重组质粒的构建、转化和重组子的筛选与鉴定

重组质粒的构建、转化和重组子的筛选与鉴定
姓名:郑小煜
学号:201100140069
班级:11级生技班
同组者:赵莉、高瑞
【实验目的】
1、学习在实现DNA的体外重组过程中，正确选择合适的载体和限制性
内切酶，并利用限制性核酸内切酶对载体和目的DNA进行切割，产
生利于连接的合适末端。

2、通过对DNA的酶切，学习设计构建重组DNA分子的基本方法，掌握
载体和外源目的DNA酶切的操作技术。

3、学习利用T4 DNA连接酶把酶切后的载体片段和外源目的DNA片段
连接起来，构建体外重组DNA 分子的技术，了解并掌握几种常用的
连接方法。

4、掌握利用CaCl2制备感受态细胞的方法。

5、学习并掌握热击法转化E.coli的原理和方法。

6、在使用红白菌落法筛选获得重组子的基础上，本实验学习通过对重
组子进行重组质粒DNA的抽提鉴定，以进一步确定重组质粒中含有
外源目的DNA片段，验证重组子是期望的重组子的方法。

7、通过学习掌握重组DNA分子鉴定的基本方法。

8、掌握α互补筛选法筛选重组子的方法。

并鉴定体外导入目的DNA片
段的大小。

9、学习用试剂盒提取重组质粒DNA的方法。

10、复习琼脂糖凝胶电泳的原理及方法。

【实验原理】
外源DNA与载体分子的连接即为DNA重组技术，这样重新组合的DNA分子叫做重组子。

重组的DNA分子在DNA连接酶的作用下，有Mg2+、ATP存在的连接缓冲系统中，将分别经限制性内切酶酶切的载体分子和外源DNA分子连接起来。

将重组质粒导入感受态细胞中，将转化后的细胞在选择性培养基中培养，可以通过α互补筛选法筛选出重组子，并可通过酶切电泳及PCR检验的方法进行重组子的鉴定。

1、限制性核酸内切酶及酶切反应
体外构建重组DNA分子，首先，要了解目的基因的酶切图谱，选用的限制性内切酶不能目的基因内部有专一的识别位点，即当用一种或两种限制性核酸内切酶切割外源供体DNA时，能得到完整的目的基因。

其次，要选择具有相应的单一酶切位点的质粒或者噬菌体等载体分子作为克隆的载体。

常用的酶切方法有双酶切法和单酶切法两种。

本实验采用单酶切法，即只能用一种限制性核酸内切酶切割目的DNA 片段，酶切后的片段两端将产生相同的黏性末端或平末端。

选择具有相同限制性核酸内切酶识别位点的合适载体，在构建重组分子时，除了形成正常的
重组子外，还可能出现目的DNA片段以相反方向插入载体分子中，或目的DNA串联后再插入载体分子中，甚至出现载体分子自连，重新环化的现象，因此重组效率较低。

单酶切法简单易行，但后期筛选工作比较复杂。

各种限制性核酸内切酶都有其最佳反应条件，其中最主要的因素是反应温度和缓冲液的组成，为了实验中的方便，根据离子强度可将各种酶的缓冲液分为三类：高盐、中盐和低盐离子强度缓冲液。

在双酶切体系中，限制性内切酶在使用时应遵循“先低盐后高盐，先低温后高温”的原则进行反应。

酶切与连接是两个密切相关的步骤，要达到高效率的连接，必须酶切完全，酶切的DNA数量要适当。

另外，酶切反应的规模也取决于需要酶切的DNA的量，以及相应的酶量。

一般的，酶切0.2~1.0μg的DNA分子时，反应体积约为15~20μL，DNA的量增大，反应体积可按比例适当放大。

酶的用量参照标准：一个标准单位（U）酶能在指定的缓冲液系统和温度下，1h 完全酶解1μg pBR322 DNA。

如果酶活力低，可以适当增加酶的用量，但是最高不能超过反应总体积的10%，因为限制性核酸内切酶一般是保存在50%甘油的缓冲液中，如果酶切反应体系中甘油的含量超过5%，就会抑制酶的活性。

2、载体与外源DNA的连接反应
在基因工程操作中,连接反应总是紧跟酶切反应，外源DNA片段与载体分子连接的方法即DNA分子体外重组技术主要依赖于限制性核算内切酶和DNA连接酶催化完成的。

DNA连接酶催化两双链DNA片段相邻的5’-磷酸和3’-OH间形成磷酸二酯键。

在分子克隆中最有用的DNA连接酶是来自
T4噬菌体的T4 DNA连接酶，该酶需要ATP作为辅助因子。

它可以连接黏性末端和平末端。

连接反应时，载体DNA和外源DNA的摩尔数之比控制在1:（1~3）之间，可以有效地解决DNA多拷贝插入的现象。

反应温度介于酶作用速率和末端结合速率之间，一般是16℃，用常用的连接时间为12-16h。

本实验的连接反应方式是互补粘性末端DNA片段之间的连接：
当载体和外源DNA用同一种限制性核酸内切酶切割时，产生相同的黏性末端，连接后形成的重组DNA分子仍保留原限制性核酸内切酶的识别序列。

若外源DNA插入片段和适当的载体存在同源黏性末端，这将是最方便的克隆途径。

但是，在同黏性末端连接方案中，存在高背景和两向插入的弊端。

如果用两种能够产生相同的黏性末端的限制性核酸内切酶（同尾酶）切割时，虽然也可以有效地进行连接，但是获得的重组DNA分子一般是消失了原来用于切割的那两种限制性核酸内切酶的识别序列，这样不利于从重组子上完整地将插入片段重新切割下来。

在特殊情况下，由两种同尾酶产生的黏性末端经连接后可以被其中一种酶切开或产生新的识别序列，可以被第三种酶切割。

如果用两种产生不同的黏性末端的限制性核酸内切酶同时消化一种特定的DNA分子，将会产生出具有两种不同黏性末端的DNA片段。

十分显然，如果载体分子和待克隆的DNA分子都是用同一对限制性核酸内切酶切割，那么载体分子和外源DNA片段只能按一种取向退火形成重组DNA分子。

重组后的DNA分子还可以用这对限制性核酸内切酶切割，回收外源目的DNA 片段。

互补黏性末端连接方案也存在片段的多拷贝插入现象。

但需要表达蛋白质产物时，多拷贝的插入，在没有拼接剪切型号的情况下，将会导致表达困难或紊乱。

所以筛选时需要用限制性核酸内切酶图谱对单拷贝插入片段进行鉴定和筛选。

适当的插入片段与载体分子比例能减少多拷贝插入片段的形成，一般选择的比例为2:1(插入片段摩尔数：载体摩尔数）。

3、感受态细胞的制备及质粒转化
构建好的重组DNA转入感受态细胞中进行表达的现象就是转化。

能进
行转化的受体细胞必须是感受态细胞，即宿主细胞最容易接受外源DNA片
段并实现转化的一种生理状态，由受体菌的遗传性状所决定，同时也受菌龄及环境因子的影响。

细胞的感受态一般出现在对数生长期，新鲜幼嫩的细胞是制备感受态细胞和进行成功转化的关键。

人工转化是通过人为诱导的方法使细胞具有摄取DNA的能力，或人为地将DNA导入细胞内，该过程与细菌自身的遗传控制无关，常用热击法，电穿孔法等。

能否实现质粒DNA的转
化还与受体细胞的遗传特性有关，所用的受体细胞一般是限制修饰系统的缺陷变异株，即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株。

除自然转化外，细胞经过一些特殊方法处理后，细胞膜的通透性发生变化，也可以成为易于接受并转化外源DNA的感受态细胞。

目前常用的感受
态细胞制备方法有CaCl2法，简便易行，且其转化效率完全可以满足一般实验要求，制备的感受态细胞暂不用时，可以加入终浓度为15%的无菌甘油，-70℃可保存半年至一年。

经过CaCl2处理的细胞细胞膜通透性增加，成为能允许外源DNA分子进入的感受态细胞。

在低温下，将携带有外源DNA片段的载体与感受态细胞
混合，经过热击或电穿孔技术，使载体分子进入细胞。

进入受体细胞的外源DNA分子通过复制、表达，使受体细胞出现新的遗传性状。

将这些转化后的细胞在选择性培养基上培养，即可筛选出重组子。

影响感受态细胞制备及转化的因素：1）细胞的生长状态和密度：从甘油管中新鲜活化而不是多次转接的菌；培养至指数前期到指数期（OD600≈0.3-0.6）；应为限制-修饰系统缺陷菌株；受体细胞与所转化的载体性质应相匹配。

2）质粒DNA的质量和浓度：超螺旋构象的质粒DNA，较其线性构象的转化率高10-100倍；加入DNA的体积不应超过感受态细胞的5%，1ng的cccDNA即可使50μL的感受态细胞达到饱和；对于同一类型的载体而言，
分子量越大转化率越低。

3）其他药品、试剂质量：如CaCl2应用高纯度药品、超纯水配制，过滤除菌、分装保存；所有试剂、容器、耗材等均需无菌处理；感受态细胞制备过程均需要无菌、冰浴操作。

本实验以E.coli DH 5α菌株为受体细胞，用CaCl2处理，使其处于感受态，然后将重组后的pUC19质粒在42℃下热击90s，实现转化。

质粒pUC19携
带有氨苄青霉素抗性基因（AMP r），在含有氨苄青霉素平板上筛选转化子。

没有导入质粒pUC19的受体细胞，在含有氨苄青霉素培养基上不生长。

质
粒pUC19进入E.coli DH 5α后，通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

在麦康凯培养基平板上，转化子利用β-半乳糖苷酶分解培养基中的乳
糖产生有机酸，pH降低，培养基中的指示剂变红，转化子的菌落变成红色。

不含质粒的E.coli DH 5α，没有β-半乳糖苷酶活性，不能利用培养基中的乳
糖产生有机酸，而是利用培养基中的有机碳源，不使培养基pH降低，在不含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

挑取在氨苄青霉素培养基
上生长的红色菌落，通过扩增培养，可将转化的质粒提取出来，进行后续的酶切、连接等操作。

4、重组转化子的筛选与验证
重组DNA转化宿主细胞后，并非所有的受体细胞都能被导入重组DNA分子，一般仅有少数重组DNA分子能进入受体细胞，同时也只有极少数的受体细胞在吸纳重组DNA分子之后能良好增殖。

并且它们是与其他大量未被转化的受体菌细胞混杂在一起。

再者，在这些被转化的受体细胞中，除部分含有我们所期待的重组DNA分子外，另外一些还可能是由于载体自身或一个载体与多个外源DNA片段形成非期待重组DNA分子导入所致。

因此必须使用各种筛选及鉴定手段区分转化子与非转化子，并从转化的细胞群体中分理出带有目的基因的重组子。

本实验中采用的方法是平板筛选法。

平板筛选法主要用于重组质粒DNA分子的转化子的筛选，而不含重组质粒DNA分子的受体菌则不能存活，α互补筛选法是根据菌落颜色筛选含有充足质粒的转化子。

质粒pUC19携带有氨苄青霉素抗性基因
（Amp r）,在含有氨苄青霉素平板上筛选转化子。

没有导入质粒pUC19的受体细胞，在含有氨苄青霉素的平板上不生长。

质粒pUC19进入E.coli DH 5α后，通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

在麦康凯培养基平板上，转化子利用β-半乳糖苷酶分解培养基中的乳糖产生有机酸，pH降低，培养基中的指示剂变红，转化子的菌落变红。

不含质粒的E.coli DH 5α，没有β-半乳糖苷酶活性，不能利用培养基中的乳糖产生有机酸，而是利用培养基中的有机碳源，不使培养基pH降低，在不含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

重组后的载体DNA因为目的基因的插入位点在pUC19乳糖利用基因内部，不能形成α-互补作用，所以也不能利用培养基中的乳糖产生有机酸，在含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

颜色筛选与抗性筛选同时使用，一次筛选即可判断出：未转化的受体菌（DH 5α本身）不具有抗性，不生长；转化了空载体（即未重组质粒）的转化子，生长红色菌落；转化了重组质粒的转化子，长成白色菌落。

转化效率=cfu/μg DNA （每微克DNA经转化后可以得到的阳性克隆数目）
重组效率=重组克隆数/总克隆数=白菌落/（白+红菌落）
5、质粒不相容性
质粒不亲和性/不相容性（plasmid incompatibility）——在没有选择压力的情况下，两种亲缘密切的不同质粒，不能够在同一个寄主细胞系
中稳定共存的现象。

不亲和质粒——在细胞增殖过程中，两种亲缘关系密切的不同质粒中，必有一种会被逐渐地排斥（稀释）掉，这样的两种质粒为不亲和质
粒。

不亲和群（incompatibility group）——具有亲缘关系，但彼此之间互不相容的一组质粒。

质粒不相容的分子基础：两种不亲和/相容质粒；同一个细胞中的两种不亲和质粒，随细胞分裂而分配到子细胞中；质粒扩增拷贝数增加；
再分配中质粒比例发生改变；最终子细胞中只含一种质粒。

【实验主要仪器和材料试剂】
1、实验器材：
Eppendorf管，枪尖，枪尖盒，微量移液器，制冰机，灭菌锅，恒温水浴
锅，高速离心机，电泳仪和电泳槽，凝胶成像检测仪，微波炉，恒温振
荡培养箱，高速冷冻离心机，计时器，平板，三角瓶，试管，接种环，
牙签，酒精灯，火柴，
2、实验试剂：
琼脂糖，λDNA，质粒pUC19，Hin d III，10×M buffer，去离子水，溴酚
蓝电泳上样缓冲液，TAE电泳缓冲液，氨苄青霉素母液，100mmol/L CaCl2
溶液，试剂盒（含有Rnase A的溶液I，溶液II，溶液III，HB buffer，DNA
washing buffer，elution buffer），EB染液，
3、菌株：E.coli DH 5α
4、培养基：LB培养基，麦康凯培养基
【实验步骤】
（一）限制性核酸内切酶及酶切反应
1、在0.5mL Eppendorf管中依次加入酶切反应的各种成分。

2、各管样品混合均匀后，4000rpm，1min，将液体集中于管底。

3、37°C，1-2h，电泳检测酶切效率。

（二）载体与外源DNA的连接反应
1、在0.5mL Eppendorf管中依次加入连接反应所需的各种成分。

2、各管样品混合均匀后，4000rpm，1min，将液体集中于管底。

3、在16°C的恒温水浴锅中过夜培养连接。

（三）感受态细胞的制备及质粒转化
1、受体菌培养
（1）固-液接种：从LB平板上挑取新活化的E.coli DH 5α单菌落，
接种于5mL LB培养基中，37°C振荡培养过夜。

（2）液-液转接：以1%接种量将过夜培养的E.coli DH 5α接种于
新鲜LB培养基中，37°C，220rpm振荡培养2-2.5h。

（3）菌液冰浴：2-2.5h后，将菌液置于冰浴中。

2、感受态细胞的制备
（1）取两个无菌的1.5mL Ep管，各加入1.5mL菌液（倒满为止），
4°C，4000rpm离心5min，弃上清。

重复上述操作，使每
个Ep管中收集3mL培养液的菌体。

（2）残留液体涡旋细胞，加800μL预冷的0.1M CaCl2，冰浴悬浮细胞。

4°C，4000rpm离心5min，弃上清。

（3）加入100μL预冷的0.1M CaCl2，轻轻悬浮细胞，冰浴20min。

（4）分装至50μL/管，感受态细胞制备完成（现用或者48h内使用，4度保存）。

3、感受态细胞的转化
（1）取新配制的感受态细胞悬液100μL（若是冷冻保存液，则需化冻），加入不超过2μL的pUC19质粒DNA（DNA含量
不超过50ng），此管用于转化实验，同时作受体菌和质粒
DNA两个对照管。

I-实验转化组：感受态细胞悬液100μL+连接物5.0μL；
II-转化对照组：感受态细胞悬液50μL+pUC19 1.0μL（自
提）
III-细胞对照组：感受态细胞悬液50μL
（2）将以上各样品管轻轻摇匀，冰浴10min。

（3）42°C热击90s，然后迅速置于冰上冰浴5min。

（4）复苏：向上述各管中分别加入新鲜LB培养基900μL，摇匀，于37°C复苏培养0.5-1h，使受体菌恢复正常生长。

4、稀释和涂布平板
（1）将转化细胞溶液按一下操作涂布平板：
I-实验转化组：取50、100、150和200μL培养液涂布在2
个含有氨苄青霉素的麦康凯培养基平板上。

II-转化对照组：取50μL培养液涂布在1个含氨苄青霉素
的麦康凯培养基平板上。

III-细胞对照组：取50μL培养液分别涂布在含氨苄青霉素
和不含氨苄青霉素的麦康凯培养基平板上。

（2）当菌液完全被培养基吸收后倒置培养皿，于37°C恒温培养16-20h。

（四）重组转化子的筛选与验证
1、观察平板上有无菌落生长、菌落与平板颜色以及菌落数量。

2、从含有氨苄青霉素的麦康凯平板上挑取4个白色菌落划线于空
白含氨苄青霉素的麦康凯平板上，于37°C恒温培养16-20h。

3、挑取该平板上的白色菌落于20mL LB培养基中，37°C恒温培养
过夜。

（五）重组质粒的提取（试剂盒法）与电泳检测
1、将带有质粒的E.coli接种于5mL LB/抗生素培养液中，37℃摇床
培养12-16h。

2、取1.0-5.0mL的菌液，室温下13000r/m离心1min收集细菌。

3、倒弃培养基，加入250μLSolutionⅠ/RNase A混合液，漩涡震荡
使细胞完全悬浮。

4、往重悬混合液中加入250μL Solution Ⅱ，轻轻颠倒混匀4-6次，
此操作避免剧烈混匀裂解液且裂解反应不超过5min。

5、加入250μL Solution Ⅲ，温和颠倒数次至形成白色絮状沉淀。

6、室温下，13000r/min离心10min。

7、转移上清液至套有2mL收集管的HiBind DNA结合柱中，室温下，
13000r/min离心1min，倒去收集管中的滤液。

8、把柱子重新装回收集管，加入500μL HB Buffer，按上述条件离
心，弃去滤液。

9、把柱子重新装回收集管，加入700μL DNA Wash Buffer，按上述
条件离心，弃去滤液。

（注意：浓缩的DNA Wash Buffer在使用之
前必须按标签的提示用无水乙醇稀释。

）
10、（可选）弃去滤液，重复第9步骤一次。

11、弃去滤液，把柱子重新装回收集管，13000r/min离心空柱
2min以甩干柱子基质。

（注意：不要忽略此步——这对去除柱子
中残留的乙醇至关重要。

）
12、把柱子装在干净的1.5mL离心管上，加入30-50μL Elution
Buffer到柱子基质中，静置1-2min，13000r/min离心1min，洗脱
出DNA。

13、电泳检测：在离心管中加入2μL ddH2O、2μL质粒以及1μL
loading buffer，轻弹/吹吸混匀，快速离心集液于管底，上样，跑
电泳。

【实验参考】
1、限制性核酸内切酶酶切反应体系
表2 限制性核酸内切酶酶切反应体系
2、酶切后琼脂糖凝胶电泳上样顺序
表3 酶切后琼脂糖凝胶电泳上样顺序
3、连接反应体系
表4 连接反应体系
4、重组质粒及转化对照参考表
表5 重组质粒及转化对照参考表
5、重组质粒的电泳检测——上样顺序
表6 重组质粒的电泳检测——上样顺序
【实验结果及分析】
1、质粒酶切电泳检测
图1 重组质粒电泳图
图2 重组质粒电泳图
λ/H III λDNA λ/H IIIpUC19pUC19 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12（Test）商品/H III
2泳道为我所在组。

对比酶切时的marker和商业酶切质粒，我组电泳条带从上到下依次为：最上方条带大小在λDNA处，因此可判断此条带是在之前提取质粒时混入的杂质λDNA；第二条条带在2.6-2.7kb左右，而且每组都有，因此可判断此条带为线性pUC19质粒；第三条带基本上在双螺旋pUC19质粒的位置，
因此此条带基本上为未切开的双螺旋pUC19质粒；最下面的条带明显为未降解的RNA。

可以判断出除9组外，其他组的载体质粒pUC19酶切的不彻底，线性pUC19质粒下面还有一条较浅的带。

故酶切不成功，后续实验使用老师备用的λDNA 酶切片段。

2、重组子筛选结果
1）氨苄青霉素的添加与否能解释什么问题？
DH5α为氨苄敏感型，不能在含氨苄青霉素的平板上生长；pUC19带有氨苄青霉素抗性基因，可在含氨苄青霉素的平板上生长。

故未导入
pUC19的受体细胞在含有氨苄青霉素的培养基上不生长，只要在含氨苄青霉素的平板上生长的菌落均为导入pUC19的受体细胞，易于筛选。

2）菌落为什么会有不同的颜色？分别是什么？
质粒pUC19进入E.coli DH 5α后，通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

在麦康凯培养基平板上，转化子利用β-半乳糖苷酶分解培养基中的乳糖产生有机酸，pH降低，培养基中的指示剂变红，转化子的菌落变红；重组后的载体DNA因为目的基因的插入位点在pUC19乳糖利用基因内部，不能形成α-互补作用，所以也不能利用培养基中的乳糖产生有机酸，在含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

3）不同平板上菌落的数量有何变化？为什么？
在实验组中，菌落的生长密度随着加入菌液的体积成梯度增加。

因为菌液体积越大，菌落数量越多。

4）红、白菌落各有多少？比例如何？
红菌落：124
白菌落：2
红/白=62
5）转化效率是多少？
转化效率=2/1ng=2*103/μg
6）同样是基于α-互补，蓝-白与红-白筛选的原理是否完全相同？
不是完全相同。

两者均通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

蓝-白筛选是由于产生有色物质而使整个培养菌落产生颜色变化；而红-白筛选是由于产酸/碱，使培养基中的指示剂颜色变化，进而改变菌落颜色。

7）红-白筛选的具体原理是什么？
红-白筛选法是根据菌落颜色筛选含有充足质粒的转化子。

质粒pUC19携带有氨苄青霉素抗性基因（Amp r）,在含有氨苄青霉素平板上筛选转化子。

没有导入质粒pUC19的受体细胞，在含有氨苄青霉素的平板上不生长。

质粒pUC19进入E.coli DH 5α后，通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

在麦康凯培养基平板上，转化子利用β-半乳糖苷酶分解培养基中的乳糖产生有机酸，pH降低，培养基中的指示剂变红，转化子的菌落变红。

不含质粒的E.coli DH 5α，没有β-半乳糖苷酶活性，不能利用培养基中的乳糖产生有机酸，而是利用培养基中的有机碳源，不使培养基pH降低，在不含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

重组后的载体DNA因为目的基因的插入位点在pUC19乳糖利用基因内部，不能形成α-互补作用，所以也不能利用培养基中的乳糖产生有机酸，在含有氨苄青霉素的麦康凯培养基上形成白色菌落。

8）培养基的颜色是否有变化？为什么？
仅不含pUC19的菌株培养基颜色变黄，其余均为红色，无变化。

原因是：质粒pUC19进入E.coli DH 5α后，通过α-互补作用，形成完整的β-半乳糖苷酶。

在麦康凯培养基平板上，转化子利用β-半乳糖苷酶分解培养基中的乳糖产生有机酸，pH降低，培养基中的指示剂变红，故培养基颜色为红色；
而不含pUC19质粒的菌株则会分解其他碳源，产生氨气，使培养基变成黄色。

3、重组质粒电泳图
图2 重组质粒电泳图（1-6组）
超螺旋pUC19 rp SJ1-1rp SJ1-2rp SJ2-1rp SJ2-2 rp SJ3-1rp SJ3-2超螺旋pUC19 rp SJ4-1rp SJ4-2 rp SJ5-1rp SJ5-2 rp SJ6-1rp SJ6-2
Marker marker
rp SJ2-1、rp SJ2-2为本组重组质粒电泳结果。

与第二泳道的pUC19对照可以看出，我们筛选到的重组质粒中插入了外源DNA片段。

重组质粒分别插入了较小的基因片段（rp SJ2-1）和较大的基因片段（rp SJ2-2）。

【注意事项】
1、本实验属于微量操作技术，无论是DNA样品还是酶的用量都极少，
必须严格注意吸样量的准确性并确保样品全部加入反应体系中。

2、实验中所用塑料器材都必须是新的，并且经过高温灭菌，操作时打
开使用，操作过程不要求无菌，但要注意手和空气中杂酶的污染，因此
要注意环境干净，戴手套操作，尽量减少走动，缩短Ep管开盖的时间。

3、不论是酶切还是连接反应，加样的顺序应该是，先加重蒸水，其次
是缓冲液和DNA，最后加酶。

且前几步要把样品加到管底的侧壁上，加
完后用力将其甩到管底，而酶液要在加入前从-20℃的冰箱取出，酶管放
置冰上，取酶液时吸头应从表面吸取，防止由于插入过深而使吸头外壁
沾染过多的酶液。

取出的酶液应立即加入反应混合液的液面以下，并充
分混匀。

酶液使用完毕应立即放回冰箱，防止酶的失活。

4、Ep管的盖子应盖紧，防止水浴加热的过程中水汽进入管内，并做好
标记以防样品混淆。

5、由于受热，酶切反应结束时，装有酶切样品的管盖上会有大量的冷
凝水，应离心2s，使样品集中于管底，再开盖取样检测。

注意防止污染。

6、转化过程要防止杂菌和其他DNA的污染，整个操作过程应在无菌条
件下进行。

7、电泳时使用的缓冲液最好是现配现用，以免影响电泳效果。

8、制备凝胶时，应避免琼脂糖溶液在微波炉里加热时间过长，否则溶
液将会暴沸蒸发，影响琼脂糖浓度。

制胶时要除去气泡。

拔梳子时要特
别小心，以防凝胶与支持物脱离。

9、上样时要小心操作，避免损坏凝胶或将样品槽底部的凝胶刺穿。

也
不要快速挤出吸头内的样品，避免挤出的空气将样品冲出样品孔。

10、溴化乙锭是一种强烈的诱变剂，有毒性，使用含有这种染料的溶液
时，应带上乳胶手套进行操作。

勿将溶液滴洒在台面上，实验结束后用
水彻底冲洗干净。

11、紫外线对眼睛和皮肤均有伤害，对眼睛尤甚。

观察电泳条带时要确
保紫外光源得到适当遮蔽，并应戴好目镜或眼罩，避免皮肤直接暴露在
紫外线下。

12、实验中加样后应及时更换吸头，以避免试剂的污染。

13、感受态细胞必须从纯菌种开始。

要从划线纯化的单菌落开始，进行
活化培养，不要使用多次转接或储存在4℃的培养菌液，其目的是保持
菌株的纯度和活力。

14、控制细胞的生长状态和密度是转化效率的关键，细胞生长浓度以刚
进入对数生长期为好，可通过监测培养液的A600来控制。

细胞浓度不足。