植物体内转化酶活性的测定
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植物体内转化酶活性的测定
转化酶又称蔗糖酶(β—D—呋喃型果糖苷一果糖水解酶),是一种水解酶。
植物体的库组织中,一般含有较高活性的转化酶。
它能将植物体内的主要同化产物——蔗糖不可逆地水解为葡萄糖和果糖,为细胞的可溶性糖类贮库提供可利用六碳糖,以用于细胞壁、贮藏多糖及果聚糖的生物合成,并通过与呼吸作用偶联的氧化磷酸化产生能量。
所以,转化酶与植物组织的生长有密切关系,是衡量同化产物的转化和利用,植物细胞代谢及生长强度的指标。
【原理】
转化酶可将非还原性糖的蔗糖水解为葡萄糖和果糖。
将从植物组织中提取的酶液与蔗糖溶液保温作用一定时间后,测定产生的还原糖的量来表示转化酶活性的大小。
在碱性条件下,还原糖与3,5-二硝基水杨酸共热,3,5-二硝基水杨酸被还原为3-氨基-5-硝基水杨酸(棕红色物质),还原糖则被氧化成糖酸及其它产物。
在一定范围内,还原糖的量与棕红色物质颜色深浅的程度量呈一定的比例关系,在540nm波长下测定棕红色物质的消光值,查对标准曲线可求出样品中还原糖的含量。
通常,在测定过程中,溶液的pH对酶活性影响很大。
不同的酶及不同材料中同一种酶都有其最适的pH值。
转化酶有两个影响水解蔗糖能力的解离基团,一个PKa约为7,另一个PKa约为3。
不同植物材料的转化酶中这两个基团的含量不同,它们的最适pH也不同(最适pH在7.0左右的为中性转化酶,最适pH
在7.0以下的为酸性转化酶)。
所以,在测定材料中转化酶的活性之前,首先要选择适宜的PH值。
【材料、仪器与试剂】
1.材料:植物组织
2.试剂:
(1)提取缓冲液:100 mmol/L Tris-HCl (PH7.0) 缓冲液,内含5 mmol/L MgCl
2
,
2 mmol/L EDTA-Na
2
,2% 乙二醇,0.2%牛血清蛋白(BSA),2%PVP,5 mmol/LDTT 。
(2)透析缓冲液:25 mmol/L Tris-HCl (PH7.0) 缓冲液,内含2.5 mmol/L MgCl
2
,
1 mmol/L EDTA-Na
2
,1% 乙二醇,1 mmol/L DTT。
(3)酶反应液:80 mmol/L乙酸-K
3PO
4
(pH4.7和pH7.0)缓冲液,内含50 mmol/L
蔗糖。
(4)葡萄糖标准液:1 mg/mL。
(5)3,5-二硝基水杨酸试剂:精确秤取1g 3,5-二硝基水杨酸,溶于20 ml 2 mol/L NaOH溶液中,加入50 ml蒸馏水,再加入30 g酒石酸钠,待溶解后用蒸馏水定容至100 ml。
盖紧瓶塞,勿让CO
2
进入。
若有浑浊可过滤后使用。
材料:小麦叶片、籽粒。
3.设备
冷冻离心机,恒温水浴,分光光度计,研钵一套,磁力搅拌器,天平(感量0.01mg),1 mL 移液管5支,5 mL带塞试管10支。
【方法与步骤】
1.酶的提取:称取1g植物叶片,置于预冷的研钵中,分批加入5ml 提取缓冲液,冰浴研磨提取,2度下10000转离心20分钟,上清液3ml 装入透析袋中,透析袋置于透析缓冲
液中4度透析过夜,期间更换透析液3次,透析后酶液定容5ml 备用。
2.酶反应:取3支5 mL 具有试管,加入0.95 mL 反应液和50μL 透析后的酶液,30℃水浴中反应10 min 中止反应。
用煮死酶液作对照(煮沸10min )。
3.还原糖含量的测定:往各反应试管中再加3,5-二硝基水杨酸试剂1 mL ,沸水浴5 min ,冷却至室温,于540nm 比色测定生成的还原糖量。
4.标准曲线制作:取7支5 ml 具塞试管,编号,按下表配置加入各种试剂液,并按上述步骤3进行,测定其吸光度值。
以吸光度值为纵坐标,葡萄糖含量
酶活力(mg 葡萄糖·g -1
FW ·h -1
)=
n t FW C V V S
t
⨯⨯⨯⨯
【结果与计算】
转化酶的活性用还原糖量(mg /g ·fw ·h)表示,计算公式如下: C 表示从标准曲线查得的葡萄糖量(mg ); FW 表示组织鲜重(g ); t 表示反应时间(h );
V t 表示提取酶液的总体积(mL ); V s 表示测定时取用酶液体积(mL ); n 表示提取液测定中的稀释倍数。
转化酶的测定
转化酶又称蔗糖酶,是一种水解酶,植物体的库组织中,一般含有较高活性的转化酶,它能将植物体内的主要同化产物——蔗糖不可逆的水解为葡萄糖和果糖,为细胞的可溶性糖贮库提供可利用六碳糖,以用于细胞壁、贮藏多糖及果聚糖的生物合成,并通过与呼吸作用偶联的氧化磷酸化产生能量,所以,转化酶与植物组织的生长有密切关系,是衡量同化产物的转化和利用、植物细胞代谢及生长强度的指标。
试剂:
1、10%蔗糖溶液
2、葡萄糖标准液(500μg/ml)
3、0.05mol/l的磷酸缓冲液
4、(DNS)3,5二硝基水杨酸:将6.3g二硝基水杨酸和262 ml 2mol/l NaOH溶液,加到500ml含有185g酒石酸钾钠的热水溶液中,再加5g结晶酚和5g亚硫酸钠,搅拌溶解,冷却后加蒸馏水定容至1000ml,贮于棕色瓶中备用。
方法:1、酶的提取:1g样品剪碎后,用预冷的蒸馏水在冰浴中研磨成匀浆,定容至100ml,在冰箱中浸提3小时,4000转离心15分钟,上清液即为酶的粗提液。
2、酶活性的测定:吸酶液2ml,放入试管中,再加入pH6.0的缓冲液5ml及10%蔗糖溶液1ml,在37度水浴中保温30分钟,取出后立即按3,5二硝基水杨酸法测定还原糖的含量。
以煮沸酶液10分钟钝化酶的试管作对照。
3、还原糖标准曲线的制作及还原糖含量的测定
①标准曲线:取6支20ml刻度试管,编号,按下表配置不同浓度的葡萄糖标准液:
管号 1 2 3 4 5 6
葡萄糖原液量(ml)0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0
加蒸馏水量(ml) 2.0 1.6 1.2 0.8 0.4 0
0 100 200 300 400 500
葡萄糖浓度(μ
g/ml)
在上述各管中分别加入1.5ml 3,5二硝基水杨酸试剂,在沸水浴中加热5分钟,取出后立即放入盛有冷水的烧杯中冷却至室温,加蒸馏水定容至20ml,混匀,以1号管为空白,测540nm 波长下的OD值。
以OD值为纵坐标,葡萄糖浓度为横坐标,绘制标准曲线。
②酶反应液中还原糖的含量的测定:吸取2ml反应液,加入1.5ml 3,5二硝基水杨酸试剂,沸水浴中煮沸5分钟,冷却定容至20ml ,测定540nm波长下的OD值,查标准曲线得酶反应液中还原糖的浓度。
4、结果计算:
A=(N-N’)*V/(T*W*1000)
A:转化酶的活性(mg/gfw/h) N:酶反应液中还原糖的浓度(μg/ml)
N’:钝化酶反应液中还原糖的浓度(μg/ml) V:酶反应液的总体积
T:反应时间W:材料鲜重。