HPLC法测定癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中药物含量

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HPLC法测定癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中药物含量鄂伟;张启迪;王君玮;曲志娜;赵思俊;邹明
【摘要】建立癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中癸氧喹酯的HPLC含量测定方法.采用破囊液(0.2mol/L NaHCO3和0.06 mol/LNa3C6H5O7· 2H2O,pH=7.8~8.2)对癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊进行破囊,破囊后用甲醇和三氯甲烷混合溶液(4∶1)超声提取癸氧喹酯.HPLC检测方法采用Agilent ZORBAX 80A Extend-C18色谱柱;以乙腈-0.1%甲酸水溶液(75∶25)为流动相;检测波长为267 nm;流速为1 mL/min.结果表明,所采取的破囊方法破解效率高,微囊破解完全.方法精密度与准确度表明,癸氧喹酯浓度在0.05 ~10 μg/mL的范围内线性关系良好,回归方程为Y=61.768X +2.8814,R2=0.9996.本方法具有操作简便、快速、准确可靠等特点,适合癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中药物含量测定.
【期刊名称】《西南农业学报》
【年(卷),期】2013(026)004
【总页数】4页(P1486-1489)
【关键词】高效液相色谱法;癸氧喹酯;壳聚糖-海藻酸钠微囊
【作者】鄂伟;张启迪;王君玮;曲志娜;赵思俊;邹明
【作者单位】青岛农业大学动物科技学院,山东青岛266109;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛266109;中国动物卫生与流行病学中心,山东青岛266032;中国动物卫生与流行病学中心,山东青岛266032;中国动物卫生与流行病学中心,山东青岛266032;青岛农业大学动物科技学院,山东青岛266109
【正文语种】中文
【中图分类】R927.2
癸氧喹酯(Decoquinate)是一种喹啉类抗球虫药物,又名地考喹酯,临床上可用来防治鸡的毒害、巨型、柔嫩、堆型、变位和布氏艾美耳球虫等引起的球虫病[1],其次对隐孢子虫引起的动物腹泻也有一定的缓解和治疗作用。

该药自1967年上市以来,一直被许多国家用于预防肉仔鸡的球虫病[2]。

癸氧喹酯不溶于水及绝大部分有机溶剂,其制剂比较单一,市场上主要是应用其预混剂,这极大限制了癸氧喹酯的临床应用。

本实验室采用药物微囊化技术,以壳聚糖和海藻酸钠为复合囊材,制备癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊,较好地解决了癸氧喹酯难溶于水的弊端。


前仅见有癸氧喹酯预混剂和溶液剂相关检测方法的报道[3~4],未见有微囊中
癸氧喹酯含量检测方法的报道。

本研究采用化学方法与机械方法相结合的破囊方法,并建立了一种检测癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中药物含量的HPLC方法,为制
剂的后续研发及质量评价提供技术支持。

1 材料与方法
1.1 药品及试剂
癸氧喹酯对照品(含量98.5%,德国Dr.Ehrenstorfer公司,批号18507-89-6);癸氧喹酯原料药(含量98.5%,青岛康地恩药业股份有限公司);癸氧喹酯壳聚糖-
海藻酸钠微囊(自制);乙腈、甲醇(色谱纯,德国 Merck公司);甲酸(色谱纯,美国DIKMA 公司);NaHCO3、Na3 C6 H5O7·2H2O、三氯甲烷均为分析纯。

1.2 试验方法
1.2.1 色谱条件色谱柱为Agilent ZORBAX 80A Extend-C18(250 mm ×4.6 mm,5 μm);流动相乙腈-0.1%甲酸水溶液(75∶25);检测波长267 nm;柱温
35℃;流速1 mL/min;进样量20μl。

1.2.2 溶液的配制样品溶剂:准确量取50 mL CHCl3,加甲醇定容至250 mL。

对照品储备液:精密称取癸氧喹酯标准品0.0025 g,置于25 mL容量瓶中,加适量上述样品溶剂超声5 min,使其充分溶解,定容至刻度,摇匀,得终浓度为100μg/mL储备液,-20℃保存备用。

破囊液:精密称取1.72 g NaHCO3和1.84 g Na3 C6 H5O7·2H2O,加超纯水溶解,定容至100 mL。

1.2.3 样品前处理取载药微囊样品,精密称取0.01 g,置于10 mL玻璃离心管中,加1 mL破囊液,涡旋5 min使微囊充分溶解破碎,将溶液转移至100 mL 容量瓶中,加样品溶剂定容至刻度,超声5 min使药物充分溶解。

取10 mL溶液于100 mL容量瓶中,加流动相定容,取一定量样品溶液过0.22μm有机微孔滤膜后装入样品瓶,待测。

1.3 系统适应性与方法专属性试验
1.3.1 系统适应性试验对照品储备液平衡至室温,精密量取1 mL于10 mL容量瓶中,加入样品溶剂定容,配制浓度为10μg/mL的工作液,取一定量工作液用流动相稀释至浓度为2μg/mL,空白溶剂用流动相稀释5倍。

分别精密称取0.01 g空白微囊和载药微囊样品,采用“1.2.3”方法处理。

对照品溶液、空白溶剂、空白微囊样品溶液、载药微囊溶液样品按“1.2.1”条件下进样,记录色谱图。

1.3.2 专属性试验精密称取5份空白微囊样品,每份0.009 g,置于10 mL 玻璃离心管中。

分别准确加入 0.001 g对照品,按“1.2.3”中的破囊方法破囊后,将溶液转移至100 mL容量瓶中,密封。

经强酸(6 mol/L的HCl溶液1 mL避光处理1 h,加入等体积的6 mol/L的 NaOH溶液中止反应)、强碱(6 mol/LNaOH溶液1 mL避光处理1 h,加入等体积的6mol/L的HCl溶液中止反应)、高温(105℃干燥箱中避光放置24 h)、光照(4500±500 lx强光照射10 d)、
氧化(加入 0.2 mL H2O2,避光反应 1 h)处理后加样品溶剂定容至100 mL,充分混匀,用流动相稀释10倍,进样检测,记录色谱图。

1.4 线性关系考察
取一定量工作液,用流动相分别稀释浓度为0.05、0.5、1、2、5、10 μg/mL 的标准溶液。

在“1.2.1”色谱条件下测定6个标准品浓度,以标准液浓度(X)为横坐标,峰面积(Y)为纵坐标考察线性关系。

1.5 定量限和检测限试验
取线性范围试验项0.5μg/mL溶液,用流动相逐步稀释,降低进样浓度,重复操作6次,以信噪比3∶1和10∶1时的进样量确定最低检测限(LOD)和最低定量限(LOQ)。

1.6 精密度试验
取10、1、0.5 μg/mL 3 个浓度的对照品溶液,各浓度日内重复进样5次,计算日内相对标准偏差;同法各浓度每日测定1次,连续测定5 d,计算日间相对标准偏差。

1.7 回收率的测定
准确称取 0.005、0.008、0.0095 g 空白微球 3份,置于10 mL玻璃离心管中,分别加入癸氧喹酯对照品 0.005、0.002、0.0005 g,相当于 50%、20%、5%的药物含量。

按“1.2.3”方法处理。

同时工作液用流动相稀释,得到5、2、0.5μg/mL的标准溶液。

按“回收率=×100%”式中,A为经处理后微囊中癸氧喹酯峰面积,As为对应标准液中癸氧喹酯峰面积,计算回收率。

1.8 癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊样品中药物含量测定
取3批次癸氧喹酯微囊样品,精密称取0.01 g,按“1.2.3”中的微囊样品处理方法进行处理,样品溶液上机,每批样品重复测定3次,计算微囊中癸氧喹酯含量。

2 结果与分析
2.1 HPLC方法的建立
2.1.1 系统适应性试验结果结果(图1)显示,癸氧喹酯保留时间为8.3~8.4 min,在267 nm波长条件下,空白辅料和溶剂在此出峰时间处无杂质峰出现。

在该色谱条件下,主峰分离较好,峰型较对称,说明此色谱条件适合于癸氧喹酯微囊中药物含量的测定。

图1 HPLC色谱图Fig.1 HPLC chromatogramsA.癸氧喹酯标准品(2μg/mL)色谱图;B.空白溶剂色谱图;C.空白微囊样品色谱图;D.癸氧喹酯微囊样品色谱图A.Chromatogram of decoquinate standard(2 μg/mL);B.Chromatogram of blank solvent;C.Chromatogram of blank
microcapsules;D.Chromatogram of sample ofmicrocapsules with decoquinate
2.1.2 专属性实验经强酸、强碱、高温、光照、氧化处理后,杂质峰及分解物质峰均能得到很好的分离,对主峰不产生干扰,不影响癸氧喹酯的测定。

2.2 线性关系的考察
结果显示,癸氧喹酯在0.05~10μg/mL浓度范围内线性关系良好,标准曲线方程为 Y=61.768X+2.8814,R2=0.9996。

2.3 定量限与检测限
根据试验测得的药物峰与基线噪音值的比值,按信噪比S/N=3,测得LOD值为0.015μg/mL,按信噪比S/N=10,计算LOQ为0.05μg/mL。

2.4 精密度试验
试验结果(表1~2)表明,该方法测定癸氧喹酯含量精密度高,日内变异系数小于1.17%,日间变异系数小于1.92%,符合方法学要求。

2.5 回收率实验
对添加50%、20%、5%药物水平的空白微囊进行回收率测定,数据(表3)显示,3个浓度的癸氧喹酯样品平均回收率较高,均在98%以上,因此本方法可以用于检定微囊中癸氧喹酯的含量。

2.6 样品中癸氧喹酯含量的测定
数据(表4)显示,3批载药微囊样品中的癸氧喹酯平均含量分别为 7.66%、8.49%、8.04%,说明3批样品中癸氧喹酯含量合格。

表1 日内精密度试验结果(n=5)Table 1 Test results of intra-day variance浓度(μg/mL)Density峰面积Peak area 1 2 3 4 5平均峰面积Average peak area RSD(%)0.5 30.6 29.3 30.7 31.0 30.8 30.5 0.68 1 71.0 73.9 73.7 73.1 72.4 72.8 1.17 10 619.9 619.1 618.3 618.7 619.6 619.1 0.65
表2 日间精密度试验结果(n=5)Table 2 Test results of inter-day variance浓度(μg/mL)Density峰面积Peak area 1 2 3 4 5平均峰面积Average peak area RSD(%)0.5 30.2 30.7 28.4 31.3 31.7 30.5 1.29 1.0 72.8 73.9 73.3 72.4 69.0 72.3 1.92 10.0 619.1 616.0 617.5 620.3 618.3 618.2 1.62
表3 回收率试验结果(n=3)Table 3 Test results of recovery药物含量(%)Drug contents回收率(%)Recovery 1 2 3平均回收率(%)Average recovery
RSD(%)50 99.77 99.44 99.90 99.70 0.24 20 99.40 98.39 98.03 98.61 0.71 5 96.39 100.65 98.01 98.35 2.15
表4 不同批次载药微囊中药物含量(n=3)Table 4 The content of decoquinate in alginate-chitosan microcapsules批次Lot No.含量(%)Contents 1 2 3平均含量(%Average contents 1)7.69 7.66 7.62 7.66 2 8.31 8.78 8.37 8.49 3 8.02 8.13 7.98 8.04
3 讨论与结论
3.1 破囊条件的选择
壳聚糖-海藻酸钠微囊内层囊膜是通过海藻酸钠与Ca2+结合形成稳定的络合物,而外层囊膜是海藻酸盐[Cam(C5 H7 O4 COO-)n]和壳聚糖(C6 H9O4
NH+3)n)通过正负电荷之间的静电力相互作用形成微囊。

当外部环境存在HCO-3时,存在以下反应。

在该反应中,随着CO2气体不断释放,反应持续向右进行,微胶囊的聚电解质复合膜逐渐解聚,暴露出内层的海藻酸钙凝胶珠。

此时较强的络合剂可以竞争性的络合海藻酸钙凝胶中的Ca2+,从而使内层的海藻酸钙凝胶珠溶解[5]。

本研究采用化学方法与机械方法相结合的破囊方法,结合超声破碎,使微囊完全破碎并释放出药物。

3.2 样品溶剂的选择
二氯甲烷和三氯甲烷提取效果比较研究发现,三氯甲烷与乙腈作为混合溶剂时,溶解不完全;二氯甲烷与甲醇作为混合溶剂时,久置后易产生少量沉淀;三氯甲烷与甲醇作为混合溶剂时,溶解良好,放置后无沉淀析出,故选择三氯甲烷与甲醇的混合溶液做样品溶剂。

3.3 流动相的选择
我国已对畜禽肉中癸氧喹酯残留量的检测方法制定了标准,该方法采用的流动相为乙腈∶甲醇∶硝酸钙溶液(77∶3∶20)。

而美国采用的是乙腈∶甲醇∶水
(65∶15∶20)并加入一定量的氯化镁[6]。

上述2种流动相用于癸氧喹酯微囊检测时均未能达到预期效果。

对比研究发现采用乙腈和0.1%甲酸水溶液作为流动相时分离效果较好,且成分相对简单。

当乙腈和0.1%甲酸水溶液比例分别为为73∶27、75∶25 和80∶20 时,主峰出峰时间分别为 9.2、8.3 和6.8 min。

色谱分析表明,出峰时间为8.3 min时药品峰的分离最好,故选择75∶25的比例作为最终流动相比例。

3.4 检测波长的选择
不同文献报告癸氧喹酯HPLC法检测选用的波长有所不同,主要有 3 个,分别是265[3],267[4]和330[7]nm。

试验中用1μg/mL的标准品溶液在3种
不同的波长下进行检测,结果显示,330 nm波长时响应值低,主峰峰面积最小,仅相当于267 nm波长时的三分之一;265和267 nm检测波长时,响应值接近,但267 nm波长时的色谱图杂峰更少,故选择267 nm作为检测波长,在此色谱
条件下,色谱峰响应值高,分离效果好。

本研究建立的高效液相色谱法检测癸氧喹酯微囊中药物含量的方法,方法前处理简单,具有良好的专属性、精密度和准确度,色谱峰响应值高,分离度好,是较为理想的检测方法,可以应用到癸氧喹酯壳聚糖-海藻酸钠微囊中药物含量的检测。

参考文献:
【相关文献】
[1]朱模忠.兽药手册[M].北京:化学工业出版社,2002:195-196.
[2]Williams R B.Tracing the Emergence of Drug-resistance in Coccidia(Eimeria spp.)of Commercial Broiler Flocks Medicated with Decoquinate for the First Time in the United Kingdom[J].Vet Parasitol,2006,135:1 -14.
[3]潘绮雯,陈创华,刘佩怡.高效液相色谱法测定癸氧喹酯预混剂的含量[J].中国兽药杂志,2010,44(4):46-47.
[4]周玉武,栾明娜,徐福亮,等.高效液相色谱法测定癸氧喹酯溶液的含量[J].中国兽药杂志,2009,43(2):32 -34.
[5]薛伟明,于炜婷,刘袖洞,等.载细胞海藻酸钠/壳聚糖微胶囊的化学破囊方法研究[J].高等学校化学学报,2004,25(7):1342-1346.
[6]Elaine A Bunch.HPLCAnalysis of Decoquinate in Feeds[S].FDA,Bothell,
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