探针熔解曲线法快速检测结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变

探针熔解曲线法快速检测结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变张婷;付军;王国治;陈保文;杨蕾;卢锦标;许晔;李庆阁
【摘要】目的评价结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变检测试剂盒MehPro
TB/SL的分析性能以及临床性能.方法首先使用企业参考品对试剂盒的突变检出能
力进行考察,之后将野生型基因组DNA以10倍梯度稀释后考察试剂盒的最低检测限,使用野生型质粒以及含常见耐药突变的质粒以不同突变比例混合考察试剂盒检
测不均一耐药样本的能力,并使用23株非结核分枝杆菌标准株考察试剂盒的分析特异性,最后使用241份临床分离株对试剂盒进行临床评价.结果该试剂盒可以将9
种耐药相关突变与1种野生型多态性与野生型进行区分.可以检测到低至5个拷贝
的野生型基因组DNA.当突变比例为30％或更高时,试剂盒可以将其与野生型进行
区分.23种非结核分枝杆菌的结果显示该试剂盒有良好的特异性.和比例法药敏试验进行对比,该试剂盒的临床灵敏度为卡那霉素90.0％(9/10),阿米卡星80.0％(8/10),卷曲霉素85.7％(6/7);特异性为卡那霉素98.8％(85/86),阿米卡星98.8％(85/86),卷曲霉素96.6％(86/89).试剂盒检测结果与测序结果一致.结论该试剂盒灵敏度高、特异性好,可以快速、准确地检测结核分枝杆菌注射类二线药常见的耐药突变,有望
应用于临床.
【期刊名称】《中国人兽共患病学报》
【年(卷),期】2015(031)005
【总页数】6页(P412-417)
【关键词】结核分枝杆菌;注射类二线药;耐药突变;探针熔解曲线法
【作者】张婷;付军;王国治;陈保文;杨蕾;卢锦标;许晔;李庆阁
【作者单位】厦门大学生命科学学院“细胞应激生物学”国家重点实验室,分子诊断教育部工程研究中心,厦门 361105;厦门大学生命科学学院“细胞应激生物学”国家重点实验室,分子诊断教育部工程研究中心,厦门 361105;中国食品药品检定研究院结核病疫苗室,北京 100050;中国食品药品检定研究院结核病疫苗室,北京100050;中国食品药品检定研究院结核病疫苗室,北京 100050;中国食品药品检定研究院结核病疫苗室,北京 100050;厦门大学生命科学学院“细胞应激生物学”国家重点实验室,分子诊断教育部工程研究中心,厦门 361105;厦门大学生命科学学院“细胞应激生物学”国家重点实验室,分子诊断教育部工程研究中心,厦门 361105【正文语种】中文
【中图分类】R378
我国结核分枝杆菌的耐药情况严重，耐药率高，给结核病的预防和治疗带来严峻挑战。

耐多药结核病（Multidrug－resistant tuberculosis，MDR－TB）是指至少对异烟肼和利福平具有耐药性，广泛耐药结核病（Extensively drug－resistant tuberculosis，XDR－TB）则是指在耐多药结核病的基础上，对二线药物中的氟喹诺酮类药物以及3种二线抗结核注射剂（卷曲霉素、卡那霉素、阿米卡星）中的至少一种耐药。

MDR－TB和XDR－TB的不断增多，使得快速、可靠地对二线抗结核药物的耐药性进行检测的需求更加迫切。

常用的注射类二线抗结核药物主要有氨基糖苷类抗生素（卡那霉素、阿米卡星）和多肽类抗生素（卷曲霉素）。

通过药物敏感性试验进行耐药检测是目前普遍采用的方法，包括比例法和绝对浓度法[1]。

但由于结核分枝杆菌生长缓慢而使药敏试验周期过长，通常需要4－6周，延误患者治疗。

基于分子生物学的耐药检测可以大大减少得到药敏结果的时间，如线性探针杂交法[2－3]、焦磷酸测序法[4]、DNA
测序法等。

然而，这些基于PCR的方法均涉及PCR后处理，易引起PCR产物污
染造成假阳性结果，且操作复杂，需要具备专业背景的技术人员。

基于实时PCR技术的探针熔解曲线法将扩增和检测合二为一，无PCR后处理，具有快速、特异、灵敏等优点，在突变检测领域得到广泛应用，在结核分枝杆菌耐药性检测上的应用也引起人们极大兴趣[5－11]。

注射类二线药的耐药主要由点突变
引起，适合采用探针熔解曲线法进行检测。

卡那霉素、阿米卡星和卷曲霉素的耐药机制存在交叉耐药现象，主要是由rrs基因的点突变导致，3种药的耐药株中发生该基因突变的比例分别为25%～40%、95%和70%～80%，包括rrs 1401A→G、rrs 1402C→T和rrs 1484G→T等位点。

另外，rrs 1473G→A／T的突变导致部
分卷曲霉素的耐药。

60%～80%的卡那霉素耐药株在eis基因启动子区发生突变，主要有－10G→A、－14C→T和－37G→T等突变类型[12－15]。

本研究利用厦门致善生物科技股份有限公司生产的结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变检测试剂盒（探针熔解曲线法）MeltPro TB／SL对241份结核分枝杆菌临床分离株进行注射类二线药耐药相关突变检测，并对该试剂盒进行检测性能的考察。

1 材料与方法
1.1 结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变检测试剂盒MeltPro TB／SL试剂盒由厦门致善生物科技股份有限公司提供。

试剂盒采用探针熔解曲线法检测，使用双管双色体系检测rrs基因（1401、1402、1473和1484位点）、eis基因启动子区（－10、－14和－37位点）的突变。

包括提取体系（TB DNA提取液）、扩增
体系（PCR反应混合液A、B和酶混合液）以及对照体系（阳性对照和阴性对照）。

探针熔解曲线法的检测原理基于野生型序列具有特定的熔点，基因突变会导致探针结合能力下降，导致熔点下降。

根据熔点的变化即可判断突变的有无。

对于一份未知的待检样本，需要结合反应体系A和B的FAM和HEX通道共4个检测区域的
结果，进行整体的分析。

结核分枝杆菌在4个检测区域均应存在野生型或突变型熔解峰，若有一个或一个以上检测区域无熔解峰，则提示待检样本可能不是结核分枝杆菌或其浓度低于检测限。

反应程序：50。

C2min；95。

C10min；95。

C10 s，71。

C15s（每个循环下降1。

C），78。

C15s，循环10次；95。

C10s，61。

C15s（检测荧光），78。

C15 s，循环45次，荧光通道选用FAM和HEX。

熔解分析程序：95。

C2min；40。

C2min；40。

C～85。

C，升温过程中每1。

C采集FAM和HEX通道荧光信号。

注射类二线药耐药突变检测分两管在双色实时PCR仪进行。

一管检测rrs基因突变，另一管检测eis基因启动子区突变。

PCR体系按照试剂盒说明书配制，25μL 检测体系含20μL PCR反应混合液和5μL模板DNA。

1.2 菌株来源及处理
1.2.1 临床样本来自中国食品药品检定研究院结核病疫苗室的结核分枝杆菌培养样本96份，均有卡那霉素、阿米卡星和卷曲霉素的药敏信息；来自山东胸科医院的结核分枝杆菌培养样本145份，无药敏信息。

按照试剂盒说明书，采用热裂解法进行基因组DNA的提取：取样本的灭活菌液，与TB DNA提取液按照体积比1∶1混匀；99。

C加热20min；13 000 r／min 离心10min，取上清作为模板。

1.2.2 非结核分枝杆菌用于分析特异性评价的23株非结核分枝杆菌标准株灭活菌液由中国食品药品检定研究院结核病疫苗室提供。

23株菌浓度为1×106个菌／mL，包括：鸟分枝杆菌、胞内分枝杆菌、蟾蜍分枝杆菌、溃疡分枝杆菌、土地分枝杆菌、胃分枝杆菌、不产色分枝杆菌、施氏分枝杆菌、次要分枝杆菌、玛尔摩分枝杆菌、堪萨斯分枝杆菌、海分枝杆菌、猿分枝杆菌、瘰疠分枝杆菌、戈登分枝杆菌、苏加分枝杆菌、龟分枝杆菌、脓肿分枝杆菌、偶然分枝杆菌、耻垢分枝杆菌、
草分枝杆菌、浅黄分枝杆菌、亚洲分枝杆菌。

基因组DNA提取方法与临床样本的提取方法相同。

1.2.3 含不同耐药突变的质粒用于突变检出能力验证的12个质粒由生工生物工程（上海）股份有限公司合成，其中包括2个野生型质粒（分别对应rrs基因和eis
基因启动子区）以及10个突变型质粒（1个野生型多态性eis－12C＞T，9个耐
药突变rrs 1401A＞G、rrs 1402C＞T、rrs 1473G＞A、rrs 1473G＞T、rrs 1484G＞T、eis－37G＞T、eis－14C＞T、eis－13A＞G、eis－10G＞A）。

使用E.Z.N.A.TM Plasmid Miniprep Kit（Omega Bio－tek，美国）进行质粒的提取。

使用分光光度计进行浓度测定，根据质粒长度进行拷贝数的计算。

1.2.4 H37Rv标准株用于最低检测限考察的H37Rv标准株灭活菌液由深圳市慢性病防治中心提供，使用 TIANamp Bacteria DNA Kit（TIANGEN BIOTECH，北京）进行基因组DNA提取和纯化。

之后使用分光光度计进行浓度测定。

1.3 实验仪器 CFX 96实时定量PCR仪（Bio－Rad，美国）；GenePro基因扩增仪（杭州博日科技有限公司，中国）；ND－1000紫外－可见分光光度计（美国Thermo Fisher Scientific公司）；5451D台式离心机（Eppendorf，德国）；CHB－100恒温金属浴（杭州博日科技有限公司，中国）。

1.4 突变检出能力考察使用TB DNA提取液将定量好的质粒进行稀释，得到浓度
为1×104拷贝／μL的模板。

同时以灭菌超纯水作为空白对照。

1.5 最低检测限考察使用TB DNA提取液将定量好的H37Rv基因组DNA进行稀释，依次得到浓度为1×105拷贝／μL、1×104拷贝／μL、1×103拷贝／μL、
1×102拷贝／μL、1×101拷贝／μL、1×100拷贝／μL的模板。

每管加入5μL作为模板，同时以灭菌超纯水作为空白对照。

1.6 不均一耐药检测性能考察选择4个检测区域较常见的突变类型的质粒（rrs 1401A→G、rrs 1484G→T、eis－14G→T、eis－37G→T）分别与相应的野生型
质粒进行不同比例的掺杂，得到104拷贝／μL浓度水平下的不同突变比例模板，其所含的突变比例分别为0%、5%、10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%和100%。

同时以灭菌超纯水作为空白对照。

1.7 分析特异性考察以中国食品药品检定研究院结核病疫苗室提供的23株非结核分枝杆菌提取的DNA为模板，考察该试剂盒的分析特异性。

同时以灭菌超纯水作为空白对照。

1.8 样本检测使用241份临床样本进行试剂盒的临床评价。

所有检测为突变的样本、疑似不均一耐药的样本以及与药敏结果不符的样本均进行测序验证，测序由华大基因科技服务有限公司完成。

2 结果
2.1 使用质粒进行突变检出能力的考察为考察该试剂盒能否将注射类二线药耐药
相关突变与野生型进行区分，使用具有不同突变类型的质粒进行考察。

结果如表1。

结果显示，各耐药突变与野生型的熔点差异均在3.0。

C以上，突变型均能和野生型相区分。

部分情况下无法判断具体的突变类型（rrs 1473G＞A和rrs 1473G＞T；eis－14C＞T、eis－13A＞G 和eis－10G＞A），但这两种情况下不同突变的发生都导致试验菌株对CAP或KAN耐药，因此不影响对试验菌株耐药性的判断。

2.2 最低检测限考察结果最低检测限考察的结果显示，不同浓度的模板对应的4
个检测通道的Tm值均一而稳定。

当野生型模板浓度为5拷贝／反应时，4个检测通道均有相应的熔解峰。

结果表明，本体系的野生型最低检出量可以达到5拷贝
／反应。

2.3 不同突变比例模板的考察结果如图1结果显示，随着突变比例的增加，熔解
曲线逐渐由野生型峰向突变型峰偏移。

在4个检测通道中，突变比例为30%及以
上时，熔解曲线的峰形较野生型有明显的差异，可以与野生型峰进行区分，从而判断为不均一耐药样本。

2.4 分析特异性的考察结果使用23种非结核分枝杆菌进行该试剂盒的分析特异性考察，同时以H37Rv为对照。

结果显示，在反应体系A的FAM和HEX通道，除H37Rv有熔解信号之外，部分非结核分枝杆菌有信号；在反应体系B的FAM 通道和HEX通道，除H37Rv有野生型熔解峰之外，23株非结核分枝杆菌和空白对照的结果一致，即反应体系B对非结核分枝杆菌的无交叉反应。

综合两个反应结果，没有任何一株NTM同时在两个反应中均有检测信号，因此23种常见非结核分枝杆菌对检测结果无交叉反应，说明该试剂对于上述NTM具有100%的分析特异性。

2.5 临床样本检测结果
2.5.1 中国食品药品检定研究院结核病疫苗室的培养样本96份。

表1 不同突变质粒与野生型的熔点差异Tab.1 ΔTmbetween wild－type and mutant plasmids注：aKAN、AMK、CAP分别为卡那霉素、阿米卡星、卷曲霉素的英文简写。

bΔTm[ΔTm＝Tm（野生）－Tm（突变）]Notes：aKAN，AMK and CAP are the abbreviations of kanamycin，amikacin and capreomycin，respectively.bΔTm[ΔTm＝Tm（mutant）－Tm（wild－type）].ΔTmb突变类型Mutant type耐药种类a Drug反应体系A Reaction A反应体系B Reaction B FAM HEX FAM HEX rrs 1401A＞G KAN，AMK，A KAN －－5－CAP 7－－－rrs 1402C＞T KAN，CAP 10 －－－rrs 1473G＞A CAP － 5 －－rrs 1473G＞T CAP － 3 －－rrs 1484G＞T KAN，AMK，CAP －－5 －－eis－37G＞T KAN －－－ 4 eis－14C＞T KAN －－ 5 －eis－13A＞G KAN －－5 －eis－12C＞T Sensitive －－－3 －eis－10G＞
图1 不同突变比例的模板考察的结果Fig.1 Detection of the mixed mutant and wild－type in different ratios4幅图对应该试剂盒的4个检测通道，图中曲线分别对应突变比例为 0%、5%、10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、
80%、90% 和100%的模板对应的熔解曲线，其中虚线代表突变比例为30%的模板对应的熔解曲线。

The four pictures represented four detection channels.The mutant percentages were：0%，5%，10%，20%，30%，40%，50%，60%，70%，80%，90%and 100%.The dotted lines were melting curve results with 30%mutation.
通过将试剂盒的检测结果与药敏结果进行对比（表2），可以发现，对于卡那霉素耐药突变检测，该试剂盒的灵敏度为90.0%，特异性为98.8%，总符合率为
97.9%，kappa值为0.89；对于阿米卡星耐药突变检测，该试剂盒的灵敏度为80.0%，特异性为98.8%，总符合率为96.9%，kappa值为0.83；对于卷曲霉素耐药突变检测，该试剂盒的灵敏度为85.7%，特异性为96.6%，总符合率为
95.8%，kappa值为0.73。

表2 探针熔解曲线结果与药敏结果对比Tab.2 Results comparison between MeltPro TB／SL and phenotypic drug－susceptibility testing（DST）探针熔
解曲线结果Results of MeltPro TB／SL总计药敏试验结果Results of DST耐药Resistance敏感Suscep Total tible突变Mutant 9 1 10野生Wild－type 1
85 86总计Total 10 86 96
从以上96份临床样本中共检出10例突变样本，测序结果表明，9例样本发生rrs 1 401A→G突变，1例样本发生eis基因启动子区－10G→A突变。

比例法药敏试验结果对卡那霉素耐药而MeltPro TB／SL为野生的1例样本，其测序结果也为野生型，与探针熔解曲线结果一致；比例法药敏试验结果对卡那霉素敏感而MeltPro TB／SL为突变的1例样本，其测序结果为rrs 1401A→G，与探针熔解
曲线结果一致。

比例法药敏试验结果对阿米卡星耐药而MeltPro TB／SL为野生的2例样本，其测序结果也为野生型，与探针熔解曲线结果一致；比例法药敏试验结果对阿米卡星敏感而MeltPro TB／SL为突变的1例样本，其测序结果为rrs 1
401A→G，与探针熔解曲线结果一致。

比例法药敏试验结果对卷曲霉素耐药而MeltPro TB／SL为野生的1例样本，其测序结果也为野生型，与探针熔解曲线结果一致；比例法药敏试验结果对卷曲霉素敏感而MeltPro TB／SL为突变的3例样本，其测序结果为rrs 1401A→G，与探针熔解曲线结果一致。

总而言之，测序结果与探针熔解曲线法的耐药检测结果完全一致。

2.5.2 山东胸科医院的145份培养样本使用注射类二线药耐药突变检测试剂盒对145份样本进行检测，并对突变样本进行测序验证。

熔解曲线分析为突变的样本
共9份，均为反应体系A的FAM通道检测突变，即rrs 1 400区域的突变。

经测序证实，所有9株突变类型均为rrs 1 401A→G突变。

另外检出1份不均一耐药
样本，在反应体系A的FAM通道检测结果为双峰。

经测序证实，该样本同时存在野生型菌株和突变类型为rrs 1 401A→G的突变型菌株。

3 讨论
简便高效、灵敏特异的耐药诊断技术是结核病防控的有利工具，对于耐药结核病的早期检测、合理治疗以及传播控制都有重要的意义。

目前针对一线抗结核药物的耐药检测试剂有较多开发和评价[6－11，16－17]，而针对注射类二线药的耐
药检测试剂相对较少，专门针对注射类二线药的耐药检测试剂则近乎空白。

商
用试剂GenoType MTBDRsl（Hain Lifescience，德国）采用固相线性探针杂交
原理，可检测包括氟喹诺酮类、乙胺丁醇以及氨基糖苷类／多肽类的耐药性[2－3]。

其中针对注射类二线药的耐药性突变，该试剂仅针对rrs基因设计了2条突变型探针，而已知与注射类二线药耐药相关的常见突变在rrs基因上有1 401、1 402、1 473和14 844个位点，在eis基因启动子区有－10、－14和－37 3个位点，显然，该试剂盒检测的突变数目严重不足。

另外，就方法学而言，所采用的固相杂交法需要多步PCR后操作，不仅操作复杂繁琐，时间长，且极易造成PCR产物的污染而出现假阳性结果。

本文考察的结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变检测试剂盒（探针熔解曲线法）MeltPro TB／SL是目前唯一专门检测注射类二线药物耐药突变的试剂，覆盖突变位点囊括了rrs基因的4个位点（1401、1402、1473和1484位点）和eis基因启动子区（－10、－14和－37位点）的3个位点上的所有突变类型，设计检测
耐药突变类型共9个，大大超过了GenoType MTBDRsl检测数目。

在方法学上，MeltPro TB／SL是基于荧光PCR的探针熔解曲线法，属于闭管检测模式，检测
过程在实时PCR仪器上运行，无PCR后处理步骤，不仅大大节约了时间（46个
样品从核酸提取到报告结果仅需约3h），也减少了PCR产物污染的机会。

从分析性能评价结果可以看出，MeltPro TB／SL可将10种突变类型与野生型明
确区分，最低检出量低至5个拷贝的野生型基因组DNA，并且其熔解峰Tm值在较大范围内不受模板浓度影响。

使用含有常见耐药突变型的质粒与野生型质粒按不同的比例混合后，当突变比例为30%及以上时，熔解曲线的峰形相较于野生型有
明显的差异，可以与野生型区分，这一结果为检测耐药患者中的非均一耐药提供了依据。

分析特异性研究结果表明，在23株NTM中，部分NTM在rrs基因有检
测信号，这可能与rrs基因在这些NTM中保守度高有关，但所有菌株在eis基因
启动子区内均无信号。

对于任何一个待测样本而言，其检测结果需两个反应同时检出信号，当其中一个反应无检测信号时，就可以判断该样本非 MTB感染，上述结果证明了 MeltPro TB／SL高特异性。

从临床性能评价结果可以看出，与传统的比例法药敏试验相比，MeltPro TB／SL
有较高的临床灵敏度（卡那霉素为90.0%，阿米卡星80.0%，卷曲霉素85.7%），尤其是具有极高的临床特异性（卡那霉素为98.8%，阿米卡星98.8%，卷曲霉素96.6%）。

对于那些药敏结果与突变检测结果不一致的样本，测序结果显示其突变信息与MeltPro TB／SL结果一致，进一步证明了该试剂检测突变的可靠性。

这些药敏与突变信息不一致的样本，或者存在其它的耐药突变机制，或者其药敏试验的
准确性不够，需更多的样本验证。

总之，MeltPro TB／SL覆盖位点广，分析性能优良，对临床样本的检测结果与药敏结果以及测序结果具有较高的一致性，并具有操作简便和检测快速的优点，作为一种新型结核分枝杆菌注射类二线药耐药突变检测的试剂，具有潜在的应用价值，有望为耐药结核病的防控和治疗提供快速高效的筛查手段。

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