ACC产品-哌拉西林他唑巴坦和实验之间的相互作用
注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠说明书
核准日期:2007年04月22日修改日期:2009年07月01日邦达注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠说明书请仔细阅读说明书并在医师指导下使用【药品名称】通用名称:注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠英文名称:Piperacillin Sodium and Tazobactam Sodium for Injection汉语拼音:Zhusheyong Pailaxilinna Tazuobatanna【成份】本品为复方制剂,其组份为:帕拉西林钠和他唑巴坦钠。
0.5625g每支分别含帕拉西林0.5g,他唑巴坦62.5mg;1.125g每支含帕拉西林1.0g,他唑巴坦0.125g。
【性状】本品为白色或类白色疏松块状物或粉末;无臭、味苦,极具引湿性。
【适应症】本品适用于对哌拉西林耐药,但对哌拉西林他唑巴坦敏感的产β-内酰胺酶的细菌引起的中、重度下述感染:1.由耐哌拉西林、产β-内酰胺酶的大肠杆菌和拟杆菌属(脆弱拟杆菌、卵形拟杆菌、多形拟杆菌或普通拟杆菌)所致的阑尾炎(伴发穿孔或脓肿)和腹膜炎。
2.由耐哌拉西林、产β-内酰胺酶的金黄色葡萄球菌所致的非复杂性和复杂性皮肤及软组织感染,包括蜂窝组织炎、皮肤脓肿、缺血性或糖尿病性足部感染。
3.由耐哌拉西林、产β-内酰胺酶的大肠杆菌所致的产后子宫内膜炎或盆腔炎性疾病。
4.由耐哌拉西林、产β-内酰胺酶的流感嗜血杆菌所致的社区获得性肺炎(仅限中度)。
5.由耐哌拉西林、产β-内酰胺酶的金黄色葡萄球菌所致的中、重度医院获得性肺炎(医院内肺炎)。
治疗敏感细菌所致的全身和(或)局部细菌感染。
【规格】0.5625g(含帕拉西林0.5g,他唑巴坦62.5mg);1.125g(含帕拉西林1.0g,他唑巴坦0.125g)【用法用量】将适量本品用20ml稀释液(0.9%氯化钠注射液或灭菌注射用水),充分溶解后,立即加入250ml液体(5%葡萄糖注射液或0.9%氯化钠注射液)中,静脉滴注,每次至少30min,疗程为7~10天。
哌拉西林他唑巴坦说明书
1 药品名称通用名:注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠曾用名:商品名:英文名:Piperacillin Sodium and Tazobactam Sodium for Injection汉语拼音:Zhusheyong PailaxiLinna Tazuobatanna本品为复方制剂,其组分为哌拉西林钠和他唑巴坦钠。
2 性状本品为白色粉末或类白色疏松块状物或粉末,无臭,味苦,极具引湿性。
3 药理毒理哌拉西林为半合成青霉素类抗生素,他唑巴坦为β内酰胺酶抑制药。
本品对哌拉西林敏感的细菌和产β内酰胺酶耐哌拉西林的下列细菌有抗菌作用:革兰阴性菌:大多数质粒介导的产和不产β内酰胺酶的下列细菌:大肠埃希菌、克雷伯菌属(催产克雷伯菌、肺炎克雷伯菌)、变形杆菌属(奇异变形杆菌、普通变形杆菌)、沙门菌属、志贺菌属、淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、莫根杆菌属、嗜血杆菌属(流感和副流感嗜血杆菌)、多杀巴杆菌、耶尔森菌属、弯曲菌属、阴道加特纳菌。
染色体介导的产和不产β内酰胺酶的下列细菌:弗劳地枸橼酸茵、产异枸橼酸菌、普鲁威登斯菌属、莫根杆菌、沙雷菌属(粘质沙雷菌、液压沙雷菌)、铜绿假单胞菌和其他假单胞菌属(洋葱假单胞菌、荧光假单胞菌、嗜麦芽假单胞菌)、不动杆菌属。
革兰阳性菌:产和不产β内酰胺酶的下列细菌:链球菌属(肺炎链球菌、生脓链球菌、牛链球菌、无乳链球菌、绿色链球菌、C族和G族链球菌)、肠球菌属(粪肠球菌、屎肠球菌)、金黄色葡萄球菌(不包括MRSA)、腐生葡萄球菌、表皮葡萄球菌(凝固酶阴性葡萄球菌)、棒状杆菌属、单核细胞增多性李斯德杆菌、奴卡菌属。
厌氧菌:产和不产β内酰胺酶的下列细菌:拟杆菌属(二路拟杆菌、二向拟杆菌、多毛拟杆菌、产黑色素拟杆菌、口腔拟杆菌)、脆弱拟杆菌属(脆弱拟杆菌、普通拟杆菌、卵园拟杆菌、多形拟杆菌、单形拟杆菌、不解糖拟杆菌)、消化链球菌属、梭状芽胞杆菌属(难辨梭菌、产气荚膜杆菌)、韦荣球菌属、放线菌属。
4 药代动力学本品静脉滴注后,血浆中哌拉西林和他唑巴坦浓度很快达到峰值。
哌拉西林他唑巴坦注射剂 说明书
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注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠(4:1)的配比研究
注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠(4:1)的配比研究摘要哌拉西林和他唑巴坦组成的复方制剂中,哌拉西林和他唑巴坦的配比有8:1和4:1两种。
相对于8:1的制剂,4:1制剂的抑菌能力更强,临床疗效更好关键词哌拉西林他唑巴坦配比哌拉西林属酰脲类青霉素,抗菌谱广,抗菌作用强,尤其对铜绿假单胞菌有强大抗菌作用,是目前国内外广泛应用并认为最有价值的一类青霉素。
但其对β-内酰胺酶不稳定。
他唑巴坦是新的β-内酰胺酶抑制剂,属于青霉烷,在舒巴坦结构的基础上增加了一个三氮唑环,是舒巴坦的衍生物,具有广泛的抑菌活性。
目前临床应用的β-内酰胺酶抑制剂主要有克拉维酸钾、舒巴坦钠、他唑巴坦钠,这些酶抑制剂本身也能诱导β-内酰胺酶,而他唑巴坦是最弱的诱导剂,因此,哌拉西林和他唑巴坦组成的复方制剂,从组方而言优于β-内酰胺类抗生素与其它酶抑制剂的复合制剂。
哌拉西林和他唑巴坦组成的复方制剂中,哌拉西林和他唑巴坦的配比有8:1和4:1两种。
相对于8:1的制剂,4:1制剂的抑菌能力更强,临床疗效更好。
现将哌拉西林他唑巴坦(4:1)配比研究综述如下。
1.体内、外药效学研究:以哌拉西林与他唑巴坦不同配比的制剂对哌拉西林耐药菌感染的小鼠进行治疗,实验结果显示:对金葡菌,哌拉西林/他唑巴坦以8:1~2:1配比比单独用哌拉西林时的MIC80低16倍以上,不同比例间无显著差异;对大肠杆菌,哌拉西林/他唑巴坦以2:1~1:1配比时MIC80比单独应用哌拉西林时MIC80低64倍;对莫氏肺炎球菌,两者比例为4:1和2:1时的MIC80最低;对变形杆菌,两者比例为4:1时MIC80最低。
对感染小白鼠的最佳治疗比例:由金葡菌感染的小鼠:哌拉西林/他唑巴坦的最佳治疗比例为4:1,由大肠杆菌感染的小鼠:哌拉西林/他唑巴坦比例为8:1~2:1之间无明显区别,由莫氏肺炎球菌感染的小鼠,4:1~2:1为最佳比例。
以上研究表明,本品在体内和体外的药效学成平行性,随着β-内酰胺酶抑制剂在配方中所占比例的增加,抑酶作用增强。
哌拉西林钠他唑巴坦钠详细说明书
【临床应用】CFDA说明书适应症用于治疗敏感菌引起的下列感染:1.呼吸道感染:社区获得性肺炎(仅限中等严重程度)、医院获得性肺炎(中至重度)(由铜绿假单胞菌导致的医院获得性肺炎应与氨基糖苷类药联用)。
2.泌尿道感染。
3.腹腔内感染:阑尾炎(并发穿孔或脓肿)、腹膜炎。
4.皮肤及软组织感染:单纯性和复杂性皮肤和皮下组织感染(包括蜂窝组织炎、皮肤脓肿、缺血性足感染、糖尿病足感染)。
5.细菌性败血症。
6.妇科感染:产后子宫内膜炎或盆腔炎。
7.中性粒细胞减少者的细菌感染(与氨基糖苷类药联用)。
8.骨、关节感染。
9.多种细菌混合感染。
其他临床应用参考1.用于动物咬伤。
2.用于预防手术感染。
3.用于肠道或泌尿生殖道手术部位感染。
【用法与用量】成人·常规剂量·感染1.静脉滴注一次4.5g,每8小时1次。
常规疗程为7-10日,医院获得性肺炎的推荐疗程为7-14日。
一日用药总剂量和频率可根据感染的严重程度和部位增减,剂量范围为一次2.25-4.5g,给药频率可每6小时、8小时、12小时1次。
·肾功能不全时剂量肌酐清除率大于40ml/min者,无需调整剂量。
肌酐清除率为20-40ml/min者,一次4.5g,每8小时1次。
肌酐清除率小于20ml/min者,一次4.5g,每12小时1次。
·老年人剂量老年人的剂量选择应谨慎,通常从剂量范围的下限开始用药。
·透析时剂量血液透析者除医院获得性肺炎外,其他所有适应症的最大剂量为一次2.25g,每12小时1次。
医院获得性肺炎血液透析者的最大剂量为一次2.25g,每8小时1次。
因血液透析可清除30%-40%的给药剂量,故每次血液透析后需额外加用0.75g。
连续非卧床腹膜透析(CAPD)患者无需额外加用本药。
儿童·常规剂量·感染1.静脉滴注 12岁及12岁以上儿童,用法用量同成人。
·阑尾炎、腹膜炎1.静脉滴注 (1)2-9个月儿童,推荐剂量为一次90mg/kg,每8小时1次。
哌拉西林与他唑巴坦治疗肺炎的疗效观察
哌拉西林与他唑巴坦治疗肺炎的疗效观察【摘要】目的:研究分析哌拉西林与他唑巴坦治疗肺炎的疗效观察。
方法:将60例肺炎患者纳入本次临床研究的样本范围内,所有样本均为我院收治,且收治时间集中在2021年5月至2022年5月期间内收治。
按照随机数字表法进行分组,30例纳入常规治疗组,其余30例纳入观察治疗组。
对两组患者治疗期间不良反应的发生率及治疗有效率进行评价。
结果:观察治疗组患者治疗后的临床有效率明显高于常规治疗组患者,其在用药期间的不良反应发生率明显低于常规治疗组患者,结果存在显著差异性,P<0.05。
结论:采取哌拉西林与他唑巴坦对肺炎患者进行治疗后,患者的治疗有效率得到显著提高,其患者在用药期间的不良反应发生率更低,效果更加显著。
【关键词】哌拉西林;他唑巴坦;应用价值;肺炎肺炎属于临床上常见的炎症性疾病,其主要发生在人体肺间质、肺泡、终末气道处【1】。
导致该疾病的原因较多,如过敏、药物作用、免疫损伤、病原微生物等均有可能导致该病。
小儿及老年群体是该疾病的好发人群,这是由于小儿和老年人的免疫力和抵抗力较低,且如果得不到及时有效的治疗,十分容易导致一系列并发症的发生,严重者甚至会导致患者死亡【2】。
因此,临床上必须采取积极有效的措施对该类患者进行治疗。
在此背景下,本研究采取哌拉西林与他唑巴坦对肺炎患者进行治疗,以此分析该药物的临床疗效,现以下文进行详细报道。
1 资料与方法1.1一般资料将60例肺炎患者纳入本次临床研究的样本范围内,所有样本均为我院收治,且收治时间集中在2021年5月至2022年5月期间内收治。
按照随机数字表法进行分组,30例纳入常规治疗组,其余30例纳入观察治疗组。
常规治疗组中,男性患者共计17例,女性患者13例,年龄28-80岁,平均年龄(54.54±1.53)岁。
观察治疗组中,男性患者共计16例,女性患者14例,年龄29-80岁,平均年龄(54.89±1.74)岁。
哌拉西林钠舒巴坦钠主要药物的相互作用有哪些?
哌拉西林钠舒巴坦钠主要药物的相互作用有哪些?哌拉西林钠舒巴坦钠是一种合并了哌拉西林钠和舒巴坦钠的复方药物,常用于治疗多种细菌感染。
该药物在临床应用中,需要注意其与其他药物之间的相互作用,以避免潜在的不良反应和药效降低。
以下是哌拉西林钠舒巴坦钠的主要相互作用:1.与抗凝药物的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠可能与抗凝药物,如华法林、利伐沙班等相互作用,增加了出血风险。
因此,在治疗期间需要密切监测凝血指标,必要时调整抗凝药物剂量。
2.与非甾体抗炎药(NSAIDs)的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠与NSAIDs(如布洛芬、苯巴比妥等)同时使用时,可能增加肾脏负担,导致肾功能损害和药物浓度升高。
因此,在联用时需密切监测肾功能,避免不必要的肾毒性效应。
3.与利尿剂的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠与利尿剂(如呋塞米、氢氯噻嗪等)同时使用时,可能增加尿量,导致血容量不足和低血压。
因此,联用时应调整用药剂量,避免不必要的低血压反应。
4.与肝素的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠与肝素同时使用时,可能增加出血的风险。
因此,在联用时需要定期监测凝血指标,注意调整肝素剂量,以防止出血并发症的发生。
5.与口服避孕药的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠可能干扰口服避孕药的药效,降低其避孕效果。
因此,在服用哌拉西林钠舒巴坦钠期间,建议额外采取非药物避孕措施,以确保避孕效果。
6.与受体拮抗剂的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠与受体拮抗剂(如普拉克索、诺洛非尼等)同时使用时,可能相互干扰对方的药效,导致治疗效果降低。
因此,在联用时需密切监测疗效,必要时调整药物剂量或间隔时间。
7.与免疫抑制剂的相互作用:哌拉西林钠舒巴坦钠与免疫抑制剂(如环孢素、他克莫司等)同时使用时,可能增加感染风险,并且可能导致药物浓度升高或降低。
因此,在联用时需密切监测免疫功能和药物浓度,必要时调整药物剂量。
总之,哌拉西林钠舒巴坦钠的相互作用主要涉及抗凝药物、NSAIDs、利尿剂、肝素、口服避孕药、受体拮抗剂和免疫抑制剂等药物。
哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液治疗肺炎和路感染的适应症和使用指南
哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液治疗肺炎和路感染的适应症和使用指南哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液治疗肺炎和流感的适应症和使用指南肺炎和流感是常见的呼吸系统感染疾病,严重影响人们的生活质量和健康。
为了有效治疗肺炎和流感,医学界研发出了一款治疗药物——哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液。
本文将详细介绍这种药物的适应症和使用指南,帮助读者更好地了解如何正确使用它来治疗肺炎和流感。
Ⅰ. 哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液的适应症哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液广泛用于治疗肺炎和流感,主要适应症包括以下几个方面:1. 细菌性肺炎:哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液可用于治疗由厌氧及非厌氧菌引起的细菌性肺炎,如链球菌、肺炎链球菌、卡他莫拉菌等。
2. 呼吸道感染:该药物也可用于治疗细菌性呼吸道感染,如细菌性喉炎、细菌性支气管炎等。
3. 流感合并细菌感染:在流感的基础上,若患者合并了细菌感染,哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液也可用于治疗。
4. 其他适应症:该药物还可以用于治疗革兰氏阳性杆菌感染和肺部真菌感染。
Ⅱ. 哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液的使用指南正确使用哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液对于治疗肺炎和流感至关重要。
以下是使用指南:1. 使用方法:本药物为注射液,需要经由静脉注射给药。
严禁肌肉注射或皮下注射。
2. 使用剂量:剂量应根据患者年龄、体重、肝功能和病情严重程度等因素进行个体化调整。
请遵循医生的指示,严格按照医嘱使用。
3. 用药频次:一般情况下,一天使用两次,每次用药间隔8至12小时。
4. 用药时长:治疗肺炎和流感的疗程一般为7至14天,具体疗程视患者病情而定。
5. 注意事项:在使用哌拉西林钠他唑巴坦钠注射液时,应注意以下事项:(1)在使用前,需对过敏体质、哮喘、乙肝病毒感染等情况进行评估,并告知医生。
(2)对于有青霉素过敏史的患者,应遵循适当的备选用药方案。
(3)如出现严重的过敏反应(如荨麻疹、呼吸困难等),应立即停药,并就医处理。
(4)患者在用药期间应积极配合医生监测肝功能、肾功能等指标的变化。
哌拉西林联合他唑巴坦、舒巴坦(4∶1)的体外抗菌活性比较
哌拉西林联合他唑巴坦、舒巴坦(4∶1)的体外抗菌活性比较目的:观察哌拉西林/他唑巴坦、哌拉西林/舒巴坦(4∶1)对临床分离的产ESBLs菌株的体外抗菌作用,比较其抗菌活性。
方法:采用标准平皿稀释法对临床分离的产ESBLs大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌进行药物敏感测定。
结果:哌拉西林/他唑巴坦、哌拉西林/舒巴坦复方制剂(4∶1)对多数产ESBLs菌具有很好的抗菌作用。
结论:哌拉西林/他唑巴坦抗菌效果优于哌拉西林/舒巴坦。
[Abstract]Objective: To study the antibacterial activities of different formulations of piperacillin-sulbactam(4∶1)and piperacillin alone against ESBLs-producing bacteria of clinical isolates in vitro. Methods: Bacterial susceptibility testing was performed on 35 ESBLs-producing bacteria of clinical isolates using agar dilution method.Compared antibacterial activities of different formula compounds of piperacillin tazobactam and piperacillin sulbactam. Results: Piperacillin-sulbactam and Piperacillin-tazobactam with 4∶1 ratio were highly active against most ESBLs-producing bacteria. Conclusion: In this formula compounds, the antibacterial activities of Piperacillin-tazobactam is better than Piperacillin-sulbactam.[Key words] Piperacillin; Sulbactam; Tazobactam; In vitro antibacterial activity哌拉西林(piperacillin,PIPC)属酰脲类青霉素,抗菌谱广、作用强,对铜绿假单胞菌有强大抗菌作用,是目前国内、外广泛应用并被认为是最有价值的一类青霉素。
一例哌拉西林他唑巴坦钠导致药物热的病例分析
一例哌拉西林他唑巴坦钠导致药物热的病例分析药物热是由于使用某种药物而直接或间接引起的发热,是药物不良反应之一[3]。
临床医生可能对药物引起的皮疹、肝肾损害、血管神经性水肿、过敏性休克等不良反应较为熟悉,而对药物热,尤其是不伴有其它不良反应的药物热尚不够重视,易导致误诊误治,个别患者甚至因为不能及时停用致热药物而危及生命。
药物热在抗菌药物治疗期间并不罕见,许多抗菌药物都有较高的药物热发生频率,尤其是β-内酰胺类抗菌药物[3]。
药物热的诊断缺乏特异性指标,且抗感染药物引起的药物热与感染性疾病本身引起的发热易混淆,临床上较难判断。
本文介绍1例哌拉西林他唑巴坦钠致药物热的病例,提示临床药师或医师应关注哌拉西林他唑巴坦钠产生药物热的不良反应,从而避免和减少患者药源性损害事件的发生。
1.病例摘要患者,女,88岁,主诉:“间断发热六天”于2017年12月3日入院治疗。
患者于六天前无明显诱因出现间断发热,最高体温38.2℃,服用退烧药物(具体药物及用法用量不详)可降至正常,但数小时后体温再次升高,12月2日夜体温38.0℃,口服退热药、罗红霉素、静点氨曲南(具体用法用量不详)后体温无下降。
为求明确诊断来我院治疗。
肺CT:“右肺中下叶炎症、左肺上叶支气管扩张继发感染、右肺上叶小结节、右侧胸膜肥厚”,急诊以“肺炎”收入我科,病程中无咳嗽咳痰,无胸痛咯血,无呼吸困难,饮食、睡眠、二便、体重无明显变化。
既往病史:否认高血压、糖尿病、心脏病等慢性疾病,否认肝炎、结核等传染性疾病。
过敏史:否认食物、药物及其他物品过敏史。
查体:体温36.0℃,脉搏82次/分,呼吸15次/分,血压152/68mmHg,一般状态欠佳,嗜睡,浅表淋巴结无肿大,球结膜无水肿充血,睑结膜无苍白,口唇轻度发绀,颈静脉无明显充盈怒张,双肺叩诊清音,听诊呼吸音粗糙,双下肺可闻及湿罗音,心率82次/分,节律规整,未闻及病理性杂音。
腹软,无压痛和反跳痛,肝脾肋下未触及,双下肢无水肿。
哌拉西林他唑巴坦的主要相互作用是哪些?
哌拉西林他唑巴坦的主要相互作用是哪些?哌拉西林他唑巴坦(Piperacillin-tazobactam)是一种广谱抗生素,主要用于治疗多种感染症,包括呼吸道感染、尿路感染、皮肤和软组织感染、中耳感染等。
该药物是由哌拉西林(piperacillin)和他唑巴坦(tazobactam)的复合物组成的,具有强大的杀菌作用和抗菌谱广的特点。
哌拉西林属于青霉素类药物,具有对革兰阳性和阴性菌的广谱杀菌作用。
它主要通过干扰细菌细胞壁的合成来发挥作用,进而导致细菌死亡。
对于产β-内酰胺酶的细菌,哌拉西林的作用会受到限制,这通常会降低其对耐药菌株的效果。
而他唑巴坦是一种β-内酰胺酶抑制剂,可以通过抑制β-内酰胺酶的产生,增强哌拉西林对革兰阴性细菌的活性。
β-内酰胺酶是一种酶,它能降解β-内酰胺类药物,从而导致对这些抗生素的耐药性。
他唑巴坦的存在能够阻止β-内酰胺酶的活性,从而提高哌拉西林对β-内酰胺酶阳性菌株的疗效。
尽管哌拉西林和他唑巴坦在相互协同作用方面具有显著效果,但这两种药物也可能产生相互作用。
以下是一些哌拉西林他唑巴坦主要相互作用的例子:1. 其他抗生素:与其他抗生素联用时,可能会增加不良反应的风险。
特别是与氨基糖苷类抗生素如庆大霉素(gentamicin)一起使用时,可能导致肾脏毒性的发生。
2. 口服避孕药:哌拉西林他唑巴坦可能会降低口服避孕药的效果,从而增加怀孕的风险。
因此,在使用本药物的同时,最好选择其他可靠的避孕方法以防止怀孕。
3. 西咪替丁和奥美拉唑:与西咪替丁(cimetidine)和奥美拉唑(omeprazole)等抗酸药物一同使用时,可能会减少哌拉西林吸收,从而降低疗效。
建议在用药之间相隔一段时间,以避免相互作用。
4. 氨苄西林/舒巴坦:与氨苄西林/舒巴坦(ampicillin/sulbactam)一同使用可能会降低两种药物的疗效。
因此,在需要治疗时,可能需要调整剂量或选择其他抗生素。
除了上述相互作用,哌拉西林他唑巴坦还可能与其他药物发生相互作用,包括罗氟米诺(levofloxacin)、华法林(warfarin)等。
哌拉西林他唑巴坦的特殊用药人群的监护
哌拉西林他唑巴坦的特殊用药人群的监护哌拉西林他唑巴坦是一种广泛应用于临床的抗生素药物,属于β-内酰胺类药物。
该药物具有广谱抗菌活性,对多种细菌感染具有良好的疗效。
然而,由于哌拉西林他唑巴坦的特殊性质,它在特定的人群中要谨慎使用,并需要进行监护。
首先,孕妇和哺乳期妇女是哌拉西林他唑巴坦监护的特殊人群之一。
哌拉西林他唑巴坦通过胎盘屏障可以经由脐带血药物传递到胎儿身上,并且通过母乳可以被婴儿吸收。
因此,孕妇和哺乳期妇女应该根据病情和药物的治疗必要性来决定是否使用哌拉西林他唑巴坦。
在使用过程中,应该密切观察妇女和胎儿的不良反应,并定期检测婴儿血象、肝功能等指标。
其次,婴幼儿和小儿也是特殊的用药人群,需要进行哌拉西林他唑巴坦的监护。
婴幼儿和小儿的肝功能未能充分发育,肾排泄功能较差,药物的代谢和排泄能力较弱,容易导致药物在体内蓄积,引起毒副作用的发生。
因此,在婴幼儿和小儿使用哌拉西林他唑巴坦时应进行个体化调整剂量,并注意观察不良反应的发生情况。
另外,肝、肾功能不全的患者也属于特殊的用药人群。
哌拉西林他唑巴坦主要通过肾脏排泄,肾功能不全的患者由于肾排泄能力下降,哌拉西林他唑巴坦的半衰期增加,导致药物在体内蓄积,增加药物的毒副作用发生的风险。
同时,这类患者肝脏的代谢能力也受到一定程度的影响,可能导致药物的代谢能力下降。
因此,在使用哌拉西林他唑巴坦时,需要根据肝、肾功能进行剂量调整,并密切观察有无药物不良反应的发生。
此外,老年人也需要在使用哌拉西林他唑巴坦时进行特殊的监护。
老年人的机体器官功能常常已经退化,肾脏和肝脏的代谢能力明显下降,药物的代谢和排泄能力减弱,容易导致药物在体内的蓄积。
老年人的机体耐受性也较差,容易发生药物的副作用。
因此,在使用哌拉西林他唑巴坦时,需要根据老年人的生理特点进行个体化调整剂量,并密切观察不良反应的发生情况。
最后,哌拉西林他唑巴坦的监护还需要注意药物与其他药物的相互作用。
哌拉西林他唑巴坦与其他药物(如氨基糖苷类抗生素、非甾体抗炎药等)联合使用时可能会发生相互作用,增加药物的毒副作用的发生风险。
哌拉西林他唑巴坦的主要用法用量是多少?
哌拉西林他唑巴坦的主要用法用量是多少?哌拉西林他唑巴坦是一种广谱抗生素药物,主要用于治疗感染性疾病。
它通常用于治疗淋球菌、葡萄球菌和链球菌等细菌引起的疾病,如呼吸道感染、皮肤和软组织感染、尿路感染等。
哌拉西林他唑巴坦可通过静脉注射或肌肉注射给药。
哌拉西林他唑巴坦的主要用法如下:1. 呼吸道感染:对于慢性支气管炎、肺炎等呼吸道感染,通常建议使用哌拉西林他唑巴坦进行治疗。
成人通常每4-6小时静脉注射1.5-3.0克药物,最大剂量不超过12克/日。
儿童的剂量根据体重来确定,通常为每公斤体重30-50毫克。
2. 皮肤和软组织感染:对于由金黄色葡萄球菌引起的皮肤和软组织感染,哌拉西林他唑巴坦是一个常用的治疗选择。
成人每4-6小时静脉注射1.5-3.0克药物,最大剂量不超过12克/日。
儿童的剂量根据体重来确定,通常为每公斤体重30-50毫克。
3. 尿路感染:哌拉西林他唑巴坦也可用于治疗由敏感细菌引起的尿路感染。
成人通常每4-6小时静脉注射1.5-3.0克药物,最大剂量不超过12克/日。
儿童的剂量根据体重来确定,通常为每公斤体重30-50毫克。
总体而言,哌拉西林他唑巴坦的剂量和用法通常需要根据患者的年龄、体重、病情严重程度以及药物的推荐剂量来确定。
此外,患者的肝肾功能状况也会对剂量的选择产生影响。
因此,在使用该药物之前,医生应仔细评估患者的状况,并遵循相关的用药指南。
值得注意的是,哌拉西林他唑巴坦的使用可能会导致一些不良反应,如过敏反应、恶心、呕吐、腹泻、肝功能异常等。
在使用期间,患者应密切关注自己的身体状况,并在出现任何不适症状时及时向医生报告。
如果患者有孕妇、哺乳期妇女、肝硬化、肾功能不全等相关疾病,应在使用前告知医生。
总而言之,哌拉西林他唑巴坦是一种广谱抗生素药物,适用于多种感染性疾病的治疗。
然而,患者在使用前应详细咨询医生,遵循其建议并按照正确的剂量使用药物,以确保最佳的疗效和安全性。
此外,哌拉西林他唑巴坦也常被用于治疗严重感染或医院获得性感染,特别是对于那些对其他抗生素产生耐药性的细菌感染。
哌拉西林他唑巴坦用药的注意事项是什么?
哌拉西林他唑巴坦用药的注意事项是什么?哌拉西林他唑巴坦是一种常用的抗生素,用于治疗各种感染疾病。
它常用于呼吸道感染、泌尿道感染、皮肤软组织感染等常见病。
虽然这种药物通常很安全,但还是有一些需要特殊关注的事项。
首先,使用哌拉西林他唑巴坦前应该检查患者是否对该药物过敏。
过敏反应可能表现为皮肤瘙痒、荨麻疹、呼吸急促、喉咙肿胀等症状。
对该药物过敏的患者在以后不应再使用该药物。
其次,使用时需要注意药物的剂量和频率。
一般成人剂量为每次2克,每4-8小时一次,最大剂量不超过4g/日,儿童的剂量通常是成人的一半。
老年人的剂量也需要减少,因为他们的肾功能通常较差。
如果患者的肾功能受损,剂量也需要相应调整。
此外,该药物通常需要连续使用5-7天以保证疗效。
此外,哌拉西林他唑巴坦可以与其他药物相互影响。
例如,如果与氨基糖苷类药物一同使用,可能导致肾脏损害,因此应该避免同时使用。
此外,哌拉西林他唑巴坦也可以增加华法林等抗凝药物的抗凝作用,可能导致出血等不良反应。
另外,使用止痛药或抗胆碱药物的患者也需要慎重考虑使用哌拉西林他唑巴坦,因为这些药物可能增加该药物的不良反应。
在使用哌拉西林他唑巴坦期间,需要密切监测患者的肝功能、肾功能等指标。
特别是对于使用该药物超过7天的患者,应该每隔几天进行肝功能和肾功能的监测,以及血液学检查,以确保药物不会对身体产生过度的负担。
此外,在使用过程中也需要关注患者的不良反应。
哌拉西林他唑巴坦可能导致胃肠道反应,如恶心、呕吐、腹泻等。
如果出现严重的胃肠道不适或持续的腹泻,应该及时停药并咨询医生。
此外,还有少数患者可能发生皮疹、荨麻疹等过敏反应,同样也应该及时停药并咨询医生。
最后,使用哌拉西林他唑巴坦的患者还要注意一些日常生活中的事项。
例如,应该避免饮酒,因为酒可以影响药物的代谢和副作用;同时也应该避免暴露在阳光下,因为该药物可以增加皮肤对阳光的敏感性,容易导致日光性皮炎。
总结起来,使用哌拉西林他唑巴坦需要特别注意以下几点:1. 检查患者是否对该药物过敏;2. 注意剂量和频率的控制;3. 避免与其他药物的相互作用;4. 密切监测肝功能、肾功能等指标;5. 注意不良反应的出现;6. 注意日常生活中的一些禁忌事项。
注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠说明书
注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠说明书注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠商品名特治星,主要成分:本品为复方制剂,其组分为哌拉西林钠和他唑巴坦钠。
下面是店铺整理的注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠说明书,欢迎阅读。
注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠商品介绍通用名:注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠生产厂家: 惠氏-艾尔斯特制药公司批准文号:药品规格:4.5克/支药品价格:¥194元注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠说明书注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠商品名特治星,主要成分:本品为复方制剂,其组分为哌拉西林钠和他唑巴坦钠。
【性状】本品为白色粉末或类白色疏松块状物或粉末,无臭,味苦,极具引湿性。
【药代动力学】本品静脉滴注后,血浆中哌拉西林和他唑巴坦浓度很快达到峰值。
滴注30分钟后,血浆哌拉西林浓度与给予同剂量哌拉西林的血浆浓度相等,静脉滴注2.25g、3.375g及4.5g哌拉西林钠他唑巴坦钠30分钟时,血浆哌拉西林峰浓度(Cmax)分别为134、242和298mg/L,他唑巴坦峰浓度(Cmax)分别为15、24、24mg/L。
健康受试者接受单剂量或多剂量哌拉西林钠他唑巴坦钠后,哌拉西林和他唑巴坦的血消除半衰期(t1/2?)范围为0.7至1.2小时,不受剂量和给药时间的影响。
哌拉西林在体内被代谢成微小的具有生物活性的去乙基代谢物,他唑巴坦则被代谢成无药理及抗菌活性的产物,哌拉西林与他唑巴坦均由肾脏排泄。
68%哌拉西林迅速以原形自尿中排出;他唑巴坦及其代谢物主要经由肾脏排泄,其中80%为原形。
哌拉西林、他唑巴坦、去乙基哌拉西林也可通过胆汁分泌。
约30%哌拉西林和他唑巴坦与血浆蛋白结合,其结合率不受其他化合物的影响;血浆蛋白与他唑巴坦代谢物的结合可忽略不计。
哌拉西林与他唑巴坦广泛分布于组织及体液中,包括胃肠道粘膜、胆囊、肺、女性生殖器官(子宫、卵巢、输卵管)、体液、胆汁。
组织中药物浓度约为血浆浓度的50%~100%。
与其他青霉素类药物一样,脑膜非炎性病变时,脑脊液中哌拉西林、他唑巴坦浓度很低。
哌拉西林钠他唑巴坦纳课件
哌拉西林钠他唑巴坦纳通过抑制细菌细胞壁的合成发挥抗菌 作用,对β-内酰胺酶稳定,不易被酶水解。
药代动力学特性
吸收
哌拉西林钠他唑巴坦纳口服吸收较差 ,主要通过静脉注射给药,注射后广 泛分布于组织、体液中。
分布
代谢与排泄
哌拉西林钠他唑巴坦纳在体内不代谢 ,主要通过肾小球滤过和肾小管分泌 以原形药物排出体外,约80%的药物 由肾脏排泄。
哌拉西林钠他唑巴坦纳可透过胎盘屏 障,少量可进入乳汁,但量较少。
药物相互作用与配伍禁忌
药物相互作用
哌拉西林钠他唑巴坦纳与氨基糖苷类抗生素合用可产生协同作用,增强对肠杆菌 科细菌的抗菌活性;与丙磺舒合用可抑制肾小管分泌,延长哌拉西林钠他唑巴坦 纳的血浆半衰期。
配伍禁忌
哌拉西林钠他唑巴坦纳与头孢菌素类药物、利尿剂、碱性药物等不宜混合使用, 会产生化学反应,影响药效。
BIG DATA EMPOWERS TO CREATE A NEW ERA
03
哌拉西林钠他唑巴坦纳的临床应用
常见感染性疾病的治疗
社区获得性肺炎
哌拉西林钠他唑巴坦纳可用于治 疗由肺炎链球菌、流感嗜血杆菌 、卡他莫拉菌等引起的社区获得
性肺炎。
泌尿生殖道感染
对于由大肠杆菌、变形杆菌、葡萄 球菌等引起的泌尿生殖道感染,哌 拉西林钠他唑巴坦纳是有效的治疗 药物。
剂量调整
根据患者的病情和体重,成人每次用 药剂量为4.5g,每日最大剂量不超过 9g。
儿童用药方案与剂量
用药方案
对于儿童患者,哌拉西林钠他唑巴坦纳 的用药方案和剂量应按照医生的建议进 行。
VS
剂量调整
根据儿童的年龄、体重和病情,医生会制 定个性化的用药方案,确保药物剂量安全 有效。
注射用哌拉西林钠他唑巴坦钠说明书--特治星
注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠说明书【药品名称】通用名:注射用哌拉西林钠/他唑巴坦钠英文名:Piperacillin Sodium and Tazobactam Sodium for Injection汉语拼音:Zhusheyong Pailaxilinna/Sanzuobatanna商品名:特治星(Tazocin)【成份】本品主要成份为哌拉西林和他唑巴坦。
哌拉西林钠是右旋-α-氨苄青霉素的衍生物。
哌拉西林的化学名称是:(2S,5R,6R)-6[(R)-2-(4-乙基-2,3-二氧-1-哌嗪甲酰氨基)-2-苯乙酰氨基]-3,3-二甲基-7-氧-4-硫杂-1-氮杂双环[3.2.0]庚烷-2-羧酸盐。
分子式:C23H26N5NaO7S分子量:539.54Cas No:59703-84-3他唑巴坦钠是青霉素基核的衍生物,他唑巴坦的化学属性是一种磺基青霉素酸,其化学名称是:[2S-(2α,2β,5α)]-3-甲基-7-氧代-3-(1H-1,2,3,-三唑-1-甲基)-4-硫杂-1-氮杂双环(3,2,0)-庚烷-2-羧酸-4,4-二氧化钠。
分子式:C10H11N4NaO5S分子量:332.28Cas No:89785-84-2【性状】本品为白色至类白色疏松块状物或粉末。
【适应症】哌拉西林/三唑巴坦适用于治疗下列由已检出或疑为敏感细菌所致的全身和/或局部细菌感染。
1.下呼吸道感染。
2.泌尿道感染(混合感染或单一细菌感染)3.腹腔内感染。
4.皮肤及软组织感染。
5.细菌性败血症。
6.妇科感染。
7.与氨基糖苷类药物联合用于患中性粒细胞减少症的病人的细菌感染。
8.骨与关节感染。
9.多种细菌混合感染;哌拉西林/三唑巴坦适用于治疗多种细菌混合感染,包括怀疑感染部位(腹腔内、皮肤和软组织、上下呼吸道、妇科)存在需氧菌和厌氧菌的感染。
尽管哌拉西林/三唑巴坦仅适用于上述情况,但由于哌拉西林/三唑巴坦药物中有哌拉西林成份,所以对于治疗由哌拉西林敏感细菌所致的感染仍是经受得起检验的。
他唑巴克坦与哌拉西林联用的药理和临床
他唑巴克坦与哌拉西林联用的药理和临床
林赴田
【期刊名称】《中国新药杂志》
【年(卷),期】1996(5)4
【摘要】综述了他唑巴克坦/哌拉西林的体外和体内抗菌作用,药代动力学及临床应用。
他唑巴克坦是β-内酰胺酶抑制的,TAZ与PIPC联合应用对各种产生β-内酰胺酶的细菌有协同抗菌作用。
TAZ/PIPC对小鼠全身感染各种产酶细菌优于单用PIPC的效果。
【总页数】6页(P265-270)
【作者】林赴田
【作者单位】无
【正文语种】中文
【中图分类】R978.1
【相关文献】
1.联用头孢美唑钠和哌拉西林他唑巴坦治疗呼吸内科疾病的效果分析 [J], 张春燕
2.哌拉西林钠与他唑巴坦钠的药理研究与临床应用 [J], 尹翠英;任炜;时萍
3.哌拉西林他唑巴坦钠联用甲硝唑致白细胞、粒细胞减少一例并文献复习 [J], 刘园园;丁楠;曹爱霖;黄怡
4.哌拉西林-他唑巴坦与阿米卡星联用对支气管扩张伴感染患者的影响 [J], 梁开丽;黄玉仕
5.联用哌拉西林钠-他唑巴坦钠与左氧氟沙星治疗支气管扩张合并感染的效果 [J], 卢伟
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BRIEF REPORTThe interaction between piperacillin/tazobactam and assays for Aspergillus galactomannan and 1,3-beta-D -glucan in patients without risk factors for invasive fungal infectionsG.Metan •C ¸.Ag ˘kus ¸•H.Buldu •A.N.Koc ¸Received:27August 2009/Accepted:12January 2010/Published online:17March 2010ÓUrban &Vogel 2010AbstractBackground The aim of this study was to investigate the interaction between intravenous piperacillin/tazobactam treatment and Aspergillus galactomannan antigen (GM)and 1,3-beta-D -glucan (BDG)test results in patients with-out known risk factors for invasive fungal infections (IFI).Patients and methods Patients without known risk factors for IFI and who were to receive piperacillin/tazobactam monotherapy were considered eligible for the study.Serum samples were obtained both before and after antibiotic infusion on the first,third,seventh and tenth days of a piperacillin/tazobactam treatment course and 4days after the last dose.GM was determined by Platelia Aspergillus ELISA (Bio-Rad Laboratories)and BDG was assayed using the Fungitell kit (Associates of Cape Cod,East Fal-mouth,MA)according to manufacturers’specifications.Results A total of 135serum samples were collected from 15patients.When a cut-off level of C 0.7was used for GM positivity,there were no false positive results.When a cut-off level of C 0.5was used,six serum samples were positive.There were no statistically significant differences between the median GM indices or median BDG levels of the vari-ous sampling times.However,24of 135serum samples were positive for BDG for a threshold of 80pg/mL.After ruling out fungal infections and all known potential causes of false BDG positivity,environmental contamination remained a possible cause of BDG reactivity.Conclusion No significant interaction was observed bet-ween piperacillin/tazobactam administration and Asper-gillus GM and BDG assays.Positive results for these tests should be evaluated cautiously in patients at high risk for IFI receiving piperacillin/tazobactam.Keywords Aspergillus galactomannan antigen Á1,3-Beta-D -glucan ÁFalse positivity ÁPiperacillin/tazobactamIntroductionInvasive fungal infections (IFI)remain a significant cause of morbidity and mortality in patients with haematological malignancies.Serial monitoring of 1,3-beta-D -glucan (BDG)and galactomannan (GM)is important for the early diagnosis of IFI;however,there are some clinical cir-cumstances that cause false positivity and decrease the specificity of these tests [1].Contamination of the blood specimen with cotton,contamination of microcentrifuge tubes with cardboard,enteral feeding with soybean pro-tein,gastrointestinal colonisation with Bifidobacterium sp.,and infections with fungi other than Aspergillus sp.are thought to be the major items causing GM false positivity [2].Antibiotics derived from fungi might be associated with false positive test results,including ampicillin/sulbactam,piperacillin/tazobactam (TZP)and amoxicillin/A part of this study was presented at the 11th InternationalSymposium on Febrile Neutropenia,20–21February 2009,Valencia,Spain (Oral presentation 003),under the title of ‘The interaction between piperacillin/tazobactam treatment and Aspergillus galactomannan test in patients without risk factors for invasive aspergillosis’.G.Metan (&)ÁC ¸.Ag ˘kus ¸Department of Infectious Diseases and Clinical Microbiology,Faculty of Medicine,Erciyes University,Kat 10,Melikgazi,38039Kayseri,Turkeye-mail:gokhanmetan@;gmetan@.tr H.Buldu ÁA.N.Koc ¸Department of Microbiology and Clinical Microbiology,Faculty of Medicine,Erciyes University,Kayseri,TurkeyInfection (2010)38:217–221DOI 10.1007/s15010-010-0003-6clavulanic acid.Among these,the greatest problem for GM testing has been in patients receiving TZP.Some authors have reported false GM positivity in patients treated with TZP[3–7],while other investigators could not reproduce the rate of false positivity[8,9].However,most of these studies were performed in the early2000s in patients at high risk for IFI.After2005,a decrease in the GM content of TZP batches was reported[10],and in a recent study from Turkey,the GM index was0.23in TZP vials[11].BDG false positivity has not been widely studied;however,it may be falsely elevated in the serum of patients undergoing haemodialysis with cellulose membranes;patients treated with immunoglobulin,albu-min,or other blood productsfiltered through cellulose filters containing BDG;and in patients with serosal exposure to glucan-containing gauze[12].The number of studies evaluating the interaction between BDG tests and beta-lactam antibiotics is limited.A case report has described false positive BDG assay results in six patients receiving treatment with amoxicillin/clavulanic acid[13]. However,in a study that tested44antimicrobials for the presence of BDG,none were positive when diluted to the usual maximum plasma concentrations[14].As therapeutic decisions may be made based on the results of GM and/or BDG tests,it is important to under-stand their potential limitations.The aim of this study was to investigate the interaction between intravenous TZP treatment and Aspergillus GM and BDG test results in patients without known risk factors for IFI.Patients and methodsThis study was conducted at the Infectious Diseases Clinic of Erciyes University Faculty of Medicine,Kayseri, Turkey.Patients older than18years without history of allergy to beta/lactam antibiotics and who were to receive TZP monotherapy for urinary tract or soft tissue infections were considered eligible for the study.The exclusion cri-teria were use of a beta-lactam antibiotic during the pre-vious15days,suspected or proven fungal infection during the previous15days,history of haematological malig-nancy or solid tumour,use of corticosteroids longer than 15days with a dose of20mg/day or treatment with other recognised T cell immunosuppressants such as cyclospor-ine or NF-a blockers,specific monoclonal antibodies(such as alemtuzumab)or nucleoside analogues during the past 30days,acute renal failure or history of chronic renal insufficiency,any operation during the last2months,and the presence of diarrhea or severe mucositis.The study was approved by the local Ethics Committee and patients were required to give written informed con-sent.In order to examine the interaction between TZP and GM and BDG test results,serial blood samples were col-lected.Thefirst samples were obtained before thefirst dose of TZP and30min after the end of the antibiotic infusion. This procedure was repeated on the third,seventh,and tenth days of the antibacterial treatment.Afinal serum sample was obtained4days after the last dose of TZP. Blood samples were drawn from a peripheral vein that was not used for the infusion of TZP.Serum samples were immediately separated,aliquoted and frozen at-80°C until GM and BDG testing.Four vials of TZP were also tested for GM and BDG. Vials containing4.5g TZP were resuspended in100mL of 0.9%NaCl for clinical use,and5mL of each vial was stored for analysis.The galactomannan antigen levels in sera were deter-mined with the Platelia Aspergillus ELISA kit(Bio-Rad Laboratories)according to the manufacturer’s instructions. The results were expressed in terms of the galactomannan index.Cut-off levels of0.5[15]and0.7[16]were used to define the positivity of the test.BDG levels in sera were assayed using the Fungitell kit(Associates of Cape Cod, East Falmouth,MA,USA)according to manufacturer’s specifications.The cut-off was80pg/mL[17].Statistical analyses were performed with SPSS for Windows(version15.0;SPSS,Chicago,IL,USA).Median and interquartile ranges were used as descriptive methods. Friedman analysis was used to test the differences where appropriate,and a two-sided P value less than0.05was considered significant.ResultsFifteen patients with a median age of47years(23–78) were included in the study.Eleven of the patients were female.All patients received the original TZP(Wyeth Pharmaceuticals)from different batches.Fourteen patients received a daily dose of394.5g TZP for urinary tract infections,and one received a daily dose of494.5g TZP for diabetic foot infection.Escherichia coli was recovered from urine cultures of nine patients,Klebsiella pneumonia e from urine culture of two patients and Proteus spp.from urine culture of one patient.E.coli was isolated from the diabetic foot infection.None of the patients had a blood-stream infection based on the blood culture results.Urine cultures did not yield any yeast,and all patients had normal chest X-rays.A total of135serum samples were collected from15 patients.When a cut-off level of C0.7was used for GM positivity,there were no false positive results.When we used a cut-off level of C0.5,six serum samples were positive.Two of the false positive serum samples were obtained before the administration of TZP on thefirst day218G.Metan et al.of the treatment(Table1).There was no statistically sig-nificant difference in median GM index according to the sampling time(P=0.706).Median GM indices before and after TZP infusion are shown in Fig.1.Of the135serum samples,24were positive for BDG. Two serum samples taken before infusion on thefirst day of antibacterial treatment were positive(Table1),and seven taken before infusion later in the treatment course were positive.However,the statistical analysis showed no association between TZP administration and median BDG levels(P=0.411).Three of135serum samples were false positive for both GM and BDG tests at the same sampling time(Table1).Median BDG levels before and after TZP infusion are shown in Fig.2.None of the TZP vials tested positive for GM or BDG.DiscussionTZP is a fungus-derived broad spectrum antibiotic that is effective and well-tolerated in patients with febrile neu-tropenia.The interaction between TZP and GM positivity is of great concern in patients at high risk for invasive aspergillosis(IA).In a previous study from Turkey,28of 43sera(65.1%)were positive in patients receiving con-comitant TZP in the absence of IA[6].When another institution from Turkey analysed the false positivity of GM due to TZP treatment with the same method during the same period,the false positive rate was12.5%[9].Lot-to-lot variability in the GM content of TZP batches could explain this difference.Machetti et al.[18]investigated the kinetics of GM in seven patients having undergone abdominal surgery with perioperative prophylactic TZP. None of the patients who received TZP from batches with a ‘medium’GM index had a false positive GM test result (C0.5).Orlopp et al.[16]detected a small but significant increase in GM indices immediately after TZP infusion in 30patients receiving it for febrile neutropenia.When they used a cut-off level of C0.5,this led to21%(7/30)false positive results.The authors mentioned that there were no false positive tests if samples were collected prior to infusion and a cut-off level of[0.7was used.In our study, false positivity of GM was avoided with a cut-off level of 0.7,and there was no evidence of GM accumulation even after several infusions of TZP.The lower rate of interaction between TZP and GM in recent studies including our own could be due to a change in the manufacturing process of the antibiotic;this possibility could be clarified by the manufacturer.There are several studies that attributed false positive BDG results to beta-lactam antibiotics.Pickering et al.[19] reportedfive patients with false positive BDG tests receiving beta-lactam antibiotics including TZP.In another study that evaluated the role of BDG in the diagnosis of IFI,5of the16patients who had a false positive GM assay due to cross-reaction with beta-lactams were BDG positiveTable1Galactomannan index and1,3-beta-D-glucan levels(pg/mL)at each sampling time for the patients with two consecutive results over the cut-off levelsBefore TZP infusion day 0After TZPinfusion dayBefore TZPinfusion day3After TZPinfusion day3Before TZPinfusion day7After TZPinfusion day7Before TZPinfusion day10After TZPinfusion day104days afterlast TZPinfusionPatient1GM0.55*0.53*0.320.200.200.200.220.450.27BDG108*90*203*118*41493031310*Patient3GM0.57*0.210.230.230.270.460.210.240.28BDG206*112*68261324606160Patient8GM0.210.280.330.390.260.61*0.200.150.19BDG796850716655112*93*77Patient10GM0.370.420.180.230.200.210.280.250.19BDG121299*84*2518747725Patient13GM0.150.140.220.150.210.140.140.160.18BDG94447134*156*611212118*TZP Piperacillin/tazobactamThe values above the cut-off are indicated with an asteriskPositivity of galactomannan and1,3-beta-D-glucan due to piperacillin/tazobactam219[17].However,these were retrospective analyses,and in vitro studies from TZP vials did not confirm any BDG positivity [13,14].To the best of our knowledge,our study is the first to prospectively examine BDG false positivity due to TZP administration.We did not observe any sta-tistically significant interaction between median BDG levels and TZP treatment,but 17.8%of the samples were positive at a threshold of 80pg/mL.All known causes of BDG reactivity were ruled out in these patients,including haemodialysis with cellulose membranes;receipt of immunoglobulin,albumin,or other blood products filtered through cellulose filters containing BDG;and serosal exposure to glucan-containing gauze [12].In this study,we did not check Candida colonisation as a possible factor for false BDG positivity because previous studies showed that Candida colonisation is an unlikely cause of false positive results in the BDG assay [20,21].Pickering and colleagues reported BDG reactivity in the sera of patients with gram negative bacteraemia [19].In our study,however,13patients had microbiologically documented gram negative bacillus infections,and none of them had a positive blood culture.False positive BDG results have been described after contamination by environmental BDG [22].During this study,the sera were tested in the same laboratory where all fungal cultures are performed.This could cause environ-mental contamination of the samples.The exclusion criteria allowed us to study patients without risk factors for IFI and rule out occult fungal infections that could cause GM or BDG positivity.Kinetic analysis of the BDG levels helped in the identification of false positive results since in these patients BDG levels showed abrupt rises and falls (Table 1)[21].For the diagnosis of invasive aspergillosis,a combina-tion of GM and BDG tests improved the specificity (to 100%)and positive predictive value (to 100%)of each individual test without affecting the sensitivity and nega-tive predictive values [21].In this study only 3of 24BDG positive serum samples were also GM positive.The com-bined use of two tests could be useful to identifiy thefalseFig.1Median galactomannan index at each sampling time (IQR interquartile range)Fig.2Median 1,3-beta-D -glucan level at each sampling time (IQR interquartile range).BAI-0before piperacillin/tazobactam (TZP )infusion day 0,AAI-0after TZP infusion day 0,BAI-3before TZP infusion day 3,AAI-3after TZP infusion day 3,BAI-7before TZPinfusion day 7,AAI-7after TZP infusion day 7,BAI-10before TZP infusion day 10,AAI-10after TZP infusion day 10,4-DAYS ALI 4days after last TZP infusion220G.Metan et al.positive results.However,increased cost will be a matter of concern.In conclusion,in a group of patients without risk factors for IFI,we did not observe a significant interaction between TZP and aspergillus GM and BDG test results.Positive results for these tests should be evaluated cautiously in patients at high risk for IFI receiving TZP treatment. However,further studies are needed to better understand the possible causes of false positive BDG tests. Acknowledgments We thank Ferhan Elmali(Department of Bio-statistics,Faculty of Medicine,Erciyes University,Kayseri,Turkey) for help with the statistical analysis.This study was supported with a grant from the Scientific and Technological Research Council of Turkey(project number108S076).Conflicts of interest statement Gokhan Metan has received travel grants from Merck-Sharp and Pfizer,and the other authors have no conflicts to declare.References1.Del Bono V,Mikulska M,Viscoli C.Invasive aspergillosis:diagnosis,prophylaxis and treatment.Curr Opin Hematol.2008;15:586–93.2.Wheat LJ,Walsh TJ.Diagnosis of invasive aspergillosis bygalactomannan antigenemia detection using an enzyme immuno-assay.Eur J Clin Microbiol Infect Dis.2008;27:245–51.3.Viscoli C,Machetti M,Cappellano P,et al.False-positive galac-tomannan platelia Aspergillus test results for patients receiving piperacillin-tazobactam.Clin Infect Dis.2004;38:913–6.4.Adam O,Aupe´rin A,Wilquin F,et al.Treatment with pipera-cillin-tazobactam and false-positive Aspergillus galactomannan antigen test results for patients with hematological malignancies.Clin Infect Dis.2004;38:917–20.5.Walsh TJ,Shoham S,Petraitiene R,et al.Detection of galacto-mannan antigenemia in patients receiving piperacillin/tazobactam and correlations between in vitro,in vivo,and clinical properties of the drug antigen interaction.J Clin Microbiol.2004;42:4744–8.6.Tanriover MD,Metan G,Altun B,et al.False positivity forAspergillus antigenemia related to the administration of pipera-cillin/tazobactam.Eur J Intern Med.2005;16:489–91.7.Aubry A,Porcher R,Bottero J,et al.Occurrence and kinetics offalse-positive Aspergillus galactomannan test results followingtreatment with beta-lactam antibiotics in patients with hemato-logical disorders.J Clin Microbiol.2006;44:389–94.8.Penack O,Schwartz S,Thiel E,et ck of evidence that false-positive Aspergillus galactomannan antigen test results are due to treatment with piperacillin-tazobactam.Clin Infect Dis.2004;39:1401–2.9.Ozkalemkas F,Ozcelik T,Ozkocaman V.Treatment withpiperacillin-tazobactam and Aspergillus galactomannan test results for patients with hematological malignancies.Eur J Intern Med.2007;18:79.10.Penack O,Rempf P,Graf B,et al.False-positive Aspergillusantigen testing due to application of piperacillin/tazobactam–is it still an issue?Diagn Microbiol Infect Dis.2008;60:117–20. 11.Yu¨cesoy M,Ergon MC.Investigation of Aspergillus galacto-mannan levels in antimicrobial agents.Mikrobiyol Bul.2007;41:565–70.12.Marty FM,Koo S.Role of(1?3)-beta-D-glucan in the diag-nosis of invasive aspergillosis.Med Mycol.2008;13:1–8.13.Mennink-Kersten MA,Warris A,Verweij PE.1,3-Beta-D-glucanin patients receiving intravenous amoxicillin-clavulanic acid.N Engl J Med.2006;354:2834–5.14.Marty FM,Lowry CM,Lempitski SJ,et al.Reactivity of(1?3)-beta-d-glucan assay with commonly used intravenous antimicrobials.Antimicrob Agents Chemother.2006;50:3450–3.15.Maertens JA,Klont R,Masson C,et al.Optimization of the cutoffvalue for the Aspergillus double-sandwich enzyme immunoassay.Clin Infect Dis.2007;44:1329–36.16.Orlopp K,von Lilienfeld-Toal M,Marklein G,et al.False posi-tivity of Aspergillus galactomannan Platelia ELISA because of piperacillin-tazobactam treatment:does it represent a clinical problem?J Antimicrobial Chemother.2008;62:1109–12.17.Persat F,Ranque S,Derouin F,et al.Contribution of the(1?3)-beta-D-glucan assay for diagnosis of invasive fungal infections.J Clin Microbiol.2008;46:1009–13.18.Machetti M,Majabo MJ,Furfaro E,et al.Kinetics of galactomannanin surgical patients receiving perioperative piperacillin/tazobactam prophylaxis.J Antimicrob Chemother.2006;58:806–10.19.Pickering JW,Sant HW,Bowles CA,et al.Evaluation of a(1?3)-beta-D-glucan assay for diagnosis of invasive fungal infections.J Clin Microbiol.2005;43:5957–62.20.Ponto´n J,del Palacio A.Influence of Candida colonization on the(1?3)beta-D-glucan assay.Clin Infect Dis.2006;43:263–4.21.Pazos C,Ponto´n J,Del Palacio A.Contribution of(1?3)-beta-D-glucan chromogenic assay to diagnosis and therapeutic moni-toring of invasive aspergillosis in neutropenic adult patients:a comparison with serial screening for circulating galactomannan.J Clin Microbiol.2005;43:299–305.22.Kelaher A.Two non-invasive diagnostic tools for invasiveaspergillosis:(1–3)-beta-D-glucan and the galactomannan assay.Clin Lab Sci.2006;19:222–4.Positivity of galactomannan and1,3-beta-D-glucan due to piperacillin/tazobactam221。