留取标本后应记录留取时间，保证在留取标本后1小时内送至检验科。

粪便标本:自然排便后，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便一小勺。

液体粪便则取絮状物，一般取1~3ml,直接装入粪便容器中送检。

清洁中段尿标本:应保证尿液在膀胱内至少停留4h以上。

最好留取早晨清洁中段尿标本。

注意：容器内是无菌的，所以打开容器盖后，应拿在手中，不要随意乱放。

留取方法:（1）患者睡前少饮水；（2）清晨起床后先用肥皂水清洗会阴部,女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗,再用清水冲洗尿道口周围;(3）开始排尿，将前段尿排出，弃去，不要停顿，直接将中段尿约5ml直接排入专用的无菌容器中,立即送检。

自然咳痰标本：患者清晨起床后，用清水或冷开水反复漱口去除过量的口腔细菌,有假牙者应取下假牙.先轻咳,咳出口腔中的痰液弃去，再用力深咳,从气管咳出呼吸道深部的痰,直接吐入清洁、无菌的容器中。

细菌标本采集规范

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键.标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果,给临床以误导，延误对患者的正确治疗。

为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。

一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。

1．采集方法:静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后,直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固.如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中,再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。

2。

采血时间以及血培养份数:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本,可使细菌检出率高达99％.对间歇性寒战或发热的患者,应在寒战或体温高峰到来之前0。

5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。

特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2~3份血液标本培养.(2)可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养,如果24小时后阴性,再采集两份血标本培养。

(3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24~36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。

因为1次血培养不足以说明问题,可能会遗漏阳性结果。

（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时;应改变血培养方法,以获得罕见或苛养的微生物。

（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本.3。

采血部位:采血部位通常为肘静脉。

疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。

疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。

简述留取血培养标本的方法及注意事项

1. 方法1.1 选取适当的采血管：在留取血培养标本时，首先要选择适当的采血管，通常使用含有抗凝剂的血管，如EDTA管或肝素管。

1.2 消毒皮肤：接下来要对患者的采血部位进行消毒处理，以减少外部细菌的污染。

常用的消毒剂有酒精、碘酒或氯己定等。

1.3 抽取血样：消毒后，使用一次性采血器具，将血样采集到抗凝管内，通常要留取足够的血样做血培养检验。

1.4 标注标本信息：在留取血培养标本后，务必要在标本管上标注患者的相关信息，如尊称、性莂、芳龄、病区、科室等。

2. 注意事项2.1 避免空气污染：在留取血培养标本时，要尽量避免空气污染，避免将外部空气中的细菌带入血样中，尤其在离心和接种血培养时更要注意。

2.2 注意采血技巧：采血人员要有一定的采血技巧，避免在采血过程中对患者造成过多疼痛，也要避免对血样造成不必要的污染。

2.3 避免过度摇晃：在留取血培养标本后，要避免过度摇晃标本管，以免破坏细菌的生长和培养。

轻轻摇匀即可。

2.4 选择合适的培养基：在进行血培养前，要根据临床情况和病原体的猜测，选择合适的培养基，如青霉素富养基或厌氧培养基等。

3. 丰富的续写和扩展内容3.1 血培养标本处理血培养标本的处理是非常关键的环节。

在采集完血样后，需要将标本尽快送到临床微生物实验室进行处理。

在送检前，要确保标本的密封性，避免血样泄漏或被外部污染。

要根据医学实验室的规范和操作流程进行标本的处理和运送，以确保标本的完整性和可靠性。

3.2 血培养标本的保存对于血培养标本的保存，要避免高温、阳光直射、冷冻等不利因素。

通常建议在室温下保存，但也要避免放置在过于潮湿或通风不良的环境中。

保持标本的原有状态，确保在送检前细菌的数量和种类不发生改变。

3.3 血培养标本的接种在进行血培养时，需要根据医学实验室的规范和要求进行标本的接种。

通常情况下，要使用专门的接种环境和设备，如无菌培养皿、接种环、无菌移液器等。

接种时要正确添加培养基，避免过度或不足的添加，同时要确保标本的均匀分布。

细菌学培养尿标本留取方法及注意事项

细菌学培养尿标本留取方法及注意事项下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。

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痰标本前处理对细菌培养结果的影响性分析

痰标本前处理对细菌培养结果的影响性分析发表时间：2014-05-13T14:22:08.373Z 来源：《医药前沿》2014年第3期供稿作者：孙玉红[导读] 临床治疗呼吸道感染疾病通常要取患者的痰液检验，然而受到正常菌群污染，通常情况下，痰标本的细菌学检验结果不太准确。

孙玉红（河南省洛阳市汝阳县人民医院检验科 471200）【摘要】目的探讨痰标本前处理对细菌培养结果的影响。

方法选取我院收治的呼吸道感染患者为研究对象，对患者送检的痰标本检筛，分别对合格的和不合格的痰标本进前处理，对比两种痰标本阳性菌的分离率，同时探究预处理对细菌学检验结果的影响。

结果合格痰标本的阳性菌分离率约为50.9%，不合格的分离率为3%。

经前处理的痰标本可以提高阳性菌株的检出率，且预处理时间对流感嗜血杆菌检出率有影响。

结论痰标本前处理有助于细菌学检验结果的准确性，值得临床推广和应用。

【关键词】痰标本预处理细菌学检验结果【中图分类号】R446 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2014）03-0200-02临床治疗呼吸道感染疾病通常要取患者的痰液检验，然而受到正常菌群污染，通常情况下，痰标本的细菌学检验结果不太准确。

我院选取2011年2月至2012年2月我院收治的呼吸道感染患者为研究对象，取痰标本，探究痰标本前处理对细菌学检验结果的影响，现报告如下。

1 资料1.1 一般资料：选取我2012年2月至2013年2月院收治的呼吸道感染患者为研究对象，共取送检痰标本1000例。

1000例痰标本均是患者清晨起床，清水漱口后，尽力从气管内咳出的第一口痰，收集置于无菌器皿中，送检。

1.2 送检痰标本质量鉴定：送检的痰标本采用无菌接种环进行革兰染色，之后，置于细胞学显微镜下观察并记录鳞状上皮细胞和白细胞总数，鳞状上皮细胞和白细胞每低倍视野下分别小于10个、大于25个，该痰标本判定为合格[1]。

反之，为不合格痰标本。

1.3 痰标本接种及前处理：痰标本接种：根据《检验操作规程》，选痰标本带血丝或者脓性部分，接种血平板、万古霉素、麦康凯平板，在高温35°下培养24至48小时后观察[2]，对比合格和不合格两种痰标本下细菌学检验结果。

临床常见微生物标本采集法及影响临床微生物检验的因素

典型案例
我们在临床检验工作当中遇到过这样的事情，脑积水患儿准备进行手术，术前三次脑脊液培养均分离出表皮葡萄球菌，脑脊液常规检查正常，污染菌？病原菌？临床请求会诊。
标本采集运送中的影响因素
• 抗微生物药物对标本的影响抗菌药物抑制细菌生长，影响检出率，应当在应用抗微生物药物之前采集标本，或者停药3~5天采集标本，或在血浆药物浓度最低时采集标本。
通常以自然咳痰法采集标本最常见。应嘱咐患者晨起漱口，咳深部痰，告知唾液的培养结果对临床无指导意义，以便引起患者对留取标本的重视。检验痰液标本是否合格应进行涂片。涂片合格后的痰标本建议使用盐水稀释方法接种于相应培养基上
痰涂片显微镜检查判别标准
标本运输
标本采集后应立即送检, 以防某些细菌在外环境中死亡。作结核分枝杆菌或真菌培养的痰液如不能及时送检，应置于4℃冰箱保存。
发热（38C）或低温（36C）寒战白细胞增多（计数大于10，000109/L，特别有“核左移” 未成熟的或杆状核的白细胞）粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1000109/L）血小板减少皮肤粘膜出血昏迷，休克多器官衰竭 CRP升高
采集方法
1.采血部位：肘静脉：无菌采集，1-3次其他部位：亚急性心内膜炎等病人，从肘动脉或股动脉等多次采血 2.采样量：不少于培养基的1/10。成人采血5～10ml 骨髓1-2ml 儿童采血1～5ml 3.培养要求：除有明确的感染
引子：
流行病学调查显示，临床感染病原菌种类不断发生变化，对抗微生物药物的耐药性不断增强，因此，临床医生在抗感染治疗中越来越重视病原学的检测，对微生物室的工作要求越来越高。微生物室任务越来越爱繁重。
临床医生要求微生物室应做到：

改进痰培养标本采集方法对细菌学检验质量的影响

浸泡后用刷子仔细刷洗器械关节、槽等处，补齿弥
［张淑项，２戴智，劳，＝腔科应蘑视潜在的特异性感染方等．Ｉ＿＝１
¨］【华医院感染等杂志．０２］（）６３Ｊ．｛】２０，２９：７．
３］曹力，梁慧，王鲜平，，等全方位做好医院质量监测控制医院感
造成对器械表面损伤后使有机物藏匿于其中，导
致清洗质量下降，使器械生锈；工刷洗器械时并手
要轻拿轻放，免碰撞，避同时做好个人防护，以免］葛朝珍．晓平，挥权，．州市医院医疗器械清洗质量监１倪蒋等杭测分析Ｅ３中华医院感染杂志，０３１（）３Ｏ３１Ｊ．２０，３４：５一５．
关键词：吸道感染；培养标本；集；菌学检验呼痰采细
中图分类号ｉ１６１Ｒ，．４９文献标识码：Ａ
文章编号：６１９７（０００ —０５－０ｌ７— ８５２１）３２３２
痰液是气管、气管、泡产生的分泌物，支肺在呼吸道感染时痰量增加．有性状和成分的改变。并
操作规范》定，用后的器械应及时彻底清洗，规使防止附着在器械上的血液、液干结，时也起到体同初步去污的作用。用多酶溶液浸泡。使蛋白质能分解，效去除血迹，埘器械的特殊结构，关有但如节、槽沟、器械手柄凹凸处等，能保证清洗质量，不

抗生素使用、标本采集方法对痰培养样本细菌学检验结果的影响研究

抗生素使用、标本采集方法对痰培养样本细菌学检验结果的影响研究发表时间：2017-08-23T16:08:41.350Z 来源：《航空军医》2017年第12期作者：李巨坤[导读] 对于临床为痰培养样本细菌学检验结果的准确率，选择规范的标本采集手段及尽量在未使用抗生素前进行检查。

（嘉禾县人民医院湖南嘉禾 424500）摘要：目的探究临床工作中抗生素的使用、标本采集方法对痰培养样本细菌学检验结果的影响。

方法从2014-10至2015-10我院检验科收检的需要进行痰培养样本细菌学检验的病例中抽取220份，其中110例将采集方法作为唯一变量分为改良采集法的探究Ⅰ组和日常采集法的参照Ⅱ组，另110例将是否使用抗生素作为唯一变量分为使用抗生素的参照Ⅲ组和未使用抗生素的探究Ⅳ组，对比临床成效。

结果探究Ⅰ组的合格样本数占82.27%（48例），查出存在病原菌为74.55%，参照Ⅱ组的合格样本数占63.64%（35例），查出存在病原菌为67.27%，探究Ⅲ组的合格样本数占89.09%（49例），查出存在病原菌为75.08%，参照Ⅳ组的合格样本数占70.91%（39例），查出存在病原菌为63.55%，以上差异有统计学意义（P＜0.05），但各组之间的检查平均用时、检查费用之间无明显差异（P＞0.05）。

结论对于临床为痰培养样本细菌学检验结果的准确率，选择规范的标本采集手段及尽量在未使用抗生素前进行检查，能够保证采集标本的规范性，提高检验结果的准确性，推荐临床广泛应用。

关键词：结果影响；抗生素使用；标本采集方法；痰培养样本；细菌学检验呼吸系统疾病是临床发生人数较多的一类疾病，患者年龄分布较广，大多发生于季节变换时［1］。

患者经呼吸道将病原菌吸入体内，从而出现一系列临床表现。

痰培养样本细菌学检验是临床常用的检查手段，弄清楚病原菌有利于临床医师针对性用药，进行治疗［2］。

因此，检查结果的准确性尤为重要，为了探究患者是否服用抗生素及标本采集方法对检验结果的影响，从2014-10至2015-10我院检验科收检的需要进行痰培养样本细菌学检验的病例中抽取220份，现将结果整理如下。

不同尿标本留取方式对尿常规检验中白细胞计数变化的影响因素

不同尿标本留取方式对尿常规检验中白细胞计数变化的影响因素摘要】目的：对不同尿标本留取方式对尿常规检验中白细胞计数变化的影响因素进行分析探讨，为今后的临床检验工作提供有价值参考信息。

方法：选择2014年1月～2015年10月间，我院泌尿科收治的，符合临床诊断标准的尿路感染患者228例作为研究对象，采取随机数字表法将其分成单次清洗组、多次清洗组后，每组114例。

单次清洗组和多次清洗组又继续按照留尿方法分成前段组、中段组，分别定义为甲乙丙丁四组。

对以上四组尿液标本的细菌污染情况进行观察，对比分析尿沉渣镜检红细胞、白细胞计数结果。

结果：对比发现，甲组与丙组比较，乙组与丁组比较，尿液标本阳性率无统计学差异（P＞0.05）；甲组与丙组、乙组与丁组细菌感染发生率比较存在明显差异（P＜0.05）；甲组与乙组、丙组与丁组，白细胞计数比较均存在明显差异（P＜0.05）。

结论：在进行尿液标本采集时，多次清洗，留取中段尿液标本，可提高白细胞计数准确性与精确性，降低假阳性干扰，临床价值显著，值得关注。

【关键词】尿液标本；留取方式；尿常规；尿沉渣；白细胞计数【中图分类号】R446.12 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2016）08-0367-02本次研究中出于对不同尿标本留取方式对尿常规检验中白细胞计数变化的影响因素进行分析探讨，为今后的临床检验工作提供有价值参考信息的目的，对我院收治的尿路感染患者展开了分组尿液标本采集，并对各组受试者的尿常规检查结果进行了对比分析，结果汇报如下。

1.资料与方法1.1 一般资料研究中资料来源于我院收治的，符合临床诊断标准[1]的尿路感染患者，共计选择其中的228例作为研究对象，包括有男141例，女87例，患者年龄在19～68岁之间，平均（45.8±12.1）岁。

将其分成单次清洗组、多次清洗组后，每组114例。

单次清洗组和多次清洗组又继续按照留尿方法分成前段组、中段组，分别定义为甲乙丙丁四组。

临床常见标本的采集方法

临床常见标本的采集方法一、静脉血标本的采集1．操作者先洗手或用手消毒剂喷雾后揉搓待干；2．根据受检者检验项目选择真空采血管；3．在穿刺点上方约6cm处系紧压脉带，嘱受检者紧握拳头，使静脉充盈显露，进行皮肤消毒；4．取下双向采血针头无菌帽，以左手拇指固定静脉穿刺部位下端，右手拇指和食指持采血针柄，使针头与皮肤呈30°角沿静脉走向快速刺入皮肤，然后呈5°角向前刺破静脉壁，进入静脉腔。

见回血后，将针头顺势深入少许即可；5．将采血针的另一端刺入所需的真空采血管盖中央的胶塞中，血液自动流入试管。

如需多管血样，将松开压脉带，嘱受检者松拳，用消毒干棉球压住穿此处，快速拔出针头，嘱受检者按压局部数分钟；6．取下采血针放入利器盒，将所采血样分别贴上相应的条码，抗凝血需立即颠倒混匀，及时送检。

二、动脉血气标本的采集1．受检者取坐位或卧位，休息5min，应正常呼吸，避免憋气及过度通气，以免影响检查结果；2．选择动脉血管后，常规皮肤消毒，用动脉采血针（内有肝素）垂直刺入血管，针管自动吸入0.5ml后，用消毒干棉球压住穿刺处快速拔出针头。

局部按压5min以上，防止血肿形成；3．拔出后立即将针头用橡皮封闭，隔绝空气。

随即挫动注射器，使血液与肝素充分混匀，立即送检。

送检过程中要防止针头橡皮脱落，造成空气直接进入注射器。

如有不慎脱落，必须如实向检验人员说明情况，并告知临床医生，以免影响检验结果和临床诊断。

如确因不能及时送检，可将标本短时间内保存于4℃冰箱中。

三、生化检验标本的采集注意病人生理因素对检验结果的影响，如年龄、性别、体型、情绪、运动、体位改变等。

研究表明，CH、ALP、UA等项目易受年龄的影响，性激素的测定男女差别巨大。

受情绪影响较大的项目有GLU、GH、CA、Cor、PRL等。

另外，血清中CH、ALB、ALT、ALP、AST、TG、AMY及血清Ca等项目受体位改变因素影响较大。

还应注意饮食对测定结果的影响，包括病人是否真正空腹及不进流食。

两种痰标本留取方法对下呼吸道感染患者痰培养结果的影响

即送检。
由于上呼吸道（口、咽）细菌种类繁多，咳出的痰标本常被口、咽部寄殖的细菌污染。此外，据统计，约有３０％的下呼吸道感染的老年患者，由于干咳无痰或咳痰无力，常常留取唾液作为痰标本，
影响了疾病的诊断率。此研究改变了传统直接从口腔中留取痰标本的方法，采用无菌原则，利用吸引器吸引的方法直接从病变
１对象与方法
注：￣２－＝５．８８．Ｐ＜Ｏ．Ｏ１
１．１对象
２０１１年１０月至２０１２年１月在本院就诊的符合对照组差异显著，有统计学意义。实验组的痰标本检出细菌比对照组的痰标本检出细菌及检出率均高，
下呼吸道感染是最常见的感染之一，痰是最方便和无创伤性病原学诊断标本，痰培养和药物敏感试验对于确定病原体的意义
很大。而通常痰液的留取是经口腔排出，而人体口咽部寄居大量
组的痰标本的合格率高，见表１。
表１２组患者痰标本的合格情况比较例（％）
中图分类号：Ｒ４７１文献标识码：Ｂ文章编号：１００６－－６４１１（２０１３）０１ — ０１４５ — ０１统直接从口腔中留取痰标本更有助于提高疾病诊断的准确率。实
验组与对照组差异显著，有统计学意义。实验组的痰标本比对照
当代护士２０１３年１月下旬刊
－．１４５一

细菌培养标本的采集、转运储存方法

细菌培养标本的采集、转运和储存方法一、痰标本1、采集时间：最好于应用抗菌药前，采集清晨第一口新鲜痰液。

2、采集方法：（1）自然咳痰：用清水漱口（包括咽喉部）3次后用力咳痰，从呼吸道深部咳出第一口新鲜痰液于无菌容器内或输送培养基中。

（2）帮助咳痰：不易获得痰的患者可雾化吸入加温的氯化钠（45℃10％氯化钠水溶液）。

（3）支气管镜或支气管毛刷：由医生采集，建议直接种入输送培养基。

（4）胃内采集痰标本：婴幼儿不会咳痰而且常把痰误咽入胃中。

可在清晨，用胃管插入胃内，用注射器抽出胃液。

（5）小儿采集痰标本：用压舌板刺激咳嗽使肺部和器官的分泌物喷出，用拭子采取标本送检，如不能立即送检应种入输送培养基。

3、转运和储存：如在2小时内送检，可常温下放置；如不能立即送检，可放置4℃冰箱，但最好不要超过24小时。

二、血液标本1、采集时间：尽可能在用抗菌药前，心内膜炎除外；对已应用抗菌药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。

2、采集方法：依次使用75%酒精、碘伏、75%酒精清洁采集部位皮肤；一般选取肘静脉，疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉为宜。

注意：不要与血气和血沉标本一起采集；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血。

3、采血量：两套4瓶，分需氧和厌氧，从两个部位抽血。

成人每套血量不少于16-20ml，先将10ml注入需氧瓶，再将剩余血注入厌氧瓶。

儿童每套血1-10ml，采血量是总血量的1％(儿童败血症含菌量是成人的10-100倍)。

4、采血间隔：如第一次采集2套（4瓶）血培养标本，在以后的2-5天不必采血，但除外心内膜炎和导管相关性败血症。

5、转运和储存：血培养瓶务必立即送至细菌室，因故不能立即送检时，应将已接种的瓶放在室温，切勿放在冰箱存放。

三、粪便标本1、采集时间：腹泻患者应在用抗菌药前、急性期采集；沙门菌感染、肠热症应在2周内采集；厌氧菌感染出现症状即可采集。

2、采集方法：自然排便者可用小木棒挑取有脓血和黏液部位的粪便2-3克，如液状粪便取絮状物盛于无菌的、密封的、不吸水的、容器内或直接盛于增菌液或保存液中；对不易获得粪便患者及幼儿，可用直肠拭子采集后置保存液或输送培养基中送检。

不同留取痰标本时机对培养结果的影响

不同留取痰标本时机对培养结果的影响目的探讨常规次日清晨留取痰标本与患者入院时即留取痰标本对痰培养结果的影响。

方法选择2011年7月～2012年7月本院收治的慢性阻塞性肺疾病（COPD）患者240例，分为实验组和对照组各120例。

实验组在患者入院时即予留取痰标本，对照组患者入院后次日清晨留取痰标本，比较两组痰标本的合格率。

结果入院时即予留取痰标本的合格率高于入院后次日清晨留取痰标，两者差异有统计学意义（P 0.05），具有可比性。

1.2 方法1.2.1 实验组留取痰液时机入院时责任护士接待患者，并通知医生，为患者进行入院评估后（使用抗生素前），在旁指导患者用温开水漱口，取坐位或半坐卧位，屈膝，上身前倾，深吸气后屏气3 s，然后腹肌用力，做爆破性咳嗽，将痰液咳出，留在无菌器皿内，加盖贴上条形码，立即通知专业的标本收集人员送细菌室做培养。

对于难咳出痰的患者，先予10%氯化钠溶液2.5 mL与0.9%氯化钠溶液2.5 mL配制成5%氯化钠溶液5 mL雾化吸入后按上述方法留痰。

1.2.2 对照组留取痰标本时机入院后责任护士按医嘱将已贴好条形码的无菌器皿给患者，指导其于次日清晨（已使用1 d抗生素）用温开水漱口，取坐位或半坐卧位，屈膝，上身前倾，深吸气后屏气3 s，然后腹肌用力，做爆破性咳嗽，将痰液咳出，留在无菌器皿内，放在指定位置，由专业的标本收集人员送细菌室做培养。

1.2.3 检测方法将留取的痰标本在显微镜下涂片镜检，通过细胞学检查来判断标本的合格情况。

鳞状上皮细胞≤10个/低倍视野，中性粒细胞≥25个/低倍视野为合格痰标准[3]。

1.3 统计学方法使用统计学软件SPSS 13.0进行数据的分析处理，对两组标本的合格率、阳性率以及抗生素使用时间进行统计，计数资料及计量资料分别采用χ2/t检验，以P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果结果显示，实验组患者留取痰标本的合格率、阳性率均高于对照组，抗生素使用时间少于对照组，两组比较，差异均有统计学意义（P < 0.05），见表1～3。

留取细菌培养标本的要求

留取细菌培养标本的要求[留取细菌培养标本的要求]正确采集细菌标本进行细菌学检查，是正确检验病人细菌感染的关键，因此留取细菌检验标本应注意以下几点：1.如何采集血液标本?血液标本应在病人发热1～2日或发热高峰采集培养为宜。

此时阳性率高。

采集时应以无菌手续由静脉取血5～10ml，立即注入适当的液体增菌培养瓶内，并迅速轻摇，使充分混匀，以防凝固，并有利于细菌生长。

作厌氧菌培养时，抽血后应立即接种厌氧培养基中，避免接触空气，并尽快送往细菌室放入温箱，避免温度对细菌生长不利。

另外磺胺类药物和抗生素可影响细菌检出的结果，因此采集标本应力争在抗菌药物治疗之前，否则应提醒细菌室，选用可以中和抗生素的培养基，这样血液中残留的抗生素被中和掉，有利于细菌生长，以便准确地检测出种类。

2．脓及创伤感染标本的留取。

(1)应首先用无菌生理盐水清洗脓液及病灶的杂菌，再采集标本，以免影响检验结果。

(2)一般用棉拭子采取脓液及病灶的深部的分泌物，瘘管也可以无菌手续采取组织放入无菌试管内送检。

(3)脓肿标本以无菌注射器抽取为好，也可在切开排脓时，以无菌棉拭子采取，也可以将沾有脓汁的最内层敷料放人无菌平皿中送检。

(4)厌氧菌感染的脓液常有腐臭应予注意。

采集和运送标本是否合格，对厌氧培养是否成功至关重要，特别要注意两点：①避免正常菌群所污染；②由采集至接种前尽量避免接触空气。

标本采取完毕应立即送往细菌室检测。

如一时来不及送，应在室温内作暂短保存，一般认为不要冷藏，因冷藏对某些细菌有害，而且在低温时氧的溶解度较高。

3．痰液标本的留取。

(1)痰液标本的采集以清晨为好，因此时痰量多，含菌量大。

标本收集前，病人最好用清水漱口数次，除去口腔内大部分杂菌。

然后用力自气管深部咳出痰液，吐人无菌器皿内，及时送检。

咳痰时应尽量防止唾液及鼻咽部的分泌物混入，以减少污染。

(2)若病人痰量较少，需要检查结核菌时，则应收集24小时痰液，以提高阳性率。

(3)支气管分泌物内含的细菌常能正确地反映出下呼吸道中的病理变化，标本的采集应由专科医生利用支气管镜直接从患者支气管内采取。

尿细菌学培养的尿标本留取方法及注意事项

尿细菌学培养的尿标本留取方法及注意事项尿细菌学培养是一种常用的临床检测方法，用于检测尿液中是否存在细菌感染。

正确的尿标本留取方法和注意事项对于获得可靠的检测结果至关重要。

下面将介绍尿标本留取方法和需要注意的事项。

一、尿标本留取方法1. 标本采集时间：通常在晨尿或早间第一次排尿后，因为这时的尿液中的细菌浓度最高。

如果患者无法在晨尿排尿，也可在随后的尿液中留取标本。

2. 标本容器选择：应选择无菌的尿液采集容器，如尿样瓶或培养瓶，并确保容器密封良好。

3. 标本采集准备：在留取标本前，应先进行外阴部清洁。

女性患者应将外阴轻轻分开，用清洁纸巾或无菌棉球清洁尿道口以防细菌污染。

4. 标本采集方法：（1）女性患者：同时排尿和收集尿液标本。

a. 先将尿下洗净，接着让尿液直接落入容器中。

b. 保持适量的尿液在容器中，然后继续排尿。

（2）男性患者：尿样采集会稍微简单一些。

a. 收集开始时可以先放弃尿液的头尿，然后将尿液直接落入容器中。

b. 收集过程中，要保持适量的尿液在容器中。

5. 标本储存：尿标本的保存时间一般不超过2小时，并且要保存在室温下。

如果无法在2小时内送到实验室，请将尿液标本存放在4℃的冰箱中，但不要冷冻。

二、尿标本留取的注意事项1. 避免尿道外真菌污染：女性患者在清洁外阴部时，应特别注意尽量避免清洁到肛门区域，以防尿道外真菌污染。

2. 避免尿液样本污染：收集尿样时，避免手部和其他物品接触到容器侧壁、内壁或盖子，以免引入细菌。

3. 避免尿液中的细菌污染：患者应在排尿前将外阴清洁干净，以减少尿液中的细菌污染。

4. 保持尿液标本的完整性：在留取尿标本后，应检查容器是否密封良好，以防尿液泄漏。

5. 尽量避免尿液标本污染其他标本：尿液标本应放在专用的尿液袋中进行运输，以避免污染其他标本。

6. 注意采集尿培养前的药物使用历史：某些抗生素和消毒液（如含有碘的消毒液）可能会抑制细菌的生长，因此在采集尿标本前应告知医生是否有使用相关药物。

痰培养标本采集方法的改进对细菌学检验质量的影响分析

痰培养标本采集方法的改进对细菌学检验质量的影响分
析
痰培养是一种常用的细菌学检验方法，用于分离和鉴定呼吸道感染的病原细菌。

痰培养的质量对于准确诊断和治疗有着重要的影响。

本文将从标本采集方法的改进对痰培养质量的影响进行分析。

痰培养标本采集是病原细菌分离和鉴定的起点。

传统的痰标本采集方法是患者自主咳嗽产生痰液，然后采集痰液作为标本。

然而，这种方法存在一些问题，如病人难以产生足够的痰液、咳嗽时痰液被污染或者痰液中含有大量的上皮细胞等，这些都会影响培养的质量。

改进的标本采集方法可以显著提高痰培养的质量。

首先，可以使用痰液吸引器进行采集。

这种方法可以确保采集到足够数量的痰液样本，并且可以减少上皮细胞的污染。

其次，可以采用深部吸引法进行标本采集。

深部吸引法是通过导管直接插入支气管，采集到支气管腔内的痰液。

这种方法可以避免口腔和咽喉的污染，提高纯度和准确性。

改进的标本采集方法还可以延长标本存放时间。

传统的痰标本采集后通常要尽快送到实验室进行处理，否则会导致细菌在标本中过度增殖，从而影响分离和鉴定。

改进的方法是在采集后将标本置于抗菌剂稀释液中，并在低温条件下储存。

这可以延长标本的保存时间，减少细菌过度增殖的情况。

总的来说，改进的痰培养标本采集方法对于细菌学检验质量的影响是积极的。

改进的方法可以提高标本的纯度和准确性，延长保存时间，并且可以借助现代生物学技术提高鉴定结果的准确性。

这些改进为临床医生提供了更准确的病原细菌信息，有助于指导治疗和预防策略的制定。

因此，推广并应用改进的痰培养标本采集方法是十分必要的。

临床微生物标本的正确采集及运送

患者出现以上一种或同时具备几种临床表现时可作为血培养的重要指征
血液标本的采集与运送
2、血培养标本的采集时间尽可能在患者寒战或开始发热时采血在患者接受抗生素治疗前采血如患者已经使用抗生素进行治疗，应在下一次用药
前采血
血液标本的采集与运送
3、血培养标本的采集 ⑴皮肤消毒程序：严格执行以下3步法：①75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上，②再用1%-2%碘酊作用30s或10%碘伏作用90s以上，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径3cm以上；③最后用 75%酒精脱碘。如对碘过敏的患者，可用75%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。注意：不允许在消毒后按压静脉，除非戴有无菌手套
化脓和创伤标本的采集与运送
采集方法 ⑴未破裂脓肿：在采集标本前，对患者病灶局部的
皮肤或黏膜表面，用2.5%—3%碘酊消毒、75%酒精脱碘，用无菌注射器将脓肿内容物吸出,然后切开脓肿、引流，采集的脓液（>1ml）,并取部分脓肿壁置于厌氧运送装置或接种于厌氧培养基中立刻送检。注意不主张用拭子采集标本。
血液标本的采集与运送
5、血培养采集的次数 ⑴对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时或短时间间隔（10分钟内）从不同部位（如双臂）采集2套血培养标本，做到“双瓶双侧”。如有必要，可同时或短时间间隔内从下肢静脉采血接种第 3套培养瓶。在采集血培养后的2-5天内，不需要重复采集血培养。当采血量不能满足推荐的采血量时，应首先接种需氧瓶。 ⑵婴幼儿患者，需要同时采集2次（不同部位）血培养标本。
穿刺液标本的采集及运送
2、标本运送采集后应正确盖好，防止泄露或容器外部留有残留
物。标本应在15min内送检。若不能及时送检室温保存
不超过24h。

尿细菌学培养的尿标本留取方法及注意事项

尿细菌学培养的尿标本留取方法及注意事项尿细菌学培养是一种常用的方法，用于检测尿液中是否存在细菌感染。

以下是关于尿标本留取方法及注意事项的详细描述：1. 使用干净的容器收集尿液标本。

可以使用特殊的尿液容器，也可以使用干净的玻璃瓶或塑料瓶。

2. 在收集尿液之前，首先进行外阴清洁。

使用清水或温和的洗涤剂清洗外阴区域，然后用清水冲洗干净。

3. 尽量避免将细菌从外阴区域带入尿液标本中。

女性在收集尿液时，应将阴道用纱布或卫生巾堵塞，以防止阴道中的细菌进入尿液。

4. 对于婴儿和幼儿，使用尿壶或尿布来收集尿液。

在收集之前，确保尿壶或尿布是干净的。

5. 对于儿童和成年人，最好在早晨醒来后第一次排尿时收集尿液，因为这样的尿液更能准确地反映尿道以及导尿道的情况。

将第一次尿液排空，然后收集下一次排尿的尿液。

6. 使用尿液容器收集尿液时，保持容器的内部和外部清洁。

避免将容器放置在地面上，以防止污染。

7. 尽量收集中段尿液。

这意味着在排尿开始时不要收集尿液，也不要收集尿液结束时的尿液。

通过收集中间部分的尿液，可以减少尿道周围的细菌污染。

8. 收集足够数量的尿液样本。

尿液培养通常需要约10-15毫升的尿液。

确保收集到足够的尿液，以便进行其他必要的检测。

9. 尽量避免触碰容器内部。

如果不小心接触到容器内部，建议更换一个新的容器，以避免细菌污染。

10. 密封尿液容器。

使用容器上提供的盖子或盖子，确保尿液标本不会泄漏或受到污染。

11. 标记尿液容器上的标签。

写下病人的姓名、年龄、日期和时间等相关信息，以确保尿液标本可以正确地处理和识别。

12. 将尿液标本尽快送往实验室。

尿液标本应在收集后的1-2小时内送往实验室。

在送往实验室之前，尿液标本最好存放在低温环境中，以防止细菌的增殖。

13. 如果无法立即送往实验室，可以将尿液标本存放在冰箱中。

但是请注意，冷藏的尿液标本应尽快送往实验室，以防止细菌的增殖。

14. 在收集尿液之前，清洁实验室台面。

不同临床标本对微生物检验阳性率结果的影响及其原因

世界最新医学信息文摘 2019年第19卷第55期187投稿邮箱：zuixinyixue@·医学检验·不同临床标本对微生物检验阳性率结果的影响及其原因林春和（英德市中医院，广东清远 513000）0　引言细菌、病毒、真菌等个体难以用肉眼观察到的一切微小生物被统称为微生物[1]。

微生物是导致机体发生感染的主要原因之一，针对不同微生物导致的感染有不同的药物进行治疗，如果药物选择不当，不仅不能有效的杀灭病原体，甚至可能导致病原体发生变异，增加治疗的难度[2-3]。

因此对于感染患者微生物的检验就成为临床研究的重点课题。

有研究报道，不同临床标本对微生物检验阳性率结果具有影响。

为了观察不同类型的临床标本微生物检测的阳性结果，我院进行了本次研究，现报道如下。

1　资料与方法1.1　患者选择。

随机选择2018年3月至2018年10月至我院进行病原菌检查标本1400例进行临床研究。

其中呼吸道413例、血培养355例、非呼吸道310例、粪便322例。

本次研究通过医院伦理委员会研究并予以批准。

1.2　方法1.2.1　研究方法：所有采集标本均给予微生物检测以及药敏测试。

仪器为全自动细菌鉴定药敏分析仪，检测方法为比色法和比浊法，使用光电逐孔检测技术，试剂盒包括肠杆菌、真菌、弧菌等常见微生物试剂，药敏试剂盒包括肠杆菌、葡萄糖等配套试剂盒，所有标本均由本院微生物实验室进行检测，严格按照试剂盒要求流程进行操作。

呼吸道标本采集：取患者清晨的口腔痰液，指导患者将痰液吐在无菌采集皿中，标本量需要超过器皿容量1 mL ，将痰液制成图片进行检查。

血液标本采集：取患者清晨空腹肘正中静脉血10 mL ，制作成血液样本。

粪便标本采集：取患者清晨自然排除粪便3 g 放于无菌器皿中制成涂片。

非呼吸道标本包括尿液标本、穿刺液标本等，根据要求取相应标本制成涂片。

1.2.2　分析指标：观察不同途径取得的临床标本经微生物检验所得阳性率，并进行比较。

不合格标本对检验结果的影响

不合格标本对检验结果的影响
临床检验工作中遇到的不合格标本主要表现在溶血、凝血、污染、采集量不足或过多、标识错误等。

不合格标本产生的原因主要包括：(1) 使用了错误的容器或添加剂;(2)使用了不恰当的采血器具，如使用规格过小或过大的针头容器，使用过大的负压真空管等;(3)样本标识错误;(4) 标本采集过程中的操作不规范使标本发生溶血;(5)采血量过少或过多;(6) 标本污染。

不合格标本肯定会影响检验结果。

下面是yjbys 小编为大家带来的关于不合格标本对检验结果的影响的知识，欢迎阅读。

一、血细胞计数和分类计数
采血不顺畅、抗凝剂比例不当或混匀不彻底使得抗凝不充分导致的血液凝固或血细胞聚集，导致相应细胞计数结果的偏低;聚集的细胞还可能被仪器误判为其他细胞数量的不准确。

末梢血采集过程中过分挤压造成组织液混入，导致血小板的聚集，导致血小板计数值偏低，同时组织液的混入还可引起血液的稀释。

抽血、混匀手法过于剧烈或添加物不当造成的溶血，可导致细胞计数结果偏低。

在末梢血采集时，消毒剂未完全干燥之前进行穿刺可能导致血细胞的破坏，引起计数结果偏低。

炎症浸润部位采血导致局部炎症细胞的混入，导致细胞形态的不正常，血细胞的黏附、聚集合并导致细胞分类计数结果受影响。

血液细胞学检查应使用EDTA 抗凝，错误的抗凝剂可能引起血细胞形态的变化，造成血细胞计数和分类的不准确，如草酸盐和肝素抗凝可引起血小板数、白细胞数和淋巴细胞计数结果的偏低。

二、出凝血项目
采血不顺畅、血量过少引起抗凝剂比例不当或混匀不彻底使得抗凝剂不充分，导致凝血过程激活和凝血因子的消耗。

这种情况可能引起。