转录因子Brachyury在肿瘤细胞EMT过程中作用的研究进展
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
转录因子Brachyury在肿瘤细胞EMT过程中作用的研究进
展
李开春;应明真;王雅杰
【摘要】上皮间充质转化(EMT)指上皮细胞通过特定程序转化为具有间质表型细胞的生物学过程.EMT在胚胎发育、慢性炎性反应、组织重建和癌症转移中发挥重要作用.EMT过程被一组转录因子调控,其中包括T-box家族成员Brachyury.Brachyury因子促进EMT及肿瘤细胞的迁徙和播散.Brachyury因子与EMT过程相关的信号通路主要有TGF-β信号通路、FGF/FGFR信号通路和
Wnt/β-连环蛋白信号通路等.Brachyury因子是一个很有潜力的T细胞介导肿瘤免疫治疗的候选靶标.本文对转录因子Brachyury在肿瘤细胞EMT过程中的作用进行综述.
【期刊名称】《癌症进展》
【年(卷),期】2017(015)009
【总页数】4页(P994-997)
【关键词】转录因子;Brachyury;上皮细胞-间充质细胞转换
【作者】李开春;应明真;王雅杰
【作者单位】同济大学附属天佑医院肿瘤科,上海 200331;第二军医大学附属长海医院肿瘤科,上海 2004330;第二军医大学附属长海医院肿瘤科,上海 2004330【正文语种】中文
【中图分类】R730.231
T-box转录因子Brachyury在胚胎发育过程中发挥重要作用。
近年来研究发现,Brachyury也促进肿瘤细胞的上皮间充质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)。
EMT是上皮细胞来源恶性肿瘤发生转移的关键一步,也被认为是肿瘤细胞对常规放化疗抵抗的原因之一。
EMT过程被一组转录因子调控,其中包括T-box家族成员Brachyury。
本文旨在对Brachyury因子的结构和功能、EMT过程、Brachyury因子与EMT之间的关系,以及靶向Brachyury通路的抗肿瘤治疗进展作一综述。
自1927年T基因被首次发现以来,越来越多的具有同源DNA结构域的基因被归入T-box基因家族。
1990年,T基因在小鼠中被成功克隆并发现其编码一种转录因子。
T-box基因家族通常分为5个亚科,包括T、Tbx1、Tbx2、Tbx6和Tbr 亚科。
T-box基因家族调节早期胚胎细胞分化,并参与中胚层发育和器官形成,T-box基因突变将导致多种疾病[1]。
转录因子Brachyury是由T基因编码的T-box转录因子家族中的重要成员,是一种序列特异性DNA结合蛋白,在物种进化中高度保守(即T-box区),各成员之间的其余序列并未发现相似性[2]。
Brachyury蛋白的T-box区为N端229个氨基酸残基,具有DNA结合特性,能与5 bp的DNA功能域(TCACA)特异性结合[3]。
在已经筛选的所有两侧对称动物以及腔肠动物中发现Brachyury转录因子的存在。
T基因也被称为Brachyury基因。
Brachyury基因突变首次在小鼠中被鉴定。
携带Brachyury突变的杂合子小鼠被发现有短且稍扭结的尾巴,这也是Brachyury翻译为鼠短尾突变体表型的原因。
携带Brachyury突变的纯合子小鼠胚胎通常由于严重的生长缺陷而宫内死亡[4]。
Brachyury基因先后在非洲爪蟾、鸡、果蝇、斑马鱼、文昌鱼、海鞘、棘皮动物和人类中被鉴定出来[5]。
人Brachyury基因位于染色体6q27,长10 kb,由8个外显子和7个内含子组成。
人Brachyury编码序列为1305个核苷酸长的开放阅
读框,编码435个氨基酸,与鼠Brachyury具有91%的同源性[6]。
在胚胎发育过程中,特别是在原肠胚形成时,上胚层相对未分化的细胞发展成3
个明确的胚层,即外胚层、中胚层和内胚层时,Brachyury因子发挥多个正常功能,促进胚胎细胞移动和黏附[7]。
在上皮肿瘤发生、发展过程中,Brachyury因子发
挥类似的作用,促进EMT及肿瘤细胞的迁徙和播散。
研究发现,过度表达Brachyury的肿瘤细胞下调表达黏附分子E-钙黏蛋白(E-cadherin),这使得上
皮来源肿瘤细胞发生间充质转化,促进侵袭和转移[8]。
EMT是指上皮细胞通过特定程序转化为具有间质表型细胞的生物学过程。
EMT在胚胎发育、慢性炎性反应、组织重建、癌症转移和多种纤维化疾病中发挥重要作用,其主要特征有细胞黏附分子(如E-钙黏蛋白)表达减少、角蛋白为主的细胞骨架
转化为波形蛋白(Vimentin)为主的细胞骨架以及形态上具有间充质细胞特征。
EMT过程表现为上皮细胞失去细胞极性,通过多种分子和生化改变,附着于基底
膜呈现出一个间质细胞的表型。
这些改变包括大大增加的细胞外基质(extracellular matrix,ECM),以及增强的侵袭能力、迁徙能力和抗凋亡能力[9]。
EMT过程通常分为3种类型:1型EMT参与胚胎着床和发育以及器官的形成;2
型EMT参与伤口愈合和再生以及组织纤维化;3型EMT参与恶性上皮肿瘤细胞
的浸润和转移[10]。
1型EMT表现为相邻上皮细胞间失去联系和获得间质表型,
使细胞突破基底膜从而分离胚胎内不同的组织,促进胚胎发育[11]。
2型EMT表
现为上皮细胞分化为肌成纤维细胞,促进ECM的分泌和伤口收缩,然后正常上皮细胞参与上皮化重建,以修复伤口[12]。
3型EMT表现为上皮来源的癌细胞获得
转化能力,通过间质转变,脱离最初的部位,然后通过突破基底膜,从而浸润周围组织和发生远处转移[13]。
正常胚胎发育过程和伤口愈合再生过程发生的EMT与
肿瘤发生、发展过程中发生的EMT在本质上是相同的。
在EMT过程中,上皮细胞下调上皮蛋白(E-钙黏蛋白)表达。
E-钙黏蛋白表达下降或功能丧失导致上皮屏障功能丧失[14]。
E-钙黏蛋白表达下降的同时,N-钙黏
蛋白表达增加。
这个平衡的改变导致过渡期细胞失去原有上皮细胞表型,从而获得间叶细胞表型[15]。
胚胎发育和肿瘤进展的EMT过程所涉及的信号通路及其调控
本质上没有区别,均由一组多效性转录因子控制,包括Slug、Snail、Goosecoid、Twist、Sip1、ZEB1 和 ZEB2 等[16]。
这些转录因子的表达通过抑制上皮细胞标
志物表达和诱导间充质细胞标志物表达,从而过渡到一个间充质状态。
Palena等[17]研究发现在人类肿瘤EMT过程中的一个新的驱动因子,称为Brachyury(来自希腊语“short tail”,又称为“T基因”)。
通常Brachyury
因子过度表达后,上皮癌细胞系才出现EMT过程的特征性改变,包括增强的肿瘤细胞运动和侵袭能力。
当Brachyury因子表达被抑制时,具有间叶表型的肿瘤细
胞出现间叶-上皮转变(mesenchymal epithelial transition,MET),包括间叶标志物表达缺失,上皮标志物表达出现,同时伴有肿瘤转移和侵袭能力的缺失[18]。
进一步明确上皮肿瘤细胞发生EMT过程的分子机制,并探索基于EMT过程关键
信号通路的靶向治疗,也许是未来抗肿瘤转移治疗的一个方向。
多种生长因子包括肝细胞生长因子(hepatocyte growth factor,HGF)、表皮
生长因子(epidermal growth factor,EGF)、白细胞介素-8(interleukin-8,
IL-8)及其受体、血小板衍生生长因子(platelet derived growth factor,PDGF)、成纤维细胞生长因子(fibroblast growth factor,FGF)及其受体(FGFR)和转化生长因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)等,负
责感应EMT相关的一系列功能[19]。
转录因子,特别是 Snail、Slug、ZEB1、Twist、Goosecoid和FOXC2等,随后会被激活。
转录因子Brachyury激活
EMT过程的信号通路还没有被完全阐明。
本文探讨Brachyury因子与EMT过程
相关的3个主要信号通路:TGF-β信号通路、FGF/FGFR信号通路和Wnt/β-连环
蛋白(β-catenin)信号通路。
TGF-β是一种多功能细胞因子。
在组织修复过程中,TGF-β能刺激ECM的沉积。
同时TGF-β也能调节肿瘤细胞的增殖、分化和细胞存活,并刺激肿瘤细胞获得更
积极的转移表型。
TGF-β能够直接调节EMT的转录程序,也可与多种信号网络包括Notch信号、Wnt信号以及其他信号相互作用,从而影响Brachyury因子通路[20]。
Larocca等[21]通过对多种人类肿瘤细胞系包括肺癌和前列腺癌的研究表明,
TGF-β1可诱导产生Brachyury。
在EMT过程中,TGF-β1和Brachyury相互促
进表达间质表型。
研究发现,抑制TGF-β信号通路可以降低Brachyury的表达并且逆转EMT,同时能够提高肿瘤细胞对化疗药物的敏感性。
化疗联合TGF-β抑制剂似乎是很有前景的临床治疗策略。
FGF/FGFR信号通路的激活,可促进EMT,促进肿瘤细胞的增殖、侵袭和转移,
以及增强对放化疗的耐受性[22]。
脊索瘤是一种由残余脊索恶变而来的罕见骨肿瘤。
近期研究认为,家族性脊索瘤与Brachyury基因复制相关。
在脊索的进化过程中,Brachyury因子的表达需要FGF/FGFR信号通路的激活。
Hu等[23]研究发现,脊索瘤细胞可以产生成纤维细
胞生长因子2(FGF2)。
中和FGF2可以抑制MEK/ERK磷酸化,从而降低Brachyury表达,抑制EMT过程,诱导细胞凋亡。
此外,shRNA可以抑制Brachyury表达,抑制FGF2分泌,阻断FGF2效应。
以上研究结果可能有助于开发脊索瘤新的治疗策略。
Wnt/β-catenin信号通路在胚胎发育、干细胞自我更新、肿瘤发生和化疗药物抵
抗过程中发挥重要作用[24]。
Turner等[25]研究发现,EMT参与鼠胚胎干细胞发育,而Brachyury因子依赖于Wnt/β-catenin信号通路激活或者终止EMT过程。
Arnold等[26]研究发现,通过表达LEF-1转录因子和β-catenin核定位,未表达
E-钙黏蛋白的胚胎干细胞可模拟Wnt信号通路。
这些E-钙黏蛋白阴性的细胞同时表达Brachyury因子。
重新将E-钙黏蛋白导入到这些细胞中可导致细胞膜与β-catenin的络合反应,同时下调LEF-1和Brachyury因子表达,从而调节EMT进程。
通过对EMT的影响,Brachyury在肿瘤转移中扮演一个关键角色。
肿瘤细胞发生EMT过程能够引发一连串瀑布反应事件,导致肿瘤侵袭和转移,同时获得肿瘤干细胞(cancer stem cell,CSC)样特征,包括获得对化疗和放疗的抵抗。
理论上,靶向EMT过程的治疗策略可以在肿瘤早期预防侵袭和转移,或者在肿瘤晚期增强对放化疗的敏感性[27]。
然而,由于EMT过程在正常生理过程中也是必不可少的,故靶向EMT治疗可能存在许多实际困难。
越来越多的研究发现,Brachyury因子的高表达可以促进EMT过程,促进肿瘤侵袭和转移。
不同于其他转录因子,Brachyury在几乎所有人类肿瘤中均能被发现,而且除了在成人睾丸和甲状腺有低水平的表达外,正常组织几乎不表达[28]。
2007年,Palena等[17]首次提出Brachyury因子是一个很有潜力的T细胞介导肿瘤免疫治疗的候选靶标。
Hamilton等[29]报道了靶向Brachyury阳性肿瘤的一个免疫平台的研发和特征。
该免疫平台的核心是加热灭活的重组酵母Brachyury载体疫苗(命名为GI-6301)。
研究表明,重组酵母Brachyury因子刺激树突状细胞后,在体外能够激活和扩增Brachyury特异性CD4+和CD8+T细胞,可以有效杀伤表达Brachyury蛋白的肿瘤细胞。
接种GI-6301的小鼠也会引起Brachyury特异性CD4+和CD8+T细胞反应,并诱导抗肿瘤免疫。
GI-6301用于治疗晚期肿瘤的1期临床研究表明,34例患者观察到了Brachyury 特异性T细胞免疫反应,无自身免疫或其他严重不良事件发生[30]。
其中2例脊索瘤患者既往多次治疗后,仍然达到1例稳定,1例部分缓解,另1例晚期结直肠癌患者多线化疗后,竟达到疾病稳定1年以上,且盆腔肿块密度降低和癌胚抗
原(CEA)下降。
这是治疗性癌症疫苗第一次在人类中的研究,以证明其安全性和免疫原性。
目前,一项随机2期临床研究正在招募患者中。
Li等[18]研究发现,染色体结构维持蛋白1(SMC1)通过上调Brachyury因子促进三阴性乳腺癌细胞的侵袭和转移。
进一步研究还发现,在激素受体阳性乳腺癌细胞,Brachyury通过上调去乙酰化酶-1(SIRT1)促进三苯氧胺耐药[31]。
研究者认为,理论上靶向Brachyury治疗可能阻断三阴性乳腺癌细胞的侵袭转移;靶向Brachyury治疗可能克服他莫昔芬的耐药现象。
Brachyury基因在胚胎发育中参与调节脊索形成,在肿瘤侵袭和转移中也发挥至关重要的作用。
靶向Brachyury免疫治疗可诱导表达Brachyury的肿瘤细胞裂解,从而减少与肿瘤侵袭发展相关的EMT形成。
靶向Brachyury免疫疗法对不表达Brachyury的正常细胞几乎没有影响。
然而,目前对于促进EMT过程的Brachyury因子的信号通路还知之甚少,尤其对于与Brachyury功能相关的上下游基因还不清楚。
现有研究显示,靶向Brachyury的抗EMT治疗应用于临床的潜力巨大[32-33]。
因此,需要更多的研究来更好地理解Brachyury增强肿瘤细胞侵袭和转移的分子机制。
我们也期待更大样本治疗性Brachyury疫苗用于证明其疗效和安全性的临床研究。
【相关文献】
[1]Papaioannou VE.The T-box gene family:emerging roles in development,stem cells and cancer[J].Development,2014,141(20):3819-3833.
[2]Gentsch GE,Owens ND,Martin SR,et al.In vivo T-box transcription factor profiling reveals joint regulation of embryonic neuromesodermal bipotency[J].Cell
Rep,2013,4(6):1185-1196.
[3]Fernando RI,Litzinger M,Trono P,et al.The T-box transcription factor Brachyury promotes epithelial-mesenchymal transition in human tumor cells[J].J Clin
Invest,2010,120(2):533-544.
[4]Zhu J,Kwan KM,Mackem S.Putative oncogene Brachyury(T)is essential to specify cell fate but dispensable for notochord progenitor proliferation and EMT[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2016,113(14):3820-3825.
[5]Song W,Gobe GC.Understanding molecular pathways and targets of Brachyury in epithelial-mesenchymal transition(EMT)in human cancers[J].Curr Cancer Drug Targets,2016,16(7):586-593.
[6]Edwards YH,Putt W,Lekoape KM,et al.The human homolog T of the mouse
T(Brachyury)gene;gene structure,cDNA sequence,and assignment to chromosome
6q27[J].Genome Res,1996,6(3):226-233.
[7]Faial T,Bernardo AS,Mendjan S,et al.Brachyury and SMAD signalling collaboratively orchestrate distinct mesoderm and endoderm gene regulatory networks in differentiating human embryonic stem cells[J].Development,2015,142(12):2121-2135.
[8]Sun S,Sun W,Xia L,et al.The T-box transcription factor Brachyury promotes renal interstitial fibrosis by repressing E-cadherin expression[J].Cell Commun Signal,2014,12:76.
[9]Kalluri R,Weinberg RA.The basics of epithelial-mesenchymal transition[J].J Clin Invest,2009,119(6):1420-1428.
[10]Kim HY,Jackson TR,Davidson LA.On the role of mechanics in driving mesenchymal-to-epithelial transitions[J].Semin Cell Dev Biol,2017,67:113-122.
[11]Kim YS,Yi BR,Kim NH,et al.Role of the epithelial-mesenchymal transition and its effects on embryonic stem cells[J].Exp Mol Med,2014,46:e108.
[12]Weber CE,Li NY,Wai PY,et al.Epithelial-mesenchymal transition,TGF-β,and osteopontin in wound healing and tissue remodeling after injury[J].J Burn Care Res,2012,33(3):311-318.
[13]Chaffer CL,Weinberg RA.A perspective on cancer cell
metastasis[J].Science,2011,331(6024):1559-1564.
[14]Hanahan D,Weinberg RA.Hallmarks of cancer:the next
generation[J].Cell,2011,144(5):646-674.
[15]Lamouille S,Xu J,Derynck R.Molecular mechanisms of epithelial-mesenchymal transition[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2014,15(3):178-196.
[16]Chou YS,Yang MH.Epithelial-mesenchymal transition-related factors in solid tumor and hematological malignancy[J].J Chin Med Assoc,2015,78(8):438-445.
[17]Palena C,Polev DE,Tsang KY,et al.The human T-box mesodermal transcription factor Brachyury is a candidate target for T-cell-mediated cancer immunotherapy[J].Clin Cancer Res,2007,13(8):2471-2478.
[18]Li K,Ying M,Feng D,et al.SMC1 promotes epithelial-mesenchymal transition in triple-negative breast cancer through upregulating Brachyury[J].Oncol Rep,2016,35(4):2405-2412.
[19]Smith BN,Bhowmick NA.Role of EMT in metastasis and therapy resistance[J].J Clin
Med,2016,5(2):E17.
[20]Gadue P,Huber TL,Paddison PJ,et al.Wnt and TGF-beta signaling are required for the induction of an in vitro model of primitive streak formation using embryonic stem
cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(45):16806-16811.
[21]Larocca C,Cohen JR,Fernando RI,et al.An autocrine loop between TGF-β1 and the transcription factor brachyury controls the transition of human carcinoma cells into a mesenchymal phenotype[J].Mol Cancer Ther,2013,12(9):1805-1815.
[22]Hallinan N,Finn S,Cuffe S,et al.Targeting the fibroblast growth factor receptor family in cancer[J].Cancer Treat Rev,2016,46:51-62.
[23]Hu Y,Mintz A,Shah SR,et al.The FGFR/MEK/ERK/brachyury pathway is critical for chordoma cell growth and survival[J].Carcinogenesis,2014,35(7):1491-1499.
[24]Mohammed MK,Shao C,Wang J,et al.Wnt/β-catenin signaling plays an ever-expanding role in stem cell self-renewal,tumorigenesis and cancer chemoresistance[J].Genes
Dis,2016,3(1):11-40.
[25]Turner DA,Rué P,Mackenzie JP,et al.Brachyury cooperates with Wnt/β-catenin signalling to elicit primitive-streaklike behaviour in differentiating mouse embryonic stem cells[J].BMC Biol,2014,12:63.
[26]Arnold SJ,Stappert J,Bauer A,et al.Brachyury is a target gene of the Wnt/beta-catenin signaling pathway[J].Mech Dev,2000,91(1-2):249-258.
[27]Palena C,Hamilton DH.Immune targeting of tumor epithelial-mesenchymal transition via brachyury-based vaccines[J].Adv Cancer Res,2015,128:69-93.
[28]Hamilton DH,Litzinger MT,Fernando RI,et al.Cancer vaccines targeting the epithelial-mesenchymal transition:tissue distribution of brachyury and other drivers of the mesenchymal-like phenotype of carcinomas[J].Semin Oncol,2012,39(3):358-366.
[29]Hamilton DH,Litzinger MT,Jales A,et al.Immunological targeting of tumor cells undergoing an epithelial-mesenchymal transition via a recombinant brachyury-yeast vaccine[J].Oncotarget,2013,4(10):1777-1790.
[30]Heery CR,Singh BH,Rauckhorst M,et al.Phase I trial of a yeast-based therapeutic cancer vaccine(GI-6301)targeting the transcription factor brachyury[J].Cancer Immunol Res,2015,3(11):1248-1256.
[31]Li K,Ying M,Feng D,et al.Brachyury promotes tamoxifen resistance in breast cancer by targeting SIRT1[J].Biomed Pharmacother,2016,84:28-33.
[32]Roselli M,Fernando RI,Guadagni F,et al.Brachyury,a driver of the epithelial-mesenchymal transition,is overexpressed in human lung tumors:an opportunity for novel interventions against lung cancer[J].Clin Cancer Res,2012,18(14):3868-3879.
[33]Palena C,Fernando RI,Hamilton DH.An immunotherapeutic intervention against tumor
progression:Targeting a driver of the epithelial-to-mesenchymal transition[J].Oncoimmunology,2014,3(1):e27220.。