谷胱甘肽与支气管哮喘
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
垦丛匿堂堕咝丕缍坌堑!!!!至筮!!鲞箜!塑皇!!墨!!旦i!墅!!!!!i墨!坚型璺!!:墅2:!!!!:∑!!:!!:盟!:!谷胱甘肽与支气管哮喘
朱运福戴爱国胡瑞成
谷胱甘肽是真核细胞中普遍存在的含疏基三肽,所含巯基约占细胞内非蛋白疏基的90%,是细胞内重要的还原性物质,在保护细胞免受亲电子复合物和外源性毒物等氧化性物质所致的氧化损伤中发挥重要的作用,同时也是半胱氨酸的贮存及运输形式,还参与免疫及炎症的调节。
氧化/抗氧化失衡在支气管哮喘(哮喘)慢性气道炎症反应中具有重要意义。
本文就谷胱甘肽在支气管哮喘发病的作用机制研究进展作一综述。
1谷胱甘肽合成及调节机制
谷胱甘肽在胞质中合成,肺上皮细胞、内皮细胞、成纤维细胞等广泛合成谷胱甘肽。
谷胱甘肽的合成分两步:①7一谷氨酸与半胱氨酸合成7一谷氨酰半胱氨酸;②7-谷氨酰半胱氨酸与甘氨酸合成谷胱甘肽,以上两步反应分别由7一谷氨酰半胱氨合成酶(7一GCS)和谷胱甘肽合成酶催化。
谷胱甘肽合成主要受合成底物半胱氨酸和7-GCS调节,而谷胱甘肽合成酶无调节作用;谷胱甘肽浓度对7-GCS的活性具有反馈调节作用。
细胞外的还原型谷胱甘肽(GSH)被r谷氨酰转肽酶(7-GT)分解为谷氨酸及半胱氨酰甘氨酸,谷氨酸及半胱氨酰甘氨酸再进入细胞内进行循环利用。
7一GT是膜结合酶,催化基团位于细胞外,肺上皮细胞具有较高的rGT活性,有较高的利用呼吸道上皮内村液中GSH的能力。
细胞外的胱氨酸通过Na+依赖性的可诱导的Xc~特殊转运系统转运至细胞内,然后经还原成半胱氨酸,用于GSH合成;细胞外的半胱酸也可主动转运至细胞内。
GSH还原系统对维持细胞内GSH也发挥重要作用。
谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)催化还原型GSH与氧化性物质发生反应,生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),GSSG再被谷胱甘肽还原酶还原成GSH。
7一GCS是GSH合成反应的限速酶,由催化重链(7一GCS—HS)和调节轻链(7GCS-LS)组成,两链间以二硫链结合。
在人类染色体上,7-GCS-HS和rGCS-LS的编码基因分别位于6P12、1P21。
7-GCS-HS具有“看家基因”的共同特征,其启动子区有TATA盒、CAAT盒、GC盒基序以及金属反应元件
作者单位:410001长沙,湖南省老年医院湖南省老年医学研究所呼吸疾病研究室
(metalresponseelement,MRE)、抗氧化剂反应元件(anti—oxidativeresponseelement,ARE)、激活蛋白一1(activatorprotent一1,AP一1)结合位点、核因子一KB(NF—KB)结合位点。
y—GCS-LS基因也具有“看家基因”的共同特征,启动子区含有MRE、AP-1和AP一1样结合位点,没有发现NF-xB的结合位点和对应于ARE的基序,但在一290:-301处有一亲电反应元件(electrophilicresponseelement,EpRE)基序,EpRE序列及功能与ARE相似,因此两基因的基础表达可能由相似的机制调控口]。
在生理条件下,80%的7一GCS与GSH结合处于无活性状态,当细胞内GSH减少时,7-GCS游离出来,游离的7一GCS重链与轻链构形发生变化,处于活性状态,催化GSH合成,这一过程不需丫一GCS的表达,是细胞快速抗氧化损伤反应机制。
目前认为氧化应激引起7-GCS表达增加,主要与c—jun、c—fos及NF-xB表达及活性增高有关。
C—jun和c—los组成同源或异源二聚体转录因子AP一1、AP-1和NF-KB为氧化还原敏感性转录因子,当氧化应激时AP一1和NF—xB被激活,与7-GCS启动子区AP一1及NF—JcB结合位点结合,7-GCS的表达增加。
在哮喘中,AP-1和NF—KB表达是增加的;AP一1和NF—KB在促进前炎性因子表达增加的同时也促进抗氧化基因的表达增加,如7一GCS、MnSOD、HO-1等,以提高细胞自身的抗损伤能力。
氧化剂所致7一GCS表达增加的细胞信号转导通路还不十分清楚,可能与氧化还原敏感性细胞信号传导通路PKC及MAPK有关。
2哮喘发病中的氧化应激机制
哮喘患者支气管肺泡灌洗液(BALF)和外周血中氧自由基增多且与疾病的严重程度相关。
此外,哮喘患者外周血中总抗氧化能力下降,同时脂质过氧化产物如丙二醛(MDA)生成增加,提示同时存在系统氧化应激。
哮喘炎症过程中肺内活化的嗜酸粒细胞、肥大细胞、中性粒细胞、单核细胞、巨噬细胞释放大量活性氧如O芗、H:O。
、OH·等;哮喘支气管诱导型一氧化氮合酶(iNoS)表达增加,NO生成增多,NO与O孑作用生成具有强氧化性的过氧亚硝酸阴离子(ONOO一);OH·、O芗和ONOO一可与胞膜中的不饱和脂肪酸生成脂质过氧化物。
除了炎性细胞产
万方数据
垦丛堕堂唑堡墨缠坌婴!!!!至筮!!鲞箜!塑塞坐曼!!望生璺z!里!!!i鲤坚型墅!!塾2:!!!!!∑!!:!!:盟!:!
生自由基外,气道固有细胞如上皮细胞也能生成大量的自由基[2]。
此外,环境中的氧化物如空气污染也增加哮喘时活性氧(ROS)的生成。
体外研究发现H:O:能够诱导人类气道反应性增加;动物研究发现雾化吸人黄嘌呤一黄嘌呤氧化酶产生的ROS可以引起猫气道收缩和气道高反应性;临床研究也显示哮喘患者体内ROS及脂质过氧化产物水平增高,且与疾病严重程度有关。
我室的研究表明哮喘豚鼠模型血清及肺组织中MDA及活性氧增加,且与气道重塑及炎性细胞浸润程度呈正相关[3]。
ROS通过引发细胞多价不饱和脂肪酸共价键上的脂质过氧化应,导致气道上皮细胞损伤脱落,加重炎性渗出,气道反应性增高。
近年来研究显示RoS可作为细胞内重要的第二信使在细胞基因调控、细胞信号传导过程中发挥重要作用。
在平滑肌,ROS可选择性地刺激平滑肌细胞IP3诱导的Ca2+释放,从而增强平滑收缩和促进相关基因的表达。
有实验表明细胞信号传导途径MAPK、JAK—STAT的激活受氧化应激的调节[4],而MAPK、JAK—STAT的激活在哮喘中具有重要意义,如诱导平滑肌细胞增殖、促使肥大细胞脱颗粒、促进前炎性因子、趋化因子表达[5]、炎性介质的释放[6]、抑制嗜酸粒细胞凋亡。
ROS还可激活成纤维细胞,参与气道结构重建;引起毛细血管渗透性增加,促进支气管黏膜水肿,增加气道黏液的分泌。
3谷胱甘肽在哮喘中的抗氧化应激作用
谷胱甘肽作为肺中最重要的抗氧化剂,是评价氧化应激的标志,谷胱甘肽以还原型(GSH)和氧化型(GSSG)两种形式存在,GSH/GSSG比值下降表明存在氧化应激。
肺脏具有较高浓度的GSH(6.1~17.5nmol/mg肺),呼吸道上皮内衬液中GSH的浓度(200~400ffmol/1)是血浆中的100倍。
维持呼吸道上皮衬液中GSH高浓度具体机制还不清楚。
体外实验证明氧化应激可使培养的支气管上皮细胞丫一GCS表达增加、GSH合成增加[7]。
哮喘肺中丫一GCS表达增加,7-GCS活性增强,支气管上皮内衬液中总谷胱甘肽增多而GSH减少,GSH/GSSG比率下降[3],哮喘患者痰液中总谷胱甘肽和GSSG浓度增加[8],哮喘恶化时呼出气中GSH减少[9],均表明GSH对于哮喘氧化应激机制具有重要意义。
哮喘气道局部存在氧化应激,GSH减少,GSSG增加’,GSH/GSSG的比值下降,氧化应激使上皮细胞和炎性细胞内的NF-,:B和AP-1激活[1…,抗氧化基因如7-GCS、锰过氧化物酶(MnSOD)、血红素加氧酶(HO-1)表达上调。
哮喘肺内总谷胱甘肽增加可能与以下机制有关:①哮喘肺中存在氧化应激,GSH消耗增加,GSH对7一GCS反馈抑制减弱,GSH合成增加;②氧化应激激活氧化还原敏感性转录因子AP-1、NF-KB,促进丫一GCS表达。
我室的研究表明7一GCS的表达与AP一1、NF—KB呈正相关口嵋;③氧化应激时肺上皮细胞7一GT表达增加[12|,胱氨酸的转运加快[13|。
谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)及谷胱甘肽S转肽酶(GST)以GSH为底物,清除活性氧或活性氮及脂质过氧化物,这方面的研究较多,在此不做赘述。
4谷胱甘肽在哮喘中的抗炎作用
哮喘患者气道炎性细胞增多,同时释放多种炎性介质,从而进一步导致炎性细胞的浸润,形成放大效应。
正常细胞内GSH/GSSG>90%,对维持细胞内还原环境和减少二硫键的形成十分重要,若此比值降低可引起蛋白质磷酸化和泛素化,通过促进抑制性核因子一.cB(I.cB)的降解从而激活NF-KB,NF—KB活化可导致iNOS、IL-1、TNF—a、IL_8、IL一6、ICAM一1、GM-CSF等前炎性细胞因子的表达;此外,氧化应激还能够经JNK和P38信号通路激活AP-1,从而促进炎症发展。
在动物实验中,口服N一乙酰半胱酸(NAC),可减轻致敏小鼠支气管炎性细胞的浸润、降低毛细血管通透性、抑制NF—KB的表达[1引。
在哮喘肺中,AP一1的表达及NF一-cB的活性是增加的。
许多前炎性介质和抗氧化基因的表达是依赖氧化还原的信号传导机制调控的,在氧化应激和炎症时,细胞内GSH/GSSG的水平可能决定前炎性介质及抗氧化基因的表达,GSH作为抗氧化剂可以下调对氧化还原敏感的转录因子NF—KB和AP一1的活性。
含疏基抗氧化剂NAC,通过增加细胞内GSH水平和减少NF-.cB的活化,抑制上皮细胞及巨噬细胞炎性介质的释放[1引。
然而,也有相反的报道,NAC可增加AP一1与DNA的结合及反式激活[1引。
研究还表明内皮细胞中GSH/GSSG比例下降可增加内皮细胞黏附分子的表达,从而增加炎性细胞的浸润,氧化应激导致GSH减少,可上调细胞间黏附分子(IC:AM一1)和血管细胞间黏分子(VCAM-1)的表达,从而使中性粒细胞浸润增加,而哮喘气道中性粒细胞的增加与哮喘严重程度相关。
体内、外实验表明,GSH减少可导致气道上皮通透性增加。
利用7-GCS的抑制剂丁硫氨酸亚矾胺(BSO),亦可增加气道上皮的通透性。
因此,GSH在保护支气管上皮完整,减轻支气管黏膜水肿方面发挥重要作用。
糖皮质激素是目前控制哮喘最有效的药物,可抑制转录因子NF—KB和AP-1的活性,然而在抗炎的同时可下调
万方数据
垦处璧堂堕堕丕缍坌婴.!!!!生蔓;!鲞箜!塑曼!!!墨!12i!曼z!!!旦鲤坚鲤皇i:皇2:!!!!!∑!!:!!:型!:1
7-GCS的表达,从而减弱机体的抗氧化能力。
我室的研究也表明,在哮喘豚鼠模型及哮喘患者给予地塞米松,可降低7一GCS的活性及1'-GCS表达减少‘引。
5谷胱甘肽在哮喘中的免疫调节作用
哮喘患者存在免疫失调,目前认为Thl/Th2淋巴细胞比例失调是哮喘的主要发病机制之一,Thl细胞主要合成和释放IL2、IFN一7,主要调节免疫抗感染;而Th2细胞主要合成IL-4、IL-5、IL-10、IL_13,主要调节变态反应,在哮喘支气管炎症中Th2细胞相对增多,机体变态反应增强。
Peterson等n73发现在抗原呈递细胞中的GSH的水平,对调节Thl/Th2的比例有重要作用。
炎性细胞内GSH的水平可影响细胞信号传导和转录因子的活化,上调某些基因的表达如IL一8、IL一4[1引,而IL一4是合成IgE必须的因子。
GSH减少还可导致T细胞失活和凋亡。
此外,还原型GSH还可增加淋巴细胞分泌IFN-y和减轻哮喘症状[1引。
6谷胱甘肽在哮喘中的抑制气道重构作用
哮喘发病早期,气道狭窄是可逆的,随着哮喘反复发作,可导致气道重塑,主要表现为支气管平滑肌肥大,气道上皮下纤维化及周围肺组织对气道的支持作用消失,导致气道阻塞不可逆。
细胞内GSH参与氧化应激介导的气道重构,抑制细胞外基质的合成。
细胞内GSH的减少导致基质金属蛋白酶(MMP)活化,增加细胞外基质的降解。
在成纤维细胞jGSSG可致金属蛋白酶抑制物(TIMP)失活。
含疏基抗氧化剂如GSH、N一乙酰半胱氨酸(NAC)可抑制MMP一1和MMP一2的活化,同时增加TIMP的水平。
然而,哮喘患者雾化吸入GSH、NAC可引起支气管收缩,其主要原因是GSH和NAC富含疏基,易氧化形成亚硫酸盐,导致气道反应性增加。
7小结
哮喘是一种气道慢性炎性疾病,多种炎性细胞参与,释放多种细胞因子及炎性介质,导致炎症持续发展,同时存在氧化应激,促进炎症发展,形成恶性循环。
GSH是肺内重要的抗氧化剂,其合成主要受7一GCS、合成底物半胱氨酸及GSH对y-GCS的反馈调节。
在哮喘中,GSH可纠正氧化与抗氧化的失衡、抑制炎症发展、降低气道高反应性、调节免疫、抑制气道重塑。
抗氧化治疗如体外补充强有力的抗氧化剂或提高机体自身的抗氧化能力,可能成为今后治疗哮喘的新方法。
参考文献
·681·
1曹守冬,戴爱国.7-GCS调节机制研究进展.国外医学临床生物化学与检验分煅,2003,24(1):46—47.
2RoxhelleLG,FischerBM,AdlerKB.Concurrentproductionofreactiveoxygenandnitrogenspeciesbyairwayepithelialcellsinvitro.FreeRadicBiolMed,1998,24(5):863—868.
3曹守冬,戴爱国.支气管哮喘豚鼠肺内谷氨酰半胱氨酸合成酶表达调控和地塞米松的影响.中华结核和呼吸杂志,2004,27(4):277—278.
4AbeJ,BerkBC.FynandJAK2mediateRasactivationbyreactiveoxygenspecies.JBiolChem,1999,274(30):21003—21010.
5MoorePE。
TrudiL,DavidD,eta1.IL-13andIL-4causeeotaxinreleaseinhumanairwaysmoothmusclecells:aroleforERK.AmJPhysiolLungCelIMoIPhysiol,2002,282(4):L847—853.
6WeiD。
FredW,ChunK,eta1.AntiinflammatoryEffectsofGenistein,aTyrosineKinaseInhibitor,onaGuineaPigModelofAsthma.AmJRespirCritCareMed。
2003,167(2):185—192.
7RayS。
WatkinsDN,MissoNL,eta1.Oxidantstressinducesgamma-glutamylcysteinesynthetaseandglutathionesynthesisinhumanbronchialepithelialNCI—H292cells.ClinExpAllergy,2002,32(4):571—577.
8BeierJ。
BeehKM.SemmlerD,eta1.Increasedconcentrationsofglutathioneininducedsputumofpatientswithmildormoderateallergicasthma.AnnAllergyAsthmaImmunol。
2004,92(4):459-463.
9CorradiM。
FolesaniG,AndreoliR,eta1.Aldehydesandglutathioneinexhaledbreathcondensateofchildrenwithasthmaexacerbation.AmJRespirCritCareMed,2003,167(3):395-399.
10RahmanI.Oxidativestress,transcriptionfactorsandchromatinremodellinginlunginflammation.BiochemPharmacol,2002,64(5-6):935—942.
11林书典,戴爱国.7谷氨酰半胱氨酸合成酶在大鼠慢性阻塞性肺疾病中的表达.中华结核和呼吸杂志,2004,27(5):348-349.
12KugelmanAHA,ChoyRL,ShiE,eta1.y-GlutamyltranspeptidaseisincreasedbyoxidativestressinratalveolarL2epithelialcells.AmJRespirCellMolBi01,1994,11(5):586-592.13SusantoISE,WrightRS,LawsonCE.eta1.Metallothionein,glutathione,andcystinetransportinpulmonaryarteryendothelialcellsandNIH/3T3cells.AmJPhysiol,1998,274(2):L296一L300.
14BlesaS。
CortijoJ,MataM.OralN-acetylcysteineattenuatestheratpulmonaryinflammatoryresponsetoantigen.EurRespirJ,2003,21(3):394—400.
15DorothyH,JamesJ.GreeneInfluenceofthecellularredoxstateonNF-KB-regulatedgeneexpression.JCellPhysisiol,2000,183(1):45—52.
16SehenkH,KleinM,ErdbruggerW,eta1.DistincteffectsofthioredoxinandantioxidantsontheactivationoftranscriptionfactorsNF-KBandAp-1.ProcNatlAcadSci,1994,91(5):1672-1676.
17PetersonJD。
HerzenbergLA,VasquezK.Glutathionelevelsinantigen—presentingcellsmodulateThlversusTh2reponsepatterns.ProcNatlAcadSci,1998,95(6):307卜3076.
18JeanninP。
DelnesteY。
LecoanetHenchozS,eta1.Thiolsdecreasehumaninterleukin-4productionandIL··4·-inducedimmunoglobulinsynthesis.JExpMed,1995,182(6):1785一1792.19ChernyshovVP,OmelehenkoLI,TreuschG,eta1.GMUp-regulationofinterferon-gammaproductionbyreducedglutathione,anthocyaneandL-cysteinetreatmentinchildrenwithallergicasthmaandrecurrentrespiratorydiseases.RussJImmunol,2002,7(1):48-56.
(收稿日期:2004—10-20)
万方数据。