脑组织原液制作岗位操作法
脑脊液生化的操作内容及流程
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在进行脑脊液生化检测之前，需要进行充分的准备。
脑脊液采集作业指导书
脑脊液采集作业指导书1. 引言脑脊液采集是一项非常重要的医学操作，用于诊断和治疗各种神经系统疾病。
本指导书旨在提供详细的脑脊液采集操作步骤和注意事项，以确保采集的准确性和安全性。
2. 准备工作在进行脑脊液采集之前，必须进行充分的准备工作，以确保整个过程的顺利进行。
以下是一些准备工作的步骤和注意事项：2.1 检查操作器材在开始脑脊液采集前，务必检查所有操作器材的完整性和清洁度。
确保针头、管路、收集容器等器材都是干净的，并且没有任何损坏。
2.2 准备工作区域选择一个安静、整洁的工作区域进行脑脊液采集。
确保操作台面干净，并放置所需的器材和消毒用品。
2.3 术前准备让患者了解整个脑脊液采集过程，并解答其可能有的疑问。
确保患者处于舒适的姿势，并准备好必要的术前药物。
3. 脑脊液采集步骤以下是一般的脑脊液采集步骤，注意，具体操作步骤可能会因不同医疗机构的标准而有所差异，请按照医疗机构的具体要求进行操作：3.1 无菌操作•手部消毒：使用含70%酒精的洗手液洗手，保持双手清洁和干燥。
•佩戴手套：在进行脑脊液采集之前，戴上无菌手套。
3.2 麻醉•局部麻醉：选定脑脊液采集点，使用局部麻醉药物麻醉。
3.3 采集•穿刺：将脑脊液采集针插入患者的脊椎间隙或者蛛网膜下腔。
•采集：连接采集器具，收集脑脊液样本。
•采集完成后，注意封闭和标记采集的样本。
3.4 处理采集针•将采集针丢弃到医疗废物箱中，确保安全处置。
3.5 结束操作•清洁和消毒：清洁操作区域，丢弃使用过的器材，并进行必要的消毒操作。
•记录操作日志：记录脑脊液采集的详细信息，包括采集日期、操作者和采集样本的特征。
4. 注意事项在进行脑脊液采集时，需要特别注意以下事项：4.1 无菌操作确保在整个脑脊液采集过程中，保持无菌操作。
避免任何可能导致交叉感染的行为。
4.2 麻醉药物在使用麻醉药物时，务必按照准确的剂量和方法进行操作。
避免过量使用或者使用错误的麻醉药物。
4.3 采集点选择在选择脑脊液采集点时，需要仔细考虑患者的具体情况。
精制脑组织注射液所用试液配制操作规程
精制脑组织注射液所用试液配制操作规程1.目的：建立精制脑组织注射液所用试液配制标准操作规程，保证检验结果的准确性。
2.依据：《中华人民共和国药典》2000年版二部。
辽宁省药品标准3.范围：本标准适用于精制脑组织注射液所用的试液。
4.职责：QC室主任、配制人、复核人对本标准的实施负责。
5. 程序：5.1. 各种试液名称及配制规程：5.1.1. 20%茚三酮试液：取茚三酮20g，加乙醇使溶解成100ml。
即得。
5.1.2. 20%磺基水杨酸溶液：取磺基水杨酸20g，加水使溶解成100ml，即得。
5.1.3. 0.005mol/L硫酸液：取硫酸滴定液（0.5mol/L）1ml,加水稀释至100ml,即得。
6. 本标准引用本公司内部标准：试液配制管理规程（SMP ZL0039）。
氧氟沙星注射液所用试液配制操作规程建立氧氟沙星注射液所用试液配制标准操作规程,保证检验结果的准确性。
2.依据：《中华人民共和国药典》2000年版二部3.范围：本标准适用于氧氟沙星注射液所用的试液。
4.职责：QC室主任、配制人、复核人对本标准的实施负责。
5. 程序：5.1. 各种试液名称及配制规程：5.1.1. 0.1mol/L盐酸溶液：取盐酸9ml，加水稀释至1000ml，即得。
5.1.2. 糊精溶液（1→50ml）：取糊精1g，溶解至50ml水中，即得。
5.1.3. 荧光黄指示液：取荧光黄0.1g，加乙醇100ml使溶解，即得。
5.1.4. 流动相：0.05mol/L枸橼酸溶液与乙腈（79:21）混匀，用三乙胺调pH至4.0。
5.1.5. 0.05mol/L枸橼酸溶液：取枸橼酸10.50g加水溶解至1000ml，即得。
6. 本标准引用本公司内部标准：试液配制管理规程（SMP ZL0039）。
原液车间岗位安全操作规程10.6
特种纤维厂原液车间安全操作规程内蒙古双欣环保材料股份有限公司一、原液投料岗位安全操作规程1.上班必须穿戴工作服，戴好防护用品，女同志上班时不准穿高跟鞋，必须将长发盘起。
2.严禁穿拖鞋上岗，严禁酒后上岗，严禁在岗位抽烟。
3.严格按照配料单上的料位、比例、袋数装车投用。
4.使用钩刀时要注意安全，不能拿着钩刀朝向别人方向拆袋。
5.严禁在岗位上拿钩刀打闹开玩笑。
6.推投料车时方向要把握好，一定要注意不要压伤脚丫。
7.投料时，一定要注意PVA袋的破损情况防止异物掉入机内发生事故，投料时不要过猛过量。
8.蒸汽阀门在开和关时，（特别是在开时）一定注意要慢9 .戴好劳保用品，严格按照操作法准确操作。
二、原液溶解岗位安全操作规程1.上班必须穿戴工作服，戴好防护用品，女同志上班时不准穿高跟鞋，必须将长发盘起。
2.严禁穿拖鞋上岗，严禁酒后上岗，严禁在岗位抽烟。
3.设备传动部分清扫时，手不得触及传动部分，严防卷入。
4.溶解机清扫时，必须事先和电工取得联系切断所有电源，将现场添加水，蒸汽手动阀关闭，待机内冷却后，人员方可入内清扫。
5.检查溶解机的压力是否为零或负压后，再打开溶解机人孔盖，进行投料，严禁带压操作。
6.溶解机投料前检查底阀是否关好，升温前检查人孔盖和排气阀是否关严关好。
7.现场处理堵料、冒料、混批时必须与DCS操作台密切配合。
8.返液时，必须打开溶解机的排气阀，现场观察液位，以防造成冒液或因压力过高顶开视孔镜或人孔盖造成事故。
9.溶解机内溶解温度控制在104℃以下，压力不得超过0.05MPa。
10.溶解升温过程中，如果总蒸汽压力降到1.5Kg/cm2时，应立即关闭蒸汽总阀，防止原液压入蒸汽管路。
11.废液添加时，注意回收桶的液位和压力进行废液添加。
12.预溶解槽配料时戴好眼罩和口罩，以免酸碱烫伤皮肤。
13.使用消音器先开冷水阀，后开蒸汽阀，橡胶皮管的接口处一定要牢固，以免发生烫伤事故。
14.及时清扫冲洗地面原液，防止摔伤、烫伤。
小鼠脑组织匀浆的制备 -回复
小鼠脑组织匀浆的制备-回复小鼠脑组织匀浆的制备：一步一步回答引言：小鼠是广泛用于生物学研究的模式动物之一。
在研究中，常需要获得小鼠脑组织的匀浆用于分析。
小鼠脑组织匀浆的制备是一个关键步骤，本文将详细介绍制备小鼠脑组织匀浆的方法。
一、实验前的准备工作1.准备工具和材料：- 镊子和剪刀：用于取出小鼠脑部。
- 水浴或热板：用于加热。
- 离心管和离心机：用于离心沉淀。
- 细胞磨机或高压细胞破碎仪：用于破碎组织。
- 甘油：用于保存匀浆样品。
2.准备工作环境：- 消毒实验台面和工具。
- 佩戴一次性手套和口罩。
- 使用无菌工作环境。
二、小鼠脑组织的分离与采集1.选择适合的小鼠：- 根据实验要求选择适龄、适性别的小鼠。
- 使用已通过伦理审查的正规实验动物。
2.麻醉小鼠：- 使用适当的麻醉剂，如异氟醚，使小鼠处于无痛觉和无抵抗状态。
3.解剖小鼠头部：- 使用镊子和剪刀从颅骨处将头剥离。
- 将剥离的头部放于含有冷生理盐水的离心管中。
4.取出小鼠脑部：- 利用镊子和剪刀小心地将小鼠脑部取出，并放入含有冷生理盐水的离心管中。
5.清洗脑部：- 使用冷生理盐水轻轻清洗脑部表面的血液和残留物。
6.分离脑部组织：- 使用镊子和剪刀将小鼠脑部切割成小块，并放入含有冷生理盐水的离心管中。
7.离心：- 将含有脑组织的离心管进行离心，以去除冷生理盐水，留下脑组织。
三、小鼠脑组织的匀浆过程1.加入缓冲液：- 向含有小鼠脑组织的离心管中加入适量的缓冲液，如磷酸缓冲液或PBS 缓冲液。
- 缓冲液的加入可以帮助保持组织的完整性和细胞结构，并防止样品干燥。
2.组织破碎：- 使用细胞磨机或高压细胞破碎仪对脑组织进行破碎。
破碎的程度可以根据实验需求进行调整，但需注意保持样品的温度低于4摄氏度以避免细胞损伤。
3.离心：- 将破碎后的脑组织均质液进行离心，减速离心10-15分钟以沉淀细胞碎片和细胞核。
4.收集上清液：- 使用移液管小心收集上清液，避免带入沉淀物。
制液岗位安全操作规程
制液岗位安全操作规程一、操作范围本规程适用于制液岗位的安全操作，其中包括有机物质及其混合物、广泛用于医药、农药、化工、食品添加剂、香料等领域的制剂、溶液及其他液态产品等的生产操作和管理。
二、岗位职责1.熟练掌握制液的配方、设备的使用和生产流程；2.安全操作设备，严格按照工艺流程操作，确保产品质量并确保工厂安全；3.了解产品的技术规格要求；4.配合质量部门进行产品检查，及时报告质量问题；5.维护、保养设备，并及时汇报设备问题；6.熟悉公司环境、产品范围、安全标准和操作规程，具备良好的安全意识和团队意识。
三、安全管理1. 原料库存管理1.原料要经过质量部门的检验，并合格标识方可入库;2.仓库要时刻保持清洁、整齐，不允许儿童或未经培训的人员进入仓库;3.合理地安排原料的存放区域，分类别存放、分区管理。
2. 设备操作规范1.全部技术人员必须了解并严格遵守操作规范；2.设备操作前必需按照要求检查设备安全，包括机械部分、电气设备、管路、液位计等，检查设备有无漏电、缺点等问题；3.控制器的设定必须按照制剂配方的要求;4.操作人员应当严格建立保护意识，对机器设备和设备周围区域实行十分严密的防卫。
3. 废物管理1.废物必须严格按照公司和国家的环保规定进行储存和处理;2.废物收集桶要放置在指定区域，不能随意移动，也不能超负荷实行废液的排放；3.回收物质必须经过安全悬挂，可再使用的物料需要进行生产设备处理。
4. 特殊情况处理1.在突发火灾等紧急情况下，必须迅速切断电源，并采取紧急措施；2.在出现气体泄漏、毒气泄漏等恶劣环境下，必须立即自救并向部门领导汇报；3.遇到进入隔离区，或出现火情、爆炸等事故，按照岗位职责参加事故自救和灭火。
四、安全培训和教育1. 入岗培训1.入岗培训是技术人员正式工作前必须经过的培训，必须由公司指定负责人员进行；2.培训内容包括公司的文化、组织架构、工作流程、培训标准和操作规范等。
2. 安全培训1.安全培训是为了增强安全意识，提高技术人员的安全素养而开展的一项工作，必须由公司进行；2.安全培训重点包括设备使用、生产操作管理的安全措施、应急处理和事故案例分析等方面。
实验室组织培养脑组织的方法
实验室组织培养脑组织的方法
脑组织的培养是神经科学研究中常用的技术之一，它能够提供一种可控的、长期的、高通量的神经元培养环境。
本文介绍了实验室组织培养脑组织的方法，包括脑组织的获取、处理、细胞分离、细胞培养和细胞鉴定等步骤。
1. 脑组织的获取
脑组织的获取需要进行动物实验，一般可以选择小鼠、大鼠、豚鼠、猫等实验动物。
在动物手术前，需要进行充分的准备工作，包括消毒、镇痛、麻醉等。
手术完成后，将动物的头颅剖开，取出脑组织并迅速放入冷却的琼脂糖溶液中。
2. 脑组织的处理
将脑组织放入无菌的培养皿中，用组织培养液冲洗去血液和其他细胞。
然后，用小刀将脑组织切成尽可能小的块，以便后续的细胞分离。
3. 细胞分离
将切好的脑组织加入酶解液中，使其在37°C下消化5-20分钟，然后用组织培养液冲洗去酶解液和细胞碎片。
然后，用筛子或离心管筛选出单个细胞。
4. 细胞培养
将分离出的细胞加入含有适当营养物质和生长因子的培养基中，放入恒温培养箱中，保持适当的温度、湿度和氧气浓度，培养2-4周左右，直至神经元形成完整的网络。
5. 细胞鉴定
可以通过形态学、免疫染色、蛋白质分析等方法，对细胞进行鉴定和分类，以确定细胞类型和成熟度。
总之，实验室组织培养脑组织的方法需要注意无菌和细胞处理的技术细节，同时也需要充分的实验设计和严格的实验操作，才能得到可靠的实验结果。
小鼠脑组织匀浆的制备 -回复
小鼠脑组织匀浆的制备-回复小鼠脑组织匀浆是一种常用的实验方法，用于提取脑组织中的细胞、蛋白质或核酸等物质。
这种方法可以在许多研究领域中使用，包括神经科学、药理学和分子生物学。
制备小鼠脑组织匀浆的过程虽然相对简单，但需要一些专门的实验技巧和设备。
下面将介绍一种标准的小鼠脑组织匀浆制备方法。
步骤一：准备工作1. 准备所需仪器和试剂。
这包括放置小鼠的无菌操作台、灭菌的工作台、低温离心机、冷冻离心机、显微镜、均质器、离心管、缓冲液和杂质去除试剂等。
2. 打开通风机、紫外线灯和消毒柜等，进行无菌操作。
步骤二：小鼠准备1. 根据实验需要，选择合适的小鼠品系、性别和年龄。
一般来说，小鼠的年龄最好在6-12周之间。
2. 使用无菌操作技术，将小鼠放置在无菌的操作台上，并使用无菌器械进行操作。
3. 注射无菌盐水或其他适当的麻醉剂，使小鼠完全麻醉。
（使用合适的剂量和方法，遵循实验室内部的相关指导或法律法规。
）4. 完全麻醉后，用无菌钳子将小鼠取出放在工作台上。
检查小鼠是否完全麻醉，无反应和呼吸困难等。
步骤三：脑组织取样1. 使用无菌钳子将小鼠头部固定，使之保持相对稳定。
2. 使用手术剪刀和锋利的手术割刀，顺着中线切开小鼠头部，并小心地将头皮和肌肉剥离。
3. 用锐利的手术剪刀切开颅骨，在适当的位置用手术钻在头骨上打孔。
4. 将注射器配备的琼脂糖溶液慢慢注入脑室，然后用注射针或吸管将脑浆吸出。
步骤四：脑组织匀浆1. 取出放置有脑浆的离心管，进行一些常规操作，比如用显微镜检查样本的纯度。
2. 将脑浆转移到均质器中，并按照设备说明使用合适的条件均质。
比如，使用低速均质，并间歇性地加入冷冻离心机。
3. 将均质后的脑浆离心，以去除细胞碎片和杂质物。
4. 转移离心上清液到新的离心管中，并进行下一步的实验操作。
总结起来，制备小鼠脑组织匀浆的过程包括准备工作、小鼠准备和脑组织取样等关键步骤。
通过采用无菌操作技术和合适的设备和试剂，可以获取高质量的小鼠脑组织匀浆样本，为后续实验提供可靠的基础。
小鼠脑组织匀浆的制备 -回复
小鼠脑组织匀浆的制备-回复小鼠脑组织匀浆的制备是进行分子生物学研究和生物药物制剂开发中常用的实验技术之一。
脑组织匀浆的制备可以用来提取蛋白质、RNA、DNA 等生物分子，并用于细胞内分子机制的研究。
本文将一步一步地介绍小鼠脑组织匀浆的制备过程。
第一步：准备工作在开始实验之前，需要准备好所需的试剂和器材。
常用的试剂包括生理盐水、PBS缓冲液、RIPA裂解缓冲液等。
器材方面需要准备冰浴器、离心机、超声波细胞破碎仪、离心管、无菌土壤、标准差点吸管等。
第二步：小鼠的选择选择实验所需的小鼠品系，并确保小鼠的健康状态。
小鼠应当处于无病无虫状态，并在实验开始前一天停止饮食，只提供饮水。
第三步：动物取材使用无菌土壤将小鼠的头部固定在实验台上。
用剪刀小心地剪开小鼠的头颅，暴露出脑组织。
然后使用无菌镊子和剪刀将脑组织剥离出颅腔，并将剥离后的脑组织放入预先准备好的PBS缓冲液中。
第四步：去除脑膜将脑组织从PBS缓冲液中取出，并使用镊子将脑膜小心地剥离。
脑膜是脑组织外层的保护膜，去除后可以更好地分离脑组织。
第五步：均质化将去除脑膜的脑组织放入无菌的均质器中，加入适量的PBS缓冲液，并使用超声波细胞破碎仪进行均质。
超声波的作用可以将脑组织细胞破碎，并均匀地分散在缓冲液中。
第六步：离心将均质后的脑组织悬浮液转移到离心管中，并进行离心。
离心的目的是分离出固体碎片和细胞碎片，得到脑组织匀浆。
第七步：收集匀浆将离心后的液体转移到无菌的离心管中，并用差点吸管逐层吸取。
注意不要吸入固体碎片。
根据实验需要，可以选择不同速度的离心操作，以得到不同浓度的脑组织匀浆。
第八步：储存和使用将得到的脑组织匀浆用无菌冰盒保存在-80的冰箱中。
匀浆的使用要做好防止感染的措施，避免交叉污染。
在实验使用时，可以根据需要进行稀释，以满足各种研究要求。
以上就是小鼠脑组织匀浆的制备步骤。
在进行实验时，要严格遵循实验操作规范，避免交叉污染和损伤脑组织，以确保实验结果的准确性和可靠性。
脑脊液标本采集技术操作标准(最新考核表)
脑脊液标本采集技术操作标准(最新考核表)引言脑脊液标本采集是临床诊断和研究中常用的重要操作。
准确的脑脊液标本采集技术能够确保标本的质量，提高疾病的诊断准确性。
本文档旨在制定脑脊液标本采集技术操作标准，以供临床医务人员参考和遵循。
1.脑脊液标本采集前的准备工作1.1.准备必要的器械和材料，包括脑脊液采集针、试管、消毒液等。
1.2.清洁操作区域，保持一定的无菌环境。
1.3.检查患者的相关信息，包括病史、药物使用情况等。
1.4.与患者及家属沟通并解释脑脊液采集的目的和注意事项。
2.脑脊液标本采集技术操作步骤2.1.患者取体采血压、脉搏、呼吸、体温等必要的生命体征检查。
2.2.定位脊髓腔，常用的位置是腰椎4-5椎间隙。
2.3.消毒处理，将操作区域进行无菌消毒，常用酒精或碘酒消毒。
2.4.局麻麻醉，将局部麻醉药物用于脊髓腔穿刺位点。
2.5.脊髓腔穿刺，操作者利用脑脊液采集针进行脊髓腔的穿刺。
2.6.脑脊液采集，须根据需要采集一定量的脑脊液标本，一般为3-4mL。
2.7.采集完成后，将脑脊液标本放入试管中，并封闭试管以防止污染。
2.8.清洁消毒，对操作区域进行再次消毒，以预防感染的发生。
2.9.通知患者注意事项，如卧床休息、注意观察等。
3.脑脊液标本采集后的处理3.1.将采集完成的脑脊液标本送往实验室进行相应的检查。
3.2.在送检过程中要确保标本的安全性和完整性，避免交叉污染。
3.3.根据实验室的需求，做好标本的保存和运输。
4.脑脊液标本采集中的注意事项4.1.操作者必须具备相关的专业知识和操作技巧，并严格按照操作标准进行采集。
4.2.对于有出血风险的患者，应慎重考虑脑脊液采集的必要性和安全性。
4.3.患者应该配合操作者的指引，保持合适的体位，以利于采集的顺利进行。
4.4.每个脑脊液标本采集针只能使用一次，并在使用后进行消毒和处理。
4.5.操作过程中应注意规范的无菌操作，避免细菌感染和交叉污染的发生。
结论本文档介绍了脑脊液标本采集的操作标准，包括前期准备工作、采集技术操作步骤、采集标本后的处理以及注意事项。
小鼠脑组织匀浆的制备 -回复
小鼠脑组织匀浆的制备-回复小鼠脑组织匀浆的制备是一项重要的实验技术，它被广泛应用于生物医学研究中。
本文将一步一步回答如何制备小鼠脑组织匀浆的问题，以帮助读者了解该实验的操作步骤和注意事项。
1. 实验前准备在开始制备小鼠脑组织匀浆前，需要做好一些实验前的准备工作。
首先，准备好所需的实验材料和试剂。
例如，需要准备缓冲液、显微镜玻片、滤纸、离心管等。
其次，要确保所有的实验设备和器械已经彻底清洁，并且消毒工作已完成。
最后，为了确保实验的顺利进行，需要熟悉实验的操作步骤，并确保所有的实验操作都符合实验室的安全规范。
2. 麻醉和取材小鼠脑组织匀浆的制备需要先将小鼠进行麻醉，并取出其脑组织。
一般来说，可以通过给小鼠腹腔注射适量的麻醉剂来使其麻醉。
待小鼠完全麻醉后，用消毒的手术器械切开小鼠的头部，将脑组织取出并放入冰冻的缓冲液中。
3. 组织匀浆取出的小鼠脑组织需要进行匀浆处理，以获得组织的均一悬浮液。
首先，将放有脑组织的冰冻缓冲液转移到离心管中，并加入适量的缓冲液。
然后，使用离心机将脑组织进行离心，以去除多余的溶液。
接下来，将离心后的脑组织放入离心管中，并加入适量的缓冲液。
使用离心机对其进行匀浆处理，通常可以设置合适的离心速度和时间来获得理想的匀浆效果。
4. 离心和收集匀浆经过匀浆处理后，需要使用离心机将匀浆液进行离心。
通过离心，可以使匀浆液中的大颗粒沉淀到离心管的底部。
根据实验需要，可以设定合适的离心速度和时间来进行离心。
离心结束后，使用移液器将上清液转移至新的离心管中，从而得到小鼠脑组织的匀浆液。
须注意，匀浆液中的大颗粒可以用滤纸过滤掉，以获得更干净的匀浆液。
5. 存储和使用制备好的小鼠脑组织匀浆液可以根据实验需求进行存储和使用。
一般来说，可以将其分装至适量的离心管中，并在低温下保存。
在使用之前，可以根据实验要求进行离心处理，以去除可能存在的沉淀物。
存储和使用过程中，务必注意实验样品的标记和记录，以免产生混淆或丢失。
配制岗位操作法文档
配制岗标准操作规程目的：建立配液岗标准操作规程，确保调配的规范操作。
适用范围：配液岗的操作。
内容：⒈生产前准备：⒈⒈接受空白批生产记录表，并核对生产指令与配料单，确认无误。
⒈⒉按生产指令的规格要求，计算所需原料量：配液总体积/原液含量=原液用量。
配液总体积-原液量=注射用水用量。
1.3．检查操作间内是否挂有厂房“已清洁”标志、上批次生产的“清场合格证”在有效期内。
1.4．检查操作间将使用的设备是否挂有在有效期内的“完好”和“已清洁”标志。
1.5．检查本次生产操作所使用的工器具是否有在有效期内的“已清洁”标志。
1.6．检查生产环境温度、相对湿度、压差等参数是否符合规定要求。
1.7．检查注射用水、电气、压缩气供应是否正常。
1.8．上述检查无误后由QA复查，并由QA 发放生产许可证，挂在操作间门上。
更换现场以前所有标志，挂上本批生产状态标志，注明本批产品名称、规格、批号、批量、生产日期等，同时挂上设备运行状态标志。
2．原液配制计算：2.1．根据原料的含量，按照成品含量的要求计算原液的配制量：每毫升含多肽：1mg、核糖：0.03mg、游离氨基酸：1.3mg2.2．配制计算：以多肽含量为计算依据。
2.3．原液配制要求：每毫升含多肽在0.95～1.05mg之间；含核糖大于0.024mg；含游离氨基酸大于1.3mg。
2.4．原料合批计算：配制原液总量=单批原料含多肽的毫克数相加，用和除以1.1得商。
用商减去每批原料的毫升数，即为原液配制需加入注射用水的量。
2.5．核糖与游离氨基酸：计算方法和上法相同。
注：核糖和游离氨基酸只规定了下限，可以在配制时添加。
3．操作：3.1．将原料转入配液罐（原液取样检多肽含量），按计算量称取核糖，用少量注射用水溶解后，加入配液罐，加注射用水至配制总量，搅拌混匀10分钟。
用酸度计测定pH值，用2%氢氧化钠或2%盐酸调节至pH6.3-7.2（根据以前生产经验，不用调pH，均在合格范围内）,搅拌20分钟。
脑组织原液制作岗位操作法
脑组织原液制作岗位操作法目的：建立脑组织原液制作岗位操作法，以达到操作的规范化、标准化，保证脑组织原液生产质量。
2. 范围：适用于脑组织的制备、过滤、超滤的操作。
3.职责：制作岗位的工序班长、操作人员对本标准的实施负责，车间主任、QA检查员负责监督。
4. 程序：4.1. 生产操作前准备工作：4.1.1. 原液制备前的准备与检查：4.1.1.1. 操作人员按进出一般生产区更衣规程（SOP SC 0009）进行更衣。
4.1.1.2. 将所需用的容器、工具按一般生产区容器、工具清洁规程(SOPSC0017)进行清洁。
4.1.1.3. 所用设备按相应的清洁程序进行清洁。
4.1.1.4. 工作间按一般生产区清洁规程（SOP SC0001）进行清洁。
4.1.1.5. 检查所需用的天平、台称的灵敏度、准确度。
4.1.1.6. 按“批生产指令”向仓库领取所需原辅料。
4.1.1.7.按物料进入一般生产区清洁规程（SOP SC0015）去掉猪脑的外包装编织袋，均匀摊放于洁净方盘内室温融化。
4.1.2. 原液除菌过滤前准备与检查：4.1.2.1. 操作人员按进出万级洁净区更衣规程（SOP SC 0012）进行更衣及手部消毒。
4.1.2.2. 平板过滤系统按平板过滤系统操作规程（SOP SC0036）4.1~4.3进行操作。
4.1.2.3. 将所用容器、器具按万级洁净区容器、器具清洁消毒规程（SOP SC0020）进行清洁、灭菌。
4.1.2.4. 除菌过滤室按万级洁净区清洁消毒规程（SOP SC 0004）进行清洁、消毒。
4.1.3. 超滤前准备：4.1.3.1.操作人员进出万级洁净区更衣规程（SOP SC0012）进行更衣及手部消毒。
4.1.3.2.所用容器具按万级洁净区容器、器具清洁消毒规程（SOP SC0020）进行清洁消毒。
4.1.3.3.超滤系统按超滤系统操作规程（SOP SC1036）之操作前准备程序进行操作。
注射剂配液岗位操作法
注射剂配液岗位操作法一、注射剂配液岗位操作法的重要性嘿呀，咱先来说说这个注射剂配液岗位操作法为啥这么重要呢。
这就好比盖房子打地基一样，配液要是搞不好，那后面整个注射剂的质量就没法保证啦。
它可是关系到药品能不能安全有效地被使用呢。
二、操作前的准备1. 人员方面咱操作人员得先把自己收拾得干干净净的，穿好工作服，戴好帽子、口罩啥的。
可不能头发丝儿、小毛毛啥的掉进配液里呀，那可就糟透了。
而且操作人员得经过专业的培训，对这个配液流程得门儿清才行。
2. 环境准备配液的环境必须是清洁、卫生的。
这个地方得定期打扫、消毒，像那些灰尘啊、细菌啊都不能让它们在这儿待着。
而且温度和湿度也得控制在合适的范围里，不然可能会影响配液的效果。
3. 设备与物料准备设备要提前检查好，看看有没有损坏的地方，能不能正常运行。
物料呢，各种原料、辅料、溶剂啥的都得核对清楚，质量要合格，数量也不能错。
就像你做饭，食材要是不对，那做出来的饭肯定不好吃，这配液也是一样的道理。
三、配液的具体操作1. 称量按照配方，要精确地称取各种原料、辅料。
这可不能马虎，多一点少一点都可能影响最终注射剂的效果。
就像做蛋糕，面粉放多了或者少了，蛋糕的口感就不一样啦。
2. 溶解把称好的物料放到合适的容器里，然后加入溶剂进行溶解。
溶解的时候要注意搅拌的速度和方式，要让物料充分地溶解，不能有结块或者没溶解的部分留在里面。
3. 调节pH值有的注射剂对pH值有要求，这时候就得用专门的试剂来调节pH值啦。
要慢慢地加试剂，边加边测，直到达到规定的pH值范围。
这就像给衣服染色，颜色的深浅得刚刚好才行。
4. 过滤配好的溶液要进行过滤，把里面的杂质、不溶性颗粒啥的都过滤掉。
过滤的设备要选合适的，过滤的过程中也要注意观察，确保过滤的效果。
四、操作后的清理与检查1. 设备清理配液完成后，设备得赶紧清理干净。
残留的物料要是留在设备里，下次配液的时候可能会影响质量，而且还可能滋生细菌呢。
2. 溶液检查配好的溶液要进行一些检查，比如含量测定、澄明度检查啥的。
脑组织采集操作流程
脑组织采集操作流程概述本文档旨在提供脑组织采集的操作流程，确保实验的顺利进行。
准备工作1. 确保实验室环境整洁、无菌。
2. 准备好以下工具和材料：- 手套- 外科刀具- 确保脑组织完整的冰冻- 乙醚或异氟醚的麻醉药物操作步骤1. 麻醉动物：- 将动物置于适当的麻醉设备中。
- 使用乙醚或异氟醚等麻醉药物使动物失去知觉。
2. 杀死动物：- 确保动物已经完全麻醉。
- 使用合适的方式将动物安全地杀死。
3. 切割头皮：- 用外科刀具将动物的头部皮肤切开，暴露出颅骨。
4. 打开颅骨：- 使用外科刀具小心地在颅骨上切开一个小孔。
- 用鹦鹉嘴钳将颅骨完全开放，暴露出脑组织。
5. 采集脑组织：- 使用手套小心地将脑组织取出，并放入冰冻中。
- 确保脑组织完整，并尽量避免污染。
6. 处理采集的脑组织：- 将采集的脑组织储存到合适的中，确保冷冻保存。
- 根据后续实验的需求，可以进行进一步处理，如切片等。
清理工作1. 将使用过的刀具和其他工具进行高温高压灭菌处理。
2. 清理实验室环境，保持整洁和无菌。
注意事项：- 在进行脑组织采集实验前，需要得到合适的伦理审批，并遵守相关的法律法规。
- 操作过程中要保证自身和他人的安全，注意使用麻醉药物时的剂量和注意事项。
- 在进行切割和操作时，要小心谨慎，避免对动物和人员造成伤害。
- 采集和处理脑组织时要保持无菌条件，避免可能的污染。
以上为脑组织采集的操作流程，希望能对您有所帮助。
制液岗位安全操作规程
制液岗位安全操作规程1、严格遵守安全规程，工艺操作规程及各项规章制度，严禁违章作业和违章指挥。
2、上岗操作人员，严格执行国家有关安全生产的法律法规、法规和各项管理制度，履行安全生产的责任和义务。
3、操作人员必须经过技术培训和安全技术教育，达到“三懂四会”即懂生产原理，懂工艺流程，懂设备结构，会操作，会保养，会排除故障，会处理事故，正确使用防护器材和消防器材，并通过操作技术和安全技术考试，取得安全操作证书，方能独立上岗操作。
4、遵守劳动纪律，坚守岗位，认真执行岗位责任制，按时按点，按项目巡回检查，及时报告异常或事故，果断处理，认真记录，交接清楚。
5、作业人员在工作时间内不得离岗、串岗、睡岗，集中精力操作，防止发生各类事故。
6、安全技术规定①、皮带机、电动犁式卸料器、搅拌机和混合剂的操作应由搅拌操作员进行，其他任何人不准动用。
+②、启动前，操作员检查电动犁卸粮器、皮带运输机、搅拌机运行部位进行认真检查，确认安全无误，无障碍物后，方可启动。
③、开启粘结剂阀门时，动作要缓慢，蒸汽加温时，要关小蒸汽阀门，防止粘结剂大量涌出伤人。
1 E ④、电动犁式卸料器、皮带机、搅拌机在运行过程中出现严重超温、超流或者电器及机械，发出异常响声，必级立即停车检查处理。
⑤、任何人不得在运输带上驾驶，操作，检修、坐、卧或者休息，机械设备未停或未停稳禁止清堵，不得在运转设备上放工具物料。
⑥、校正皮带跑偏，清理皮带机辊筒，以及维修粉碎机、皮带机、搅拌机等运转设备时，必须先停车后处理，粉碎机、电动犁式卸料器、搅拌机运行时禁止用手、木棍、铁板(棒)、竹片、铁铲及其他物件铲、刮、清堵或用扫帚清扫。
⑦、电动犁式卸料器、皮带机、搅拌机在运行中，禁止进行检修、检修前应停机办理“检修许可证”落实好安全措施，切断电机电源，并在操作箱前挂“禁止启动”警示牌。
制液罐清罐或检修，必须办理入塔罐许可证，蒸汽阀断开或上盲板，联系电工给搅拌机断电，在起动箱上挂上禁止起动的警告标志，落实好监护人，方可开始作业。
实验室组织培养脑组织的方法
实验室组织培养脑组织的方法作为神经科学研究中的重要手段，体外培养神经组织已被广泛应用于神经学和神经科学研究中。
它主要使用的实验材料是离体或胎儿大脑组织，以产生神经细胞和胶质细胞等成分。
通过这些技术，可以更好地了解神经发育和组织工程等领域。
1. 将脑组织置于血清浸泡液中这是体外培养神经组织的最简单方法之一。
它可以在不使用水及其他基质的情况下，在细胞培养模式下有效地生长。
该方法涉及到取下组织样本并置于含有少量培养基和血清的培养皿中。
作为生长的刺激，血清提供了几种与神经细胞成长相关的因子或生长因子。
随着时间的推移，细胞数量增加，它们在培养皿中形成聚集，类似于细胞夹层，通常称为神经节。
这种方法能够激活神经细胞的重要活性状况，例如电生理学的不同特征和发放行为，同时也对发现不同神经类型及其从属的功能因子有所帮助。
2. 球面积培养球面积培养的主要优点是它能够形成三维神经组织，从而更好地模拟体内的情况。
在这个技术中，离体的或胎儿脑组织被置于一个球形细胞夹层中，其中细胞和胶质细胞被沉积到“球”内。
在这种方法中，细胞从外部环境中孤立出来，同时可以随着时间的推移形成更为相似的细胞聚集。
球面积培养已被用于研究多种神经疾病，包括神经元凋亡、神经胶质瘤等，同时也为组织工程领域提供了一个十分重要的研究系统。
3. 迁移性体外培养迁移性体外培养技术被广泛应用于研究神经元多样性、神经生长、突触形成和再生等领域。
该技术使用反向培养措施，将神经组织压缩到基质层和细胞夹层中，并让它们逐渐扩散成完整的神经组织。
使用这种技术，三个化学介质——肝细胞生长因子、神经细胞因子和拓扑结构——一起协作，以产生正常的神经组织，提高神经元重构的质量和有效性。
对这种技术的许多改进版，如微细制造和去除成分等，已被用于改进神经元凋亡的数量和质量。
通过上述方法，细胞和神经物质可以在细胞培养中有效生长，这是一个大有用处的研究领域。
这些技术的进一步发展将显著地增加我们对神经发育和功能的理解，同时也将激发进一步的脑神经学和神经科学研究。
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脑组织原液制作岗位操作法目的：建立脑组织原液制作岗位操作法，以达到操作的规范化、标准化，保证脑组织原液生产质量。
2. 范围：适用于脑组织的制备、过滤、超滤的操作。
3.职责：制作岗位的工序班长、操作人员对本标准的实施负责，车间主任、QA检查员负责监督。
4. 程序：4.1. 生产操作前准备工作：4.1.1. 原液制备前的准备与检查：4.1.1.1. 操作人员按进出一般生产区更衣规程（SOP SC 0009）进行更衣。
4.1.1.2. 将所需用的容器、工具按一般生产区容器、工具清洁规程(SOPSC0017)进行清洁。
4.1.1.3. 所用设备按相应的清洁程序进行清洁。
4.1.1.4. 工作间按一般生产区清洁规程（SOP SC0001）进行清洁。
4.1.1.5. 检查所需用的天平、台称的灵敏度、准确度。
4.1.1.6. 按“批生产指令”向仓库领取所需原辅料。
4.1.1.7.按物料进入一般生产区清洁规程（SOP SC0015）去掉猪脑的外包装编织袋，均匀摊放于洁净方盘内室温融化。
4.1.2. 原液除菌过滤前准备与检查：4.1.2.1. 操作人员按进出万级洁净区更衣规程（SOP SC 0012）进行更衣及手部消毒。
4.1.2.2. 平板过滤系统按平板过滤系统操作规程（SOP SC0036）4.1~4.3进行操作。
4.1.2.3. 将所用容器、器具按万级洁净区容器、器具清洁消毒规程（SOP SC0020）进行清洁、灭菌。
4.1.2.4. 除菌过滤室按万级洁净区清洁消毒规程（SOP SC 0004）进行清洁、消毒。
4.1.3. 超滤前准备：4.1.3.1.操作人员进出万级洁净区更衣规程（SOP SC0012）进行更衣及手部消毒。
4.1.3.2.所用容器具按万级洁净区容器、器具清洁消毒规程（SOP SC0020）进行清洁消毒。
4.1.3.3.超滤系统按超滤系统操作规程（SOP SC1036）之操作前准备程序进行操作。
4.1.3.4.超滤室按超滤室清洁消毒规程（SOP SC1020）进行清洁消毒。
4.2. 生产过程：4.2.1. 原液的制备过程：4.2.1.1. 去杂骨、异物：待猪脑融化后，去掉外包装，按猪脑的质量标准，用手摘挑，去除猪脑内的碎骨和异物。
4.2.1.2. 称量：精确称量出原料的投料量、不合格原料量及废料量，并使投料量+不合格原料量+废料量=领取量，并由组长复核原料的数量和新鲜度。
4.2.1.3. 配试剂：4.2.1.3.1. 2mol/L NaOH溶液：精确称量NaOH 80g，置于量筒内，加入注射用水溶解后加至1000ml摇匀。
4.2.1.3.2. 2mol/L HCl溶液：用量筒精确量取HCl 180ml，加入注射用水至1000ml摇匀。
4.2.1.3.3.0.9%NaCl溶液：精确称量90g NaCl，加入注射用水溶解后加至10000ml摇匀。
4.2.1.3.4.胰酶：按10kg猪脑原料加入75g的胰酶为比例，按投料量计算胰酶需要量，并精确称量后加入适量注射用水中，搅拌均匀使其溶解。
4.2.1.3.5.氯仿（三氯甲烷）：按10kg猪脑原料应加入氯仿150ml为比例，按投料量计算氯仿的需要量，并用量筒精确量取。
4.2.1.3.6.苯酚：按1万药液应加入50ml苯酚为比例，按实际提取药液量，计算苯酚需要量，并用量筒精确量取。
4.2.1.4. 制匀浆：将猪脑与0.9% NaCl溶液按（1:2）比例混合，置于装料斗内，按胶体磨操作规程（SOP SC1028）将其研磨2遍，制成匀浆，并用洁净物料桶盛装。
4.2.1.5. 灌瓶：在匀浆内加入规定量的胰酶、氯仿并加入适量的2mol/L NaOH溶液，搅拌均匀，调pH值为8.0，灌入洁净的光口印度瓶内9000ml~10000ml，用黄纸包裹瓶口，用线绳系好。
4.2.1.6. 酶化：蒸汽水浴锅内放入饮用水，将匀浆瓶放入水中，按蒸汽水浴锅操作规程（SOP SC1032）进行操作将匀浆温度控制在37℃～40℃，恒温5小时。
4.2.1.7. 热变：将适量的2mol/L HCl溶液加入匀浆内，摇晃均匀调瓶内匀浆pH值为3.5。
按蒸汽水浴锅操作规程（SOP SC1032）进行操作，将匀浆温度控制在95~100℃，恒温1小时。
4.2.1.8. 粗滤及真空抽滤：固定好抽滤瓶及布氏漏斗，在漏斗内平铺ф300mm七层滤纸，打开真空阀门，用少量蒸馏水倒入漏斗内，用滤纸将布氏漏斗周边封严，然后用16层纱布过滤药液中残渣，上清液流入漏斗内，进行真空抽滤，抽滤结束后，将所得药液倒入洁净物料桶内。
4.2.1.9. 脱色、去热源：将药液倾倒于蒸汽加热配料夹层锅内，加入规定量的苯酚，并加入适量2mol/L NaOH溶液搅拌均匀后，调pH值为9.0，然后加入0.2%的活性碳搅拌均匀。
按蒸汽加热配料夹层锅操作规程（SOP SC1034）进行操作，将药液加热95~100℃、恒温30分钟后，过夜静置存放15小时。
脱碳：将板框过滤器的入药管口与蒸汽夹层锅的出料口连接；出药口用洁净盛物料桶盛接。
按多层板框过滤器操作规程（SOP SC0034）进行脱碳。
4.2.1.11. 脱碳后的原液内加入适量2mol/L HCl，搅拌均匀,调pH值为7.0。
4.2.1.12. 在瓶表面明显处做状态标示，并按物料进出洁净区清洁消毒规程（SOPSC 0016）将瓶壁表面清洁消毒，传入除菌过滤室。
4.2.2. 原液除菌过滤过程：4.2.2.1. 核对原液的pH值，用pH试纸测试应为7。
4.2.2.2.将平板过滤系统（内有0.45µm微孔滤膜）的入药管插入待过滤的脑组织原液内；出药口用经干热灭菌的光口印度瓶盛接。
4.2.2.3. 按平板过滤系统操作规程（SOP SC0036）进行除菌过滤操作（工作压力一般控制在1~1.5kg/cm2）。
4.2.2.4. 待脑组织原液除菌过滤完毕后，用灭菌胶塞封闭原液瓶瓶口，并在瓶表面明显处做状态标示。
4.2.2.5. 按物料进出洁净区清洁消毒规程（SOP SC0016）用消毒液对瓶壁表面清洁消毒后，由传递窗送入超滤室。
4.2.3. 超滤过程：4.2.3.1. 将灭菌的引流管、回流管放入原液瓶内，封闭瓶口；将滤液管放入光口印度瓶内，密封瓶口。
4.2.3.2. 按超滤系统操作规程（SOP SC1036）进行超滤操作。
4.2.3.2.1. 打开电源开关，调节泵速，将进液压力一般控制在1.5~2 kg/cm2，回流压力一般控制在0.5~1 kg/cm2。
4.2.3.2.2. 超滤完毕取样送QC处待测含量及热原。
4.2.3.3. 将超滤后的脑组织原液瓶盖灭菌胶塞，并用硫酸纸包裹瓶口、用胶布封严，在瓶表面贴上状态标示，标明：品名、批号、数量、生产日期、制作岗位等。
送至4℃低温冷库内指定地点存放。
4.3. 操作结束后清场：4.3.1.原液制备后的清场：4.3.1.1. 使用后的容器、器具按一般生产区容器、器具清洁消毒规程(SOP SC 0017)进行清洁。
4.3.1.2. 使用后的胶体磨按胶体磨清洁规程(SOP SC 1029)进行清洁。
4.3.1.3. 使用后的蒸汽水浴锅按蒸汽水浴锅清洁规程(SOP SC1033)进行清洁。
4.3.1.4. 使用后的蒸汽加热配料夹层锅按蒸汽加热配料夹层锅清洁规程(SOP SC 1035)进行清洁。
4.3.1.5. 工作区内按一般生产区清洁规程(SOP SC0001)进行清洁。
4.3.1.6.将废物收集入废物贮器按生产中废弃物处理规程（SMP SC 0037）进行处理，并对废物贮器进行清洁。
4.3.2. 过滤、超滤后的清场：4.3.2.1. 将操作台上的废物收集入废物贮器内。
4.3.2.2. 使用后的容器、器具按万级洁净区容器、器具清洁消毒规程（SOP SC0020）进行清洁、灭菌。
4.3.2.3. 使用后的蠕动泵应按万级洁净区设备清洁消毒规程（SOP SC0008）进行清洁消毒。
4.3.2.4. 使用后的平板过滤器按平板过滤器清洁消毒规程（SOP SC0037）进行清洁、灭菌。
4.3.2.5. 使用后的超滤器按超滤器清洁消毒程（SOP SC 1037）进行清洁、消毒。
4.3.2.6. 过滤室应按十万级洁净区清洁消毒规程（SOP SC 0004）进行清洁、消毒。
4.3.2.7. 超滤室按超滤室清洁消毒规程（SOP SC 1020）进行清洁消毒。
4.3.2.8. 将废物贮器密封后，传出洁净区按生产废弃物处理规程(SMP SC0037)进行处理，并将废物贮器进行清洁消毒。
4.3.3. 清场结束后，填写清场记录，并由QA检查员检查清场情况，确认合格后，签字并贴挂“己清洁”状态标示及“清场合格证”。
4.3.4. 清洁工具应按清洁工具清洁规程（SOP SC0023）进行清洁消毒，并分区存放。
4.4. 质量标准：4.4.1.原料[性状]：新鲜的猪脑为粉红色，颜色均匀，表面光滑、柔软洁净、无异味、无异物污染。
4.4.2.原液[性状]：成淡黄色或无色的澄明液体。
[含量]：含总氮（N）≥2.0mg/ml[热原]：符合标准[蛋白质]：溶液应澄清，不得有沉淀析出。
[鉴别]：应显紫红色。
[pH值]：7.04.5. 质量标准控制及复核：4.5.1. 用天平、台称、称量原辅料时应有第二人独立复核。
4.5.2. 投料及计算应有第二人独立复核；4.5.3. 酶化时pH值为8.0度为37℃～40℃；恒温时间为5小时。
温pH值、温度、时间的控制应有第二人独立复核测试。
4.5.4. 热变时pH值为3.5；温度为95℃～100℃；恒温时间为1小时，pH值、温度、时间的控制应有第二人复核测试。
4.5.5. 脱色时pH值为9.0，温度为95℃~100℃，时间为30分钟，pH值及温度、时间，应有第二人复核测试及监控。
4.5.6. 脱碳后pH值调整为7，并应有第二人复核测试。
4.6. 注意事项：4.6.1. 某一操作完成后应马上记录数据，并由操作人、复核人签名。
4.6.2. 处理酸、碱、氯仿、笨酚等腐蚀性物品时，应带橡胶手套等防护用具。
4.6.3.在洁净区操作时，不得裸手直接接触药品，当不可避免时，手部每隔15—20分钟用75%乙醇消毒。
4.6.4.洁净区的双侧门及传递窗的二门，不能同时打开。
4.6.5.洁净区内的各种操作活动要稳、准、轻。
4.6.6.操作平板过滤器、超滤器时，应待压力表回零1—2分钟后开启。
4.6.7.洁净室的温度一般控制在18~26℃，相对湿度一般控制在45~65%范围内。
4.7. 异常情况处理：所用的设备不能正常运转，影响正常生产或影响产品质量时，应填写《偏差及异常情况报告》说明发生的原因、过程，交车间主任并通知QA检查员，并请维修人员进行修理。