党参多糖抑制PI3KAKT通路对人肝癌HepG2细胞生长和运动能力的影响

doi:10.3969/j.issn.1000⁃484X.2020.09.016
党参多糖抑制PI3K /AKT 通路对人肝癌HepG2细胞生长和运动能力的影响
刘云鹤　蔡金保①　王红丽　(河南省南阳医学高等专科学校第一附属医院肿瘤内科,南阳473000)
中图分类号　R735.7 文献标志码　A 文章编号　1000⁃484X (2020)09⁃1108⁃06
①河南省南阳医学高等专科学校第一附属医院药学部,南阳473000㊂
作者简介:刘云鹤,女,主治医师,主要从事肿瘤内科疾病的研究㊂
[摘　要]　目的:采用体外培养人肝癌HepG2细胞为研究对象,探讨党参多糖(CPP)对HepG2细胞生长和运动能力的影响及其机制㊂方法:用不同浓度(0㊁0.1㊁0.25㊁0.5㊁1㊁2.5㊁5㊁10㊁20㊁50㊁100㊁200㊁300和400μmol /L)党参多糖作用于体外培养的人肝癌HepG2细胞,采用CCK⁃8法检测细胞存活率,选择5,10和20μmol /L 进行后续实验㊂流式细胞术检测细胞凋亡率;划痕实验检测细胞迁移;Transwell 检测细胞侵袭;Western blot 检测上皮标志蛋白E⁃钙黏蛋白(E⁃cadherin)和间质标志蛋白N⁃钙黏蛋白(N⁃cadherin)N⁃cadherin㊁波形蛋白(Vimentin)的表达水平以及信号通路磷脂酰肌醇3⁃激酶(PI3K)㊁AKT 的磷酸化情况;最后,20μmol /L 党参多糖或PI3K 激活剂740Y⁃P 单独使用或联用处理HepG2细胞,检测细胞增殖㊁凋亡㊁迁移㊁侵袭和PI3K /AKT 信号通路磷酸化㊂结果:党参多糖能促进体外培养HepG2细胞凋亡,抑制细胞增殖㊁迁移和侵袭能力;同时调节E⁃
cadherin㊁N⁃cadherin㊁Vimentin 和PI3K /AKT 相关蛋白表达;最后,20μmol /L 党参多糖和740Y⁃P 联用能有效逆转740Y⁃P 对细胞增殖㊁凋亡㊁侵袭和迁移能力的调节作用㊂结论:党参多糖能有效抑制人肝癌HepG2细胞的生长和运动能力,其机制与调节PI3K /AKT 信号通路有关㊂
[关键词]　肝癌;党参多糖;生长;运动;740Y⁃P;PI3K /AKT
Effects of codonopsis pilosum polysaccharide on PI3K /AKT pathway on growth and motility of HepG2cells in human liver cancer
LIU Yun⁃He ,CAI Jin⁃Bao ,WANG Hong⁃Li .Department of Internal Medicine⁃Oncology ,First Affiliated Hospital of Nanyang Medical College of Henan Province ,Nanyang 473000,China
[Abstract ]　Objective :To investigate the effects of Codonopsis pilosum polysaccharide (CPP)on the growth and motility ability
of HepG2cells cultured in vitro and its mechanism.Methods :HepG2cells cultured in vitro were treated with CPP at different concentrations (0,0.1,0.25,0.5,1,2.5,5,10,20,50,100,200,300and 400μmol /L).CCK⁃8method was used to detect the cell viability,5,10and 20μmol /L were selected for subsequent experiments.Flow cytometry was used to detect apoptotic rate.Scratch test was used to detect cell migration.Transwell was used to detect cell invasion.Western blot was used to detect the expression of E⁃cadherin,N⁃cadherin and Vimentin,and the phosphorylation of PI3K and AKT signaling pathways.Finally,after treated with 20μmol /L CPP or PI3K activator 740Y⁃P alone or in combination,we detected cell proliferation,apoptosis,migration,invasion and phosphorylation of PI3K /AKT signaling pathway.Results :CPP could promote apoptosis of HepG2cells in vitro,inhibit cell proliferation,migration and invasiveness,and regulate the expression of E⁃cadherin,N⁃cadherin,Vimentin and PI3K /AKT related proteins.Finally,the combination of 20μmol /L CPP and 740Y⁃P could effectively reverse the regulation of 740Y⁃P on cell proliferation,apoptosis,invasion and migration
of HepG2cells.Conclusion :Codonopsis pilosula polysaccharide can effectively inhibit the growth and motility of human hepatocellular carcinoma HepG2cells.Its mechanism is related to the regulation of PI3K /AKT signaling pathway.
[Key words ]　Hepatocellular carcinoma;Codonopsis pilosula polysaccharide;Growth;Motility;740Y⁃P;PI3K /AKT
肝癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是全球最常见的三大癌症死亡原因之一,尽管在预防㊁筛查㊁诊断和治疗新技术方面均取得进展,但因其具有很强的生长增殖㊁黏附和侵袭转移能力,发病率
和死亡率仍不断上升[1]㊂在全世界范围内,每年约有60万人死于肝癌,随肿瘤负荷和转移情况的不同,其治疗方案也不尽相同,尤其对于肝癌晚期的治疗费用昂贵且效果不佳[2,3]㊂党参多糖(codonopsis pilosula polysaccharides,CPP)是其有效成分之一,具有广泛的生物活性㊂大量研究表明,
党参多糖具有免疫调节㊁抗病毒㊁保肝㊁抗氧化应激和神经保护等功能[4⁃9]㊂目前其对肿瘤的作用
研究并不多见,研究表明,其对乳腺癌㊁宫颈癌等肿瘤细胞能产生抑制作用[10,11]㊂Bai等[12]研究发现,党参提取所得的两种水溶性多糖对肝癌HepG2表现出抑制作用,其机制与诱导细胞周期阻滞和凋亡蛋白表达㊁抑制细胞迁移相关㊂众所周知,PI3K能活化AKT,参与调控细胞增殖㊁分化㊁迁移和凋亡等多种信号传导㊂在对前列腺癌的研究中发现,PI3K/AKT参与了细胞凋亡㊁增殖㊁迁移和侵袭,是癌症治疗的新途径[13]㊂党参多糖能否通过PI3K/AKT通路对人肝癌细胞产生影响还未见报道㊂因此,本文以体外培养的人肝癌HepG2细胞为研究对象,研究党参多糖对人肝癌HepG2细胞生长和运动能力的影响及其可能机制㊂
1　材料与方法
1.1　材料
1.1.1　细胞系与主要试剂　人肝癌HepG2细胞株购自中国医学科学院基础医学研究所细胞中心; DMEM培养液㊁胎牛血清㊁0.25%胰酶购自赛默飞世尔公司;DMSO购自上海生工;党参多糖(纯度≥98%)㊁RIPA裂解液购自美国Sigma公司;Transwell 小室购自北京优尼康生物技术有限公司;Matrix基质胶购自BD公司;BCA试剂盒购自碧云天生物科技公司;单克隆抗体㊁辣根过氧化物酶标记二抗购自Santa Cruze公司㊂
1.1.2　主要仪器设备　恒温培养箱购自美国Ther⁃moForma公司;电泳仪和半干转膜仪购自美国伯乐公司;Gel View6000化学发光凝胶成像系统购自广州云星仪器有限公司;普通光学显微镜购自日本奥林巴斯公司;FACSAria流式细胞仪购自美国BD公司;超净工作台购自苏州中亚净化设备有限公司㊂1.2　方法
1.2.1　细胞培养　用含有10%胎牛血清的DMEM 培养基,将HepG2细胞培养于37℃㊁5%CO2的恒温培养箱中㊂镜下观察细胞生长状态,细胞融合率达80%时可传代㊂
1.2.2　CCK8实验　将人肝癌HepG2细胞调整到2×104个/ml密度接种于96孔板,每孔加入100μl,待细胞贴壁后,分别给予对应终浓度党参多糖(CPP),每个剂量组设6个复孔,按实验设计培养对应时间之后每孔加入10μl CCK8溶液,继续孵育4h㊂采用450nm吸光度于酶标仪上测定各组人肝癌HepG2细胞存活率㊂
1.2.3　流式细胞术　以1×105个/ml密度将人肝癌HepG2细胞接种于6孔板中,待细胞融合率达80%以上时用胰酶处理并收集细胞,调整密度为1×106个/ml㊂严格按照FITC⁃Annexin V试剂盒说明书,每个样本加入5μl的FITC⁃Annexin V和PI染色液,室温避光孵育15min后,上机检测㊂
1.2.4　Transwell实验　Transwell小室下层加入含胎牛血清培养液,以1×105个/ml密度将人肝癌HepG2细胞接种于提前用Matrigel基质胶包被好的Transwell小室上层,上层培养液不加胎牛血清㊂培养24h后,无菌拭去Matrigel基质胶和小室上层细胞,PBS洗涤3次,4%多聚甲醛固定,用结晶紫染色细胞,流水冲洗后自然晾干㊂镜下随机选取5个视野计数㊂实验至少重复3次,设6个复孔㊂
1.2.5　划痕实验　用记号笔在12孔板背面画出5条平行直线,灭菌备用㊂以1×105个/ml密度将人肝癌HepG2细胞接种于灭菌12孔板中㊂待细胞贴壁后,用10μl枪头垂直于记号笔横线划痕,PBS清洗3次㊂给予对应终浓度药液处理后继续培养24h㊂随机选取5个视野观察并拍照㊂
1.2.6　蛋白印迹实验　用RIPA蛋白裂解液于冰上提取各组细胞总蛋白,用BCA试剂盒进行蛋白定量㊂蛋白变性后,取等量蛋白行SDS⁃PAGE电泳分离蛋白,转膜㊂5%脱脂奶粉室温封闭2h,加入一抗,4℃孵育过夜㊂弃去残液,清洗后加入辣根过氧化物酶标记的二抗,室温孵育1h㊂滴加ECL于暗室曝光显影,以GAPDH为内参㊂
1.3　统计学方法　用统计软件SPSS19.0统计分析实验数据,组间差异用t或t′检验或单因素方差分析检验㊂实验结果以x±s表示,P<0.05为差异有统计学意义㊂
2　结果
2.1　党参多糖对体外培养HepG2细胞存活率的影响　CCK8法检测人肝癌HepG2细胞存活情况,结果显示:与Control组相比,50μmol/L及以上浓度组细胞存活率的组间差距具有统计学意义(P<0.05,图1),且细胞的存活率随着CPP浓度增加而降低;而其他浓度组细胞的存活率组间差异无统计学意义㊂表明党参多糖能剂量依赖性的降低HepG2细胞的存活率,而当终浓度达到50μmol/L时可出现明显的细胞毒性作用㊂故选择无明显细胞毒作用的三个最大浓度进行后续试验,即5㊁10和20μmol/L㊂2.2　党参多糖对体外培养HepG2细胞凋亡率的影响　流式细胞术检测各组细胞凋亡情况,结果表明:与Control组相比,CPP处理组培养HepG2细胞后,细胞凋亡率明显增加(P<0.05,图2),且随着党参
多糖处理浓度增大,HepG2细胞凋亡率也随着增加㊂
2.3　党参多糖对体外培养HepG2细胞迁移的影响　划痕实验检测党参多糖对HepG2细胞转移的影响,结果如图3所示,与Control 组相比,经CPP 处理24h 后各剂量组划痕愈合率随CPP 浓度增大而明显降低(P <0.01),且与党参多糖浓度呈反比㊂2.4　党参多糖对体外培养HepG2细胞侵袭的影响　Transwell 检测党参多糖对HepG2细胞侵袭的影响,结果显示:与Control 组相比,经CPP 处理后,各剂量组镜下观察侵袭细胞数量明显减少(P <0.01,图4),且CPP 浓度越大,侵袭细胞数越少㊂
2.5　党参多糖对体外培养HepG2细胞上皮间质转化相关蛋白表达的影响　Western blot 检测HepG2细胞上皮间质转化相关蛋白的表达情况,结果如图5所示:与Control 组相比,CPP
处理组细胞上皮标记图1　CPP 对HepG2细胞存活率的影响
Fig.1　Effect of CPP on cell viability of HepG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.
05.
图2　CPP 对HepG2细胞凋亡率的影响
Fig.2　Effect of CPP on apoptosis rate of HEPG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.05.
蛋白E⁃cadherin 表达明显上调(P <0.01),间质标记蛋白N⁃cadherin 和Vimentin 的表达明显下调(P <0.01),这种调节作用与党参多糖浓度相关㊂提示,党参多糖能剂量依赖性的抑制HepG2细胞的上皮间质转化能力㊂
2.6　党参多糖对体外培养HepG2细胞信号通路的影响　Western blot 检测HepG2细胞信号通路相关蛋白的表达情况,结果如图6所示:与Control 组相比,CPP 处理组细胞p⁃PI3K 和p⁃AKT /AKT 的蛋白表达水平被明显抑制(P <0.05),且这种抑制作用与党参多糖浓度呈正比㊂表明,党参多糖能剂量依赖性的抑制p⁃PI3K 和p⁃AKT /AKT 的蛋白表达,从而影响PI3K /AKT 信号通路
㊂图3　CPP 对HepG2细胞迁移的影响
Fig.3　Effects of CPP on invasion ability of HepG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.
05.
图4　CPP 对HepG2细胞侵袭的影响
Fig.4　Effects of CPP on migration ability of HepG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.05.
图5　CPP 对HepG2细胞上皮间质转化相关蛋白表达的
影响Fig.5　
Effect of CPP on expression of epithelial⁃mesenchymal transition⁃related protein in
HepG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.
05.
图6　CPP 对HepG2细胞信号通路的影响
Fig.6　Effect of CPP on signaling pathway in HepG2cells
Note:Compared with Control group,*.P <0.
05.
图7　CPP 与740Y⁃P 共处理对HepG2细胞增殖㊁凋亡㊁迁移和侵袭能力影响
Fig.7　Effect on proliferation ,apoptosis ,invasion and migration of HepG2cells after treated by CPP and /or 740Y⁃P
Note:A.Cell proliferation detected by CCK⁃8;B.Detection of apoptosis by flow cytometry;C.Cell invasion detected by Transwell test;D.Cell migration
detected by scratch test;E,F.Protein expression of EMT⁃related and signaling pathway tested by Western blot;G.The statistics of protein expression of EMT⁃related and signaling pared with Control group,*.P <0.05;compared with 740Y⁃P group,#.P <0.05.
2.7　CPP㊁740Y⁃P 单用或联用对HepG2细胞增殖㊁凋亡㊁迁移和侵袭的影响　在有/没有PI3K 激活剂740Y⁃P 的情况下检测20μmol /L 党参多糖对HepG2细胞增殖㊁凋亡㊁侵袭和迁移能力的影响,结果如图7所示:与Control 组相比,20μmol /L 党参多糖能明显抑制HepG2细胞的增殖㊁迁移和侵袭,促进细胞凋亡(P <0.05);而740Y⁃P 与党参多糖对HepG2细胞的作用正好相反(P <0.05);而两者联用时,与740Y⁃P 组相比,20μmol /L 党参多糖能逆转
740Y⁃P 对HepG2细胞增殖㊁凋亡㊁迁移和侵袭的作用(P <0.05)㊂
3　讨论
原发性肝癌是起源于肝脏上皮或间叶组织的恶
性肿瘤,随着人们生活水平的提高,肝癌发病率呈逐年上升趋势,且越来越年轻化,其发病是多因素㊁多步骤综合作用的结果㊂研究表明,PI3K /AKT 通路的异常激活常与细胞转化㊁肿瘤发生㊁癌症发展以及药物耐药性有关,因此临床上有许多靶向该通路的药物单独或联合用于实体瘤和血液恶性肿瘤的治疗中[14]㊂比如激活PI3K /AKT 信号通路能增加结肠癌SW480细胞对顺铂的耐药性[15]㊂近年来,对天然提取物的抗癌作用研究越来越多㊂研究表明,在人结肠癌HT⁃29细胞中,白茅苷能明显抑制人结肠癌HT⁃29细胞和胃癌SGC⁃7901细胞的生长,且能通过上调p53和半胱天冬氨酸酶(Caspase)级联诱导细胞凋亡[16,17]㊂而党参多糖也具有包括抗癌在内的多种生物学活性,因此本文以体外培养的人肝
癌HepG2细胞为研究对象,探讨党参多糖能否通过PI3K/AKT信号通路对人肝癌HepG2细胞产生抑制作用㊂
细胞异常增殖和凋亡抑制是肿瘤发生的重要特点,因此抑制其增殖和促进其凋亡发生是抗癌药开发的重要思路㊂研究表明,许多天然提取物对体外培养的肿瘤细胞能表现出抑制作用㊂Hui等[18]研究发现,高良姜石油醚馏分得到的益智油通过上调PTEN表达㊁下调PI3K/AKT磷酸化诱导细胞凋亡而对多种肝癌细胞系的生长呈浓度和时间依赖性的抑制作用㊂研究表明,党参多糖对乳腺癌细胞系BT549㊁MDA⁃MB⁃231和宫颈癌细胞系Hela均能表现出明显的抑制增殖作用;且能通过上调Bax/Bcl⁃2比值和Caspase⁃3表达来诱导肿瘤细胞凋亡发生[10,12]㊂我们的研究也发现,党参多糖50μmol/L 及以上浓度对人肝癌HepG2细胞会产生明显的细胞毒性,5㊁10和20μmol/L浓度均能明显抑制HepG2细胞增殖和促进细胞凋亡㊂目前对党参多糖的研究并没有深入到单糖成分的活性研究层面,且不同的提取和分离纯化方法得到的党参多糖含量大不相同,既往研究确定了其主要成分包括鼠李糖㊁阿拉伯糖㊁半乳糖㊁核糖㊁甘露糖㊁果糖㊁木糖和葡萄糖等[19],在本文中党参多糖对HepG2细胞的毒性或活性来源尚不明确,还有待进一步研究㊂
抑制肿瘤细胞侵袭和转移是抗癌药的又一重要靶点㊂研究表明,五味子乙素能抑制P⁃AKT㊁p⁃mTOR和MMP⁃9的表达,剂量依赖性的抑制恶性胶质瘤细胞系U251和U87细胞的迁移和侵袭[20]㊂上皮间质转化(epithelial mesenchymal transition, EMT)是指上皮细胞失去极性和细胞获得间质特性从而增加细胞转移和侵袭能力的过程[21,22],是多种肿瘤发生转移和侵袭的重要过程㊂E⁃cadherin是一种重要的细胞黏附因子,参与并介导细胞之间相互黏附,与多种肿瘤的侵袭转移有不可分割的联系,它的低表达或者表达缺失被认为是肿瘤上皮间质转化的关键步骤㊂为了进一步探讨党参多糖对HepG2细胞的作用,我们检测了细胞迁移㊁侵袭和EMT相关蛋白的表达水平,结果表明:党参多糖明显抑制HepG2细胞的迁移和侵袭能力,并下调间质标记蛋白㊁上调上皮间质蛋白表达,从而抑制肿瘤细胞的侵袭和迁移能力㊂
众所周知,PI3K隶属于磷脂激酶家族,机体内多种生长因子均能激活PI3K产生第二信使PIP3,进而结合活化含有PH结构域的苏氨酸激酶AKT,参与调控细胞增殖㊁分化㊁迁移和凋亡等多种信号传导,其中也包括癌症[23]㊂研究表明,调节PI3K/AKT 通路能影响三阴性乳腺癌(triple⁃nagative breast cancer,TNBC)细胞的增殖㊁侵袭和迁移能力,抑制大肠癌细胞的增殖㊁迁移和侵袭,同时促进其细胞凋亡[24,25]㊂Liu等[26]研究发现,苦参碱(Oxymatrine, OMT)和/或奥沙利铂(OXA)联用处理结肠癌细胞系HT29和SW480,能通过降低PI3K/AKT通路相关蛋白表达而诱导结肠癌细胞发生凋亡㊂我们的研究也证实,PI3K/Akt信号通路的磷酸化激活降低是党参多糖抑制HepG2细胞生长和运动能力的作用机制,但党参多糖对HepG2细胞的这种作用是否还有其他信号通路的参与还有待进一步研究㊂
本文研究表明,党参多糖能抑制体外培养的人肝癌HepG2细胞增殖㊁侵袭和迁移能力,并促进其细胞凋亡发生;影响上皮间质转化相关蛋白E⁃cadherin㊁N⁃cadherin㊁Vimentin表达上皮和下调PI3K/AKT信号通路的磷酸化激活;还能在单用或与PI3K激活剂740Y⁃P联用时表现出对HepG2细胞增殖㊁凋亡㊁侵袭和迁移能力的抑制作用㊂综上所述,党参多糖能通过抑制PI3K/AKT信号通路活化实现对人肝癌HepG2细胞生长和运动能力的抑制作用㊂因此,党参多糖可能是一种潜在的治疗肝癌的药物,但对其单糖成分及在党参多糖活性成分中的角色还需要进行深入的研究㊂
参考文献:
[1]　张景洲,冯相伟,孟繁平.扶正解毒通络方对人肝癌HepG2细
胞MMP⁃2㊁MMP⁃9表达及细胞侵袭作用的影响[J].中国免疫学杂志,2017,33(4):542⁃544.
Zhang JZ,Feng XW,Meng FP.Effect of Fuzheng Jiedu Tongluofang on MMP⁃2and MMP⁃9and invasion of human hepatoma HepG2cells[J].Chin J Immunol,2017,33(4): 542⁃544.
[2]　Ozer Etik D,Suna N,Boyacioglu AS.Management of hepatocellular
carcinoma:prevention,surveillance,diagnosis,and staging[J].Exp Clin Transplant,2017,15(Suppl2):31⁃35.
[3]　Balogh J,Victor D3rd,Asham EH,et al.Hepatocellular
carcinoma:a review[J].J Hepatocell Carcinoma,2016,3(10): 41⁃53.
[4]　Zhang P,Hu L,Bai R,et al.Structural characterization of a pectic
polysaccharide from Codonopsis pilosulaand its immunomodulatory activities in vivo and in vitro[J].Int J Biol Macromol,2017,104 (Pt A):1359⁃1369.
[5]　Liu C,Chen J,Li E,et al.Solomonseal polysaccharide and sulfated
Codonopsis pilosula polysaccharidesynergistically resist Newcastle disease virus[J].PLoS One,2015,10(2):e0117916. [6]　Liu C,Chen J,Li E,et al.The comparison of antioxidative and
hepatoprotective activities of Codonopsispilosula polysaccharide
(CP)and sulfated CP[J].Int Immunopharmacol,2015,24(2): 299⁃305.
[7]　Chu X,Liu XJ,Qiu JM,et al.Inhibitory effects of codonopsis
pilosula polysaccharides on the deterioration of impaired phagocytosis of alveolar macrophage induced by fine particulate matter in chronic obstructive pulmonary disease mice[J].
Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2016,96(14):1134⁃1138. [8]　Chu X,Liu XJ,Qiu JM,et al.Effects of Astragalus and Codonopsis
pilosula polysaccharides on alveolar macrophage phagocytosis and inflammation in chronic obstructive pulmonary disease mice exposed to PM2.5[J].Environ Toxicol Pharmacol,2016,48(12): 76⁃84.
[9]　Zhang Q,Xia Y,Luo H,et al.Codonopsis pilosula Polysaccharide
Attenuates Tau Hyperphosphorylation and Cognitive Impairments in hTau Infected Mice[J].Front Mol Neurosci,2018,11(11):437.
[10]　Chen M,Li Y,Liu Z,et al.Exopolysaccharides from a Codonopsis
pilosula endophyte activate macrophages and inhibit cancer cell
proliferation and migration[J].Thorac Cancer,2018,9(5):
630⁃639.
[11]　Xin T,Zhang F,Jiang Q,et al.The inhibitory effect of a
polysaccharide from Codonopsis pilosula on tumor growth and
metastasis in vitro[J].Int J Biol Macromol,2012,51(5):
788⁃793.
[12]　Bai R,Li W,Li Y,et al.Cytotoxicity of two water⁃soluble polysac⁃
charides from Codonopsis pilosula Nannf.var.modesta(Nannf.)
L.T.Shen against human hepatocellular carcinoma HepG2cells
and its mechanism[J].Int J Biol Macromol,2018,120(Pt B):
1544⁃1550.
[13]　Chen H,Zhou L,Wu X,et al.The PI3K/AKT pathway in the
pathogenesis of prostate cancer[J].Front Biosci(Landmark
Ed),2016,21(6):1084⁃1091.
[14]　Mayer IA,Arteaga CL.The PI3K/AKT pathway as a target for
cancer treatment[J].Annu Rev Med,2016,67(10):11⁃28.
[15]　Xiong Z,Fu Z,Shi J,et al.HtrA1down⁃regulation induces
cisplatin resistance in colon cancer by increasing XIAP and
activating PI3K/Akt pathway[J].Ann Clin Lab Sci,2017,47
(3):264⁃270.
[16]　Zheng YM,Lu AX,Shen JZ,et al.Imperatorin exhibits anticancer
activities in human colon cancer cells via the caspase cascade
[J].Oncol Rep,2016,35(4):1995⁃2002.[17]　Am JU,Gong WJ,Su Y,et al.Imperatorin shows selective
antitumor effects in SGC⁃7901human gastric adenocarcinoma
cells by inducing apoptosis,cell cycle arrest and targeting PI3K/
Akt/m⁃TOR signalling pathway[J].J Buon,2017,22(6):
1471⁃1476.
[18]　Hui F,Qin X,Zhang Q,et al.Alpinia oxyphylla oil induces
apoptosis of hepatocellular carcinoma cells via PI3K/Akt pathway
in vitro and in vivo[J].Biomed Pharmacother,2019,109(1):
2365⁃2374.
[19]　徐美蓉,王　青,寇向龙,等.党参多糖的提取与结构组成研
究进展[J].甘肃农业科技,2018,4(9):73⁃76.
Xu MY,Wang Q,Kou XL,et al.Advances in extraction and
structural composition of polysaccharides from Codonopsis pilosula
[J].Gansu Nongye Keji,2018,4(9):73⁃76.
[20]　Jiang Y,Zhang Q,Bao J,et al.Schisandrin B suppresses glioma
cell metastasis mediated by inhibition of mTOR/MMP⁃9signal
pathway[J].Biomed Pharmacother,2015,74(8):77⁃82. [21]　Thiery JP,Sleeman plex networks orchestrate epithelial⁃
mesenchymal transitions[J].Nat Rev Mol Cell Bio,2006,7(2):
131⁃142.
[22]　Przybyal L,Muncie JM,Weaver VM.Mechanical control of
epithelial⁃to⁃mesenchymal transitions in development and cancer
[J].Annu Rev Cell Biol,2016,32(10):527⁃554. [23]　Yang M,Wang M,Li X,et al.The role of lncRNAs in signaling
pathway implicated in CC[J].J Cell Biochem,2019,120(3):
2703⁃2712.
[24]　Wu T,Song H,Xie D,et al.Silencing of ASPP2promotes the pro⁃
liferation,migration and invasion of triple⁃negative breast cancer
cells via the PI3K/AKT pathway[J].Int J Oncol,2018,52(6):
2001⁃2010.
[25]　Song W,Mei JZ,Zhang M,et al.Long noncoding RNA PlncRNA⁃
1promotes colorectal cancer cell progression by regulating the
PI3K/Akt signaling pathway[J].Oncol Res,2018,26(2):
261⁃268.
[26]　Liu Y,Bi T,Wang Z,et al.Oxymatrine synergistically enhances
antitumor activity of oxaliplatin in colon carcinoma through PI3K/
AKT/mTOR pathway[J].Apoptosis,2016,21(12):1398⁃1407.
[收稿2019⁃02⁃28　修回2019⁃06⁃04]
(编辑　刘格格)。