(推荐医学)CD34绝对计数
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33
免疫荧光染色
可采用商品化CD34+细胞计 数试剂盒或实验室自己组合的单 抗。
34
免疫荧光染色
自己组合的抗体中,每一种抗体都 需分别滴定,以明确其噪音与阳性信号 的最佳分离滴度，并检测作为组合抗体 使用和作为组合抗体成分之一单独使用 的平均荧光强度和阳性率，其可比性需 要在均值±2标准差之内。
18
标本质量（错误标本）
如果标本没有标签或标签与病 人信息不符，应拒绝接收标本，并 及时与相关医护人员沟通
19
标本质量（标本保存时间及条件）
可接受的标本最长保存时间取决于 抗凝剂的种类、溶血剂、储存条件及 细胞浓度。实验室应该根据使用的抗 凝剂和溶血剂确定可接受的标本最长 保存时间。
20
标本质量（标本保存时间及条件）
早期通过有核细胞计数、集落形成单位 来计算移植物中造血干/祖细胞数量，但前 者与造血干细胞数量一致性差，后者实验 变异性大、耗时长，其临床使用价值低。
3
概论
20世纪80年代，发现CD34分子在造 血干/祖细胞上表达，为临床 HSCT提供 了可评价造血干/祖细胞植入最低阈值 的强有力的依据。
4
概论
近年来尽管体外研究表明，人类CD34脐血干细胞也有造血活性，但大量的临床 研究证实用富含CD34+细胞移植可安全、 持久地重建多系造血。因此，目前临床及 实验室仍然是应用CD34+细胞进行造血干 细胞移植、基因转染等。
5
概论
而流式细胞仪具有CD34+细胞计数准 确、方便、快捷等优势，已广泛地应 用于造血干/祖细胞数量的检测及采集 时机的确定。
57
R1 R5
R1
R3 R2
河南省人民医院血研所
58
双平台ISHAGE设门
标记
定义
G1
R1
G2
R1 and R2
G3
R1 and R2 and R3
CD34+细胞 R1 and R2 and R3 and R4
淋巴细胞 R5
59
双平台ISHAGE设门
(1)CD45/SS R1包括所有CD45+及 dimCD45。R5为淋巴细胞
(2)CD34/SS。显示R1门内细胞。R2 包括所有CD34+细胞，从低SS到 中等SS强度。
60
双平台ISHAGE设门
(3)CD45/SS。显示R1+R2门内细胞。 R3确认CD34+细胞位于低CD45与 低SS区域，为真正CD34+细胞。
61
双平台ISHAGE设门
(4)FS/SS，取R1+R2+R3门内细胞。 R4选取SS大于淋巴细胞下限的 细胞，用于去除细胞碎片、聚 集血小板的影响。
6
造血干细胞的数量是造血干细胞移植 成功的关键因素
成功的关键
造血干细胞移植
造血干细胞的数量
恶性血液病
某些实体瘤
免疫性疾病 免疫缺陷病
心肌 血管 胰岛细胞
7
造血干细胞的检测方法
如何准确地计数造血干细胞的数量，什 么是有效的质量控制成了各大实验室探讨 的焦点。 常用的方法： 集落培养法 流式细胞术CD34+细胞计数法
13
抗凝剂的选择
1、外周血标本常选用EDTA盐抗凝， 2、采集物常用枸橼酸钠凝， 3、骨髓和脐血标本可选用EDTA、 肝素或ACD 抗凝。
14
标本质量
标本处理的步骤越多，细胞丢失就越 多。对于全血标本，溶血后不洗涤，可 以使标本处理的步骤减到最少，细胞丢 失少。
15
标本质量 （标本目测）
标本常见问题有两种类型： 1 、变性或损坏的标本，需立即弃之； 2、标本在处理过程中出现错误操作，则 需进一步评价。错误操作问题需要记录下 来，这对标本的处理、分析以及结果地解 释将很有帮助。
62
双平台ISHAGE设门
(5)CD45/CD34。显示R1门内细胞，设 定CD45和CD34阳性十字界线，确定 R1的左边界CD45下限。
(6)FS/SS。显示R5门内细胞，用于确 定R4的FS下限。
63
单平台ISHAGE设门法
商业化的CD34+细胞绝对计数 试剂盒,其CD34+细胞绝对数由专 门软件直接计算生成，操作依据 是试剂操作说明书。实验室自己 配制的抗体组合需要加入商业化 荧光微球。
54
设门方法
55
双平台ISHAGE设门
白细胞计数需要与CD34+细胞 计数使用同一标本检测，并在6h内 完成。当白细胞计数不能准确获得 时，不能用双平台方法，只能用单 平台方法。
56
基本的ISHAGE：双平台法
▲试剂：CD45-FITC,CD34PE
▲全血，直接荧光标记， 溶血、洗涤、双平台
▲设门CD45/SSC,CD34/SSC, FSC/SSC，CD45/CD34
35
抗体及荧光微球的选择
CD34抗体：选择PE直标的抗Ⅲ类抗体； CD45抗体：选择广谱的抗CD45抗体； CD34抗体同型对照：采用与CD34匹配的同一 厂家生产的同型对照； 定量荧光微球：推荐使用绝对计数的商品化 荧光微球。
36
抗体组合方案 含7-氨基放线菌素D（AAD）的三色方案： 抗体组合为CD45，CD34，7-AAD； 不含7-AAD的双色方案：抗体组合为CD45， CD34。
45
对照标本
阳性对照的种类：主要有全血标本，冻干 淋巴细胞； 使用频率：更换试剂时
46
流式细胞仪的质控
包括光学系统的调整、荧光分辨率的调 整、荧光补偿的调整、性能评估及比例、 仪器保养及记录等。仪器的调整很多方 面要遵从制造商的建议。
47
数据的获取和分析
48
细胞的获取
设定阈值和分辨率：根据仪器操 作说明书和试剂盒使用说明书进 行设定。 调整细胞群分布：在CD45/SSC散 点图中，调整SSC，使所有的白细 胞群均可见。
外部运送标本，包装要求含有三 层体系：防水内容器；防水并含有吸 附材料的第二层内容器；坚固的外包 装。致病原血液标本应严格按照有关 规定运送。
23
CD34+细胞绝对计数方法
24
CD34+细胞绝对计数方法
CD34+细胞绝对计数分为单平台方 法和双平台方法。单平台方法是首选 方法，它避免了室间变异和多台仪器 间的系统误差。
流式细胞术 CD34+细胞计数
1
概论
造血干细胞移植（HSCT）是治疗血 液系统疾病、自身免疫性疾病、某些 实体瘤和基因缺陷等疾病的重要手段 之一。在造血干细胞移植过程中采集 足够数量的造血干细胞是造血干细胞 移植成功的关键。
2
概论
但至今为止，尚无一个与体内重建造血 全吻合的造血干细胞体外检测法。30 Nhomakorabea离心
为避免荧光微球的丢失，单平台计数 在裂解红细胞后不用离心洗涤。
31
双平台方法
双平台：分别用FCM检测出CD34+细胞在 有核细胞中的比例，用血液细胞计数仪检 测出有核细胞浓度，在光镜下进行白细胞 分类，然后再计算出采集物中CD34+细胞 总数。
32
双平台方法
白细胞浓度与抗体用量同单平台方法， 不需要采用已知数量的荧光微球管或加 入荧光微球悬液。裂解红细胞的时间和 方法按照所用溶血素说明书进行，裂解 红细胞后进行离心洗涤2次。
8
集落培养法： 优点：干细胞计数结果与移植结果相吻合 缺点：很难标准化，只代表晚期干/祖细
胞，培养时间长，不能当即判断采 集物的造血干细胞数量。
9
流式细胞术CD34+细胞计数法： 优点：干细胞计数结果与移植结果相吻合
快速，简单，方便。 目前已取代了集落培养法
10
标本标识
造血干细胞采集完成后立即抽样， 抽样前要将采集袋中的细胞与小辫中 的采集物混合5次以上，再封闭小辫， 剪取小辫中的采集物，在小辫上标记 供者编号、姓名及标本名称，送实验 室检测。
64
65
单平台ISHAGE设门
同双平台相比，单平台多 设了R6（荧光微球）、R7（细 胞碎片）及R8（活的CD34+细 胞）。
66
单平台ISHAGE设门法
需手动设门，对操作者要求高； 无需同型对照，亦不受抗体浓度及 荧光素与蛋白比率的限制，经济廉 价，抗体的选择范围也宽；7-AAD 活细胞染料，可计数活细胞，需逻 辑手动设门。
43
对照标本
对照通常采用同型对照和阳性对照标本 同型对照：采用ISHAGE设门方法时可不 需同型对照，多重逻辑设门后可去除非 特异性抗体结合；
44
对照标本
阳性对照：检测新批号和当前批号试剂 的染色效率是否有问题时需要做阳性对 照，或怀疑试剂出现问题时，采用该试 剂与已知可接受性能批号的试剂同时操 作进行验证。
16
标本质量 （溶血、凝血）
1、严重溶血的标本应该放弃检测。所 有可能破坏标本完整性的异常情况均应 密切观察，并记录下来。 2、即使很小的凝块也会引起血液中某 些成分的选择性丢失或改变，凝血的标 本应尽可能弃用。
17
标本质量（温度极限）
经过长距离或长时间运送的标本， 应确认标本是否过热或过冷，即使其 他所有的鉴定标准都正常，也应该记 录下来以利于后续的处理、分析和结 果解释。
11
标本标识
所有检测标本应及时贴上标签，注明 患者姓名，标本类型，采集时间，申请 单和标本粘贴在一起送检，申请单要详 细填写患者的信息、标本类型及检测项 目，进行双平台检测时还需提供白细胞 计数和分类。
12
抗凝剂的选择
不同的抗凝剂抗凝、标本的稳定性不同。 EDTA抗凝的标本，常温下可保存12-24h， 肝素钠或枸橼酸钠抗凝的标本可保存48h。 如果标本需用血细胞分析仪同时进行白细 胞计数和分类，则应选择EDTA抗凝。
37
免疫荧光染色 按照试剂说明书和注意事项进行 操作，一般流程如下：
38
标本与抗体孵育
取含1×106白细胞的全血或稀释 的标本50μL-200μL加入适量直标抗 体10μL-20μL，室温孵育20min30min。
39
裂解红细胞
裂解时间和方法按照所用溶血素说 明书进行操作。采用含7-AAD方案时应 选择不含固定剂的溶血素，如氯化铵Tris缓冲液。
51
CD34+细胞计数
52
双参数荧光散点图的设置
双平台双色CD34+细胞计数设置： CD45/SSC、CD34/SSC、 CD45/SSC、 FSC/SSC、CD45/CD34、FSC/SSC 6个散点图。
53
双参数荧光散点图的设置
单平台三色CD34+细胞计数设置： CD45/SSC、CD34/SSC、 CD45/SSC、 FSC/SSC，CD45/CD34、FSC/SSC、 7-AAD/SSC、7-AAD/SSC 8个散点图。
25
单平台计数
单平台：在抗体染色的细胞中,等容量 加入确定浓度的荧光微球，直接用FCM 检测出采集物中的CD34+浓度，然后计 算出采集物中的CD34+细胞总数
26
白细胞浓度和抗体用量
通过计数板计数或使用血细胞分析 仪预先计算标本中的白细胞浓度，并 严格按照操作说明书调整标本和抗体 的最佳比例。
27
白细胞浓度和抗体用量 白细胞过少的标本应减少单抗用量；
白细胞过多的标本应使用含1%白蛋白 或其他蛋白的PBS稀释到适当浓度。
28
移液量
标本和荧光微球的移液量应精确， 确保准确计数加入的定量微球的浓度 和标本体积，推荐采用反向抽吸法加 样。
29
裂解红细胞
裂解时间和方法按照所用溶血素说 明书进行操作。采用含7-AAD方案时应 选择不含固定剂的溶血素，如氯化铵Tris缓冲液。
67
结果报告和审核
68
报告内容
双平台ISHAGE法报告CD34+ 细胞百分比及绝对值； 单平台ISHAGE法报告CD45+ 细胞绝对值、CD34+细胞百分比 及绝对值、活CD45+细胞和 CD34+细胞绝对数。
40
离心
离心洗涤方法与溶血素有关，按照 所用溶血素说明书进行操作。单平台绝 对值计数法在裂解红细胞后，不要离心 洗涤
41
绝对计数的商品化荧光微球
采用包被有已知数量的荧光微球 或按说明书加入一定数量的荧光微 球。
42
染色后标本保存
制备好的标本在上机分析前放在410℃下避光保存，应在1h内上机检测， 检测前混匀细胞。
49
根据CD45划定白细胞区域
作CD45/SSC散点图定位白细胞群，排 除标本中细胞碎片等对计数的干扰； CD45从强阳性到弱阳性，包括淋巴细胞、 单核细胞、粒细胞、原始细胞、嗜碱性 粒细胞和有核红细胞。
50
采集细胞数
在非设门荧光散点图中，至少 收集50000个白细胞及100个CD34+细 胞。
原则上标本采集后应立即检测，但 是实际操作中往往无法做到。不能立即 检测的标本应该保存于2-6℃冰箱中。标 本的处理和免疫染色应严格按照试剂说 明书进行。
21
标本运送
采集标本应该在2-6℃环境下尽快 送检，注意避免标本冻结和过热。
内部送检可用具有防漏密封的塑 料袋和带盖的塑料容器等运送标本。
22
标本运送
免疫荧光染色
可采用商品化CD34+细胞计 数试剂盒或实验室自己组合的单 抗。
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免疫荧光染色
自己组合的抗体中,每一种抗体都 需分别滴定,以明确其噪音与阳性信号 的最佳分离滴度，并检测作为组合抗体 使用和作为组合抗体成分之一单独使用 的平均荧光强度和阳性率，其可比性需 要在均值±2标准差之内。
18
标本质量（错误标本）
如果标本没有标签或标签与病 人信息不符，应拒绝接收标本，并 及时与相关医护人员沟通
19
标本质量（标本保存时间及条件）
可接受的标本最长保存时间取决于 抗凝剂的种类、溶血剂、储存条件及 细胞浓度。实验室应该根据使用的抗 凝剂和溶血剂确定可接受的标本最长 保存时间。
20
标本质量（标本保存时间及条件）
早期通过有核细胞计数、集落形成单位 来计算移植物中造血干/祖细胞数量，但前 者与造血干细胞数量一致性差，后者实验 变异性大、耗时长，其临床使用价值低。
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概论
20世纪80年代，发现CD34分子在造 血干/祖细胞上表达，为临床 HSCT提供 了可评价造血干/祖细胞植入最低阈值 的强有力的依据。
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概论
近年来尽管体外研究表明，人类CD34脐血干细胞也有造血活性，但大量的临床 研究证实用富含CD34+细胞移植可安全、 持久地重建多系造血。因此，目前临床及 实验室仍然是应用CD34+细胞进行造血干 细胞移植、基因转染等。
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概论
而流式细胞仪具有CD34+细胞计数准 确、方便、快捷等优势，已广泛地应 用于造血干/祖细胞数量的检测及采集 时机的确定。
57
R1 R5
R1
R3 R2
河南省人民医院血研所
58
双平台ISHAGE设门
标记
定义
G1
R1
G2
R1 and R2
G3
R1 and R2 and R3
CD34+细胞 R1 and R2 and R3 and R4
淋巴细胞 R5
59
双平台ISHAGE设门
(1)CD45/SS R1包括所有CD45+及 dimCD45。R5为淋巴细胞
(2)CD34/SS。显示R1门内细胞。R2 包括所有CD34+细胞，从低SS到 中等SS强度。
60
双平台ISHAGE设门
(3)CD45/SS。显示R1+R2门内细胞。 R3确认CD34+细胞位于低CD45与 低SS区域，为真正CD34+细胞。
61
双平台ISHAGE设门
(4)FS/SS，取R1+R2+R3门内细胞。 R4选取SS大于淋巴细胞下限的 细胞，用于去除细胞碎片、聚 集血小板的影响。
6
造血干细胞的数量是造血干细胞移植 成功的关键因素
成功的关键
造血干细胞移植
造血干细胞的数量
恶性血液病
某些实体瘤
免疫性疾病 免疫缺陷病
心肌 血管 胰岛细胞
7
造血干细胞的检测方法
如何准确地计数造血干细胞的数量，什 么是有效的质量控制成了各大实验室探讨 的焦点。 常用的方法： 集落培养法 流式细胞术CD34+细胞计数法
13
抗凝剂的选择
1、外周血标本常选用EDTA盐抗凝， 2、采集物常用枸橼酸钠凝， 3、骨髓和脐血标本可选用EDTA、 肝素或ACD 抗凝。
14
标本质量
标本处理的步骤越多，细胞丢失就越 多。对于全血标本，溶血后不洗涤，可 以使标本处理的步骤减到最少，细胞丢 失少。
15
标本质量 （标本目测）
标本常见问题有两种类型： 1 、变性或损坏的标本，需立即弃之； 2、标本在处理过程中出现错误操作，则 需进一步评价。错误操作问题需要记录下 来，这对标本的处理、分析以及结果地解 释将很有帮助。
62
双平台ISHAGE设门
(5)CD45/CD34。显示R1门内细胞，设 定CD45和CD34阳性十字界线，确定 R1的左边界CD45下限。
(6)FS/SS。显示R5门内细胞，用于确 定R4的FS下限。
63
单平台ISHAGE设门法
商业化的CD34+细胞绝对计数 试剂盒,其CD34+细胞绝对数由专 门软件直接计算生成，操作依据 是试剂操作说明书。实验室自己 配制的抗体组合需要加入商业化 荧光微球。
54
设门方法
55
双平台ISHAGE设门
白细胞计数需要与CD34+细胞 计数使用同一标本检测，并在6h内 完成。当白细胞计数不能准确获得 时，不能用双平台方法，只能用单 平台方法。
56
基本的ISHAGE：双平台法
▲试剂：CD45-FITC,CD34PE
▲全血，直接荧光标记， 溶血、洗涤、双平台
▲设门CD45/SSC,CD34/SSC, FSC/SSC，CD45/CD34
35
抗体及荧光微球的选择
CD34抗体：选择PE直标的抗Ⅲ类抗体； CD45抗体：选择广谱的抗CD45抗体； CD34抗体同型对照：采用与CD34匹配的同一 厂家生产的同型对照； 定量荧光微球：推荐使用绝对计数的商品化 荧光微球。
36
抗体组合方案 含7-氨基放线菌素D（AAD）的三色方案： 抗体组合为CD45，CD34，7-AAD； 不含7-AAD的双色方案：抗体组合为CD45， CD34。
45
对照标本
阳性对照的种类：主要有全血标本，冻干 淋巴细胞； 使用频率：更换试剂时
46
流式细胞仪的质控
包括光学系统的调整、荧光分辨率的调 整、荧光补偿的调整、性能评估及比例、 仪器保养及记录等。仪器的调整很多方 面要遵从制造商的建议。
47
数据的获取和分析
48
细胞的获取
设定阈值和分辨率：根据仪器操 作说明书和试剂盒使用说明书进 行设定。 调整细胞群分布：在CD45/SSC散 点图中，调整SSC，使所有的白细 胞群均可见。
外部运送标本，包装要求含有三 层体系：防水内容器；防水并含有吸 附材料的第二层内容器；坚固的外包 装。致病原血液标本应严格按照有关 规定运送。
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CD34+细胞绝对计数方法
24
CD34+细胞绝对计数方法
CD34+细胞绝对计数分为单平台方 法和双平台方法。单平台方法是首选 方法，它避免了室间变异和多台仪器 间的系统误差。
流式细胞术 CD34+细胞计数
1
概论
造血干细胞移植（HSCT）是治疗血 液系统疾病、自身免疫性疾病、某些 实体瘤和基因缺陷等疾病的重要手段 之一。在造血干细胞移植过程中采集 足够数量的造血干细胞是造血干细胞 移植成功的关键。
2
概论
但至今为止，尚无一个与体内重建造血 全吻合的造血干细胞体外检测法。30 Nhomakorabea离心
为避免荧光微球的丢失，单平台计数 在裂解红细胞后不用离心洗涤。
31
双平台方法
双平台：分别用FCM检测出CD34+细胞在 有核细胞中的比例，用血液细胞计数仪检 测出有核细胞浓度，在光镜下进行白细胞 分类，然后再计算出采集物中CD34+细胞 总数。
32
双平台方法
白细胞浓度与抗体用量同单平台方法， 不需要采用已知数量的荧光微球管或加 入荧光微球悬液。裂解红细胞的时间和 方法按照所用溶血素说明书进行，裂解 红细胞后进行离心洗涤2次。
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集落培养法： 优点：干细胞计数结果与移植结果相吻合 缺点：很难标准化，只代表晚期干/祖细
胞，培养时间长，不能当即判断采 集物的造血干细胞数量。
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流式细胞术CD34+细胞计数法： 优点：干细胞计数结果与移植结果相吻合
快速，简单，方便。 目前已取代了集落培养法
10
标本标识
造血干细胞采集完成后立即抽样， 抽样前要将采集袋中的细胞与小辫中 的采集物混合5次以上，再封闭小辫， 剪取小辫中的采集物，在小辫上标记 供者编号、姓名及标本名称，送实验 室检测。
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65
单平台ISHAGE设门
同双平台相比，单平台多 设了R6（荧光微球）、R7（细 胞碎片）及R8（活的CD34+细 胞）。
66
单平台ISHAGE设门法
需手动设门，对操作者要求高； 无需同型对照，亦不受抗体浓度及 荧光素与蛋白比率的限制，经济廉 价，抗体的选择范围也宽；7-AAD 活细胞染料，可计数活细胞，需逻 辑手动设门。
43
对照标本
对照通常采用同型对照和阳性对照标本 同型对照：采用ISHAGE设门方法时可不 需同型对照，多重逻辑设门后可去除非 特异性抗体结合；
44
对照标本
阳性对照：检测新批号和当前批号试剂 的染色效率是否有问题时需要做阳性对 照，或怀疑试剂出现问题时，采用该试 剂与已知可接受性能批号的试剂同时操 作进行验证。
16
标本质量 （溶血、凝血）
1、严重溶血的标本应该放弃检测。所 有可能破坏标本完整性的异常情况均应 密切观察，并记录下来。 2、即使很小的凝块也会引起血液中某 些成分的选择性丢失或改变，凝血的标 本应尽可能弃用。
17
标本质量（温度极限）
经过长距离或长时间运送的标本， 应确认标本是否过热或过冷，即使其 他所有的鉴定标准都正常，也应该记 录下来以利于后续的处理、分析和结 果解释。
11
标本标识
所有检测标本应及时贴上标签，注明 患者姓名，标本类型，采集时间，申请 单和标本粘贴在一起送检，申请单要详 细填写患者的信息、标本类型及检测项 目，进行双平台检测时还需提供白细胞 计数和分类。
12
抗凝剂的选择
不同的抗凝剂抗凝、标本的稳定性不同。 EDTA抗凝的标本，常温下可保存12-24h， 肝素钠或枸橼酸钠抗凝的标本可保存48h。 如果标本需用血细胞分析仪同时进行白细 胞计数和分类，则应选择EDTA抗凝。
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免疫荧光染色 按照试剂说明书和注意事项进行 操作，一般流程如下：
38
标本与抗体孵育
取含1×106白细胞的全血或稀释 的标本50μL-200μL加入适量直标抗 体10μL-20μL，室温孵育20min30min。
39
裂解红细胞
裂解时间和方法按照所用溶血素说 明书进行操作。采用含7-AAD方案时应 选择不含固定剂的溶血素，如氯化铵Tris缓冲液。
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CD34+细胞计数
52
双参数荧光散点图的设置
双平台双色CD34+细胞计数设置： CD45/SSC、CD34/SSC、 CD45/SSC、 FSC/SSC、CD45/CD34、FSC/SSC 6个散点图。
53
双参数荧光散点图的设置
单平台三色CD34+细胞计数设置： CD45/SSC、CD34/SSC、 CD45/SSC、 FSC/SSC，CD45/CD34、FSC/SSC、 7-AAD/SSC、7-AAD/SSC 8个散点图。
25
单平台计数
单平台：在抗体染色的细胞中,等容量 加入确定浓度的荧光微球，直接用FCM 检测出采集物中的CD34+浓度，然后计 算出采集物中的CD34+细胞总数
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白细胞浓度和抗体用量
通过计数板计数或使用血细胞分析 仪预先计算标本中的白细胞浓度，并 严格按照操作说明书调整标本和抗体 的最佳比例。
27
白细胞浓度和抗体用量 白细胞过少的标本应减少单抗用量；
白细胞过多的标本应使用含1%白蛋白 或其他蛋白的PBS稀释到适当浓度。
28
移液量
标本和荧光微球的移液量应精确， 确保准确计数加入的定量微球的浓度 和标本体积，推荐采用反向抽吸法加 样。
29
裂解红细胞
裂解时间和方法按照所用溶血素说 明书进行操作。采用含7-AAD方案时应 选择不含固定剂的溶血素，如氯化铵Tris缓冲液。
67
结果报告和审核
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报告内容
双平台ISHAGE法报告CD34+ 细胞百分比及绝对值； 单平台ISHAGE法报告CD45+ 细胞绝对值、CD34+细胞百分比 及绝对值、活CD45+细胞和 CD34+细胞绝对数。
40
离心
离心洗涤方法与溶血素有关，按照 所用溶血素说明书进行操作。单平台绝 对值计数法在裂解红细胞后，不要离心 洗涤
41
绝对计数的商品化荧光微球
采用包被有已知数量的荧光微球 或按说明书加入一定数量的荧光微 球。
42
染色后标本保存
制备好的标本在上机分析前放在410℃下避光保存，应在1h内上机检测， 检测前混匀细胞。
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根据CD45划定白细胞区域
作CD45/SSC散点图定位白细胞群，排 除标本中细胞碎片等对计数的干扰； CD45从强阳性到弱阳性，包括淋巴细胞、 单核细胞、粒细胞、原始细胞、嗜碱性 粒细胞和有核红细胞。
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采集细胞数
在非设门荧光散点图中，至少 收集50000个白细胞及100个CD34+细 胞。
原则上标本采集后应立即检测，但 是实际操作中往往无法做到。不能立即 检测的标本应该保存于2-6℃冰箱中。标 本的处理和免疫染色应严格按照试剂说 明书进行。
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标本运送
采集标本应该在2-6℃环境下尽快 送检，注意避免标本冻结和过热。
内部送检可用具有防漏密封的塑 料袋和带盖的塑料容器等运送标本。
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标本运送