大肠菌群的测定(王鑫乐)

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大肠杆菌测定

大肠杆菌测定

双 料l
双 料
双 料
单 料
单 料
单 料
单 料
单 料
单 料
盐 水
稀 释 液
10*0.1 1ml
1*0.1 0.1ml
1*0.01 0.01ml
0.01
0.1
36±1 C培养箱内.培养24±12h 如发酵都不产气,则报告大肠阴 性如发酵有产气进行下步试验
O
C.分离培养
将产气的样品接种伊红美兰培养基 上,36±1OC培养箱内培养,18±24h 观察菌落形态,并做革兰氏染色证实实验 菌落形态:①深紫黑色,具有金属光泽的菌落 ②紫黑色,不代或略带金属光泽的 菌落 ③淡紫黑色,中心色较深的菌落 (可疑菌落)粉红色,中心色无较深的菌落
注意事项
(1).初发酵和证实试验:乳糖发酵实验系样品 发酵,不是纯菌的发酵实验,所以初发酵阳性 并不代表大肠菌群阳性,因此,必须做进一步 证实实验.
(2).产气量与倒气管:
① 用于初发酵或复发 酵的导以产气为主,产酸仅作参考
③导气管口被样品颗粒封住,影响结果
• 3)挑选菌落:在平板呈黑色,有或无金属光泽, 检出率最高,粉红色,粉色检出率最低.只挑选 一个菌落影响大肠菌群的检出率,当菌落不 典型时,应挑选2~3个菌落作证实试验,以免 出现假阴性. • (4) MPN检索表:本表采用3个稀释度,即 1ml(g),0.1ml(g), 0.01ml(g) 若改用10ml(g),1ml(g), 0.1ml(g)时,表内数 字应相应降低10倍. 若改用0.1ml(g),0.01ml(g), 0.001ml(g)时, 表内数字应相应增加10倍.
原理:1 一群能发酵乳糖,产酸产气,需氧
和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌. o o +2 C能在有胆 2 大肠菌群在36 C 盐存在下生长

食品中大肠菌群的测定实验报告

食品中大肠菌群的测定实验报告

食品中大肠菌群的测定实验报告一、实验目的。

本实验旨在测定食品中的大肠菌群数量,以评估食品的卫生安全水平。

二、实验原理。

食品中的大肠菌群是指能在37℃条件下在Lauryl Tryptose Broth培养基中生长产气的革兰氏阴性杆菌的总数。

大肠杆菌是大肠菌群的代表性菌种,因此其数量可以作为食品卫生安全的指标之一。

三、实验步骤。

1. 取样,从不同来源的食品中取样,如肉类、蔬菜、水果、奶制品等。

2. 样品处理,将取样的食品样品进行处理,如洗涤、研磨等,以获得可检测的样品。

3. 菌落计数,将处理后的样品接种在Lauryl Tryptose Broth培养基中,培养一定时间后,进行菌落计数。

4. 数据分析,根据菌落计数结果,计算出食品中的大肠菌群数量。

四、实验结果。

经过实验测定,不同食品样品中的大肠菌群数量有所不同。

其中,肉类制品中的大肠菌群数量较高,蔬菜水果中次之,奶制品中较低。

这表明食品的卫生安全水平存在一定差异。

五、实验结论。

食品中的大肠菌群数量是评估食品卫生安全水平的重要指标之一。

通过本实验的测定,可以初步评估食品的卫生安全状况,为食品生产和消费提供参考依据。

未来可以结合其他指标和方法,进一步完善食品卫生安全评估体系。

六、实验注意事项。

1. 在取样和处理过程中,要注意避免外源污染,以保证实验结果的准确性。

2. 在菌落计数过程中,要严格按照操作规程进行,避免误差的产生。

3. 实验结束后,要及时清洗和消毒实验器材,以确保实验室的卫生安全。

七、参考文献。

1. 《食品微生物学实验指导》,XXX,XXX出版社,200X年。

2. 《食品卫生与安全》,XXX,XXX出版社,200X年。

以上为食品中大肠菌群的测定实验报告内容,谢谢阅读。

实验--食品中大肠菌群的测定-课件 (一)

实验--食品中大肠菌群的测定-课件 (一)

实验--食品中大肠菌群的测定-课件 (一)随着人们对食品安全的重视,食品中大肠菌群的测定越来越受到关注和重视。

在食品安全监测和生产中,常常需要进行大肠菌群的检验,以保证食品的卫生安全。

此次实验旨在学习并掌握食品中大肠菌群的测定方法。

实验一、菌落计数法1.准备样品:取适量的食品样品,如牛奶、肉制品等,加入适量的蒸馏水,充分摇匀后待用。

2.制备平板:准备好平板培养基,常用的有菌落总数计数培养基和大肠杆菌计数培养基等。

用已灭菌的棉签挖取少量培养基涂抹在培养皿上,使其均匀分布。

3.采样:用无菌的移液管取一定量的稀释后的样品,滴于培养皿表面。

4.培养:将培养皿倒置放入恒温箱中,在37℃温度下培养24-48小时。

5.计数:观察培养皿上的菌落数量,使用菌落计数器进行计数,按一定倍数(如1/10、1/100)还原为真实菌落数量。

实验二、MPN法1.制备移液器:准备好10个稀释液和10个带有3个具孔的板,每个孔中加入相应的稀释液。

2.取样:从食品样品中取一定量,用蒸馏水稀释后,分别分装到板中。

3.培养:将板放到37℃恒温培养箱中进行培养,观察是否有生长。

4.判断仪器读数:根据板中生长、未生长的情况计算菌落数,并用最可能数法计算出MPN结果。

总结通过两种方法的比较,可以看出,两种方法都有各自的优点和缺点,需要根据实际需求进行选择。

对于无法进行菌落计数的样品,可以选择MPN法,它具有精度高、结果稳定等特点。

而对于数量较少的样品,可以更为准确地使用菌落计数法。

本次实验学习了食品中大肠菌群的测定方法,虽然实验中用了人工计数,但实际工作中,常常会结合现代化设备进行自动化检测,从而提高检测效率和准确度。

对于保障食品卫生安全,这一方面的控制是很有必要的。

大肠菌群测定方法

大肠菌群测定方法

大肠菌群测定方法大肠菌群是人体内肠道中的一类细菌群,对人体具有重要的生理功能。

测定大肠菌群的方法有很多种,包括传统的培养法、分子生物学方法以及肠道菌群DNA测序等。

传统的培养法是测定大肠菌群的一种常用方法。

这种方法主要是将肠道样本采集后,通过在培养基上培养细菌来测定大肠菌群的分布情况。

首先,将采集到的样本放入富营养培养基中培养,然后通过对细菌在培养基上的生长情况以及染色特性进行观察和鉴别。

通过这种方法可以初步了解肠道中细菌的类型和数量,但是存在着一些限制,比如只能培养出一些特定的细菌,而有些细菌无法通过这种方法来测定。

分子生物学方法是一种较新的测定大肠菌群的方法。

这种方法主要是通过分析肠道样本中的细菌DNA来测定大肠菌群的类型和数量。

首先,将肠道样本中的细菌进行裂解,提取其中的DNA。

然后利用特定的引物对DNA进行扩增,最后通过凝胶电泳等方法分析扩增产物的大小和数量来判断肠道中细菌的组成。

与传统的培养法相比,分子生物学方法可以测定更多种类的细菌,并且更加准确和快速,但是也有一些限制,比如需要复杂的实验操作和设备,以及对样本的处理要求较高。

肠道菌群DNA测序是一种较新的测定大肠菌群的方法。

这种方法是在分子生物学方法的基础上发展而来的,主要是利用高通量测序技术对肠道样本中的细菌DNA进行全面的测序分析。

首先,将肠道样本中的细菌DNA进行提取和净化,然后对DNA进行测序,得到大量的序列数据。

最后通过对序列数据进行比对和分析,可以得到肠道中细菌的种类和数量,进一步了解整体的菌群结构和功能。

与前两种方法相比,肠道菌群DNA测序具有更高的准确性和分辨率,可以得到更全面和详细的信息,但是也需要更多的实验和数据处理,并且成本相对较高。

总的来说,大肠菌群测定方法包括传统的培养法、分子生物学方法和肠道菌群DNA测序等。

每种方法都有其优缺点,选择合适的方法需要根据具体的研究目的和经济条件来决定。

而随着科学技术的不断进步,相信未来还会有更多更先进的方法出现来帮助我们更好地测定大肠菌群。

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告
《大肠菌群的测定实验报告》
实验目的:通过实验测定大肠菌群的数量,了解其在肠道中的分布情况,并探讨其与健康的关系。

实验方法:我们采集了一组健康人群的粪便样本,并使用培养基和平板计数法对大肠菌群进行测定。

首先,我们将粪便样本均匀涂抹在培养基上,然后将培养皿放入恒温箱中进行培养。

培养后,我们对培养皿上的菌落进行计数,并根据计数结果得出大肠菌群的数量。

实验结果:经过实验测定,我们发现健康人群的大肠菌群数量在正常范围内,平均值约为10^8 CFU/g。

同时,我们还发现不同个体之间的大肠菌群数量存在一定的差异,但总体上呈现出稳定的分布情况。

实验分析:大肠菌群在肠道中起着重要的作用,它能够帮助人体消化食物、产生维生素等。

同时,大肠菌群的数量与肠道健康密切相关,过多或过少都可能导致肠道问题。

因此,通过测定大肠菌群的数量,可以帮助我们了解肠道健康状况,及时采取相应的调节措施。

结论:通过本次实验测定,我们得出了健康人群大肠菌群数量的正常范围,并认识到了大肠菌群在肠道健康中的重要作用。

希望通过这一实验结果,能够为人们提供更多关于肠道健康的参考信息,促进人们更加关注和重视肠道健康。

实验:大肠菌群的测定1

实验:大肠菌群的测定1

大肠菌群的测定1目的和要求(1)了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义(2)学习并掌握大肠菌群的检验原理和方法,以判别食品的卫生质量2原理大肠菌群之一群能在37℃经24h能发酵乳糖,产生气体,需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。

该菌主要来源于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,具有广泛的卫生学意义。

它反映了食品是否被粪便污染,同时间结指出食品是否有肠道致病菌污染的可能。

三步法:(1)发酵乳糖,产气产酸发酵试验;(2)初发酵阳性管通过伊红美兰平板进行分离;(3)复发酵对分离菌做证实实验。

食品中大肠菌群数系以每100g(或100ml)检样内大肠菌群最近数(the most probable number 简称MPN)表示。

最近数MPN法是一种将样品“多次(管)稀释至无菌”的计数方法。

将3个稀释梯度的待检验样品稀释液接种于9支或15支试管培养基中,每个稀释梯度试液接种3或5支。

经过培养后,根据结果查阅MPN检索表,就可以得到原样品中微生物的估计数量。

MPN检测方法尤其适用于带菌量、其他方法不能检测的食品,如水、乳制品及其其他食品中大肠菌群的计数。

3材料3.1样品乳、肉、果汁、糕点、发酵调味品及其他食品。

本实验对象菠萝汁和果粒橙3.2菌种大肠埃希氏菌(Escherichia coli)、产气杆菌(Enterobacteria aerogenes)3.3培养基及其试剂乳糖胆盐发酵管(单料或双料)、乳糖发酵管、伊红美兰琼脂干粉(EMB)、革兰氏染色液、无菌生理盐水(9ml/试管,225ml/250ml三角瓶,内含有适量玻璃珠)、75%酒精棉球等3.4其他恒温箱、恒温水域、药物天平、无菌培养皿、无菌吸管(1ml、10ml)、无菌不锈钢勺、无菌称量纸、质均器、载玻片等4流程样品↓无菌称量25g稀释↓温热的225ml灭菌生理盐水锥形瓶;再作1:10稀释度(即取1ml第一次稀释后的样品,加入到9ml的生理盐水中去)再作1:100稀释度接种、培养↓取1ml试样接种到接种到乳糖单眼发酵液中,每个梯度稀释液作3次接种,并在24±2h,36±1℃条件下进行培养初发酵结果分析↓若不产气,即为大肠杆菌阴性,报告大肠杆菌阴性;气,则划线伊红美兰琼脂平板23±3h、36±1℃进行培养分离结果↓革氏染色:若为G+阳性,报告大肠杆菌阴性;若为G-阴性则为无芽孢杆菌接种(复发酵)↓乳糖发酵管中24±2h,36±1℃件下培养最终结果产气报告大肠杆菌阳性;不产气报告大肠杆菌阴性5步骤5.1实验准备取样稀释,做成1:10、1:100、1:1000的均匀稀释液为检样。

大肠菌群的测定方法

大肠菌群的测定方法

大肠菌群的测定
灭菌:将试管、小导管、吸管、药品(配制好的月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤)用纸包好,放入灭菌锅中灭菌121℃ 15分钟。

测定:以无菌吸管吸取10ml样品放入盛有90ml生理盐水的容量瓶中,充分混匀,制成稀释度为1:10的样品匀液。

用1ml灭菌吸管吸取1:10的稀释液1ml注入盛有9ml灭菌生理盐水的试管内,振摇试管混匀制成1:100的稀释液。

另取1ml灭菌吸管,按上述吸取1:100的稀释液1ml,注入盛有9ml灭菌生理盐水的试管内,混匀制成1:1000的稀释液。

每递增稀释一次,换用一支1ml灭菌吸管。

一般选择三个稀释度,每个稀释度接种三个管,同时做空白对照试验,置36±1℃的恒温培养箱内,培养24±2h,如果倒管内都不产气则可报告大肠菌群阴性。

检验员:。

大肠菌群检测的实验报告

大肠菌群检测的实验报告

大肠菌群检测的实验报告大肠菌群检测实验报告一、实验目的本实验旨在通过检测样品中的大肠菌群数量,评估其卫生质量,为食品安全和人类健康提供重要依据。

二、实验原理大肠菌群是指一群革兰氏阴性、无芽孢、兼性厌氧的细菌,主要包括埃希氏菌属、柠檬酸杆菌属、肠球菌属等。

这些细菌可在25-37℃的环境下生长,且在伊红美蓝培养基上形成典型的大肠菌群菌落。

本实验采用MPN(最大可能数)方法进行大肠菌群的检测。

通过在不同浓度的样品中接种不同体积的培养基,并按照MPN表进行统计分析,以获得样品中大肠菌群的数量。

三、实验步骤1.样品处理:将样品按照10倍递增的方式进行稀释,以适应不同浓度的大肠菌群检测。

2.接种培养:分别取0.1mL、0.01mL、0.001mL的样品稀释液,接种于伊红美蓝培养基中,每个稀释度接种三管。

轻轻摇匀,倒置培养。

3.培养观察:将培养基放入37℃的培养箱中,培养24小时。

观察每个稀释度的培养管中是否有典型的大肠菌群菌落形成。

4.结果统计:根据MPN表,统计每个稀释度下形成菌落的管数,并计算大肠菌群的数量。

5.结果报告:根据实验数据,得出样品中大肠菌群的数量,并评估其卫生质量。

四、实验结果与分析经过24小时的培养观察,我们发现样品稀释度为10倍和100倍的培养管中形成了典型的大肠菌群菌落。

根据MPN表进行统计分析,得出样品中大肠菌群的数量为9.0×10²CFU/mL。

根据国家相关标准,该样品的大肠菌群数量超过了安全阈值(<10³CFU/mL),因此该样品的卫生质量不达标。

五、结论与建议通过本实验的检测和分析,我们得出样品中大肠菌群的数量超出了安全阈值,说明该样品的卫生质量不符合要求。

这可能是由于生产过程中的污染、储存条件不当或运输环节不卫生等原因导致的。

为了确保食品安全和人类健康,建议相关部门加强对食品生产和流通环节的监管力度,提高食品产业的卫生质量标准,并采取有效的措施确保食品的安全性。

大肠菌群mpn检验法的流程

大肠菌群mpn检验法的流程

大肠菌群mpn检验法的流程大肠菌群MPN检验法是一种用于测定水样和食品中大肠菌群浓度的方法。

其原理基于数值分析法,通过对3杯平行称量水样的不同稀释液进行培养并观察其菌落形态和数量,从而计算出大肠菌群的数量。

以下是大肠菌群MPN检验的详细流程。

步骤一:准备试管、试剂和培养基1. 选择三个或更多的试管,标记上每个试管的编号。

2. 准备9 ml 0.1%碳酸钠液,并在每个试管中加入 10 ml。

3. 在每个试管中加入 1 ml 稀释液1。

4. 在每个试管中加入 1 ml 稀释液2。

5. 在每个试管中加入 1 ml 稀释液3。

6. 在每个试管中加入 9 ml 液体培养基。

可以使用多种不同的培养基,如McConkey 培养基和E.coli/coliforms双层营养琼脂板。

步骤二:制备稀释液1. 制备初次稀释液。

将被测水样取10 ml,加入90 ml稀释液1中,充分混合得到10-1(即1/10)的初次稀释液。

2. 制备第二次稀释液。

在稀释液1中各取1 ml,加入9 ml稀释液2中,充分混合得到10-2(即1/100)的第二次稀释液。

3. 制备第三次稀释液。

在稀释液2中各取1 ml,加入9 ml稀释液3中,充分混合得到10-3(即1/1000)的第三次稀释液。

步骤三:测定大肠菌群1. 从每个试管中取10 ml水样或者是不同浓度的稀释液,加入液体培养基中。

2. 在培养基中进行培养。

大肠菌在摄氏35-37度下,48小时内可以在大部分培养基上生长。

这非常重要因为不同的培养基其菌群生长的时间和数量可能会有所不同。

3. 观察培养结果。

如果在试管中形成了典型的大肠菌落,就说明这个营养基中含有大肠菌。

如没有形成典型菌落,可能需要重新试验。

4. 根据试管中出现大肠菌的情况,使用MPN表来计算每毫升水样中的大肠菌数量。

MPN表是一种标准表格,可以用来对菌落数量进行估算。

步骤四:分析结果MPN值是指每毫升水样中大肠菌群数量的估计值。

大肠菌群测定实训报告总结

大肠菌群测定实训报告总结

一、实训背景大肠菌群是指一群能在37℃下48小时内发酵乳糖、产酸产气的革兰氏阴性无芽孢杆菌。

大肠菌群是食品卫生学中重要的微生物指标之一,其存在与否直接关系到食品的卫生质量。

为了提高我们对大肠菌群检测方法的理解和实际操作能力,我们进行了大肠菌群测定实训。

二、实训目的1. 掌握大肠菌群检测的基本原理和操作方法。

2. 熟悉实验室常规操作,提高实验技能。

3. 培养团队协作精神和严谨的科学态度。

三、实训内容1. 大肠菌群检测原理大肠菌群检测主要依据MPN(最可能数)法,通过观察样品在培养过程中是否产生酸、产气来判断大肠菌群的存在,并计算出其数量。

2. 实验步骤(1)样品采集:按照GB/T 4789.3-2003《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群测定》进行样品采集。

(2)样品处理:将采集到的样品进行均质化处理,使其成为均匀的悬浮液。

(3)接种:将处理后的样品接种到乳糖胆盐发酵管中。

(4)培养:将接种好的发酵管放入37℃培养箱中培养48小时。

(5)观察:观察发酵管中是否产生气泡和浑浊现象。

(6)计算:根据发酵管中产生气泡和浑浊现象的数量,结合MPN表计算大肠菌群数量。

3. 实验结果与分析本次实训,我们共检测了10个样品,包括糕点、蜜饯、汽水等。

根据实验结果,其中6个样品检测出大肠菌群,其余4个样品未检测出大肠菌群。

分析原因如下:(1)样品采集:样品采集过程中,应注意采集部位和采集方法,避免污染。

(2)样品处理:样品处理过程中,应确保样品均匀,避免因处理不当导致检测结果不准确。

(3)接种:接种过程中,应确保接种环清洁,避免交叉污染。

(4)培养:培养过程中,应确保培养箱温度稳定,避免因温度波动导致检测结果不准确。

四、实训体会1. 实验操作过程中,要严格遵守实验室操作规程,确保实验结果的准确性。

2. 在实验过程中,要注意观察细节,如接种环的清洁、培养箱温度的稳定性等,这些细节对实验结果有很大影响。

3. 团队协作精神在实验过程中至关重要,遇到问题时,要学会与团队成员沟通、讨论,共同解决问题。

大肠菌群测定实验报告

大肠菌群测定实验报告

大肠菌群测定实验报告大肠菌群测定实验报告引言:大肠菌群是人体肠道中的一类重要菌群,对人体健康起着至关重要的作用。

本实验旨在通过测定大肠菌群的数量和种类,了解其在人体健康中的重要性,并探讨不同因素对大肠菌群的影响。

实验方法:1. 实验材料准备:收集参与实验者的粪便样本,标记编号。

2. 样本处理:将粪便样本均匀取样,并加入适量的生理盐水进行稀释。

3. 菌落计数:将稀释后的样本分别均匀涂布在含有营养物质的琼脂平板上,进行培养。

4. 菌落观察:观察培养后的琼脂平板上的菌落形态,记录不同形态的菌落数量。

5. 菌种鉴定:通过形态学特征和生化试验等方法,对菌落进行鉴定,确定大肠菌群的种类。

实验结果:经过菌落计数和菌种鉴定,我们得到了以下实验结果:1. 大肠菌群数量:参与实验者的大肠菌群数量在不同个体间有所差异,平均菌落计数为X CFU/g。

2. 大肠菌群种类:通过菌种鉴定,我们确定了参与实验者大肠菌群的主要种类,包括大肠埃希菌、肠球菌等。

讨论:1. 大肠菌群与人体健康:大肠菌群在人体健康中起着至关重要的作用。

它们参与食物消化、维持肠道黏膜屏障功能、合成维生素等多种生理过程。

因此,大肠菌群的数量和种类的稳定与人体健康密切相关。

2. 影响大肠菌群的因素:大肠菌群的数量和种类受到多种因素的影响,包括饮食习惯、生活环境、抗生素使用等。

不良的饮食习惯、环境污染以及滥用抗生素可能会导致大肠菌群失衡,从而引发肠道疾病。

3. 维护大肠菌群健康的方法:保持均衡的饮食,摄入足够的膳食纤维和益生菌,避免滥用抗生素,定期进行大肠菌群检测等,都是维护大肠菌群健康的重要方法。

结论:通过本次实验,我们了解到大肠菌群在人体健康中的重要性,并明确了影响大肠菌群的因素。

为了维护大肠菌群的健康,我们需要注意饮食习惯、生活环境以及合理使用抗生素等。

进一步研究大肠菌群与人体健康的关系,有助于预防和治疗肠道相关疾病,提高人体健康水平。

参考文献:1. Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C., & Finlay, B. B. (2010). Gut microbiota in health and disease. Physiological reviews, 90(3), 859-904.2. Qin, J., Li, R., Raes, J., Arumugam, M., Burgdorf, K. S., Manichanh, C., ... & Wang, J. (2010). A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature, 464(7285), 59-65.。

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告

一、实验目的1. 了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义。

2. 学习并掌握大肠菌群的检验原理和方法。

3. 通过实验,判断食品的卫生质量。

二、实验原理大肠菌群是指一群能在37℃经24小时发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。

该菌主要来源于人畜粪便,因此常作为粪便污染的指标来评价食品的卫生质量。

大肠菌群的存在反映了食品是否被粪便污染,同时也间接指出了食品是否有肠道致病菌污染的可能性。

食品中大肠菌群数以每100g检样内大肠菌群最近似数表示。

最近似数法是一种将样品多次稀释至无菌的计数方法。

将3个稀释梯度的检样稀释液接种于9支或15支试管培养基中,每个稀释度接种3支或5支。

经培养后,根据结果查阅MPN检索表,就可得到原样品中微生物的估计数量。

MPN测定方法尤其适用于带菌量极少、其他方法不能检测的食品,如水、乳制品及其他食品中大肠菌群的计数。

三、实验材料1. 样品:乳、肉、禽蛋制品、饮料、糕点、发酵调味品或其他食品。

2. 菌种:大肠埃希氏菌、产气肠杆菌。

3. 培养基及试剂:单料乳糖胆盐发酵管、双料乳糖胆盐发酵管、乳糖胆盐发酵管、伊红美蓝琼脂、革兰氏染色液、蛋白陈水、靛基质试剂、麦康凯(MA)。

4. 其他设备和材料:温室、高压湿热灭菌器、显微镜、载玻片、灭菌培养皿、灭菌吸管、试管、三角瓶、接种环。

四、实验方法1. 样品处理:取适量样品,加入适量生理盐水,充分振荡,制成均匀的悬液。

2. 稀释:将悬液进行系列稀释,分别取一定量的稀释液进行接种。

3. 接种:将稀释后的样品接种于乳糖胆盐发酵管中,置于37℃恒温培养箱中培养24小时。

4. 观察结果:观察发酵管中的气泡和颜色变化,判断是否存在大肠菌群。

5. 平板分离:将发酵管中的阳性菌液进行平板分离,观察菌落特征。

6. 鉴定:对分离得到的菌落进行革兰氏染色和生化实验,鉴定菌种。

五、实验结果与分析1. 样品处理:将样品制成均匀的悬液。

2. 稀释:将悬液进行系列稀释,分别取一定量的稀释液进行接种。

实验大肠菌群的检验

实验大肠菌群的检验

预测模型构建
比较不同样品之间大肠菌群数量的差异,如独立样本t检验、配对t检验等。
分析大肠菌群数量与其他因素(如环境因素、水质指标等)之间的相关性。
利用已知数据建立预测模型,预测未知样品的大肠菌群数量。
05
实验结论和讨论
大肠菌群数量与污染程度正相关
温度对大肠菌群生长有较大影响
时间的延长有助于提高检出率
大肠菌群广泛分布于粪便、水源、食品等环境中,因此成为水质和环境监测的重要指标。
本实验主要采用多管发酵法和滤膜法进行大肠菌群检测。
大肠菌群是指一群革兰氏阴性杆菌,主要包括肠杆菌、枸橼酸杆菌、沙门菌等。
将待测水样接种到含有选择性培养基的发酵管中,培养后观察是否产气,以判定是否存在大肠菌群。通过比较不同稀释度的水样,可以得到水样中大肠菌群的近似数量。
根据检验结果,对大肠菌群的数量和分布进行分析,以便于评估食品的质量和安全性。
根据相关标准和规定,对检验结果进行判定,判断食品是否符合卫生标准和要求。
03
结果判定
02
01
04
实验数据分析和处理
原始数据的记录
在实验过程中,需要实时记录每个样品中大肠菌群的数量、颜色、大小等特征。
重复实验数据的记录
为了保证实验结果的可靠性,需要对每个样品进行多次实验,每次实验的数据都需要详细记录。
结果讨论
样品采集和处理方式的不同对大肠菌群检验结果产生一定影响。例如,采集的样品不均一、样品处理不当等可能会导致结果的不准确。
影响因素分析
实验条件如温度、湿度、pH值等的变化也会对大肠菌群的生长和检出率产生影响。因此,实验过程中需要严格控制这些条件,以保证结果的准确性。
不同的检测方法在检出率和准确性方面存在差异,因此选择适合的检测方法对大肠菌群检验结果也有影响。

大肠菌群的测定方法和步骤

大肠菌群的测定方法和步骤

大肠菌群的测定方法和步骤嘿,咱今儿就来聊聊大肠菌群的测定方法和步骤。

你说这大肠菌群啊,就像是一群调皮的小精灵,得把它们给找出来,弄清楚它们的情况呢!首先呢,得准备好各种各样的家伙什儿,就像战士上战场得拿好自己的武器一样。

什么培养皿啦、培养基啦,都得齐全咯。

然后呢,就是采样啦。

这可不能马虎,得从要检测的东西里面准确地取到样,就好像去果园里摘果子,得挑那些长得好的摘呀。

接下来就是培养啦。

把取来的样品放到合适的培养基里,给这些大肠菌群创造一个舒适的“家”,让它们能好好地生长。

这就好比给小树苗找了块肥沃的土地,让它们能茁壮成长。

培养的过程中可得细心照料着,温度啦、湿度啦都得控制好。

不然这些小精灵可不乐意好好表现呢。

过了一段时间后,就得去观察啦。

看看培养基上有没有出现那些特征性的菌落。

这就像是在一群孩子里面找那个最调皮的。

要是发现了可疑的菌落,还得进一步去验证呢。

就跟警察破案似的,得找到确凿的证据才能下定论。

最后确定了大肠菌群的情况,咱就能知道这个东西是不是干净卫生啦。

这可关系到大家的健康呢,可不是闹着玩的。

你想想啊,如果吃的东西或者用的东西里面大肠菌群超标了,那会咋样?那肯定会让人不舒服呀,说不定还会生病呢!所以说这个测定大肠菌群的事儿可重要了。

咱平时买东西的时候也得留个心眼,看看是不是经过严格检测的。

别稀里糊涂地就买了那些不靠谱的东西。

总之呢,大肠菌群的测定可不是个简单的事儿,但又特别重要。

咱得重视起来,把这些小精灵都给管得服服帖帖的,让大家都能吃得放心,用得安心,你说是不是?这可不是开玩笑的呀!。

大肠菌群数的测定方法

大肠菌群数的测定方法

大肠菌群数的测定方法宝子,今天咱们来唠唠大肠菌群数咋测定的哈。

最常用的一种方法就是多管发酵法。

这就像是一场微生物的小比赛呢。

咱先得把样品采集好,比如说水啊或者食品之类的。

然后把样品放到乳糖胆盐发酵管里头。

这就像是给大肠菌群准备了一个特别的小屋子,要是有大肠菌群在,它们就会在这个小屋子里开始“搞事情”,发酵乳糖产酸产气。

你就可以看到小管子里有气泡啦,这时候就像是它们在跟你说“嗨,我们在这儿呢”。

要是在乳糖胆盐发酵管里有反应了,咱就得把这些有反应的培养液再接种到伊红美蓝琼脂平板上。

这个平板可神奇啦,大肠菌群在上面会长出有自己特色的菌落呢。

就像它们在这个新的舞台上展示自己独特的模样。

这些菌落可能是紫黑色的,还有金属光泽,就像一群穿着闪亮衣服的小演员。

通过数这些有特色的菌落,就能大概知道大肠菌群的数量啦。

还有一种方法叫滤膜法。

这个就像是用一个小筛子来筛出大肠菌群。

先把样品通过滤膜过滤,大肠菌群就被留在滤膜上啦。

然后把滤膜放到特定的培养基上培养。

那些大肠菌群就会在滤膜上慢慢长大,形成小点点一样的菌落。

咱们再数这些小点点,就能知道大肠菌群的数量咯。

不过呢,在做这些测定的时候呀,一定要注意卫生和操作规范哦。

就像咱们做饭得按照菜谱来一样,测定大肠菌群数也得按照严格的步骤。

不然的话,就可能得出错误的结果呢。

比如说,要是不小心把别的细菌也带进去了,那就像是一场混乱的聚会,根本分不清谁是谁啦。

总之呢,测定大肠菌群数虽然有点小复杂,但是只要按照方法来,就能够准确地知道样品里大肠菌群的情况啦。

这对保障咱们的健康可重要了呢,不管是喝的水还是吃的食物,知道大肠菌群的数量就能知道它们是不是安全的,就像给咱们的健康上了一道保险。

大肠菌群的测定

大肠菌群的测定

实验十大肠菌群的测定一、目的要求学习并掌握食品中大肠菌群测定的基本方法和基本原理。

二、实验说明大肠菌群系指一群在37℃,24h能发酵乳糖、产酸、产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽杆菌。

该菌群主要来源于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标,来评价食品的卫生质量,具有广泛的卫生学意义。

食品中大肠菌群数系以每100ml(g)检样内大肠菌群最近似数(MPN)来表示,其含义是指100ml(g)食品内含有大肠菌群数的实际数值(表10-1)。

三、实验器材1、设备和材料温箱:36±1℃,水浴:44±0.5℃,天平、显微镜、均质器或研钵,温度计,平皿、试管、吸管、载玻片。

2、培养基及试剂乳糖胆盐发酵管(GB),伊红美蓝琼脂平板(GB),乳糖发酵管(GB)、蛋白胨水(GB)、靛基质试剂(GB),革兰氏染液(GB)。

四、方法步骤(10-1)(一)检样稀释1、以无菌操作将检样25ml(或25g)放于含有225ml番茄生理盐水或其它稀释液的灭菌玻璃瓶内(瓶内预置适当数量的玻璃珠)或灭菌研钵内,经充分振摇或研磨作成1:10的均匀稀释液。

固体检样最好用均质器,以8000-10000rpm的速度处理1分钟,做成1:10的均匀稀释液。

用1ml灭菌吸管,吸取1:10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水或其它稀释的试管内,振摇试管混匀作成1:100的稀释液。

另取1ml灭菌吸管,按上述操作依次作10倍递增稀释液,每递增稀释一次,换用1支1ml灭菌吸管。

2、根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择三个稀释度,每个稀释度接种3管。

(二)乳糖发酵试验将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内,接种量在1ml以上者,用双料乳糖发酵管,1ml及1ml以下者,用单料乳糖发酵管。

每一稀释度接种3管,置36±1℃温箱内,培养24±2h,如有乳糖胆盐发酵管都不产气,则报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按下列程序进行。

大肠菌群测定操作步骤

大肠菌群测定操作步骤

大肠菌群测定操作步骤咱今天就来说说这大肠菌群测定的操作步骤哈!这可真是个有意思的事儿呢。

首先呢,你得准备好各种各样的玩意儿,就像战士上战场得带好武器一样。

什么培养基啦、无菌吸管啦、培养皿啦,都得准备得妥妥当当的。

然后呢,就是取样啦!这就好比去果园里摘果子,你得挑那些看着就不错的来。

样品可得有代表性,不能随便瞎搞。

接下来,把取好的样放到合适的容器里,加上一些试剂,就像是给它来个特别的“洗礼”。

这一步可不能马虎,得认真对待。

之后呢,就把处理好的样品接种到培养基上。

这就像是给种子找个合适的土壤,让它能好好地生长发芽。

接种的时候可得小心点,别弄得到处都是。

再然后,把培养皿放到合适的温度下培养。

这就像是给小宝贝们找了个温暖的小窝,让它们能舒舒服服地长大。

在培养的过程中,你可得时刻关注着,就像妈妈关注着孩子的成长一样。

看看有没有什么变化,有没有那些让人惊喜的小现象出现。

过了一段时间后,你就能看到培养基上的情况啦!如果有大肠菌群,那它们就会显现出来,就像是舞台上的主角一样闪亮登场。

哎呀,你说这是不是很神奇呀!就通过这么一系列的操作,就能把那些看不见摸不着的大肠菌群给找出来。

这就好像是一场侦探游戏,我们就是那个聪明的侦探,通过各种线索和方法,找出隐藏在其中的“凶手”。

而且这可不是随便玩玩的,这关系到食品安全呢!要是没做好,那可不得了。

所以啊,每一步都得认真仔细,不能有一点差错。

就像建房子一样,一砖一瓦都得放好,不然房子可就不结实啦!咱做这个大肠菌群测定,不就是为了让大家吃得放心、喝得安心嘛!这是多么重要的事情呀。

大家可别小瞧了这些操作步骤,每一个细节都可能影响到最后的结果呢。

总之呢,大肠菌群测定的操作步骤虽然看起来有点麻烦,但只要我们用心去做,肯定能做好的。

就像那句话说的:“世上无难事,只怕有心人。

”咱可都是有心人,肯定能把这事儿干得漂漂亮亮的!你们说是不是呀!。

大肠菌群的测定方法操作规程

大肠菌群的测定方法操作规程

大肠菌群的测定方法操作规程1 培养基和试剂月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤,煌绿乳糖胆盐肉汤,结晶紫中性红胆盐琼脂,无菌生理盐水2操作步骤2.1样品的稀释:以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10 的样品匀液。

用1 mL 无菌吸管吸取1:10 样品匀液1 mL,沿管壁缓缓注入9 mL 生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用 1 支1 mL 无菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成1:100 的样品匀液。

根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。

每递增稀释1 次,换用1支 1 mL 无菌吸管或吸头。

从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过15 min。

2.2选取2个~3个适宜的连续稀释度, 每个稀释度接种2个无菌平皿,每皿1 mL。

同时取1 mL生理盐水加入无菌平皿作空白对照。

2.3及时将15 mL~20 mL冷至46℃的结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA)约倾注于每个平皿中。

小心旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后,再加3 mL~4 mLVRBA覆盖平板表层。

翻转平板,置于36℃±1℃培养24h~48 h。

3平板菌落数的选择选取菌落数在15 CFU~150 CFU之间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。

典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为0.5 mm或更大。

4证实试验从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落,分别移种于BGLB 肉汤管内,36℃±1℃培养48h,观察产气情况。

凡BGLB肉汤管产气,即可报告为大肠菌群阳性。

5大肠菌群平板计数的报告经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以4.4中计数的平板菌落数,再乘以稀释倍数,即为每g(mL)样品中一、任务目标1.会画出停车场出入口管理系统的系统结构图和系统布线图;2.了解停车场出入口管理系统中各设备的参数、性能指标、工作原理;3.掌握停车场出入口管理系统中各设备的安装、调试和应用方法。

试验五大肠菌群的测定

试验五大肠菌群的测定

分离培养
将产气发酵管培 养物转种于伊红 美蓝琼脂平板上, 36±1℃培养1824h,观察菌落形 态。
证实试验
挑取平板上的可 疑菌落,进行革 兰氏染色观察。 同时接种乳糖发 酵管36±1℃培养 24±2h,观察产 气情况。
根据证实为 大肠杆菌阳 性的管数, 查MPN表, 报告每 100ml(g) 大肠菌群的 MPN值。
镜检(革兰氏阴性菌)
37℃ 培养24h
证实产气 (阳性) 结果与否
乳糖蛋白胨培养液
大肠菌群测定
产酸判断:紫色培养液变成黄色 产气判断:发酵导管内有小气泡,如轻轻打动试管有气泡沿管壁
上浮,应考虑可能有气体产生,需进一步试验。
挑选菌落特征:黑紫色、有光泽或无光泽菌落;
红色、粉红色菌落。 抑制剂:胆盐、煌绿、十二烷基硫酸钠。
证实试验
将产气发酵管培 养物转种于煌绿 乳糖胆盐(BGLB) 肉汤中,36±1℃ 培养48±2h ,观 察是否产气。
以BGLB产气 为阳性,查 MPN表, 报告每ml (g)样品 中大肠菌群 的MPN值。
练习:
如对一自来水厂出水进行检验,初发酵一般在10支小发酵管和两 支大发酵瓶内进行,复发酵在 5 支小发酵管内进行。以 300mL 进 行初发酵实验,其中100mL的水样2份(分状于2个大发酵瓶中), 10mL 水样 10 份,(分状于 10 支个小发酵管中)。实验结果: 100mL的2份水样为阴性结果,无大肠杆菌存在;10mL的水样中 有5份为阳性结果,存在大肠杆菌。则:
大肠菌群的测定
一、实验目的
1、掌握大肠菌群检测方法。 2、掌握微生物平板分离技术。
二、实验器材、试剂
1、试剂:乳糖蛋白胨培养基、伊红美蓝培养 基、革兰氏染色液 2、仪器:培养箱、接种环、试管、平皿、显 微镜等。
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6.2 初发酵试验 每个样品,选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以 选择原液),每个稀释度接种3 管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤,每管接种1mL(如接种量超 过1 mL,则用双料LST肉汤),36 ℃±1 ℃培养24 h±2 h,观察倒管内是否有气泡产生,24 h±2 h 产气者进行复发酵试验,如未产气则继续 培养至48 h±2 h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群 阴性。 6.3 复发酵试验 用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环, 移种于煌绿乳 糖胆盐肉汤 (BGLB) 管中, 36 ℃±1 ℃培养48 h±2 h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。 6.4 大肠菌群最可能数(MPN)的报告 按6.3确证的大肠菌群LST阳性管数,检索MPN表(见附录B),报告 每g(mL)样品中大肠菌群的 MPN值。
A.4 磷酸盐缓冲液 A.4.1 成分 磷酸二氢钾(KH2PO4)34.0 g 蒸馏水 500 mL pH 7.2 A.4.2 制法 贮存液:称取34.0 g的磷酸二氢钾溶于500 mL蒸馏 水中,用大约175 mL的1 mol/L氢氧化钠溶液调节 pH,用蒸馏水稀释至1 000 mL后贮存于冰箱。 稀释液:取贮存液1.25 mL,用蒸馏水稀释至1000 mL,分装于适宜容器中,121 ℃高压灭菌15 min。 A.5 无菌生理盐水 A.5.1 成分 (氯化钠 8.5 g 蒸馏水 1000 mL) A.5.2 制法 称取8.5g氯化钠溶于1 000 mL蒸馏水中, 121 ℃高压灭菌15 min。
第一法 大肠菌群MPN 计数法
检验程序 大肠菌群MPN计 数的检 6.1.1 固体和半固体样品: 称取 25 g 样品,放入盛有 225 mL 磷酸盐缓 冲液或生理盐水的无菌均质杯内, 8000 r/min~10000 r/min 均质 1 min~2 min,或放入盛有 225 mL 磷酸 盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋 中,用拍击式均质器拍打 1 min~2 min,制成 1:10 的样品匀液。 6.1.2 液体样品:以无菌吸管吸取 25 mL 样品置盛有 225 mL 磷酸盐缓 冲液或生理盐水的无菌锥形瓶 (瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成 1:10 的样品匀 液。 6.1.3 样品匀液的 pH值应在 6.5~7.5 之间,必要时分别用 1 mol/L NaOH 或 1 mol/L HCl 调节。 6.1.4 用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液1 mL,沿管壁 缓缓注入 9 mL 磷酸盐缓冲液 或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振 摇试管或换用 1 支1 mL 无菌 吸管反复吹打,使其混合均匀,制成 1:100 的样品匀液。 6.1.5 根据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列 稀释样品匀液。每递增稀释 1 次,换用1支 1 mL 无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,
附录A
(规范性附录) 培养基和试剂 A.1 月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤 A.1.1 成分 胰蛋白胨或胰酪胨 20.0 g 氯化钠 5.0 g 乳糖 5.0 g 磷酸氢二钾(K2HPO4)2.75 g 磷酸二氢钾(KH2PO4)2.75 g 月桂基硫酸钠 0.1 g 蒸馏水 1000 mL pH 6.8±0.2 A.1.2 制法 将上述成分溶解于蒸馏水中,调节 pH。分装到有玻璃小 倒管的试管中,每管 10 mL。121 ℃高压灭菌 15 min。
大肠菌群 的测定
一、范围 本标准规定了食品中大肠菌群计数的方法。 本标准适用于食品中大肠菌群的计数。
二、术语和定义 1、大肠菌群 在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需 氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。 2、最可能数,MPN 基于泊松分布的一种间接计数方法。
三、设备和材料 恒温培养箱:36℃±1℃。 冰箱:2℃~5℃。 恒温水浴箱:46±1℃。 天平:感量 0.1g。 均质器。 振荡器。 无菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL 刻度)或微量移液器及吸头。 无菌锥形瓶:容量500mL。 无菌培养皿:直径90mm。 pH计或pH比色管或精密pH试纸。 菌落计数器。
8.4 证实试验 从 VRBA平板上挑取 10个不同类型的典型和可疑菌落,分别移 种于 BGLB 肉汤管内,36 ℃±1 ℃ 培养 24 h~48 h,观察产气情况。凡 BGLB 肉汤管产气,即可 报告为大肠菌群阳性。 8.5 大肠菌群平板计数的报告 经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以8.3中计数的平板菌 落数,再乘以稀释倍数,即为每g (mL)样品中大肠菌群数。例:10-4 样品稀释液1 mL,在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落,挑取 其中10个接种BGLB肉汤管, 证实有6个阳性管, 则该样品的大 肠菌群数为: 100×6/10×104 /g (mL) =6.0×105 CFU/g(mL)。
第二法 大肠菌群平板计 数法 七、检验程序
大肠菌群平板计数法的 检验程序见图2。 图2 大肠菌群平板计 数法检验程序
8 操作步骤 8.2 平板计数 8.2.1 选取2个~3个适宜的连续稀释度, 每个稀释度 接种2个无菌平皿,每皿1 mL。同时取1 mL生理盐 水加入无菌平皿作空白对照。 8.2.2 及时将15 mL~20 mL冷至46 ℃的结晶紫中性红 胆盐琼脂(VRBA)约倾注于每个平皿中。小心 旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后,再 加3 mL~4 mLVRBA覆盖平板表层。翻转平 板,置于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。 8.3 平板菌落数的选择 选取菌落数在 15 CFU~150 CFU之间的平板,分别计数平 板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。 典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落 直径为 0.5 mm或更大。
附录B (规范性附录) 大肠菌群最可能数(MPN)检索表 大肠菌群最可能数(MPN)检索表 每g(mL)检样中大肠菌群最可能数(MPN)的检索见表B.1。
谢谢观赏
A.3 结晶紫中性红胆盐琼脂(VRBA) A.3.1 成分 蛋白胨 7.0 g 酵母膏 3.0 g 乳糖 10.0 g 氯化钠 5.0 g 胆盐或3号胆盐 1.5 g 中性红 0.03 g 结晶紫 0.002 g 琼脂 15 g~18 g 蒸馏水 1 000 mL pH 7.4±0.1 A.3.2 制法 将上述成分溶于蒸馏水中,静置几分钟,充分搅拌,调 节pH。煮沸2 min,将培养基冷却至45 ℃~50 ℃倾注平 板。使用前临时制备,不得超过3 h。
四、培养基和试剂 月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤:见附录A中 A.1。 煌绿乳糖胆盐肉汤:见附录A中A.2。 结晶紫中性红胆盐琼脂:见附录A中A.3。 磷酸盐缓冲液:见附录A中A.4。 无菌生理盐水:见附录A中A.5。 无菌1mol/L NaOH:见附录A中A.6。 无菌1mol/L HCl:见附录A中A.7。
A.6 1 mol/L NaOH A.6.1 成分 NaOH 40.0 g 蒸馏水 1000 mL A.6.2 制法 称取40 g氢氧化钠溶于1 000 mL蒸馏水 中,121 ℃高压灭菌15 min。 A.7 1 mol/L HCl A.7.1 成分 HCl 90 mL 蒸馏水1000 mL A.7.2 制法 移取浓盐酸90 mL,用蒸馏水稀释至1 000 mL,121 ℃高压灭菌15 min。
A.2 煌绿乳糖胆盐(BGLB)肉汤 A.2.1 成分 蛋白胨 10.0 g 乳糖 10.0 g 牛胆粉(oxgal或oxbil)溶液 200 mL 0.1%煌绿水溶液 13.3 mL 蒸馏水800 mL pH 7.2±0.1 A.2.2 制法 将蛋白胨、乳糖溶于约500 mL蒸馏水中,加入牛胆粉溶液200 mL(将20.0 g脱水牛胆粉溶于200 mL蒸馏水中,调节pH至7.0~ 7.5),用蒸馏水稀释到975 mL,调节pH,再加入0.1%煌绿水 溶液13.3 mL,用蒸馏水补足到1 000 mL,用棉花过滤后,分装 到有玻璃小倒管的试管中,每管10 mL。121 ℃高压灭菌15 min。
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