辅酶Q10对大鼠实验性牙周炎的影响作用

辅酶Q10对大鼠实验性牙周炎的影响作用
目的：观察辅酶Q10（CoQ10）对大鼠实验性牙周炎的影响作用。

方法：选取雄性SD大鼠168只，随机分为正常组（N）、模型组（P）、替硝唑组（T）、维生素C组（VC）、辅酶Q10低、中、高剂量组（LQ、MQ、HQ）。

灌胃給药第2、4、6周，随机抽取8只，采血检测血浆中IL-1β、TNF-α、PGE2、SOD、GSH-Px、MDA水平；测量大鼠牙槽骨附着丧失，并行HE染色、TRAP染色。

结果：CoQ10可降低血浆中IL-1β、TNF-α、PGE2水平；增加SOD、GSH-Px活力，减少MDA含量。

结论：CoQ10可抑制和缓解大鼠实验性牙周炎。

标签：辅酶Q10；牙周炎；氧化应激
Abstract：Objective To investigate the effect of coenzyme Q10（CoQ10）on experimental periodontitis in rats. Methods 168 healthy SD rats were randomly divided into normal group （n），model group （P），tinidazole group （T）and vitamin C group （VC），coenzyme Q10 low，medium，high dose group （LQ，MQ，HQ）. Intragastric administration for week 2，4，6，8 rats were randomly selected to detect IL-1β、TNF-α、PGE2、SOD、GSH-Px、MDA of their peripheral blood；The ABL value was detected，and the HE staining and TRAP staining were performed. Results CoQ10 could significantly decrease the levels of IL-1β，TNF-α，PGE2 ；the activity of GSH-Px and SOD increase more，and MDA decrease . Conclusion CoQ10 can inhibit the experimental periodontitis in rats.
Keywords：Coenzyme Q10；Periodontitis；Oxidative Stress
牙周炎（Periodontitis）是一种牙周组织的慢性炎症性疾病，牙周致病菌作为使动因子激发了宿主过度的炎症反应，通过“呼吸爆发”生成大量自由基，从而破坏和损伤牙周组织细胞[1]。

烟草中含有很多种具有较高药用价值和营养价值的物质，如辅酶Q、茄尼醇、多酚类化合物等。

辅酶Q10（Coenzyme Q10，CoQ10）是一种内源性脂溶性的抗氧化剂，能清除机体的自由基，在心血管疾病、糖尿病、神经系统等疾病领域都具有一定治疗效果[2]。

因此，本实验以烟叶废料中提取的脂溶性CoQ10作为受试样品，通过建立大鼠实验性牙周炎模型，初步探讨CoQ10对实验性牙周炎的影响。

1 材料与方法
1.1 试剂CoQ10（本课题组委托云南中医学院实验中心由云产废弃烟末中提取，纯度>99%）；替硝唑（纯度98%，美仑生物）；维生素C（纯度99.99%，上海阿拉丁）；调和油（丰益贸易私人有限公司）；水合氯醛（纯度99%，Solarbio 公司）；多聚甲醛（纯度95%，天津市光复精细化工研究所）；TRAP染色试剂盒（美国sigma公司）；大鼠TNF-α ELISA、大鼠IL-1β ELISA、大鼠PGE2 ELISA 等试剂盒购自深圳欣博盛；SOD试剂盒、MDA试剂盒、GSH-Px试剂盒购自南京建成。

1.2 仪器AL204型高精密电子分析天平（德国Mettler Toledo，精度0.0001g）；5415R型低温高速离心机（德国eppendorf）；BM-IX型组织包埋机（中国孝感生物）；HH·S11·Cr2型电子恒温水浴锅（汕头医用设备有限公司）。

1.3 方法
1.3.1 实验动物及分组清洁级健康雄性SD大鼠168只，体重200g左右（购自四川省简阳市简城比尔动物养殖场，许可证号：SCXK（川）2013-24，合格证号：003425）。

将实验动物分为7组：正常组（N组）、模型组（P组）、替硝唑组（T组）、维生素C组（VC组）、CoQ10低剂量组（LQ组）、CoQ10中剂量组（MQ组）、CoQ10高剂量组（HQ组），每组24只。

正常组不做处理，常规饲料喂养，正常摄水。

1.3.2 牙周炎模型的建立实验动物适应性喂养1周后，除N组大鼠外，其余大鼠通过丝线结扎+粘性高糖饮食复制大鼠实验性牙周炎模型[3]。

7%水合氯醛0.3mL/100g腹腔注射麻醉，大鼠仰卧位固定，充分暴露视野。

用4/0#医用丝线，在大鼠双侧上颌第二磨牙环牙颈部结扎，腭侧打结，并使丝线尽量位于龈沟内。

同法结扎对侧上颌第二磨牙。

结扎后每3～4天观察1次，检查时发现结扎丝脱落及时重新结扎。

并从实验当天，造模组给于黏性高糖饮食。

造模4周后，进行牙龈指数（GI）检测，用钝头探针，沿根面平行探入大鼠上颌第二磨牙腭侧位点的袋底，探诊力量在20～25g。

探诊后10～30s记录出血情况：0表示牙龈健康；1表示牙龈有轻度的炎症：牙龈轻度水肿，颜色轻度改，探诊不出血；2表示牙龈有中等程度炎症：牙龈水肿光亮且色红，探诊出血；3 表示牙龈有严重炎症：牙龈红肿明显或伴有溃疡，有自动出血的倾向。

1.3.3 大鼠灌胃造模成功后次日，N组为正常大鼠，灌胃CoQ10溶剂调和油；P组为牙周炎大鼠，灌胃CoQ10溶剂调和油；T组为牙周炎大鼠，首日灌胃替硝唑200mg/kg，次日灌胃替硝唑100mg/kg[4]；VC组为牙周炎大鼠，灌胃維生素C剂量为100mg/kg[5]；LQ组为牙周炎大鼠，灌胃辅酶Q剂量为15mg/kg；MQ组为牙周炎大鼠，灌胃辅酶Q剂量为30mg/kg；HQ组为牙周炎大鼠，灌胃辅酶Q剂量为60mg/kg[6]。

按上述剂量，灌胃量均为1.25mL/kg，每天1次，早上9点开始灌胃给药。

1.4 指标的检测
1.4.1 标本采集每组分别于灌胃第2、4、6周末随机处死8只大鼠，取其血浆，-80℃保存，用于相关炎症因子及氧化应激指标的检测；取其左上颌去净软组织，置于75%酒精中，用于牙槽骨丧失值检测；右侧上颌骨浸于4%多甲固定液中固定，用于后续组织学检测。

1.4.2 ABL值检测取左侧去净软组织的大鼠上颌骨，用电子数显卡尺测量其上颌第二磨牙釉牙骨质界至牙槽嵴顶的距离。

每颗牙测量6个位点：近颊、中颊、远颊、近腭、中腭、远腭。

测量均值为该颗牙ABL值，以“x±s”表示。

1.4.3 苏木精-伊红（Hematoylin-Eosin，HE）染色常规脱钙包埋，近远中向
连续5微米厚度行组织切片，脱蜡至水，并进行水洗10s，加入苏木素液15min，流水冲洗1min，浸泡于1%盐酸酒精中30s后，再进行30min流水冲洗，浸泡于伊红染液中30s，流水水洗10s，在梯度酒精中进行脱水，过二甲苯中透明处理，滴加中性树胶进行封片。

于光学显微镜镜下观察大鼠第一、二磨牙，第二、三磨牙之间牙周组织的病理改变。

1.4.4 抗酒石酸酸性磷酸酶（Tartrate-Resistant Acid Phosphatase，TRAP）染色根据试剂盒说明进行TRAP染色，破骨细胞的鉴定标准：细胞核为多核、细胞浆呈现嗜酸性、并有多条伪足、细胞体体积大、形状不规则，直接接触牙槽骨表面或者在骨吸收陷窝里，进行TRAP染色以后，细胞浆则呈红色，核呈蓝色。

高倍显微镜（×400）下观察，以牙槽嵴顶作为起始点，随机选取第二磨牙近远中侧牙槽嵴边缘的4个不重叠视野，分别计算每一个视野内的破骨细胞数，并计算其均值，作为该片的破骨细胞数，每组随机抽取4张切片观察。

1.4.5 炎症因子检测按ELISA试剂盒说明检测各组各时间点大鼠血浆中炎症因子白细胞介素1β（Interleukin-1Beta，IL-1β）、肿瘤坏死因子α（Tumor Necrosis Factor-Alpha，TNF-α）、前列腺素E2（Prostaglandin E2，PGE2）的含量。

1.4.6 抗氧化指标检测按抗氧化指标检测说明书操作，检测大鼠血浆中谷胱甘肽过氧化物酶（Glutathione peroxidase，GSH-Px）、超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）的活力和丙二醛（Malondialdehyde，MDA）含量。

1.5 统计分析所有数据均由SPSS17.0数据统计软件包处理，各组数据间采用LSD-t检验、单因素方差分析（One-way ANOV A）来进行比较，P＜0.05表示差异具有统计学意义。

2 结果与讨论
2.1 牙周炎模型的确立建模术后4周时，牙周炎模型大鼠牙龈呈暗红色，龈缘圆钝，探诊点状出血，少数伴有牙龈溃疡，其GI值为（2.5±0.53），正常大鼠牙龈粉红，质地坚韧，探诊无出血，其GI值为0，两者差异具有统计学意义（P＜0.05）。

造模术后4周，随机抽取实验动物，通过HE染色观察发现结合上皮与牙体分离，上皮及固有层大量炎性细胞浸润，上皮钉突向结缔组织伸长，胶原纤维的排列紊乱，大鼠上颌第二磨牙近远中牙槽嵴顶破坏吸收严重，以此来确定大鼠牙周炎模型建立成功。

如图1、2所示。

2.2 ABL值检测结果比较通过对大鼠上颌骨ABL值检测，可较为直观观察灌胃CoQ10后牙周炎大鼠牙槽骨的恢复情况。

各组各个时间点之间相比较，N 组的ABL值均低于P组、T组、VC组和CoQ10各剂量组，差异具有统计学意义（P＜0.05）；2、4、6周，P组与N组、VC组和CoQ10各剂量组相比，差异无统计学意义（P>0.05）。

且在三个时间点来看，CoQ10各剂量组和T组、VC 组相比，差异无统计学意义（P>0.05）。

见表1。

徐艳丽等[7]用水溶性CoQ10（9 mg/kg）给患有Ⅱ型糖尿病牙周炎的大鼠进行连续灌胃11周，发现大鼠牙槽骨垂直吸收高度并没有改变，但却可以观察到RANKL/OPG比值增大，表明CoQ10
是可以抑制破骨细胞分化，影响骨吸收及骨形成。

虽然徐艳丽等人的实验结果与本实验结果具有相似性，但本实验研究的是大鼠的牙周炎模型，且最长的观测时间是6周，与伴糖尿病的牙周炎模型有一定区别。

目前关于牙周炎时CoQ10对牙槽骨吸收的影响研究甚少，因此有待进一步的研究。

2. 3 HE染色结果N组第二磨牙近远中面牙龈乳头正常，牙龈上皮完整，结合上皮附着位CEJ处，无附着丧失，牙周膜纤维排列整齐，牙槽嵴顶高度正常。

灌胃2周末，P组与T组、VC组、CoQ10各剂量组大鼠相似，出现附着丧失，牙周膜纤维排列紊乱，牙槽嵴顶吸收，固有层炎细胞浸润，如图3所示。

灌胃4周末，P组大鼠磨牙之间的龈乳头丧失，见明显附着丧失，牙周膜纤维的排列呈现紊乱，牙槽骨明显吸收，大量纤维断裂，其间有炎症细胞的浸润；T组、VC 组和CoQ10各剂量组相似，附着丧失，炎症细胞浸润，但较模型组相比，牙周膜纤维紊乱程度改善，牙槽骨吸收程度也不及模型组明显。

如图4所示。

灌胃6周末，P组大鼠磨牙间牙龈乳头丧失，牙龈上皮表面糜烂，牙周膜纤维排列紊乱，纤维断裂，炎症细胞浸润，牙骨质呈虫蚀样破坏吸收；T组、VC组及CoQ10各剂量组炎性细胞浸润牙周膜纤维排列较整齐，牙槽峭顶有新骨形成。

如图5所示。

表明灌胃CoQ10可改善牙周炎大鼠的牙周组织，促进牙周膜纤维的修复，减少炎性细胞浸润程度，但对牙周附着丧失的改善程度不明显。

2.4 TRAP染色结果于×400镜下观察大鼠牙槽嵴顶区破骨细胞变化情况并计数。

如图6所示。

各组各个时间点之间相比较，P组牙槽嵴顶区的破骨细胞数明显多于N组（P＜0.05）；各时间点CoQ10各剂量、T组、VC组的破骨细胞数与P组之间差异无统计学意义（P>0.05）。

且CoQ10各剂量组与T组、VC组之间差异无统计学意义（P>0.05）。

见表2。

牙槽骨的吸收破坏是牙周炎主要的病理变化之一。

对于牙周炎的治疗，除了基础治疗和手术治疗等治疗方法外，药物的使用也对控制炎症、阻断牙槽骨吸收和促进骨再生起到良好的辅助作用。

有学者提出[8]，抗氧化剂能清除破骨细胞中内源性自由基的生成，同时抑制破骨细胞形成过程中由自由基诱导的信号通路来抑制核因子κB受体活化因子配体（RANKL）诱导的破骨细胞产生。

由此认为抗氧化剂对于急性进行性骨吸收疾病具有潜在的作用。

Moon等[9]体外研究显示，CoQ10能显著降低骨髓来源的单核细胞和RAW 264.7细胞中RANKL 诱导的TRAP阳性多核细胞的形成；并且CoQ10能呈剂量依赖性地抑制破骨细胞中TRAP和破骨细胞相关免疫球蛋白样受体的表达。

但本实验所得到的破骨细胞实验结果是基于体内的动物实验，体内内环境复杂，可能是造成两者结果差异的主要原因之一。

此外，成骨和破骨都是骨质代谢的两个重要方面。

CoQ10对牙周炎大鼠破骨细胞无明显抑制作用，不表示对成骨细胞也无作用。

因而尚不能说明CoQ10对减少牙周炎大鼠牙槽骨区的破骨细胞无明显作用。

2.4 对三种炎症介质IL-1β、TNF-α、PGE2的检测结果比较本实验中，在2、4、6周，CoQ10各剂量组大鼠血浆中IL-1β、TNF-α、PGE2浓度均低于P组（P ＜0.05）。

见表3、4、5。

表明外源性补充CoQ10可以有效抑制IL-1β、TNF-α、PGE2的表达，降低牙周炎的炎症反应。

CoQ10作为一种具有抗氧化性能的物质，在许多炎症性疾病上具有潜在的治疗功效，可下调多种相关的炎症因子。

Jhun 等[10]发现CoQ10能显著抑制小鼠炎症关节中IL-17、IL-21、TNF-α、IL-1β等促炎细胞因子产生。

Lee等[11]也发现，在骨关节炎的大鼠模型中，CoQ10可显著减少炎症介质IL-1β，IL-6，IL-15，iNOS的表达量。

Jin等[12]研究显示，给
大鼠灌胃水溶性CoQ10（9mg/kg）能显著抑制牙周炎大鼠牙龈组织中TNF-α的表达。

本实验中用云南烟叶提取的脂溶性CoQ10灌胃大鼠，最小灌胃剂量为15mg/kg，在各时间点均能对大鼠外周血中IL-1β、TNF-α、PGE2的水平产生抑制作用，与上述研究结果相似。

一般认为替硝唑是通过对牙周微生物的抑制而发挥作用的，其作用机制不同，在临床上替硝唑是牙周炎药物治疗中的重要药物，但也具明显的副作用，其肝肾毒性较大，大量服用容易引起恶心、呕吐、腹泻和厌食等胃肠道不适，还可导致药物性口炎、血压升高和过敏反应如荨麻疹、皮疹等；此外，替硝唑对于哺乳期妇女也是禁用的[13]。

且随时间推移，一些厌氧菌的耐药性也在增加，导致临床上使用替硝唑逐渐受到限制。

而CoQ10目前被认为安全无毒的。

其毒理学研究显示：在小白鼠以及大白鼠其LD50为大于4000mg/kg。

且对雌性大鼠在受孕前到受孕初期灌胃大剂量CoQ10（1000mg/kg），结果显示CoQ10未对母体与新生仔的各项机能、形态发育和生殖能力产生影响。

目前为止，临床上使用CoQ10尚未发现产生严重不良反应。

口服CoQ10主要副作用为上腹不适、恶心、食欲不振和腹泻等胃肠道不适，偶见一过性心悸和荨麻疹。

此外，CoQ10一般不与其他药物发生相互作用[14]。

本实验结果也表明，CoQ10对大鼠牙周炎炎症因子的抑制效果与替硝唑效果相似。

并且CoQ10的毒副作用远低于替硝唑等抗菌药物。

此外，实验中大剂量的VC也具有与CoQ10近似的抑制炎症因子的效应，提示抗氧化剂可能都通过抗氧化特性来影响炎症因子的产生过程。

对于CoQ10是如何下调炎症疾病中相关炎症介质的产生，目前尚不完全清除。

现已知IL-1β、TNF-α、PGE2可通过激活机体的核转录因子κappa B（Nuclear Factor κappa B，NF-κB）途径产生。

被激活的NF-κB可导致多种炎症介质的高表达，引起炎症反应。

同时，产生的炎症介质又可以反过来对NF-κB进行激活，导致炎症信号的不断放大，进一步加重组织细胞的炎症反应。

因此猜想CoQ10可通过NF-κB途径抑制炎症因子IL-1β、TNF-α、PGE2的产生，同时减少的炎症因子反过来又减少对NF-κB途径的激活，对炎症反应的抑制可逐渐加大。

2.5 对三种氧化应激指标SOD、GSH-Px、MDA的检测结果比较牙周炎时，机体内氧化还原状态发生了改变。

SOD、GSH-Px是两种机体内的抗氧化酶，它们活力的高低代表着机体清除自由基的水平。

在2、4、6周，CoQ10各剂量组大鼠血浆中SOD活力均高于P组（P＜0.05）；CoQ10各剂量组和VC组相比均无统计学差异（P>0.05）。

见表6。

在2、4、6周，CoQ10各剂量组大鼠血浆中GSH-Px活力均高于P组（P＜0.05）；CoQ10各剂量组和VC组相比，差异均无统计学意义（P>0.05）。

见表7。

表明牙周炎时机体氧化应激增强，产生的过多自由基消耗了大量的抗氧化酶，机体的氧化应激状态变差；而本实验中的CoQ10组SOD、GSH-Px的活性明显升高，提示本实验所用的CoQ10能抑制氧化应激反应，改善牙周炎时机体的氧化还原状态。

此外，CoQ10各剂量组在2、4、6周时大鼠血浆中的SOD、GSH-Px的活性与N组相似。

表明CoQ10可恢复大鼠炎症状态下机体的氧化还原状态至正常水平，且在2周时就可达到效果。

说明CoQ10是一种抗氧化效果良好，且作用迅速的抗氧化剂，能迅速改善牙周炎时机体的氧化还原状态至正常水平。

MDA作为氧化应激的产物，它的量可代表机体内发生的脂质过氧化反应的
强度和速率，并与机体内自由基的浓度呈正相關[15]。

在2、4、6周，CoQ10各剂量组大鼠血浆中MDA含量均低于P组（P＜0.05）；与VC组相比，除6周时间点的LQ组比VC组低外，其余各时间点的CoQ10剂量组与VC组均无统计学差异（P>0.05）。

见表8。

表明CoQ10本身作为一种抗氧化剂，改善了机体的氧化还原状态，使氧化应激反应降低，氧化应激产物MDA含量随之减少。

此外，抗氧化酶SOD、GSH-Px的活力也有所提升，CoQ10可能也通过提高其他抗氧化酶的活力，增强对氧化应激的抑制效果。

研究显示：让冠状动脉疾病患者连续服用CoQ10（150mg/d）12周后发现，其外周血中的MDA含量下降、SOD的活性升高[16]。

这也与本实验的结果相似，表明灌胃CoQ10后的牙周炎大鼠的氧化应激状态有所改善。

實验中CoQ10和阳性对照药维生素C对大鼠外周血中三种氧化应激指标SOD、GSH-Px、MDA的改善具有相似性。

维生素C作为一种公认的水溶性抗氧化剂，可以通过清除机体组织过量的自由基，阻断一系列由自由基引发的连锁反应，保护组织细胞免受氧化应激损伤[17]。

实验中CoQ10和维生素C对三种氧化应激指标改善的相似性，可能归因于二者具有相似的抗氧化效果。

但维生素C不能减少CoQ10的消耗，也不能有效地清除半泛醌阳离子自由基，CoQ10为脂溶性物质而维生素C为水溶性物质，二者是两个不同的抗氧化系统。

虽然实验中二者表现出相似的抗氧化能力，但抗氧化作用途径可能是相互独立的。

CoQ10各剂量组和VC组对三个抗氧化指标的改善效果在6周时均接近于N组，两者均表现出较好的抗氧化特性，本实验中给大鼠低剂量CoQ10（15mg/kg）即可产生与高剂量维生素C（100 mg/kg）相似的效果。

研究表明[18]到目前为止CoQ10未发现严重的不良反应，是一种更为安全、有效的抗氧化剂。

此外，实验中替硝唑在对牙周炎大鼠外周血中的两种抗氧化酶活力和MDA量的改善上不及CoQ10和维生素C明显，替硝唑不具有抗氧化性对牙周炎的作用机制与CoQ10和维生素C不同。

CoQ10的抗氧化机制尚不完全清楚。

CoQ10主要以醌型（氧化型）、半醌型和酚型（还原型）三种存在形态存在于体内，而发挥抗氧化作用的主要是还原型的CoQ10。

研究发现，还原型的CoQ10以逐个失去H+和电子的方式与酯自由基或过氧自由基反应，自身先转变成半醌QH·，再转变为氧化型的CoQ10。

氧化型的CoQ10又可被体内的一些物质还原为还原型的CoQ10。

机体内的CoQ10在清除自由基后，又可在生命体中循环再生[19]。

由此，CoQ10可通过减少自由基的生成，保护生物体的膜结构完整性，对损伤的线粒体膜磷脂进行修复，减少超氧化物生成，抑制氧化应激对机体的损害。

3 结论
通过对牙周炎大鼠灌胃CoQ10发现，CoQ10能一定程度上降低大鼠实验性牙周炎血浆中IL-1β、TNF-α、PGE2的量，及增加SOD、GSH-Px的活力水平，降低氧化应激产物MDA，降低牙周炎的炎症反应，改善其氧化应激状态。

CoQ10对大鼠实验性牙周炎的潜在治疗机制：一方面可能通过清除自由基，减轻牙周组织的氧化应激损伤；另一方面可能通过减少自由基，来减少对炎症通路的激活，从而降低炎症反应。

但在6周的观察期内，未发现CoQ10对大鼠牙槽骨丧失及相应破骨细胞数产生影响，尚不能认为CoQ10可改善牙周炎所导致的骨吸收。

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