拟南芥MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析(1)
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
植物学报Chinese Bulletin of Botany 2009, 44 (1): 52−58, www.chinbullbotany.com
收稿日期: 2008-06-22; 接受日期: 2008-06-26
基金项目: 国家自然科学基金(No. 30625002和No. 30628012)†共同第一作者。
* 通讯作者。
E-mail: qulj@pku.edu.cn
.研究论文.
拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
侯仙慧1†, 丁茂予1†, 刘赛男1, 李林川1, 瞿礼嘉1, 2*
1
北京大学生命科学学院, 北京大学-耶鲁大学植物分子遗传和农业生物技术联合研究中心, 蛋白质工程和植物基因工程国家重点实验
室, 北京100871; 2国家植物基因研究中心(北京), 北京100101
摘要 生长素是最重要的植物激素之一, 参与了植物生长发育的各个方面。
植物体内游离的IAA是生长素的主要活性形式,在IAA甲基转移酶1(IAMT1)的作用下, IAA可以转变为IAA甲酯 (MeIAA)。
MeIAA本身没有活性, 在植物体内的MeIAA酯解酶作用下可以重新转变为IAA。
MeIAA是非极性分子, 能够在植物体内自由扩散。
利用MeIAA的这种特殊性质筛选突变体, 可以分离到MeIAA代谢途径或者IAA途径中新的成分。
我们对拟南芥种子进行EMS诱变, 通过观察黑暗下下胚轴的生长情况, 筛选MeIAA的抗性突变体。
我们成功分离到了8株可能的抗性突变体, 并对其中的一个Methyl-IAA resistant 1 (mir1) 突变体进行了深入分析。
MeIAA抗性突变体的筛选将为进一步了解MeIAA的代谢、IAA稳态调控和响应机理提供新的材料。
关键词 生长素, 图位克隆, MeIAA, 抗性突变体
侯仙慧, 丁茂予, 刘赛男, 李林川, 瞿礼嘉 (2009). 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析. 植物学报 44, 52−58.
生长素(auxin)是由荷兰科学家F. W. Went通过燕麦胚芽鞘弯曲实验法 (Avena curvature test) 首次分离出来的(Went, 1926)。
随后人们提取并鉴定得到了第1种生长素——吲哚-3-乙酸(IAA)。
大量的实验表明IAA在高等植物中广泛存在, 是植物体内主要的生长素(Teale et al., 2006)。
IAA调控植物体内生长发育的许多过程, 如促进侧根形成、维管组织分化、胚胎发育、顶端优势及植物向性反应等(Woodward and Bartel,2005a)。
生长素在体内主要通过色氨酸依赖途径进行生物合成, 可以与糖、氨基酸、肽以及醇形成缀合物进行贮存或运输, 也可以通过氧化失去激素活性 (Ljung etal., 2001)。
生长素是一种极性分子, 是目前发现的唯一需要极性运输的激素, PIN蛋白家族是主要的生长素输出载体, 而AUX1蛋白是生长素输入载体, PIN和AUX1蛋白在细胞膜上具有不对称分布, 受到囊泡运输的调控(Leyser, 2003; Hobbie, 2006)。
生长素信号转导主要是由SCFTIR1介导的蛋白泛素降解途径, 高浓度的IAA促进其受体TIR1和转录抑制因子AUX/IAA家族蛋白的
结合而使AUX/IAA家族蛋白泛素化降解, 从而解除了对转录因子ARF家族蛋白的转录抑制, 进而激活或者抑制下游基因的表达 (Woodward and Bartel, 2005b; Tanet al., 2007)。
本实验室发现拟南芥IAA carboxyl methyltran-sferase1(IAMT1)基因的一个功能获得性突变体iamt1-D具有叶片上卷表型 (Qin et al., 2005)。
当通过RNAi降低IAMT1的表达时, 转基因植株叶片下卷。
而且,IAMT1的表达在叶片发育过程中受到严格的时空调控。
叶片卷曲程度和IAMT1表达水平相关表明, 生长素的稳态调控对于扁平叶片的形成起重要作用 (Qin et al.,2005)。
在体外, IAMT1蛋白能够把IAA转化为IAA甲酯 (MeIAA)。
Li等通过研究auxin resistant 1 (aux1)突变体对MeIAA、IAA和NAA的不同响应, 发现MeIAA与其它IAA缀合物一样, 也是没有活性的。
但是由于MeIAA是非极性的, 所以其进入细胞同NAA一样不需要载体协助 (Li et al., 2008a)。
MeIAA的运动性暗示它与IAA糖、氨基酸缀合物不同, 不是作为贮存或者降
53侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
解的形式, 而是通过微调IAA的分布, 从而影响植物发育过程, 如叶片的形态等 (Li et al., 2008a)。
Yang等研究表明MeIAA进入细胞后, 通过细胞内的一个或几个可能的酯解酶酯解后重新转变为IAA起作用(Yang etal., 2008)。
他们鉴定了拟南芥AtMES17基因, 其编码一个MeIAA酯解酶, 在体外该蛋白能够将MeIAA转变为IAA。
AtMES17的缺失突变体表现出对MeIAA的显著抗性, 而过量表达AtMES17的转基因植株则对MeIAA具有更强的敏感性, 同时这两种株系对IAA的响应正常 (Yang et al., 2008)。
利用激素突变体来研究激素代谢及其分子机制已有不少成功的范例, 突变体分析不仅可以对某一复杂生物学过程提出合理的假设, 而且可更进一步精确找出研究生理和发育问题的新方法。
由于在黑暗下MeIAA比IAA具有更强的下胚轴抑制能力, 利用MeIAA筛选生长素抗性突变体将更加简单易行。
本实验通过筛选经EMS诱变产生的拟南芥突变体种子, 外源施加一定浓度的MeIAA, 在黑暗下观察下胚轴生长, 筛选对MeIAA具有抗性的突变体, 并做进一步的遗传和基因定位分析, 为深入了解IAA的甲基化过程在IAA信号转导和稳态调控中的作用提供新的方法。
1 材料与方法
1.1 植物材料和培养条件
本研究中所用的拟南芥(Arabidopsis thaliana)除用于图位克隆的为Landsberg (Ler) 野生型外, 其余的都为Co-lumbia (Col-0) 背景。
处理方法和培养条件见Li等论文 (Li et al., 2008b)。
1.2 EMS诱变
将2.5 g拟南芥种子均分在2个50 mL的Falcon试管中, 加入40 mL去离子水室温过夜。
向每个试管中加入120 µL EMS (Sigma), 使EMS终浓度为0.3%。
在通风橱内翻转摇匀15个小时。
再用40 mL去离子水漂洗种子6次以上, 最后将种子用0.1% 琼脂均匀悬浮, 铺在约20个培养箱中。
单箱收获得到M2代种子, 编号,室温保存。
1.3 MeIAA抗性突变体的筛选
将表面消毒后的种子点播在含有2.5 µmol
.L-1 MeIAA(Sigma)的MS培养基上, 用锡箔纸包裹避光。
4°C春化2天, 然后放入22°C培养箱中培养4天, 挑取下胚轴长度远远超过平均值的小苗(图1), 转移到MS培养基上,恢复培养5天, 再转移到土中。
一个月后单收种子, 在MeIAA培养基上鉴定该抗性是否可以遗传。
1.4 突变体温度转移实验
将种子表面消毒后, 铺在MS培养基上, 4°C春化2天,然后转到22°C, 水平萌发3天。
转移大约20棵小苗到新的MS平板上, 共转移2块。
将其中一块仍然放在22°C条件下, 另一块转至29°C, 垂直培养3天。
比较2个生长条件下的植株下胚轴长度, 并统计。
1.5 图位克隆
图位克隆(map-based cloning)参考Lukowitz 等(2000)描述的方法。
实验中所用Marker均来自拟南芥网站(www.arabidopsis.org)。
2 结果与分析
2.1MeIAA抗性突变体筛选条件的确定
在进行大规模突变体筛选之前, 我们首先比较了IAA和MeIAA对黑暗下生长的拟南芥幼苗的下胚轴抑制程度。
在0.1-25 µmol
.L-1浓度范围内, 随着激素浓度的升高,IAA和MeIAA对下胚轴的抑制程度都增强, 但是MeIAA的抑制能力更强, 两者在2.5-10 µmol
.L-1范围内差异最为显著(图1A)。
在2.5 µmol
.L-1 MeIAA浓度下, 拟南芥幼苗下胚轴长约为MS培养基上的10%。
在大于2.5 µmol
.L-1的浓度下, MeIAA对下胚轴的抑制程度随浓度变化很小(图1A)。
综合上述两种现象, 我们选取2.5 µmol
.L-1的MeIAA处理经EMS诱变的M1代种子进行筛选。
野生型幼苗在2.5 µmol
.L-1 MeIAA培养基上暗培
54植物学报 44(1) 2009
养3天后, 下胚轴和主根生长几乎完全被抑制, 顶端钩消失(图1B)。
将下胚轴长至少为野生型2倍以上的幼苗定义为候选MeIAA抗性突变体(candidate MeIAA re-sistant mutants)。
通过这种方法, 总共得到了约150个候选突变体单株。
然后将候选突变体转移到培养箱中, 单株收种子后, 重新在2.5 µmol.L-1 MeIAA培养基上暗处理3天, 验证其对MeIAA抗性表型是否可以遗传。
最终共得到8株MeIAA抗性突变体, 其中mir1、mir2、mir3和mir4如图1B所示。
mir1、mir2和mir3的下胚轴和主根对MeIAA具有很强的抗性, 而mir4仅在下胚轴对MeIAA具有中度抗性(图1B)。
2.2
部分MeIAA抗性突变体对IAA也具有抗性
由于MeIAA是IAA的非活性形式, 需要在体内的酯解酶作用下重新转变为IAA起作用 (Li et al., 2008a; Yanget al., 2008)。
那么, MeIAA抗性突变体绝大部分都应表现出对IAA的抗性。
和预期相一致, mir1、mir2和mir3等在光下对IAA也表现出了一定程度的抗性
(图2A)。
有趣的是, mir4在光下并没有显示出对IAA的抗性(数据未显示), 推测它与mir1、mir2及mir3等具有不同的抗性机制。
拟南芥幼苗从正常温度(22°C )转移到高温下(29°C )生长时, 下胚轴会比正常条件下显著伸长 (Gray et al.,1998)。
进一步研究发现该现象主要是由于下胚轴中生长素的含量提高造成的, 而且该现象是生长素特异的反应。
当突变体生长素稳态调控或信号通路出现缺陷时,其下胚轴不能伸长 (Gray et al., 1998)。
将野生型拟南芥和MeIAA抗性突变体同时在22°C 和29°C 下培养, 在29°C 下, WT的下胚轴长度是22°C 下的2倍左右, 而mir1、mir2和mir3的下胚轴没有明显的伸长(图2B), 暗示其体内生长素途径出现缺陷。
然而, mir4的下胚轴能够正常响应高温变化, 进一步暗示其抗性机制和其它突变体不同。
2.3
mir1突变体的表型和遗传学分析
挑取mir1突变体作进一步表型分析。
在2.5 µmol.L-1
图1 MeIAA抗性突变体的获得
(A) 黑暗下IAA和MeIAA对拟南芥幼苗下胚轴抑制曲线; (B) MeIAA抗性突变体Figure 1 Isolation of candidate MeIAA resistant mutants
(A) Inhibitory curvature of hypocotyls by IAA and MeIAA in the dark; (B) MeIAA resistant mutants, mir1, mir2, mir3 and
mir4
55
侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
图2 MeIAA抗性突变体生长素相关表型分析
(A) MeIAA抗性突变体同样具有对IAA的抗性; (B) MeIAA突变体下胚轴在不同温度下的伸长情况
Figure 2 Auxin related phenotypes of MeIAA resistant mutants
(A) MeIAA resistant mutants also show resistance to IAA; (B) Hypocotyl elongation of MeIAA resistant mutants at differenttemperatures
MeIAA培养基上黑暗下处理3天后, mir1突变体的下胚轴和主根表现出显著的抗性(图3A)。
有趣的是, mir1突变体在MS培养基上黑暗下培养3天后, 下胚轴比野生型短, 顶端钩消失(图3B)。
在光下, mir1突变体的子叶稍微上卷(图3C), 侧根数目显著少于野生型(图3D)。
mir1突变体成株表现出叶柄短, 叶片上卷(图3E), 而且植株矮化, 分枝数多于野生型, 但花和角果正常(图3F)。
为了研究mir1突变的分子本质, 我们对mir1突变体进行了深入的遗传学分析。
首先将mir1和Col-0进行回交, F1代幼苗在MeIAA培养基上出现了抗性和感性的分离, 而且分离比例约为1:1 (表1), 暗示该突变是由一个显性单基因控制的。
同样的结果也出现在mir1和Ler杂交的F1代中(表1)。
单收mir1和Ler杂交的F1代种子, 点播后观察F2代的分离比, 发现抗性和感性植株的分离比约为3:1(表1), 进一步暗示mir1突变是由显性单基因突变所致。
2.4 mir1突变体的初步图位克隆
我们利用图位克隆方法对mir1突变进行基因定位。
提取突变体和Ler杂交F2代中的野生型表型苗的DNA, 利用TAIR网站上的引物(marker)信息, 进行初定位(first-pass cloning)。
经过初定位, 发现mir1突变与第1条染色体上端Marker nga63具有明显连锁, 重组率约为15%; 在nga63两端分别设计引物进一步定位, 发现突变位点可能处于更靠近染色体顶端的2个MarkerNF21B7和NT1G11之间。
这一位置具有已知的4个
表1 mir1突变体遗传学分析
Table 1 Genetic segregation of MeIAA resistance in mir1
No. of plants
CrossResistantSensitiveTotalX20.95
mir1 × Col-0 (F1)222648-
mir1 × Ler (F1)323062-
mir1 × Ler (F2)27898376
0.23 (3:1)
56植物学报 44(1) 2009
图3 mir1表型分析
(A) 黑暗下在含有2.5 µmol.L-1 MeIAA的培养基上生长3天的野生型和mir1的表型;
(B) 黑暗下在MS培养基上生长3天的野生型和mir1的表型;(C) 光下在MS培养基上生长7天的野生型和mir1的表型;(D) 2周大小的野生型和mir1的侧根表型;(E) 4周大小的野生型和mir1的叶片表型;(F) 6周大小的野生型和mir1的整体植株表型Bar = 5 mm
Figure 3 Phenotypes of mir1
(A) WT and mir1 grew on 2.5 µmol.L-1 MeIAA for 3 d in thedark;
(B) WT and mir1 grew on MS for 3 d in the dark;(C) WT and mir1 grew on MS for 7 d in the light;
(D) Lateral root phenotypes of WT and mir1 of two weeks old;(E) Leaf phenotypes of WT and mir1 of four weeks old;(F) Whole plant phenotypes of WT and mir1 of six weeks oldBar = 5 mm
图4 mir1在第1条染色体上端的初定位信息
图中由上至下依次标明所用Marker的名称, 染色体序号, 各Marker距该染色体最上端的物理距离, 各Marker对应位置发生重组的植株数目及相应所检测染色体的数目, 最下方线段表示推测的突变位点所在位置。
Figure 4 Primary mapping for mir1 on Chromosome I
The supposed mapping position of mir1
is based on the recombinant No. of each marker on the Chromosome I.
57侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
Aux/IAA基因, 分别是IAA3、IAA10、IAA12和IAA17。
我们将通过进一步精细定位和测序确定突变位点。
3 讨论
对于大规模的筛选工作, 筛选方法是突变体筛选成败的关键。
越是专一的筛选条件, 就越有机会直接获得所期待的突变体。
常用的方法有正筛选和负筛选。
正筛选是设计一定的培养基或培养条件, 使得野生型不可以生长但突变体能生长; 而负筛选是野生型可以生长但突变体不能生长。
正筛选通常得到的是抗性突变体, 而负筛选通常得到超敏感突变体。
本研究中我们通过正筛选方法成功得到了MeIAA抗性突变体。
该方法的2个关键点是MeIAA的浓度和筛选指标的确定。
通过绘制MeIAA和IAA黑暗下对野生型幼苗下胚轴的抑制曲线,我们确定了2.5 µmol
.L-1是MeIAA和IAA在区分度和对下胚轴的抑制程度上最佳的选择浓度。
下胚轴长短这一筛选指标, 简单易行, 为我们大规模筛选突变体带来很大方便, 能够满足饱和筛选的条件。
MeIAA是在 IAA羧甲基转移酶1 (IAMT1)的作用下由IAA甲酯化生成(Qin et al., 2005), 是非极性的IAA缀合物, 能够在体内自由扩散。
同时, MeIAA是一种非活性的IAA形式, 需要通过体内1个或多个MeIAA酯解酶的作用重新转变为IAA (Yang et al., 2008)。
这两个性质导致MeIAA具有不同于IAA以及IAA的其它缀合物的化学特性(Li et al., 2008a), 所以用MeIAA来筛选抗性突变体具有比IAA更大的优势。
首先, MeIAA可以自由扩散, 所以筛选中能够排除部分生长素极性运输的影响, 得到的突变体可能仅与生长素的信号相关。
另一方面, 在黑暗下, MeIAA对下胚轴的抑制程度强于IAA, 在IAA筛选中的弱抗性突变体可能在MeIAA上表型更加明显, 所以通过MeIAA筛选能够得到原来很难分离到的生长素信号突变体。
此外, MeIAA代谢相关基因的突变也有可能通过这种方法得到。
在分离到的8个突变体中, mir1、mir2和mir3对MeIAA和IAA都表现出抗性, 暗示这3个突变体应该是普通的生长素抗性突变体。
mir1突变体具有明显的生长素相关发育缺陷, 如顶端钩消失、侧根少、叶片上卷表型。
图位克隆分析表明, mir1突变定位在第1条染色体上端的NT1G11 Marker附近。
而在这个Marker附近集中了IAA3、IAA10、IAA12和IAA17 4个典型的Aux/IAA基因 (Leyser et al., 1996; Tian and Reed,1999; Hamann et al., 2002)。
根据mir1的叶片表型和这些基因的已有报道相比较, 推测mir1可能是IAA3的突变。
进一步的测序和遗传学鉴定工作正在进行中。
而mir4突变体具有对MeIAA特异抗性, 而且这种抗性只特异地出现在下胚轴, 暗示该突变可能是MeIAA特异突变, 为我们揭示MeIAA代谢和活性调控提供了良好的材料。
参考文献
Gray WM, Ostin A, Sandberg G, Romano CP, Estelle M (1998).High temperature promotes auxin-mediated hypocotyl elonga-tion in Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA 95, 7197-7202.Hamann T, Benkova E, Baurle I, Kientz M, Jurgens G (2002).The Arabidopsis BODENLOS gene encodes an auxin re-sponse protein inhibiting MONOPTEROS-mediated embryopatterning. Genes Dev 16, 1610-1615.
Hobbie LJ (2006). Auxin and cell polarity: the emergence ofAXR4. Trends Plant Sci 11, 517-518.
Leyser HM, Pickett FB, Dharmasiri S, Estelle M (1996). Mu-tations in the AXR3 gene of Arabidopsis result in altered auxinresponse including ectopic expression from the SAUR-AC1promoter. Plant J 10, 403-413.
Leyser O (2003). Regulation of shoot branching by auxin. TrendsPlant Sci 8, 541-545.
Li L, Hou X, Tsuge T, Ding M, Aoyama T, Oka A, Gu H, ZhaoY, Qu LJ (2008a). The possible action mechanisms of indole-3-acetic acid methyl ester in Arabidopsis. Plant Cell Rep 27,575-584.
Li LC, Qin GJ, Tsuge T, Hou XH, Ding MY, Aoyama T, Oka A,Chen Z, Gu H, Zhao Y, Qu LJ (2008b). SPOROCYTELESSmodulates YUCCA expression to regulate the development oflateral organs in Arabidopsis. New Phytol (in press)
Ljung K, Bhalerao RP, Sandberg G (2001). Sites and homeo-static control of auxin biosynthesis in Arabidopsis during veg-
58植物学报 44(1) 2009
Isolation and Positional Cloning of Methyl-Indole-3-Acetic
Acid Resistant Mutants in Arabidopsis
Xianhui Hou 1†, Maoyu Ding 1†, Sainan Liu 1, Linchuan Li 1, Lijia Qu 1, 2*
1
National Laboratory for Protein Engineering and Plant Genetic Engineering, Peking-Yale Joint Research Center for Plant Molecu-lar Genetics and AgroBiotechnology, College of Life Sciences, Peking University, Beijing 100871, China; 2The National Plant
Gene Research Center (Beijing), Beijing 100101, China
Abstract Auxin is one of the most important plant hormones in that it regulates almost all aspects of plant growth and development. In plants, free indole-3-acetic acid (IAA) is the major active auxin and can be converted to methyl-IAA (MeIAA) with the activity of an IAA carboxyl methyltransferase 1 (IAMT1). However, MeIAA is also an inactive form of IAA and can be converted to IAA catalyzed by several esterases. MeIAA is a non-polar IAA form and can diffuse between cells, so MeIAA is suitable for screening new components in MeIAA metabolism or IAA biology. Here, we screened ethyl-methane-sulphonate (EMS)-mutagensis seedlings on MeIAA medium in the dark, with longer hypocotyls used as a criterion. We isolated 8 putative MeIAA-resistant mutants and carried out further experiments on one mutant, mir1. These new mutants will help shed light on MeIAA metabolism and the action mechanism of IAA.
Key words auxin, map-based cloning, MeIAA, resistant mutant
Hou XH, Ding MY, Liu SN, Li LC, Qu LJ (2009). Isolation and positional cloning of methyl-indole-3-acetic acid resistant mutants inArabidopsis. Chin Bull Bot 44, 52−58.
†
These authors contributed equally in this paper.
* Author for correspondence. E-mail: qulj@pku.edu.cn
(责任编辑: 刘慧君)
etative growth. Plant J 28, 465-474.
Lukowitz W, Gillmor CS, Scheible WR (2000). Positional clon-
ing in Arabidopsis. Why it feels good to have a genome initia-tive working for you. Plant Physiol 123, 795-805.
Qin G, Gu H, Zhao Y, Ma Z, Shi G, Yang Y, Pichersky E, Chen
H, Liu M, Chen Z, Qu LJ (2005). An indole-3-acetic acidcarboxyl methyltransferase regulates Arabidopsis leafdevelopment. Plant Cell 17, 2693-2704.
Tan X, Calderon-Villalobos LI, Sharon M, Zheng C, Robinson
CV, Estelle M, Zheng N (2007). Mechanism of auxin percep-tion by the TIR1 ubiquitin ligase. Nature 446, 640-645.Teale WD, Paponov IA, Palme K (2006). Auxin in action:
signaling, transport and the control of plant growth anddevelopment. Nat Rev Mol Cell Biol 7, 847-859.
Tian Q, Reed JW (1999). Control of auxin-regulated root devel-
opment by the Arabidopsis thaliana SHY2/IAA3 gene. Devel-opment 126, 711-721.
Went F (1926). On growth accelerating substance in the coleoptile of
Avena sativa. Proc K Akad Wetensch Amsterdam 30, 10-19.Woodward AW, Bartel B (2005a). Auxin: regulation, action, and
interaction. Ann Bot (Lond) 95, 707-735.
Woodward AW, Bartel B (2005b). A receptor for auxin. Plant
Cell 17, 2425-2429.
Yang Y, Xu R, Ma CJ, Vlot AC, Klessig DF, Pichersky E (2008).
Inactive methyl indole-3-acetic acid ester can be hydrolyzedand activated by several esterases belonging to the AtMESesterase family of Arabidopsis thaliana. Plant Physiol (inpress)。