核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3炎性小体抑制剂

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综述 核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3
炎性小体抑制剂
兀娜ꎬ沈敏
作者单位:100730北京ꎬ中国医学科学院北京协和医学院北京协和医院风湿免疫科
国家皮肤与免疫疾病临床医学研究中心ꎬ风湿免疫病学教育部重点实验室
通信作者:沈敏ꎬE ̄mail:shenmpumch@163.com
DOI:10 3969∕j issn 1673 ̄8705 2020 01 012
ʌ摘要ɔNLRP3炎性小体是由核苷酸结合寡聚化结构域(nucleotide ̄bindingoligomerizationdomainꎬ
NOD)样受体蛋白3(Nod ̄likereceptorprotein3ꎬNLRP3)㊁凋亡相关斑点样蛋白(apoptosisassociated
speck ̄likeproteincontainingCARDꎬASC)及无活性的半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶1(cysteine ̄requiring
asparateprotease ̄1ꎬcaspase ̄1)前体组成的复合体ꎮ已有多项实验研究证实NLRP3炎性小体的活化是
各种危险因素激活机体炎症反应的关键环节ꎬNLRP3炎性小体参与到了多种疾病的发生发展过程中ꎬ
如2型糖尿病㊁冠状动脉粥样硬化㊁痛风㊁NLRP3相关自身炎症性疾病㊁阿尔兹海默病㊁炎性肠病
等ꎮ研发靶向调控NLRP3炎性小体的药物为治疗此类炎症代谢性疾病提供了新的思路ꎮ本文对近年
来NLRP3炎性小体抑制剂的研究进展进行综述ꎮ
ʌ关键词ɔ核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3炎性小体ꎻ抑制剂ꎻNLRP3相关自身炎症性疾病
基金项目:国家自然科学基金(81501405)ꎻ北京自然科学基金(7192170)ꎻ中国医学科学院医
学与健康科技创新工程项目(2017 ̄I2M ̄3 ̄001)
NLRP3inflammasomeinhibitors㊀WUNaꎬSHENMin
DepartmentofRheumatologyꎬPekingUnionMedicalCollegeHospitalꎬChineseAcademyofMedicalSciences&
PekingUnionMedicalCollegeꎬNationalClinicalResearchCenterforDermatologicandImmunologicDiseases
(NCRC ̄DID)ꎬKeyReumatologyandClinicalImmunologyꎬMinistryofEducationꎬBeijing100730ꎬChina
Correspondingauthor:SHENMinꎬE ̄mail:shenmpumch@163.com
ʌAbstractɔNLRP3inflammasomeisakindofcomplexcomposedofnucleotide ̄bindingoligomerization
domain(NOD) ̄likereceptorprotein3(NLRP3)ꎬapoptosisassociatedspeck ̄likeproteincontainingCARD
(ASC)andinactivatecysteine ̄requiringasparateprotease ̄1(caspase ̄1).Researcheshaveprovedthatactiva ̄
tionofNLRP3inflammasomeisthepivotalsteptoinduceinflammatoryreaction.HenceꎬNLRP3inflammasome
isinvolvedintheprocessanddevelopmentofvarietiesofdiseasesꎬincludingtype2diabetesꎬatherosclerosisꎬ
goutꎬNLRP3 ̄associatedautoinflammatorydiseaseꎬAlzheimer sdiseaseandinflammatoryboweldisease.Toin ̄
vestigatedrugsthattargetNLRP3inflammasomeprovidesnovelapproachesforthetreatmentofNLRP3inflam ̄
masome ̄relateddiseases.ThisreviewwillfocusonthescientificresearchesofNLRP3inflammasomeinhibitors
inrecentyears.
ʌKeywordsɔNLRP3inflammasomeꎻinhibitorꎻNLRP3 ̄associatedautoinflammatorydisease
Fundprogram:NationalNaturalScienceFoundationofChina(81501405)ꎻNaturalScienceFoundation
ofBeijing(7192170)ꎻCAMSInitiativeforInnovativeMedicine(CAMS ̄I2M)(2017 ̄I2M ̄3 ̄001)
㊀㊀炎性小体是一类模式识别受体(patternrecog ̄nitionreceptorsꎬPRRs)ꎬ可识别细胞内病原相关分子模式(pathogenassociatedmolecularpatternsꎬPAMPs)或损伤相关分子模式(damageassociatedmolecularpatternsꎬDAMPs)ꎬ是固有免疫的重要组成成分ꎮNLRP3炎性小体是目前研究最广泛㊁最
明确的一种炎性小体ꎬ由核苷酸结合寡聚化结构域(nucleotide ̄bindingoligomerizationdomainꎬNOD)样受体蛋白3(Nod ̄likereceptorprotein3ꎬNLRP3)㊁凋亡相关斑点样蛋白(apoptosis ̄associatedspeck ̄likeproteincontainingCARDꎬASC)和半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶1(cysteine ̄requiringaspartateprotease ̄1ꎬcaspase ̄1)组成(图1)ꎮNLRP3与PAMPs或DAMPs结合后招募下游分子ASCꎬ将无活性的促caspase ̄1前体活化为有生物学功能的caspase ̄1ꎬ
caspase ̄1能够剪切焦亡蛋白GasderminD触发细胞焦亡ꎬ并且促进了白介素(interleukinꎬIL) ̄1β和IL ̄18等炎性细胞因子的成熟和分泌ꎮIL ̄1β和IL ̄18作为强炎性因子能够有效促进免疫反应ꎬ过表达时会造成急慢性炎性损伤ꎬNLRP3炎性小体及其下游分子在一系列炎症性疾病的发生发展过程中扮演了重要的角色ꎬ如2型糖尿病㊁阿尔兹海默病㊁痛风㊁NLRP3相关自身炎症性疾病(NLRP3 ̄associatedau ̄toinflammatorydiseaseꎬNLRP3 ̄AID)(以往称为冷炎素相关周期性综合征ꎬcryopyrin ̄associatedperiodicsyndromeꎬCAPS)㊁帕金森病等[1 ̄5]ꎮNLRP3炎性小体的激活有以下4种可能的机制(图1):(1)胞外三磷酸腺苷(adenosinetriphosphateꎬATP)刺激细胞膜上的P2X7型嘌呤受体ꎬ引起钾离子选择性通道开放ꎬ胞内钾离子浓度降低是NLRP3炎性小体激活的一个重要因素[6]ꎻ(2)晶体物质被细胞吞噬后破坏溶酶体膜稳定性ꎬ溶酶体破裂释放出组织蛋白酶B(cathepsinBꎬCB)ꎬ致使NLRP3炎性小体激活[7]ꎻ(3)有氧代谢的副产物活性氧(reactiveoxygenspe ̄ciesꎬROS)从线粒体释放ꎬ或线粒体损伤释放的线粒体DNA均被证实能够促进NLRP3炎性小体的激活[8 ̄9]ꎻ(4)NLRP3通过其保守的碱性区域与带负电荷的磷脂酰肌醇 ̄4 ̄磷酸(phosphatidylinositol ̄4 ̄phosphateꎬPtdIns4P)结合而被募集到分散高尔基体反面网络结构(dispersedtrans ̄Golginet ̄workꎬ
dTGN)ꎬ后者能够提供结构支点促使NLRP3招募ASC以完成小体的组配[10]ꎮ通过抑制NLRP3炎性小体的激活可以治疗NLRP3炎性小体相关疾病ꎬ
因此NLRP3炎性小体抑制剂成为近年来的研究热点ꎮ本文按照不同作用靶点ꎬ对NLRP3炎性小体抑制剂的最新研究进展进行综述ꎮ
1㊀以NLRP3为作用靶点
1 1㊀阻断NLRP3中心区域ATP酶活化
NLRP3主要由3部分构成:碳端亮氨酸富集
结构域(LRRs)ꎬ可识别并结合PAMPs和DAMPsꎻ中心区域存在ATP
酶活化有关的核苷酸寡
图1㊀NLRP3炎性小体激活机制
Fig1㊀ActivationmechanismofNLRP3inflammasome
NLRP3:核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3ꎻDAMPs:损伤相关分子模式ꎻPAMPs:病原相关分子模式ꎻlysosome:溶酶体ꎻCathepsinBrelease:组织蛋白酶B释放ꎻdTGN:分散高尔基体反面网络结构ꎻPtdIns4P:磷脂酰肌醇 ̄4 ̄磷酸ꎻmitochondrion:线粒体ꎻROSrelease:活性氧释放ꎻmtDNArelease:线粒体DNA释放ꎻP2X7:胞外核苷酸P2X7型受体ꎻATP:三磷酸腺苷ꎻK+:钾离子ꎻNLRP3inflammasomeassembly:NLRP3炎性小体组装
寡聚结合域ꎬ称为NBD或NACHTꎻ氮端为效应结构域即pyrin结构域(PYD)ꎬ负责招募下游信号分子ꎮ其中NACHT区域ATP酶的活化是NLRP3寡聚化以及ASC招募的重要步骤[11]ꎬ阻断NLRP中心区域ATP酶活化可抑制NLRP3炎性小体活化ꎮ1 1 1㊀OLT1177
活性β ̄磺酰腈化合物OLT1177是氯化剂和甲硫氨酸合成反应产物的活性成分ꎬ能负性调控NACHT结构域ATP酶结合位点ꎬ抑制NLRP3炎性小体活化ꎮ免疫沉淀反应以及荧光能量共振转移分析技术表明OLT1177还能够阻断NLRP3与ASC和caspase ̄1的相互作用ꎮOLT1177对NLRC4和黑色素瘤缺乏因子2(absentinmelanoma2ꎬAIM2)炎性小体无作用ꎬ也不影响钾离子外流或IL ̄1β前体的合成ꎬ因此该药物是一种特异性NLRP3炎性小体抑制剂ꎮMarchetti等[12]研究发现ꎬ体外实验中OLT1177可以抑制小鼠巨噬细胞产生IL ̄1β㊁减少人外周血中性粒细胞和单核细胞产生IL ̄1β㊁抑制caspase ̄1活化ꎻ小鼠体内实验发现OLT1177能够减轻脂多糖(LPS)诱发的全身炎症ꎮ对痛风性关节炎及酵母聚糖诱发的急性反应性关节炎小鼠模型应用OLT1177可改善关节腔积液中炎细胞浸润情况ꎮ该药用于治疗痛风性关节炎的I期临床试验已取得成功ꎬ未发现OLT1177相关的显著不良事件ꎬ现已进入临床II期试验[13]ꎮ
1 1 2㊀CY ̄09
Jiang等[14]发现小分子化合物CY ̄09(分子式:C19H12F3NO3S2)可以与ATP竞争结合NACHT结构域上的与ATP酶活化有关的的WalkerA基序ꎬ减少ATP酶的活化进而阻断NLRP3炎性小体激活ꎮCY ̄09不影响NLRP3蛋白的泛素化㊁钾离子外流等ꎬ并且仅作用于NLRP3炎性小体ꎬ对NLRC4㊁NLRP1等炎性小体没有作用ꎬ是NLRP3炎性小体特异性抑制剂ꎮCY ̄09治疗NLRP3 ̄AID和2型糖尿病小鼠模型均有显著效果ꎬ且具有较好的安全性㊁稳定性及口服生物活性[14]ꎬ但目前尚未进行人体试验ꎮ
1 2㊀抑制NLRP3去泛素化
NLRP3的转录后修饰是调控其活化的关键步骤之一[15]ꎮ去泛素化酶(deubiquitinatingenzymesꎬDUB)BRCC3可使NLRP3的LRR结构域去泛素化ꎬ该环节在NLRP3炎性小体活化过程中起到了关键作用[16]ꎮ1 2 1㊀G5
G5(分子式:C19H14N2O7S)是一种小分子DUB抑制剂ꎬ也称异肽酶抑制剂ꎮ2006年有研究首次发现1μmolG5即可抑制LPS ̄ATP诱导的小鼠巨噬细胞分泌IL ̄1βꎬ但具体机制不详[17]ꎮPy等[18]进一步证实G5通过负性调控NLRP3去泛素化而抑制NLRP3炎性小体激活ꎬ阻断caspase ̄1活化ꎬ并不作用于NLRC4及AIM2炎性小体ꎬ因此是另一种特异性NLRP3炎性小体抑制剂ꎮ然而ꎬ也有学者认为DUB抑制剂是通过破坏NLRP3炎性小体中ASC的寡聚化和ASC斑点形成而抑制NLRP3炎性小体活化[19]ꎮ
1 2 2㊀多巴胺
多巴胺(dopamineꎬDA)是中枢神经系统内一种重要的神经递质ꎬ近年来有学者研究揭示了DA也参与了免疫反应过程ꎮ多数DA受体表达于免疫细胞表面ꎬ包括巨噬细胞和树突样细胞ꎬDA与细胞表面的受体结合发挥效应ꎮ现已发现的DA受体有5个亚型:DRD1ꎬDRD2ꎬDRD3ꎬDRD4及DRD5ꎮ2014年Yan等[20]发现DA是一种内源性NLRP3小体抑制剂ꎬ对单钠尿酸盐(mono ̄sodiumurateꎬMSU)㊁明矾㊁尼日利亚菌素以及ATP诱导的NLRP3活化均表现出抑制作用ꎻ由DA激活的DRD1信号通路不仅可以缓解小鼠体内神经毒素MPTP诱导的神经炎症ꎬ还能改善LPS诱导的外周炎症以及MSU诱导的腹腔感染ꎮ在DA发挥抑制NLRP3小体作用过程中ꎬDRD1起到了主要作用ꎬDRD5作用次之ꎬ而DRD2㊁DRD3和DRD4则未发挥作用ꎮ在DRD1基因敲除(Drd1-/-)小鼠的巨噬细胞内ꎬDA则未能发挥抑制NLRP3炎性小体的作用ꎬ因此进一步证实了DRD1的作用ꎮ
DA通过DRD1信号通路改变了腺苷酸环化酶(cAMP)构型ꎬ使其活性增强ꎬcAMP的生成增多ꎬ小鼠巨噬细胞内cAMP活化E3泛素连接酶MARCH7ꎬ催化NLRP3的泛素化使其经细胞自噬过程被降解ꎮ这与cAMP激活剂Forskolin能够负性调控NLRP3炎性小体的活化所示的机制类似[21]ꎮ上述研究结果提示DA可能是治疗NLRP3炎性小体相关性疾病的一种有效药物ꎮ
1 3㊀抑制NLRP3与NLRP3的连接
抗过敏药物曲尼司特(TranilastꎬTR)能够抑制IgE介导肥大细胞释放组胺的过程ꎬ临床应用于治疗和预防过敏性哮喘及过敏性皮炎已有近40年的历史ꎬ安全性良好ꎮHuang等[22]发现TR能够直接与NLRP3结合进而抑制NLRP3炎性小体的活
化ꎬ与OLT1177㊁CY ̄09不同的是ꎬTR对NLRP3炎性小体的抑制作用与NACHT结构域的ATP酶活性无关ꎬ而是直接影响NLRP3与NLRP3的相互连接ꎬ进而阻断了NLRP3炎性小体的组装ꎮ痛风性关节炎及NLRP3 ̄AID小鼠模型应用TR后ꎬ体内
IL ̄1β㊁IL ̄18浓度低于空白对照组ꎬ关节腔积液量减少ꎬ死亡率也明显减低ꎻ痛风性关节炎患者关节滑液细胞加入TR共培养后ꎬcaspase ̄1活化和IL ̄1β生成减少ꎬ且与TR的剂量存在相关性ꎮ后文即将提及的MCC950是公认的NLRP3炎性小体强效特异性抑制剂ꎬTR与MCC950的对照试验表明TR在体外的药物效能约是MCC950的1/400ꎬ但在体内其药物效能约为MCC950的1/10~1/5ꎬ且TR不影响NLRC4或AIM2炎性小体ꎬ对钾离子外流及线粒体损伤无作用ꎬ特异性较强ꎮTR的相关研究为探索老药的新作用提供了重要思路ꎮ
2㊀以ASC为作用靶点
NLRP3依赖性的ASC寡聚化被认为是NLRP3炎性小体激活的关键环节ꎬASC寡聚化后形成caspase ̄1活化的平台即ASC斑点[23 ̄24]ꎮ因此ꎬ抑制ASC寡聚化可抑制NLRP3炎性小体活化ꎮ
2 1㊀MCC950
2001年Perregaux等[25]首次发现二芳基磺酰脲复合物有抑制IL ̄1β分泌的功能ꎬ其中ꎬMCC950被研究得最为深入ꎬ是一种公认的强效特异性小分子NLRP3炎性小体抑制剂ꎮMCC950通过抑制ASC的寡聚化和ASC斑点形成特异性地抑制NLRP3炎性小体的活化ꎬ低浓度的MCC950即能抑制尼日利亚菌素诱导的小鼠体内骨髓来源巨噬细胞和外周血单核细胞释放IL ̄1βꎬ该药不影响钾离子外流ꎬ也不作用于NLRC4㊁AIM2炎性小体ꎮMCC950在NLRP3 ̄AID小鼠模型体内及从NLRP3 ̄AID患者体内提取的外周血单核细胞中均能有效抑制NLRP3炎性小体ꎬ体内/外药代动力学实验表明其口服有效生物利用率高达68%[26]ꎮ
MCC950在除NLRP3 ̄AID之外的其他疾病也可能发挥作用ꎮ帕金森病是一种常见的神经退行性病变ꎬα ̄突触核蛋白是与该病相关的基因突变编码蛋白ꎬ可以激活NLRP3炎性小体[5]ꎮMCC950能够通过血脑屏障ꎬ且口服有效ꎬ该药可阻断临床前期帕金森病小鼠模型α ̄突触核蛋白原纤维诱导的ASC寡聚化ꎬ下调NLRP3炎性小体的表达ꎬ最终减缓小鼠中枢神经系统黒质纹状体多巴胺能神经元损害[27]ꎮHout等[28]应用MCC950治疗心肌梗死猪模型(3~6mg/kgꎬ共7d)ꎬMCC950组与对照组相比ꎬ实验动物血清IL ̄1β浓度降低ꎬ左室射血分数保留度高ꎬ通过伊文氏蓝/TTC染色确定风险区域(areaatriskꎬAR)及梗死面积(infarctsizeꎬIS)发现前者的AR/IS值低于后者ꎬ提示MCC950具有改善心肌梗死预后的潜能ꎮ此外ꎬ对颈动脉粥样硬化小鼠模型应用MCC950(10mg/kgꎬ3次/周ꎬ共4周)后观察到小鼠颈部血管粥样斑块体积减小ꎬ血清IL ̄1β及血管细胞黏附分子(VCAM ̄1)浓度减低[29]ꎮ2 2㊀β ̄羟丁酸
内源性化合物β ̄羟丁酸(β ̄hydroxybutyrateꎬBHB)可阻断ATP介导的ASC寡聚化及ASC斑点形成ꎬ部分抑制巨噬细胞内钾离子的外流ꎬ从而负性调控炎性小体的装配ꎮ由于BHB在人体内的清除率较高ꎬ故常常将BHB和纳米脂质体聚合凝胶(nanolipogelꎬnLGs)同时使用以提高其在血液中的浓度以及生物活性ꎮ对注射MSU的小鼠应用nLGs ̄BHB后ꎬ小鼠巨噬细胞产生的IL ̄1β较对照组明显减少ꎮ对NLRP3 ̄AID小鼠模型以及MSU诱导腹膜炎小鼠模型应用nLGs ̄BHB后均发现caspase ̄1活化降低ꎬIL ̄1β产生减少[30]ꎮ
3㊀caspase ̄1抑制剂
VX ̄765是一类口服有效的caspase ̄1抑制剂ꎬ在小鼠体内经肝酶作用转化为具有生物代谢活性的VRT ̄043198ꎮWannamaker等[31]发现VX ̄765可显著降低健康小鼠血浆中LPS诱导释放的IL ̄1β浓度ꎬ在剂量为100mg/kg时效果最为显著ꎻ对类风湿关节炎模型小鼠应用VX ̄765(100mg/kgꎬ2次/d)后ꎬ关节的炎症评分降低ꎬ与泼尼松龙(5mg/kg)疗效相当ꎮ
目前普遍认为神经元细胞内β ̄淀粉样蛋白(amyloid ̄βꎬAβ)聚集沉积形成斑块是阿尔兹海默病的特征性病理学表现ꎬ而NLRP3炎性小体被证实参与到Aβ的聚集过程中[2]ꎬ对阿尔兹海默病小鼠模型应用VX ̄765(3次/周ꎬ1~3周)后ꎬ小鼠颅内Aβ沉积减少ꎬ瞬时和长期记忆损伤的症状有所改善ꎮ淀粉样前体蛋白(Aβ的前体物质)转染的人类神经元细胞加入VX ̄765共培养可减少神经细胞轴突的串珠状改变[32]ꎮ以上发现提示VX ̄765具有治疗NLRP3炎性小体相关性疾病的潜在可能ꎮ
4㊀其他药物
4 1㊀铜离子螯合剂四硫钼酸盐
细胞内活性铜离子参与了人和小鼠巨噬细胞内
NLRP3炎性小体活化过程[33]ꎮ适量的铜离子螯合剂能够减轻LPS诱导的炎性反应[34]ꎮ铜离子螯合剂四硫钼酸盐(tetrathiomolybdateꎬTTM)作为一类有效的铜离子螯合剂ꎬ目前在临床上用于治疗Wilison病及乳腺癌ꎬ安全性良好ꎮ超氧化物岐化酶(super ̄oxidedismutase1ꎬSOD1)是一种含铜生物酶ꎬ铜是酶分子的活性中心结构并在催化反应中传递电子ꎬ
参与细胞内抗氧化过程继而降低胞内ROS浓度ꎬ而线粒体来源的ROS被认为是调控NLRP3炎性体活化的关键信号之一[9]ꎮ应用TTM后进行流式细胞分析发现ꎬ经LPS诱导的小鼠巨噬细胞ASC含量降低ꎬ成熟caspase ̄1的表达量减少ꎬ小鼠的内毒素中毒症状也有所缓解ꎮTTM不作用于AIM2㊁NLRC4及NLRP1炎性小体ꎬ不抑制NF ̄κB及MAPK通路ꎬ具有较强的选择性ꎮ同时ꎬ还有研究证实TTM能够抑制由铜 ̄Aβ复合体导致氧化应激而产生的ROSꎬ因而可能具有治疗阿尔茨海默病的作用ꎬ进一步药理实验还在进行中[35]ꎮ
4 2㊀ω ̄3多不饱和脂肪酸
有研究发现ω ̄3多不饱和脂肪酸(ω ̄3polyun ̄
saturatedfattyacidꎬω ̄3PUFA)能够抑制包括IL ̄1β
在内的炎性细胞因子的产生ꎬ但具体机制尚不明确[36]ꎮ另一项动物实验结果表明血浆中ω ̄3PUFA含量增高可以显著降低2型糖尿病的发生风险[37]ꎮ在此基础上ꎬYan等[38]研究证实ω ̄3PUFA抑制了
NLRP3依赖性caspase ̄1的激活和IL ̄1β的分泌ꎮG蛋白偶联受体(Gprotein ̄coupledreceptorꎬGPR)120和GPR40与ω ̄3PUFA的抗炎作用有关[39]ꎬβ ̄arrestin ̄2(ARRB2)是GRP120的下游支架蛋白[40]ꎬ实验发现ω ̄3PUFA可以促进ARRB2和NLRP3蛋白结合ꎬ间接激活GPR120和GPR40独立信号通路ꎬ下调NLRP3炎性小体的表达ꎮ2型糖尿病大鼠模型应用ω ̄3PUFA后其胰岛素抵抗明显改善ꎬ血糖控制趋于稳定ꎮ
5㊀总结与展望
NLRP3炎性小体在多种炎症性㊁代谢性疾病
中发挥了重要作用ꎬ以NLRP3炎性小体为靶点治疗NLRP3炎性小体相关性疾病具有广阔的临床前景(图2)ꎮ本文所述NLRP3
炎性小体抑制剂大多
图2㊀NLRP3炎性小体结构示意图及不同抑制剂作用部位
Fig2㊀StructureofNLRP3inflammasomeandtargetsofdifferentinhibitors
注:NLRP3:核苷酸结合寡聚化结构域样受体蛋白3ꎻASC:凋亡相关斑点样蛋白ꎻLRRs:亮氨酸富集结构域ꎻNACHT:ATP酶活化有关的核苷酸寡聚结合域ꎻCARD:caspase募集结构域ꎻPYD:pyrin结构域ꎻPro ̄caspase ̄1:半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶1前体ꎻcaspase ̄1:半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶1ꎻDA:多巴胺ꎻTranilast:曲尼司特ꎻBHB:β ̄羟丁酸ꎻpro ̄IL ̄18:白介素18前体ꎻpro ̄IL ̄
1β:白介素1β前体ꎻIL ̄18:白介素18ꎻIL ̄1β:白介素1β
尚未开展临床实验或正式应用于临床ꎮ目前仍有许多亟待解决的问题ꎬ如NLRP3炎性小体抑制剂的安全性如何评估ꎬ能否寻找到不同刺激剂激活
NLRP3炎性小体的共同通路并加以抑制ꎬ能否联合应用不同类型的NLRP3炎性小体抑制剂等ꎮ深入探究NLRP3活化和调控机理并以此为基础研发特异性NLRP3炎性小体抑制剂ꎬ为治疗NLRP3炎性小体相关性疾病带来了新的希望ꎮ
参㊀考㊀文㊀献
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((2Rꎬ3S) ̄2 ̄ethoxy ̄5 ̄oxo ̄tetrahydro ̄furan ̄3 ̄yl) ̄amide
(VX ̄765)ꎬanorallyavailableselectiveinterleukin(IL) ̄con ̄
vertingenzyme/caspase ̄1inhibitorꎬexhibitspotentanti ̄inflam ̄
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