qPCR实验操作流程

Q-PCR实验流程
一、①实验前准备，每天早上到实验室后，先把超净工作台的紫外灯打
开15-20分钟。

②超净台前做实验，需佩戴干净的橡胶手套/一次性薄膜手套，RNA抽提需带口罩。

③取EP管/枪头时需用镊子，不可以用使用过的手套直接取用。

取完EP管/枪头后，袋子及时封好。

④橡胶手套须放入超净台照射紫外，实验操作过程中不得带出超净台，移液器在一天工作结束后调至最大量程，并用75%乙醇清洁移液器，枪头盒及超净台面。

⑤实验进行的过程中或观看实验时，没有带口罩不要在超净台前讲话。

二、总RNA抽提
1）细胞培养皿中细胞样品用1*PBS洗两次后，用1ml枪将PBS吸干净，加入1ml Trizol （Invitrogen）溶液，吹打混匀，并吸至1.5ml RNase free EP管中使细胞充分裂解，室温静置5min；
组织样品用液氮充分研磨，加入1ml Trizol （Invitrogen）溶液，混匀，室温放置5min使其充分裂解；（管盖与管壁都需标记样品名称）
2）加入200μl氯仿，剧烈振荡混匀30s，使水相和有机相充分接触，室温静置3-5min；（离心时离心管按顺序排放，离心完毕，离心管的顺序也按顺序排好，与第一步的顺序一致）
3）4℃下，14,000g离心15min，可见分为三层，RNA在上层水相，移至另一个新的RNase free EP管；（用20-200ul的枪吸取上清，吸上清时，枪头应沿着液面上层吸取上清，枪头不可碰到、吸到中间层）
4）沉淀RNA：加入等体积异丙醇，轻柔地充分混匀（颠倒6-8次）（不应用振荡器混匀），室温静置10min；
5）4℃下，14,000g离心10min，收集RNA沉淀（如离心后仍不见EP管底部有沉淀，应将EP管放置在-80度冰箱过夜，继续在4℃下，14,000g 离心10min，收集RNA沉淀），去上清；
6）用75％乙醇洗涤两次（12,000g离心5min）（加入乙醇后只需轻轻颠倒EP管即可，不用振荡器震荡或枪头吸打沉淀），超净台风干；沉淀不
能过干或过湿，过干则不易溶解，过湿则乙醇残留。

7）视沉淀量加入适量DEPC水（至少15ul）溶解沉淀。

三、去基因组
使用RNase-free的DNase І（Promega），按以下体系配置反应液，37℃消化30min，65℃灭活10min。

RNA
DNase І
10 x buffer
H2O(RNase free) RNasin
30
20
10
39.5
0.5
µl
µl
µl
µl
µl
总体积100 µl
然后按以下步骤操作：
1) 加入等体积的苯酚/氯仿，上下颠倒混匀，室温放置5min，后14,000rpm，
离心15min，取上清。

2) 加入等体积的氯仿，上下颠倒混匀，静置分层后14,000rpm，离心15min，
取上清。

3）加入等体积异丙醇，轻柔地充分混匀（颠倒6-8次），-20℃静置15min；
4）4℃下，14,000g离心15min，收集RNA沉淀，去上清；
5）用75％乙醇洗涤两次（12,000g离心5min），超净台风干；
6）加入适量DEPC水（至少15ul）溶解沉淀。

四、总RNA纯度和完整性检测
1）纯度检测：取1μl RNA样品50倍稀释，在核酸蛋白检测仪上测定OD值，OD260/OD280的比值大于1.8，说明制备的RNA较纯，无蛋白质污染。

2）总RNA完整性检测：取RNA样品1μl，1％琼脂糖凝胶电泳80V×20min，EB 染色10min，用凝胶成像系统观察并拍照，总RNA的5s rRNA，18s rRNA 和28s rRNA条带，三条条带完整的话即可证明总RNA抽提比较完整。

五、逆转录
1. mRNA：
1)在RNase free的PCR管中配置下列溶液.
2) 将上述溶液吹打均匀，置85℃保温5min ，使RNA 变性。

随后立即冰上致冷，
以防止RNA 复性；
3) 在该PCR 管中加入下列试剂（Promega ）
oligo （dT ）
Random primer 10mM dNTP RNase inhibitor
5 x buffer M-MLV 0.5
0.5 2.0 0.5
4.0 0.5 µl µl µl µl µl µl 总体积
8.0
µl
4) 将上述20μl 反应溶液30℃保温10min ； 5) 42℃保温50min ； 6) 85℃保温10min ； 7) -20℃保存。

2. microRNA ：
使用茎环逆转录法，原理如下图：
Total RNA H 2O 1.0 µg µl 总体积
12
µl
1） 在去RNase 的PCR 管中配置以下溶液.
2）将上述溶液混匀，85℃孵育5min ，以打开RNA 二级结构。

随后立即置于冰
上，以防止RNA 复性再次恢复二级结构； 3） 在另一去RNase 的PCR 管中配置以下溶液：
10mM dNTP (promega) RNase inhibitor (promega) U6逆转录引物
5x buffer M-MLV (promega) 2.0 0.5 0.5 4.0 0.5 µl µl µl µl µl 总体积
7.5
µl
4） 将3）溶液加入到1）溶液中，混匀后30℃保温10min ； 5） 42℃孵育50min ；
6） 85℃孵育10min 灭活逆转录酶。

四、定量PCR 检测 1.引物测试：
根据mRNA 设计的引物正式实验前需进行qPCR 测试其特异性和扩增效率，具体反应体系和反应条件如正式实验，每对引物需做模板水对照。

得到结果后，首先根据熔解曲线判断引物特异性，选择标准为：单峰且峰形偏窄、水对照无明显引物二聚体熔解曲线峰。

若设计的多对引物熔解曲线均显示特异性良好，则应对比各引物的扩增曲线，优先选择Ct 值小、扩增效率高的引物进行正式实验。

2．确定上机内容后，首先在记录本上编排好上机的样品排放顺序。

（1）一个样品的加样尽可能安排在同一行（2）如正式实验中三次重复不能安排在同一板上，则需把三次重复中的实验分开，但同一次重复的实验不能分开两板
total RNA
X 个miR 逆转录引物 H 2O 1.0 0.5*X µg µl
总体积
12.5
µl
3．正式实验：
体系配制：
H2O 4ul
SYBR Green PCR Master Mix 10ul (TOYOBO)(使用前需振荡均匀) 上游引物0.5ul （10uM）
下游引物0.5ul （10uM）
总体积15ul
计算好实验中需用多少份体系，则按具体量配置。

体系分装会有损失，一般多配0.5份--1份体系。

总的体系配好后，在振荡器中振荡均匀或用枪吸打均匀，然后15ul每管分装至8连管中。

3．cDNA用灭菌纯水稀释适当的浓度，一般为1:20稀释，如遇到基因表达低的样品，则适当降低稀释比例至1:10或1:5。

cDNA按一定顺序排好后，即可加至刚配好的反应体系中。

加样完毕，盖好八连管盖，并在八连管盖最上沿的边上标记好1-12的顺序（不可将标记写在反应管的盖子上，八连管盖避免裸手触摸中间透明的荧光采集区域，且保证每孔均盖紧，否则影响重复性或可能出现熔解曲线峰漂移。

）
4．把各排八连管放在掌上离心机上离心数秒。

五．上机：
5.1 先开电脑，进入Windows 界面。

接着打开PCR仪电源开关。

5.2 打开7500软件，选择“新建”，在“Template”下拉菜单中选择“60”或
“65”（普通基因检测为“60”，MicroRNA检测为“65”）
5.3 打开样品架，放入八连管，关上样品架，并在软件上选择已放反应管的孔位，剔除无反应管的孔位。

5.4 点击File菜单中Save，输入要保存结果的文件名，命名为日期-上机时间-客户名字简写，如100830-1008-WL表示8月30日10点08分魏立的实验。

5.5 点击Start键，开始运行程序。

5.6 程序运行完毕后，取出样品架上的八连管，按顺序关闭ABI PRISM 7500
SDS 软件、PCR仪电源开关。

5.7 在7500软件上标记好每个反应孔的样品名称及检测基因的名称，分类保存
好结果文件。

反应完成后，八连管应装到封口袋中，袋子上标记好文件名，客户的名字。

（同一个客户的三次重复实验，则只需保存其中一次重复的反应管即可，其余可丢弃）。