生理学-呼吸运动调节实验报告范文
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
呼吸运动调节实验报告
呼吸运动调节实验报告实验目的：探究呼吸运动的调节机制，进一步了解呼吸系统的功能和调节过程。
实验原理：呼吸运动的调节主要依赖于呼吸中枢和周围感受器的信号传递。
呼吸中枢位于延髓的呼吸中枢区，受到化学和神经因素的调节。
主要包括呼气中枢和吸气中枢。
呼气中枢对肺泡内的二氧化碳浓度敏感，当二氧化碳浓度升高时，呼气中枢被刺激，使呼气动作增强。
吸气中枢则对氧气浓度敏感，当氧气浓度降低时，吸气中枢被刺激，使吸气动作增强。
此外，呼吸中枢还受到来自周围感受器的信息输入，如呼吸肌肌肉内的运动感受器和肺部的伸展感受器。
这些感受器通过神经传递的方式将信息传递给呼吸中枢，调节呼吸运动。
实验材料：实验步骤：1.将小白鼠放置在呼吸运动调节实验装置中，固定其头部。
2.用细针在小白鼠胸壁上插入呼吸感受器电极，并连接到放大器上，记录呼吸信号。
3.调节装置中的刺激器，通过电压刺激呼吸中枢。
4.分别对吸气中枢和呼气中枢进行刺激，记录呼吸信号的变化。
5.调整呼吸中枢刺激的强度和频率，观察呼吸运动的调节效果。
实验结果：实验中观察到，在对吸气中枢进行刺激的情况下，小白鼠的吸气运动明显增强，呼吸深度和频率均增加。
而对呼气中枢进行刺激时，小白鼠的呼气运动明显增强，呼气深度和频率均增加。
当调节刺激强度和频率时，呼吸运动的效果也会相应改变。
实验讨论：根据实验结果可知，对吸气中枢和呼气中枢进行刺激可以分别增强吸气和呼气运动。
这表明呼吸运动主要受到呼吸中枢的调节。
而呼吸中枢受到来自化学和神经因素的调节，调节的目的是为了保持机体气体交换的平衡。
当机体内的二氧化碳浓度升高时，呼气中枢被刺激，使呼气动作增强，从而排出过多的二氧化碳。
而当机体内的氧气浓度降低时，吸气中枢被刺激，使吸气动作增强，从而摄入更多的氧气。
此外，来自周围感受器的信息也会对呼吸运动产生影响。
运动感受器和肺部的伸展感受器会通过神经传递的方式将信息传递给呼吸中枢，使机体能够根据需要调节呼吸运动。
实验结论：呼吸运动主要受到呼吸中枢的调节，呼气中枢和吸气中枢分别对应呼吸过程中的呼气和吸气动作。
呼吸运动的调节实验报告
呼吸运动的调节实验报告实验目的：了解呼吸运动的调节机制。
实验原理：呼吸运动是由呼吸中枢调节的，主要通过调节呼吸肌肉的收缩与放松来实现。
呼吸中枢位于延髓和脑干，由神经元组成。
呼吸中枢对于呼吸运动的调节主要有两种方式，一种是主动调节，另一种是被动调节。
主动调节是指呼吸中枢根据体内外环境的变化主动调整呼吸运动的深度和频率。
一般情况下，当血液中氧气含量下降、二氧化碳含量上升时，呼吸中枢会增加呼吸运动的强度和频率，以增加氧气的吸入和二氧化碳的排出。
反之，当血液中氧气含量提高、二氧化碳含量降低时，呼吸中枢会减少呼吸运动的强度和频率。
被动调节是指呼吸中枢受到一些身体反射的调节。
其中最重要的是呼吸化学感受器的作用。
呼吸化学感受器散布在主动脉体和延髓等部位，能感受到血液中氧气和二氧化碳的浓度变化。
当血液中二氧化碳浓度上升时，呼吸化学感受器会通过神经传递给呼吸中枢，使其增加呼吸运动的强度和频率。
反之，当血液中二氧化碳浓度降低时，呼吸化学感受器会减少刺激，呼吸中枢相应减少呼吸运动的强度和频率。
此外，还有一些其他的反射机制，如肺组织器官和呼吸肌的反射。
实验方法：1. 实验器材：呼吸运动测量仪、呼吸频率计、磁力键、呼吸波形检测系统等。
2. 实验步骤：(1)使用呼吸运动测量仪测量实验对象的呼吸运动。
(2)使用呼吸频率计测量实验对象的呼吸频率。
(3)使用磁力键刺激呼吸化学感受器，观察实验对象的呼吸反应。
(4)使用呼吸波形检测系统观察实验对象的呼吸波形。
实验结果：实验对象的呼吸运动和呼吸频率会随着呼吸化学感受器的刺激而变化。
当磁力键刺激呼吸化学感受器时，实验对象的呼吸频率会增加。
呼吸波形也会发生相应的变化。
实验结论：呼吸运动受到呼吸中枢的主动和被动调节。
主动调节主要是根据体内外环境的变化来调整呼吸运动的深度和频率。
被动调节主要是通过呼吸化学感受器等身体反射来调节呼吸运动。
实验结果表明，刺激呼吸化学感受器可以使呼吸频率增加，呼吸波形也会发生相应的变化。
呼吸运动调节实验报告(终审稿)
呼吸运动调节实验报告文稿归稿存档编号：[KKUY-KKIO69-OTM243-OLUI129-G00I-FDQS58-家兔呼吸运动的调节实验[目的要求]1学习记录家兔呼吸运动的方法。
2 观察并分析肺牵张反射及不同因素对呼吸运动的影响。
[基本原理]人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
[动物与器材]家兔、兔体手术台，手术器械、张力传感与滑轮或动物呼吸传感器、生物机能实验系统、20ml与50ml注射器、橡皮管、20%或25%氨基甲酸乙酯、生理盐水、0.5%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。
[方法与步骤]急性动物实验时，记录呼吸运动的方法有三种，一种是通过压力传感器与气管插管连接记录；另一种是通过系在胸（或腹）部、装有压力传感器的呼吸带记录；第三种是通过张力传感器记录隔肌运动。
先将动物麻醉、固定、进行颈部气管、动脉及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。
1、剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，再沿腹白线切开长约2ml的切口。
细心分离表面的组织（勿伤及胸骨），暴露出剑突与骨柄，用金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨于胸骨完全分离，但必须保留附于其下方的隔肌片，并使之完好无损。
此时隔肌的运动可牵动剑突软骨。
2、将系有长线的金属钩钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上。
3、开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器上。
4、实验观察（1）记录呼吸运动曲线，并仔细识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约1.5m、内径1cm的橡皮管连与气管的一个侧管上，然后用止血钳夹闭另一侧管，以增加无效腔。
呼吸运动生理实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸运动的基本原理和生理机制。
2. 掌握呼吸运动的调节方法及其影响因素。
3. 通过实验观察和分析呼吸运动的变化，加深对呼吸生理学的理解。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，由呼吸中枢支配，受神经系统和体液因素的调节。
呼吸运动包括吸气和呼气两个阶段，其深度和频率受多种因素影响，如CO2、O2、H+、肺牵张反射等。
三、实验材料与器材1. 实验材料：家兔、生理盐水、乳酸、CO2、氮气、注射器、橡皮管、气管插管等。
2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯(1g/kg体重)进行麻醉。
2. 建立呼吸记录系统：将气管插管插入家兔气管，连接生理信号采集处理系统和呼吸传感器，记录呼吸频率和幅度。
3. 观察正常呼吸运动：观察家兔正常呼吸曲线，记录呼吸频率和幅度。
4. 改变呼吸运动：a. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸频率和幅度的变化。
b. 改变CO2浓度：吸入CO2气体，观察呼吸频率和幅度的变化。
c. 改变O2浓度：吸入氮气，观察呼吸频率和幅度的变化。
d. 改变H+浓度：静脉注射乳酸，观察呼吸频率和幅度的变化。
e. 剪断迷走神经：观察剪断一侧和两侧迷走神经后呼吸运动的变化。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较不同实验条件下呼吸频率和幅度的差异。
五、实验结果1. 正常呼吸运动：家兔正常呼吸曲线呈周期性变化，呼吸频率约为每分钟60次，幅度约为2cm。
2. 增加无效腔：无效腔增加后，呼吸频率和幅度均增加，呼吸加深加快。
3. 改变CO2浓度：吸入CO2气体后，呼吸频率和幅度明显增加，呼吸加深加快。
4. 改变O2浓度：吸入氮气后，呼吸频率和幅度无明显变化。
5. 改变H+浓度：静脉注射乳酸后，呼吸频率和幅度明显增加，呼吸加深加快。
呼吸运动的调节实验报告
呼吸运动的调节实验报告呼吸运动的调节实验报告引言：呼吸是人类生命活动中至关重要的一环，它使我们能够吸入氧气并排出二氧化碳。
呼吸运动的调节是保持人体内氧气和二氧化碳浓度平衡的关键。
为了深入了解呼吸运动的调节机制，我们进行了一系列实验。
实验一：呼吸频率与运动强度的关系我们首先研究了呼吸频率与运动强度之间的关系。
实验中，我们请来了十名健康年轻人作为实验对象，分别让他们进行不同强度的运动，如慢跑、快走和静坐。
我们使用呼吸带和心率监测仪来记录他们的呼吸频率和心率。
结果显示，随着运动强度的增加，呼吸频率显著增加。
慢跑时，呼吸频率平均为每分钟20次；快走时，呼吸频率平均为每分钟15次；而静坐时，呼吸频率平均为每分钟12次。
这表明，呼吸频率与运动强度呈正相关关系。
运动强度越大，人体需要更多的氧气，从而导致呼吸频率加快。
实验二：呼吸深度与情绪的关系接着，我们探究了呼吸深度与情绪之间的关系。
实验中，我们请来了十名实验对象，让他们观看一系列引起不同情绪的视频片段，如欢乐、悲伤和惊恐。
同时，我们使用呼吸带和心率监测仪来记录他们的呼吸深度和心率。
实验结果显示，不同情绪状态下的呼吸深度存在明显差异。
在欢乐的视频片段中，呼吸深度平均为每次呼吸400毫升；在悲伤的视频片段中，呼吸深度平均为每次呼吸350毫升；而在惊恐的视频片段中，呼吸深度平均为每次呼吸300毫升。
这表明，呼吸深度与情绪呈负相关关系。
当人处于欢乐状态时，呼吸深度增加；而在悲伤和惊恐状态下，呼吸深度减小。
实验三：呼吸节律与冥想的关系最后，我们探讨了呼吸节律与冥想之间的关系。
实验中，我们请来了十名有冥想经验的实验对象，让他们进行冥想。
同时，我们使用呼吸带和心率监测仪来记录他们的呼吸节律和心率。
实验结果显示，冥想状态下的呼吸节律与正常状态有所不同。
在正常状态下，呼吸节律为每分钟12次；而在冥想状态下，呼吸节律明显减慢，平均为每分钟6次。
这表明，冥想能够使呼吸节律变得更加缓慢和有规律。
呼吸调节机制实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解呼吸调节的基本原理和生理机制。
2. 观察并分析影响呼吸运动的内外因素。
3. 掌握呼吸调节实验的基本操作技能。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。
呼吸调节机制涉及中枢神经系统、外周感受器和效应器等多个方面。
本实验通过观察家兔在不同生理状态下呼吸运动的改变，探讨呼吸调节的生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水等。
四、实验方法与步骤1. 家兔麻醉与固定：将家兔置于手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
待家兔麻醉后，将其固定于手术台上。
2. 气管插管：分离气管，插入气管插管，并连接呼吸传感器。
3. 记录呼吸运动：打开生理信号采集处理系统，记录家兔的呼吸频率、节律和幅度。
4. 改变实验条件：a. 缺氧实验：将家兔置于密闭容器中，观察呼吸运动的变化。
b. 二氧化碳实验：向密闭容器中注入二氧化碳，观察呼吸运动的变化。
c. 酸性物质实验：向密闭容器中加入乳酸，观察呼吸运动的变化。
d. 迷走神经阻断实验：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
5. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较不同实验条件下呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 缺氧实验：缺氧条件下，家兔呼吸频率加快，幅度减小，说明缺氧对呼吸运动有促进作用。
2. 二氧化碳实验：二氧化碳浓度升高时，家兔呼吸频率加快，幅度增大，说明二氧化碳对呼吸运动有促进作用。
3. 酸性物质实验：乳酸浓度升高时，家兔呼吸频率加快，幅度增大，说明酸性物质对呼吸运动有促进作用。
4. 迷走神经阻断实验：剪断双侧迷走神经后，家兔呼吸频率减慢，幅度减小，说明迷走神经对呼吸运动有抑制作用。
六、结论1. 缺氧、二氧化碳和酸性物质等生理因素可以通过中枢和外周化学感受器影响呼吸运动，调节呼吸频率和幅度。
(新编)生理学-呼吸运动调节实验报告范文
（新编）生理学-呼吸运动调节实验报告范文实验目的：了解呼吸运动的自主调节机制，掌握测定呼吸运动对动脉血气水平变化的反应。
实验原理：呼吸中枢在脑干桥脑中，通过多种神经元和信号传递系统，调控肺泡通气量，维持动脉血气水平的平衡。
在基础条件下，呼吸中枢适应机体的代谢需要，改变吸气和呼气时间、频率和深度等呼吸运动参数，使氧气摄取和二氧化碳排出达到动态平衡。
在缺氧或二氧化碳过多的内外环境下，呼吸中枢能够及时答应吸氧或减尽二氧化碳等代谢需要。
实验方法：选取12名健康受试者，记录常规生理数据，包括身高、体重、年龄、心率、血压等。
在床上平躺，以氧气面罩为装置，测试受试者在不同气体浓度环境下的呼吸运动参数和动脉血气水平。
首先记录每名受试者在自由呼吸和深呼吸状态下的正常基础呼吸参数：呼吸频率（f）和吸气/呼气回路（Ttot）时间。
接着在不同浓度的氧气和二氧化碳混合气环境下，记录每分钟的吸气量（Vi）和呼气量（Ve）以及二氧化碳分压（PcCO2）和氧分压（PaO2）。
在呼气末期，利用口罩收集呼气气体，分别计算呼气分数（FE）和二氧化碳呼气分数（FECO2）。
实验结果：实验数据结果显示，在低氧环境下，吸气量逐渐增加，但呼气量略有减少，吸气时间和吸气峰值压力也显著增加。
血氧饱和度和氧气分压均下降，二氧化碳分压升高。
而在高二氧化碳环境下，呼气量明显增加，但吸气量不变或略有降低，吸气时间和呼气时间均显著延长。
血二氧化碳分压升高，但氧气分压不受影响。
在深呼吸状态下，吸气量和呼气量均增加，而呼吸频率不变或略有降低。
动脉血气水平没有显着变化。
实验结论：呼吸运动受自主调节机制的支配，能够根据外界环境和机体代谢需要自适应变化。
低氧和高二氧化碳环境下，呼吸运动参数和血气水平均出现相应变化，以利于机体克服氧气缺乏和二氧化碳过剩对身体的影响。
而深呼吸状态下，呼吸运动增加能够提高氧气摄取量和二氧化碳排出量，有效调节代谢平衡。
实验结果还提示，各个受试者的呼吸运动参数和血气水平并不完全相同，可能由于个体差异和重力影响等多种因素。
呼吸运动调节实验报告（五篇）
呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。
【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。
2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。
分离气管并穿线备用。
分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。
以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。
手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。
3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。
（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。
（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。
变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。
④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。
生理实验呼吸运动的调节实验报告
生理实验呼吸运动的调节实验报告一、实验目的1、学习记录和分析呼吸运动的方法。
2、观察各种因素对呼吸运动的影响，理解呼吸运动的调节机制。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统的调控下，有节律地收缩和舒张引起胸廓的扩大和缩小，从而实现肺与外界环境的气体交换。
呼吸运动的节律和深度受到多种因素的调节，包括神经调节（如中枢神经系统的控制和外周化学感受器的反射）和体液调节（如血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度的变化）。
三、实验材料1、实验动物：健康成年家兔一只。
2、实验器材：呼吸运动记录装置（包括压力传感器、生物信号采集系统等）、手术器械、气管插管、注射器、CO₂气体瓶、N₂气体瓶、钠石灰瓶等。
3、实验药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液。
四、实验步骤1、动物麻醉与固定家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
当家兔角膜反射消失、肌肉松弛、疼痛反应消失时，表明麻醉成功。
将麻醉后的家兔仰卧位固定于手术台上，颈部伸直。
2、手术操作剪去颈部的毛，在颈部正中作一约 6-8cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，在甲状软骨下方第 3-4 个气管软骨环处作一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
分离出一侧迷走神经，在其下方穿线备用。
3、连接实验装置将压力传感器与气管插管相连，通过生物信号采集系统记录呼吸运动的变化。
4、观察项目记录正常呼吸运动曲线，观察呼吸的频率和幅度。
增加吸入气中 CO₂浓度：将气管插管的一侧开口与 CO₂气体瓶相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将气管插管的一侧开口与 N₂气体瓶相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
增大无效腔：在气管插管的一侧连接一长约 50cm 的橡皮管，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
静脉注射乳酸溶液：通过耳缘静脉缓慢注射 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
切断一侧迷走神经：在迷走神经穿线处结扎并切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
呼吸运动调节实验报告
呼吸运动调节实验报告呼吸运动调节实验报告一、实验目的了解呼吸运动的调节机制。
二、实验原理呼吸运动是由呼吸中枢在脑干调控下进行的。
呼吸中枢由延髓内的呼吸节律生成区和脊髓内的呼吸节律传导区组成。
呼吸节律生成区通过调控脊髓内的呼吸节律传导区，使肺部肌肉产生适当的收缩和松弛，从而实现正常呼吸。
呼吸节律生成区受到多种调节因素的影响，包括血液中的氧气、二氧化碳浓度以及神经系统的调控。
当血液中氧气浓度降低或二氧化碳浓度升高时，呼吸中枢会通过调整呼吸节律生成区的放电活动来增加呼吸频率和深度，以增加氧气摄入和二氧化碳排出。
此外，神经系统的调控也会对呼吸运动产生影响。
实验中，我们可以通过不同的刺激手段来观察呼吸运动的调节情况，如改变呼吸频率和深度，以及呼气时间和吸气时间的比例。
三、实验设备和药品1. 实验动物（可以是小鼠、大鼠或兔子等）2. 呼吸运动调节实验装置（包括呼吸频率、呼气时间和吸气时间的调节装置）3. 麻醉药物四、实验步骤1. 安静环境下，给实验动物注射适量麻醉药物使其进入麻醉状态。
2. 将实验动物固定在实验装置上，调节装置的参数，使呼吸频率、吸气时间和呼气时间保持正常水平。
3. 观察实验动物的呼吸运动，记录呼吸频率、深度以及呼气时间和吸气时间的比例。
4. 分别对实验动物进行不同刺激，如给予高浓度氧气、低浓度氧气、高浓度二氧化碳等，观察呼吸运动的变化。
5. 持续观察一段时间后，停止刺激，再次观察呼吸运动的恢复情况。
六、实验结果通过实验观察和记录，可以得出呼吸运动调节的结果，如呼吸频率、深度以及呼气时间和吸气时间的比例的变化。
七、实验结论根据实验结果可以得出呼吸运动调节的结论，如不同刺激对呼吸运动的影响，呼吸运动的调节机制等。
八、实验注意事项1. 实验过程中应注意保证实验动物的安全和健康，减少对其造成的伤害。
2. 麻醉药物的使用应符合相关规定，确保实验动物的麻醉状态。
3. 实验环境应保持安静、恒定，以免对实验结果产生干扰。
呼吸调节运动实验报告
一、实验目的1. 理解呼吸调节运动的基本原理；2. 掌握呼吸调节运动的实验方法；3. 分析实验结果，探讨呼吸调节运动的生理机制。
二、实验原理呼吸调节运动是人体维持正常生理功能的重要环节，它受到多种因素的影响，包括神经、体液和肌肉等。
本实验通过观察呼吸调节运动在不同条件下的变化，分析其生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、生理盐水、CO2、乳酸、气管插管、呼吸传感器、生理信号采集处理系统等；2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、显微镜、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验方法1. 家兔麻醉：将家兔置于手术台上，用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉；2. 气管插管：在兔颈部进行气管插管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和幅度；3. 实验分组：将实验分为四组，分别为对照组、CO2吸入组、乳酸吸入组和缺氧组；4. 实验操作：a. 对照组：正常生理状态下，记录呼吸频率和幅度；b. CO2吸入组：将家兔置于含有CO2的密闭容器中，记录呼吸频率和幅度；c. 乳酸吸入组：将家兔置于含有乳酸的密闭容器中，记录呼吸频率和幅度；d. 缺氧组：将家兔置于低氧环境下，记录呼吸频率和幅度；5. 数据处理：将实验数据输入生理信号采集处理系统，进行统计分析。
五、实验结果与分析1. 对照组：家兔在正常生理状态下，呼吸频率约为60次/分钟，幅度适中；2. CO2吸入组：家兔在吸入CO2后，呼吸频率明显增加，约为100次/分钟，幅度增大；3. 乳酸吸入组：家兔在吸入乳酸后，呼吸频率略有增加，约为80次/分钟，幅度略有增大；4. 缺氧组：家兔在缺氧环境下，呼吸频率明显增加，约为120次/分钟，幅度增大。
分析：本实验结果表明，CO2、乳酸和缺氧均能引起家兔呼吸频率和幅度的增加。
这是因为CO2、乳酸和缺氧分别刺激了中枢神经系统和外周化学感受器，使呼吸中枢兴奋，导致呼吸频率和幅度增加。
呼吸调节机能实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 理解呼吸调节的基本原理，掌握呼吸运动调节的生理机制。
2. 观察并分析呼吸运动在不同生理条件下的变化，如缺氧、二氧化碳增多、增大无效腔等。
3. 掌握呼吸调节实验的基本操作方法，包括呼吸频率、幅度、潮气量的测量等。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，其调节机制复杂，涉及中枢神经系统、外周感受器、体液等多种因素。
呼吸中枢主要位于脑干，通过调节呼吸肌的收缩和舒张来实现呼吸运动。
此外，血液中的二氧化碳和氧气浓度、pH值、以及脑脊液中的化学物质等均能影响呼吸调节。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、生理盐水、二氧化碳、氮气、氨水、麻醉剂等。
2. 实验仪器：手术台、手术器械、气管插管、呼吸频率测量仪、呼吸幅度测量仪、生理信号采集处理系统、气体分析仪等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：将家兔置于手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行全身麻醉。
2. 建立呼吸通道：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸频率测量仪和呼吸幅度测量仪。
3. 记录基础呼吸参数：记录家兔在正常生理条件下的呼吸频率、幅度和潮气量。
4. 模拟缺氧：将家兔置于缺氧环境中，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
5. 模拟二氧化碳增多：向家兔呼吸系统中注入二氧化碳，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
6. 模拟增大无效腔：向家兔呼吸系统中注入氨水，使无效腔增大，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
7. 模拟迷走神经切断：切断家兔迷走神经，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
8. 模拟呼吸中枢刺激：刺激家兔呼吸中枢，观察呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
五、实验结果与分析1. 缺氧条件下，家兔呼吸频率明显加快，幅度和潮气量略有减小。
2. 二氧化碳增多条件下，家兔呼吸频率明显加快，幅度和潮气量明显增大。
3. 增大无效腔条件下，家兔呼吸频率明显加快，幅度和潮气量略有增大。
4. 迷走神经切断条件下，家兔呼吸频率明显减慢，幅度和潮气量明显减小。
呼吸运动调节实验实训报告(1)
呼吸运动调节实验实训报告(1)呼吸是人类生命活动中最基本的功能之一，而呼吸运动调节则是人体呼吸机制中的重要一环。
为了更好地理解和掌握呼吸运动的调节过程，我们进行了一次呼吸运动调节实验实训。
以下是报告内容。
一、实验目的通过呼吸运动调节实验实训，掌握人体呼吸调节机制，理解呼吸运动的原理和基础。
并通过实验数据的采集和分析，加深我们对呼吸运动调节的认识。
二、实验过程1.实验仪器呼吸运动调节实验仪、电脑、软件以及感应器、电极等辅助器材。
2.实验原理实验中采用了负荷通气法，即在呼吸前揣测一个负荷，让被试在呼出气后马上闭气，使肺内的压力提高，再让被试尽量快地吸气，在吸气的同时开启一个突然呈阶梯状升高的氧气质量流量，使肺部的氧气容量瞬间提高，呼吸频率和潮气量也随之发生改变。
3.实验步骤①被试在安静状态下，测量其正常呼吸频率和潮气量，并设置好呼吸负荷。
②测量肺活量。
③被试在负荷下呼出气，闭气持续约5秒钟，然后尽量快地吸气，在吸气同时开启突然呈阶梯状升高的氧气流质量，记录呼吸频率和潮气量的变化。
④分析数据，得出结果。
三、数据分析通过实验，我们得到了收集到的呼吸运动调节的数据。
实验中，被试在负荷下呼出气，闭气持续5秒钟，然后尽量快地吸气，在吸气同时开启突然呈阶梯状升高的氧气流质量，经过一段时间之后，记录下呼吸频率和潮气量的变化。
数据显示，被试在呼吸后吸入高浓度的氧气后，呼吸频率和潮气量都得到了改变。
具体而言，呼吸频率明显降低，平均降低了10次/分钟左右，而潮气量明显升高，平均升高了300ml左右。
这显示出，呼吸运动调节机制对高浓度氧气有反应，而且呼吸频率和潮气量都会随之产生一定的变化。
四、实验结论通过呼吸运动调节实验实训，我们获得了很多较为重要的结论和启示。
具体而言，呼吸运动调节机制可以对高浓度氧气产生反应，呼吸频率和潮气量都会随之产生变化。
这表明，人体呼吸机制中存在一定的调节机制，可以在不同的呼吸情况下做出相应的反应。
呼吸功能训练实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在通过一系列呼吸功能训练方法，评估并改善受试者的呼吸功能，包括肺通气量、呼吸肌力量和耐力，以及整体呼吸效率。
实验旨在为慢性阻塞性肺疾病（COPD）患者提供一种有效的康复训练手段，并探讨其在健康人群中的应用潜力。
二、实验对象实验对象为30名年龄在40-70岁之间，无严重心血管疾病和呼吸系统疾病的中老年人，其中15名患有COPD。
三、实验方法1. 实验分组：将受试者随机分为实验组和对照组，每组15人。
2. 实验材料：呼吸功能测试仪器、计时器、呼吸训练指导手册。
3. 实验步骤：a. 基线测试：对受试者进行肺功能测试，包括肺活量（VC）、用力肺活量（FVC）、最大呼气流量（PEF）等指标。
b. 呼吸功能训练：i. 缩唇呼气训练：指导受试者采用缩唇呼气技巧，通过吹口哨样口型缓慢呼气，以增加支气管内压力，防止小气道过早闭合。
ii. 腹式呼吸训练：教导受试者进行腹式呼吸，通过腹肌的主动舒张与收缩，加强呼吸肌训练，提高呼吸效率。
iii. 呼吸肌力量训练：采用呼吸肌力量训练器，对受试者进行呼吸肌力量训练，增强呼吸肌耐力和力量。
c. 干预周期：实验组进行为期4周的呼吸功能训练，对照组不进行任何干预。
d. 后续测试：干预结束后，对受试者进行肺功能测试，包括VC、FVC、PEF等指标。
4. 数据收集与分析：采用SPSS软件对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组在干预前后的肺功能指标差异。
四、实验结果1. 基线测试：实验组和对照组在VC、FVC、PEF等肺功能指标上无显著差异。
2. 干预后测试：a. 实验组在VC、FVC、PEF等肺功能指标上均显著提高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
b. 实验组在呼吸肌力量和耐力方面也得到显著提高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
3. 受试者反馈：实验组受试者普遍反映呼吸功能得到改善，呼吸困难症状减轻，生活质量提高。
呼吸实验报告总结
呼吸运动是人体重要的生理功能之一，它通过肺部的扩张和收缩，实现氧气的吸入和二氧化碳的排出，维持机体正常的代谢活动。
为了深入了解呼吸运动的调节机制，我们进行了本次呼吸实验。
二、实验目的1. 掌握呼吸运动的基本原理和调节机制。
2. 学习观察和记录呼吸运动的方法。
3. 分析影响呼吸运动的各种因素，如CO2浓度、缺氧、无效腔等。
三、实验方法本次实验采用家兔作为实验动物，通过以下步骤进行：1. 家兔麻醉：使用20%氨基甲酸乙酯对家兔进行全身麻醉。
2. 气管插管：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和幅度。
3. 生理盐水灌胃：给予家兔生理盐水灌胃，观察其对呼吸运动的影响。
4. CO2气体吸入：让家兔吸入一定浓度的CO2气体，观察其对呼吸运动的影响。
5. 缺氧处理：将家兔置于低氧环境中，观察其对呼吸运动的影响。
6. 无效腔增加：通过增加气道长度等方法，观察其对呼吸运动的影响。
四、实验结果与分析1. 生理盐水灌胃对呼吸运动的影响：生理盐水灌胃后，家兔的呼吸频率和幅度无明显变化，说明生理盐水对呼吸运动无显著影响。
2. CO2气体吸入对呼吸运动的影响：吸入CO2气体后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明CO2浓度升高可刺激呼吸中枢，使呼吸运动加强。
3. 缺氧处理对呼吸运动的影响：缺氧处理后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明缺氧可刺激外周化学感受器，使呼吸运动加强。
4. 无效腔增加对呼吸运动的影响：增加无效腔后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明无效腔的增加可导致肺泡气体更新率下降，刺激中枢和外周化学感受器，使呼吸运动加强。
1. 呼吸运动受多种因素调节，包括CO2浓度、缺氧、无效腔等。
2. CO2浓度升高、缺氧、无效腔增加均可刺激呼吸中枢，使呼吸运动加强。
3. 呼吸运动调节机制复杂，涉及中枢和外周化学感受器、肺牵张反射等多种因素。
六、实验心得1. 通过本次实验，我们深入了解了呼吸运动的基本原理和调节机制，提高了对生理学知识的认识。
生理学-呼吸运动调节实验报告范文
生理学-呼吸运动调节实验陈说范文之阿布丰王创作实验且的：学习呼吸运动的记录方法,观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响.实验原理：肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的,而呼吸运动是由于呼吸中枢不竭地发放节律性感动所致.呼吸中枢的紧张性活动,随着机体代谢需要,受许多因素影响.本实验是向家兔气管插管,使呼出气的一部份经换能器连于记录仪记录呼吸运动,切断迷走神经和施给各种因素,观察呼吸曲线的变动.实验对象：兔实验器材和药品：哺乳类植物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、安慰器.20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等.实验步伐和观察项目一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯(1g／kg),待植物麻醉后,仰卧固定于手术台上.沿颈部正中切开皮肤,分离气管并拔出气管插管.分离出颈部两侧迷走神经,穿线备用.二、记录呼吸运动拔出的气管插管的主管接机械—电换能器,输入到生理记录仪,侧管流露于年夜气.通过改变侧管的口径,使主管的输入信号适宜.三、观察项目(一)正常呼吸曲线(二)增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细塑料或玻璃管拔出气管插管的侧管,松开球胆的夹子,使部份CO2随吸气进入气管.气体流速不宜过急,以免明显影响呼吸运动.此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响.去失落球胆,观察呼吸恢复正常的过程. (三)缺氧：将一空球胆吸进少量空气,中间经一钠石灰瓶连至气管插管的侧管,让植物呼吸球胆内的少量空气.观察此时呼吸运动有何变动?去失落上述条件,观察呼吸恢复正常的过程.(四)增年夜无效腔：将50 cm长的橡皮管连接于气管插管的侧管上,观察此时呼吸运动的变动.变动明显后,去失落橡皮管,观察呼吸恢复过程.(五)血液中酸性物质增多时的效应：用5ml注射器,由耳缘静脉较快地注入3％乳酸2 ml,观察此时呼吸运动的变动及恢复过程. (六)迷走神经在呼吸运动中的作用：先切断一侧迷走神经,观察呼吸运动有何变动.再切断另一侧迷走神经,观察呼吸运动又有何变动.在此基础上,观察对一侧迷走神经向中端低频,较弱的电安慰所至的呼吸运动的变动.注意事项一、手术过程中,应防止伤及主要血管(如：颈总动脉、颈外静脉等),以防出血.二、为便于自身对比及互相对比,气管插管的侧管口径应自始至终坚持一致.讨论题一、分析各项实验结果,缺O2及CO2增多时对呼吸的影响机制有何分歧.二、迷走神经在节律性呼吸运动中起何作用.。
呼吸运动调节实验报告结论
呼吸运动调节实验报告结论
实验报告结论
本次呼吸运动调节实验结果表明，人体在不同运动强度下呼吸
频率和潮气量均呈现显著改变。
在低强度运动下，呼吸频率和潮气量较为稳定，没有明显改变。
而在中等强度运动下，呼吸频率与潮气量快速上升，达到封顶，
出现短暂的平台期，再接着下降到基本水平。
在高强度运动下，
呼吸频率和潮气量急剧上升，在达到一定高峰后出现试图增加呼
气量降低质疑的现象，最终下降到基本水平。
通过实验结果分析，我们发现中等强度的运动对人体的呼吸运
动调节具有较大的影响，而在高强度运动下，人体还会采取其他
机制来调节呼吸，确保身体能够承受运动带来的负荷。
总的来说，呼吸运动调节是人体非常关键的生理功能，能够影
响到人体的身体健康和运动能力。
本次实验提供了一定的参考价值，对于人体生理学研究具有一定的意义和价值。
生理实验报告_呼吸运动
一、实验目的1. 观察并记录呼吸运动的生理现象。
2. 探讨呼吸运动的调节机制，包括神经和体液调节。
3. 分析影响呼吸运动的各种因素。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，由呼吸中枢控制，通过神经和体液调节，使呼吸运动适应机体的生理需求。
呼吸运动包括吸气、呼气两个过程，其调节机制涉及呼吸中枢、化学感受器、肺牵张反射等多种因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布3. 实验试剂：生理盐水、20%氨基甲酸乙酯四、实验步骤1. 麻醉与固定：取一只家兔，称重后，用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
麻醉成功后，将家兔背位固定于手术台上。
2. 颈部手术：剪去颈部与剑突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管。
分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 呼吸运动记录：用橡皮管插管一个侧管通过马利氏气鼓连于压力转能器，然后与生物机能实验系统或二道生理记录仪相应端口连接。
气管插管的另一侧管口开口于大气，调整其口径使记录的呼吸运动有一定幅度。
再调节生理机能系统或二道生理记录仪的放大倍数、记录速度，使描记的呼吸曲线疏密及振幅均匀适宜。
4. 观察指标：记录呼吸频率和幅度。
5. 实验分组：- 对照组：观察正常呼吸运动。
- CO2吸入组：向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化。
- 乳酸吸入组：向气管插管内注入一定量的乳酸，观察呼吸运动的变化。
- 迷走神经切断组：切断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 对照组：呼吸运动规律，呼吸频率和幅度稳定。
2. CO2吸入组：呼吸频率加快，幅度增大，表明CO2对呼吸运动有刺激作用。
3. 乳酸吸入组：呼吸频率加快，幅度增大，表明乳酸对呼吸运动有刺激作用。
呼吸运动调节报告
呼吸运动调节报告呼吸运动是人体生命活动中的重要组成部分，其调节机制一直是生理学研究的热点之一。
本文通过查阅相关文献，总结了呼吸运动调节的主要机制和影响因素。
一、呼吸运动调节的主要机制人体的呼吸肌主要包括膈肌和肋间肌，他们受到神经系统和化学物质等因素的调节。
膈肌的收缩和松弛由迷走神经和膈神经调节，肋间肌的收缩和松弛由刺激感觉神经和运动神经调节。
此外，角膜反射、吸入空气的温度和湿度、氧气和二氧化碳含量等也能影响呼吸肌的调节。
2. 中枢神经系统的调节中枢神经系统通过脑干和大脑皮层对呼吸运动进行调节。
脑干中的呼吸中枢控制呼吸肌的收缩和松弛，包括延髓呼吸中枢和呼吸节律生成器。
大脑皮层对呼吸运动的控制主要是通过意识活动来影响呼吸中枢的活动。
3. 化学物质的调节化学物质的调节是呼吸运动调节中最重要的机制之一。
主要有以下几个方面：（1）氧气和二氧化碳含量的调节氧气和二氧化碳是影响呼吸运动的关键化学物质。
低氧血症和高碳酸血症都能够刺激化学感受器，并引起呼吸运动的增加。
（2）酸碱度的调节当血液pH值下降时，会刺激化学感受器，导致呼吸运动的增加。
相反，当血液pH值上升时，也会对呼吸运动有一定的抑制作用。
血中的其他化学物质，如钙离子、丙酮酸、乳酸等，也会对呼吸运动产生一定的影响。
1. 年龄随着年龄的增长，人体呼吸肌的力量、耐力和力量下降速度都会加快，也会影响呼吸中枢的调节。
2. 性别男性的肺活量比女性大，由于肺部解剖结构等原因，男性的呼吸运动更容易产生负荷。
3. 健康状况一些下呼吸道疾病、心血管疾病、神经系统疾病等会影响呼吸肌的控制和呼吸中枢的调节。
4. 运动适度的运动可以增强呼吸肌的力量和耐力，提高肺活量和呼吸频率。
但是，过度运动也会导致呼吸运动过度，引起呼吸肌疲劳和呼吸系统疾病。
结语呼吸运动调节涉及到多个生理学机制，不同的因素也会对其产生影响。
因此，对呼吸运动进行科学的监测和控制，对维护人体健康具有至关重要的意义。
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生理学-呼吸运动调节实验报告范文
实验且的：
学习呼吸运动的记录方法，观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响。
实验原理：
肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的，而呼吸运动是由于呼吸中枢不断地发放节律性冲动所致。
呼吸中枢的紧张性活动，随着机体代谢需要，受许多因素影响。
本实验是向家兔气管插管，使呼出气的一部分经换能器连于记录仪记录呼吸运动，切断迷走神经和施给各种因素，观察呼吸曲线的变化。
实验对象：兔
实验器材和药品：哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、刺激器。
20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等。
实验步骤和观察项目
一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯(1g／kg)，待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。
沿颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管。
分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。
二、记录呼吸运动插入的气管插管的主管接机械—电换能器，输入到生理记录仪，侧管暴露于大气。
通过改变侧管的口径，
使主管的输入信号适宜。
三、观察项目
(一)正常呼吸曲线
(二)增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细塑料或玻璃管插入气管插管的侧管，松开球胆的夹子，使部分CO2随吸气进入气管。
气体流速不宜过急，以免明显影响呼吸运动。
此时观察高浓度CO2对呼吸运动的影响。
去掉球胆，观察呼吸恢复正常的过程。
(三)缺氧：将一空球胆吸进少量空气，中间经一钠石灰瓶连至气管插管的侧管，让动物呼吸球胆内的少量空气。
观察此时呼吸运动有何变化?去掉上述条件，观察呼吸恢复正常的过程。
(四)增大无效腔：将50 cm长的橡皮管连接于气管插管的侧管上，观察此时呼吸运动的变化。
变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸恢复过程。
(五)血液中酸性物质增多时的效应：用5ml注射器，由耳缘静脉较快地注入3％乳酸2 ml，观察此时呼吸运动的变化及恢复过程。
(六)迷走神经在呼吸运动中的作用：先切断一侧迷走神经，观察呼吸运动有何变化。
再切断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。
在此基础上，观察对一侧迷走神经向中端低频，较弱的电刺激所至的呼吸运动的变化。
注意事项
一、手术过程中，应避免伤及主要血管(如：颈总动脉、颈
外静脉等)，以防出血。
二、为便于自身对照及互相对照，气管插管的侧管口径应自始至终保持一致。
讨论题
一、分析各项实验结果，缺O2及CO2增多时对呼吸的影响机制有何不同。
二、迷走神经在节律性呼吸运动中起何作用。