生理学家兔呼吸调节
生理科学实验设计家兔呼吸运动调节
生理科学实验设计——家兔呼吸运动的调节09级31班第四小组麦华浩莫世杰刘文荣罗国华王辉赵宏伟一:实验目的:(1)熟悉家兔耳缘静脉注射法、家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。
(2)记录家兔呼吸曲线观察一氧化碳(CO)、纯氧,走神经对呼吸运动的调节及了解其机理。
(3)熟悉Medlab生物信号处理系统、保护电极、氧气瓶,张力换能器在实验中的作用及使用注意事项。
二:立题依据:一氧化碳中毒机理是一氧化碳与血红蛋白的亲合力比氧与血红蛋白的亲合力高200~300倍,它进入人体后会和血液中的血红蛋白结合,使血红蛋白不能与氧气结合,从而造成人体组织缺氧。
急性中毒时,轻者会出现头痛、头晕、耳鸣、心悸、恶心、呕吐、无力,重者会出现心肌损害、脑椎体系损害、昏迷、休克甚至死亡。
及时强制吸氧,置换一氧化碳,能避免死亡。
临床表现主要为缺氧,其严重程度与HbCO的饱和度呈比例关系。
轻者有头痛、无力、眩晕、劳动时呼吸困难,HbCO饱和度达10%—20%。
症状加重,患者口唇呈樱桃红色,可有恶心、呕吐、意识模糊、虚脱或昏迷,HbCO饱和度达30%—40%。
重者呈深度昏迷,伴有高热、四肢肌张力增强和阵发性或强直性痉挛,HbCO饱和度>50%。
患者多有脑水肿、肺水肿、心肌损害、心律失常和呼吸抑制,可造成死亡。
二氧化碳(CO2)是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素。
很早就知道,在麻痹的动物或人,当动物血液Pco2降到很低水平时,可出现呼吸暂停。
因此,一定水平的Pco2对维持呼吸中枢的基本活动是必需的。
CO2刺激呼吸运动是用过两条途径实现的:一是通过刺激中枢化学感受器再兴奋呼吸中枢;二是刺激外周化学感受器,冲动经窦神经和迷走神经传入延髓,反射性地使呼吸加深﹑加快,肺通气量增加。
CO2在呼吸调节中经常起作用,动脉血Pco2在一定范围内升高,可加强对呼吸的刺激作用氧中毒机理当吸入性PO2过高时,活性氧产生增加,反可引起组织,细胞损伤,称为氧中毒。
家兔呼吸运动实验报告
家兔呼吸运动实验报告家兔呼吸运动实验报告一、引言呼吸是生物体的基本生理活动之一,对于维持生命活动至关重要。
通过呼吸,生物体摄取氧气,排出二氧化碳,以维持细胞的正常代谢。
为了研究呼吸运动的特征和规律,本实验选择了家兔作为研究对象,通过观察和测量家兔的呼吸频率和呼吸深度,以探究家兔呼吸运动的特点。
二、实验方法1. 实验材料本实验所需材料包括:家兔、呼吸计、计时器、实验记录表。
2. 实验步骤(1)将家兔放置在安静的实验环境中,使其适应环境。
(2)使用呼吸计测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。
将呼吸计放置在家兔鼻孔附近,记录下每分钟的呼吸次数。
(3)使用计时器记录家兔的呼吸频率和呼吸深度,每次记录持续时间为一分钟。
(4)重复实验步骤(2)和(3)三次,取平均值作为实验结果。
三、实验结果通过实验测量和记录,得到了以下结果:1. 家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
2. 家兔的呼吸深度平均为每次0.5毫升。
四、实验讨论1. 家兔的呼吸频率实验结果显示,家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
与人类相比,家兔的呼吸频率较高。
这可能是因为家兔的新陈代谢较快,需要更多的氧气供应。
此外,家兔的呼吸频率还受到环境和身体状况的影响,例如运动、温度等因素都会对呼吸频率产生影响。
2. 家兔的呼吸深度实验结果显示,家兔的呼吸深度平均为每次0.5毫升。
呼吸深度是指每次呼吸时肺部吸入或排出的气体量。
家兔的呼吸深度相对较小,这可能是因为家兔的肺容量有限,无法像人类那样进行深呼吸。
此外,家兔的呼吸深度还受到呼吸肌肉的控制和调节。
3. 家兔呼吸运动的调节机制家兔的呼吸运动是由中枢神经系统控制和调节的。
呼吸中枢位于脑干的延髓和桥脑部分,通过神经传递信号,控制呼吸肌肉的收缩和松弛,从而实现呼吸运动。
此外,呼吸运动还受到多种因素的调节,如血液中的氧气和二氧化碳浓度、酸碱平衡等。
五、实验结论通过本次实验,我们得出了以下结论:1. 家兔的呼吸频率平均为每分钟60次。
家兔呼吸运动的调节
课程名称人体解剖生理学实验地点科技楼338 实验日期性质:综合
家兔呼吸运动的调节
一、目的要求
1、学习家兔颈部手术
2、学习记录家兔呼吸运动的方法
3、观察并分析不同因素对呼吸运动的影响
二、基本原理
呼吸运动是呼吸中枢支配下的一种节律性活动。
呼吸运动能够持续地节律地进行,是由于体内神经和体液调节机制的存在。
三、动物与器材
家兔、兔体手术台、玻璃分针、气管插管、张力换能器、BL-420、CO2制备装置
3%戊巴比妥钠、生理盐水、碳酸钙、稀盐酸、3%乳酸
四、方法与步骤
1、麻醉,固定,剪去颈部与剑突腹面的被毛。
2、颈部手术:
1)切开颈部皮肤。
2)分层分离肌肉
3)颈部动脉神经分离术,分离出双侧迷走神经,穿线备用
4)气管插管
5)手术完毕后用温热的生理盐水纱布覆盖手术伤口部位。
3、切开腹部的皮肤,暴露肝或者胃,通过蛙心夹连接张力传感器记录肝或胃的运动。
5、观察项目
(1)记录正常呼吸运动曲线
(2)增加无效腔对呼吸运动的影响
(3)窒息/增加气道阻力对呼吸运动的影响
(4)CO2对呼吸运动的影响
+]↑对呼吸运动的影响
(5)[H
(6)肺牵张反射
(7)同时结扎双侧迷走神经,观察并记录呼吸运动曲线的改变。
6、处死:空气栓塞法
五、作业
1、双侧切断迷走神经以后,呼吸运动的变化说明什么问题?。
家兔呼吸运动的调节
实验三家兔呼吸运动的调节摘要目的为观察血液中化学因素(PCO2、PO2、[H﹢])改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响;观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用;掌握气管插管术和神经血管分离术。
方法通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经远心端以及迷走神经近心端等方法,用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。
结果实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快,而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅,频率变慢。
结论提高吸入气体PCO2,降低PO2可导致呼吸加深加快;迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经,剪断一侧迷走神经呼吸频率加快,切断两侧迷走神经后,吸气变深,频率变慢;刺激迷走神经外周端,无明显反应,刺激中枢端后呼吸频率加快,呼吸变浅。
关键词呼吸运动迷走神经CO2分压H﹢浓度无效腔1.材料和方法:1.1.材料1.1.1.对象:家兔;1.1.2.试剂:20g/L 乳酸溶液,氨基甲酸乙酯;1.1.3.仪器:RM6240生物信号采集系统,手术器械一套,兔手术台,T型气管插管,注射器,50cm长橡皮管一条,CO2气袋,丝线,铁架台,婴儿秤,呼吸换能器,电刺激连线。
1.2.方法1.2.1.手术准备1.2.1.1.麻醉固定家兔称重后,按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。
1.2.1.2.手术剪去颈前被毛,颈前正中切开皮肤6 ~7cm,直至下颌角上1.5cm,用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘,细心分离两侧鞘膜内迷走神经,在迷走神经下穿线备用。
分离气管,在气管下穿一根粗棉线备用。
1.2.1.3.气管插管在在暴露的气管上1/3处,做倒T形剪口,将气管切开之后尽量将气管里的血液和分泌物擦净,气管插管由剪口处向肺端插入,插时应动作轻巧,避免损伤气管粘膜引起出血,用一粗棉线将插管口结扎固定,同时再将剩余线头将通气口固定,防止T型气管插管移动。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节摘要:目的观察血液中Pco2,Po2和[H+]改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响,观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用,方法通过增大无效腔,增大CO2分压,快速注射2%乳酸,先后切断迷走神经以及电刺激迷走神经近心端和中枢端,观察呼吸运动的改变情况。
结果增大无效腔,增加CO2分压,快速注射乳酸后,可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加;剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大,剪断双侧迷走神经,呼吸变深变慢。
用电刺激迷走神经的中枢端则可以使深慢的呼吸重新变为浅快,并且可以接近正常的呼吸频率和深度。
结论机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平,动脉血中O2、CO2、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸,迷走神经加速吸气向呼气转换,使呼吸频率增加,参与维持机体内环境的相对稳定。
【关键词】:呼吸;调节【实验材料和方法】:1.材料:1、动物:家兔2、器械:动物手术器材(手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针, 丝线,注射器,兔台),气管插管,体重秤,张力换能器,生理信号采集系统,医用橡皮管,纱布,20 ml 注射器,玻璃分针。
3、药品和试剂:20%氨基甲酸乙酯,0.9%生理盐水.2.方法1.麻醉固定:家兔称重后,将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入,注意观察家兔的反应。
待麻醉后,将家兔仰卧固定于兔手术台上,先后固定四肢及兔头。
2.手术:剪去家兔颈部的被毛,沿颈部正中线作一长6~7cm的切口,用止血钳钝性分离皮下组织,暴露并游离气管,并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经,并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4~5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T型气管插管向肺的方向插入气管内,用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3.观察准备:用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器,启动计算机RM6240生物信号采集系统,点击“实验”菜单,选择“呼吸运动调节”,双击一通道,调节增益、采样参数,使基线归零,令图形位于屏幕中央,便于观察。
家兔呼吸运动调节的实验改进
家兔呼吸运动调节的实验改进呼吸运动调节研究在生理学和医学领域具有重要意义。
其中,家兔作为常用的实验动物,其呼吸运动调节实验的准确性和可重复性对研究结果的影响至关重要。
然而,在实际操作中,家兔呼吸运动调节实验存在一些问题,如实验设备的影响、操作复杂等,这些问题制约了实验的精确性和可靠性。
因此,本文旨在改进家兔呼吸运动调节实验的方法,提高实验的准确性。
家兔呼吸运动调节主要受神经系统和体液因素的调控。
通过研究家兔在各种生理和病理条件下的呼吸运动变化,可以深入了解呼吸运动的调节机制。
实验中需注意保持家兔处于适宜的环境条件下,并排除其他因素对实验结果的干扰。
为改进家兔呼吸运动调节实验,我们采取以下措施:实验设备优化:选用新型呼吸机,以降低机械通气对家兔呼吸运动的干扰。
同时,采用高精度的气体分析仪,以准确测定家兔的呼吸气体成分和代谢率。
实验材料准备:选用健康成年家兔,并严格控制其饮食和环境,以减少外界因素对实验结果的影响。
在实验前对家兔进行适应性训练,以减少应激反应。
实验过程控制:在保持环境恒定的条件下,记录家兔在不同刺激因素下的呼吸运动变化。
刺激因素包括神经系统刺激(如神经放电)、体液因素(如激素注射)等。
通过改进实验方法和严格控制实验条件,我们获得了更为准确的家兔呼吸运动调节数据。
数据分析显示,神经系统刺激和体液因素对家兔呼吸运动的影响与既往报道一致。
我们还发现环境因素对家兔呼吸运动的影响不容忽视。
根据实验结果,我们发现先前实验中存在的问题主要是由于实验设备精度不高和实验过程控制不严格所致。
通过优化实验设备和严格控制实验条件,我们获得了更加可靠的实验结果。
在此基础上,我们对家兔呼吸运动调节的机制进行了深入探讨,并提出了自己的看法和建议。
通过本文对家兔呼吸运动调节实验的改进,我们成功提高了实验的准确性和可靠性。
这为后续研究提供了更加可靠的依据。
同时,我们也认识到,在实验过程中严格控制各种条件的重要性,这对于排除其他因素的干扰、保证实验结果的客观性具有关键作用。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节2012级生物科学班学号:1.实验目的1.1学习家兔呼吸的测定方法1.2 观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素2.实验原理呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动,是呼吸肌(胸壁上的肋间肌和隔肌)在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配,传出冲动的节律与频率,影响膈肌的收缩节律、频率与强度. 人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行,是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激,可以直接作用于中枢或不同的感受器,反射性地影响呼吸运动,以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
3.实验动物和器材家兔;兔手术台、手术刀、剪毛剪、手术剪、镊子、眼科剪、金冠剪、玻璃分针、止血钳、棉花、纱布、牙签、棉线、小弯钩、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、短橡皮管、长橡皮管(1m)、Y型气管插管、20ml注射器、5ml注射器、1ml注射器、照明灯、保护电极、滑轮、支架、PowerLab生理实验系统、气管插管、张力传感器;麻醉剂(2%戊巴比妥钠2ml/Kg)、生理盐水。
4.实验步骤4.1 家兔麻醉固定:称重,耳缘静脉注射麻醉剂。
待兔被麻醉后,将兔背位固定于手术台上,剪颈部皮毛和胸部剑突位置皮毛。
4.2 气管插管及颈部神经分离手术:钝性分离颈部肌肉等组织,暴露气管,在气管背面穿线,再用手术刀手术剪在气管上方作T形切口;用制作好的棉签将气管中的血块弄出,沿向心方向插好气管插管并用线扎紧,防止松脱;分离双侧迷走神经,分别穿2根线备用。
4.3 突软骨分离手术:切开胸骨下端剑突部位的皮肤约2cm,细心分离剑突软骨周边组织,暴露剑突软骨,剪断骨柄,保留骨柄下方膈肌与剑突相连。
4.4 连接实验装置:连接好PowerLab实验装置,用棉线上的小弯钩勾住剑突软骨中间部位,通过滑轮与张力换能器连接,调节好力度大小,设置调节通道2桥式放大器(5mV,10Hz)和刺激器(300脉冲,1V,1ms,20Hz)。
家兔呼吸运动的调节和胸内压的测定实验报告
实验报告课题名称:动物生理学实验实验日期:2012.04.26 姓名:家兔呼吸运动的调节和胸内压的测定【实验目的】1. 学习呼吸运动的描记方法;2. 加深对呼吸运动的产生及调节的理解;3. 学习胸内负压的测定方法,观察在呼吸周期中胸内负压的变化。
【实验原理】呼吸运动是一种节律性的运动,是在中枢神经系统参与下,通过多种传入冲动的作用,反射性调节呼吸的深度和频率。
其中较为重要的调节活动有呼吸中枢的直接调节和肺牵张反射,化学感受器等的反射性调节。
因此体内外各种刺激可以作用于中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
呼吸运动基本节律中枢在延髓,调整中枢位于脑桥上部,随意控制则在高位脑。
呼吸过程中肺能随胸廓的扩张而扩张,是因为在肺和胸廓之间有一密闭的胸膜腔,其内的压力低于大气压,故称为胸内负压。
胸内负压由肺的弹性回缩力产生,大小随呼吸深度而变化。
【实验材料】5%戊巴比妥钠手术器材气管套管橡皮管粗注射针头水检压计呼家兔吸流量换能器保护电极 RM6240【实验步骤】1. 称重之后以0.5ml/Kg.bw进行耳缘静脉注射麻醉,麻醉后背位交叉固定。
2. 剪去喉部的毛,对性分离5-7cm,钝性剥离暴露出喉管和迷走神经,在迷走神经双侧穿线并打活结。
3. 于甲状软骨下1cm处剪一个倒T形的切口,插入器官导管,导管另一侧与呼吸流量换能器相连。
4. 连接家兔呼吸运动记录装置和刺激电极,每一试验项目均作图像记录。
【实验项目】1. 憋气效应:呼气末堵塞气管插管,此时动物不能与外界进行气体交换而处于憋气状态,憋气15S后观察呼吸运动的变化。
2. 增大无效腔:气管插管的另一端连接一根长50cm的橡皮管,观察呼吸运动的变化。
3. 吸入空气中二氧化碳浓度的增加对呼吸运动的影响:将装有二氧化碳三围球胆对准气管插管缓慢增加吸入气体中的二氧化碳浓度,观察呼吸运动变化。
4. 窒息对呼吸运动的影响:夹闭气管10S后观察呼吸运动变化。
5. 迷走神经对呼吸运动的影响:先剪断一侧迷走神经,观察对呼吸运动的影响;而后再剪断另一侧迷走神经,观察对呼吸运动的影响;再分别刺激迷走神经的外周端和中枢端,观察呼吸运动的影响。
家兔呼吸生理实验报告
家兔呼吸生理实验报告
实验目的:
探究家兔的呼吸生理过程,了解呼吸相关参数对于家兔生存和健康的影响。
实验材料:
家兔、呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器、多功能数据采集系统、实验筒。
实验方法:
1.将家兔放置在实验筒中,使其舒适。
2.连接呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器和多功能数据采集系统。
3.调节呼吸氧气浓度控制器,使家兔的呼吸氧气浓度符合常规标准。
4.记录家兔的呼吸频率、心率、氧气浓度等数据。
5.根据记录的数据,对家兔的呼吸生理过程进行分析和总结。
实验结果:
1.家兔的呼吸频率和心率比人类高很多,分别为60-150次/分钟和150-500次/分钟。
2.氧气浓度对于家兔的生存和健康影响很大,过低的氧气浓度
会使家兔窒息而死。
3.家兔的呼吸过程中会排出大量二氧化碳,如果二氧化碳排出
不及时将会对家兔造成危害。
结论:
家兔的呼吸生理过程与人类有很大不同,家兔需要更高的氧气
浓度来维持正常的生理活动。
此外,家兔的呼吸频率和心率很高,但过高的呼吸频率和心率也会影响家兔的健康。
因此,在家养兔
时应保持室内空气新鲜、氧气浓度正常,并定期监测家兔的呼吸
参数,确保家兔的健康和幸福。
呼吸运动调节实验报告(五篇)
呼吸运动调节实验报告(五篇)第一篇:呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量:1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械(主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、),兔手术台,生物信号采集处理系统,呼吸换能器,气管插管,20%氨基甲酸乙酯溶液,生理盐水,橡皮管,N 2 气囊,CO 2 气囊等。
【实验方法与步骤】1.取家兔并称重,由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml,(因注射过程中出现差错,后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml)待家兔麻醉后,仰卧用绳子固定于手术台上。
2.剪去颈前部兔毛,颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm,少量出血,用纱布蘸取生理盐水擦拭。
分离气管并穿线备用。
分离颈部双侧迷走神经,穿线备用。
以倒T 型剪开气管,有少量出血,止血后用镊子清理其中异物,做气管插管。
手术完毕后,用温生理盐水纱布覆盖手术范围。
3.实验装置(1)将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接,橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。
(2)打开计算机,启动生物信号采集处理系统,设置好参数,开始采样。
(3)采样项目①缺氧对呼吸运动的影响:方法同上,将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住,打开气囊,使吸入气中含较多的氮气,造成缺氧,观察呼吸运动的变化,移开气囊和手掌,待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
②CO 2 对呼吸运动的影响:将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住,打开气囊,使吸入气中含较多的二氧化碳,观察呼吸运动的变化,移开气囊和手掌,待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
③增大无效腔对呼吸运动的影响:将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上,观察此时呼吸运动的变化。
变化明显后,去掉橡皮管,观察呼吸运动的恢复过程。
④迷走神经在呼吸运动调节中的作用:先剪断一侧迷走神经,观察呼吸运动的变化,再剪断另一侧迷走神经,观察呼吸运动又有何变化。
生理学实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测
实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测一、目的要求1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。
2. 观察并分析肺牵张反射及其他因素对呼吸运动的影响。
二、基本原理人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行,是由于体内调节机制的存在。
正常节律性呼吸运动是在中枢神经系统参与下,通过多种传入冲动的作用,反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。
体内外的各种刺激,可以直接作用于中枢或不同的感受器,反射性地影响呼吸运动,以适应机体代谢的需要。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
三、实验材料家兔,家兔手术台,手术器械,带输液管的粗针头,张力传感器与滑轮或,压力传感器,生理信号采集系统,20ml注射器,橡皮管(长1.5m,内径1cm),纱布,3%乳酸溶液,50mg/ml尼可刹米注射液,生理盐水。
四、方法与步骤依实验4-8的方法,将动物麻醉、固定,进行颈部气管及神经分离术,插入气管插管,分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经,穿线备用。
1.剑突软骨手术。
2.开启计算机采集系统。
3.将系有长线的金属钩,钩住游离的剑突软骨中间部位,线的另一端通过万能滑轮系于张力传感器的应变梁上,然后把张力传感器与采集系统第1通道连接。
4.将粗针头上的输液管与压力传感器相通,剪开右侧胸部下方的皮肤,在右腋前线第4、5肋骨之间将针头垂直刺入胸膜腔内。
将压力传感器的侧支封闭,然后与采集系统第2通道连接,注意:针头的斜面应朝向头侧。
刺入时可先用较大的力量穿透皮肤,然后控制进针力量,以防进针过深。
5.点击采集系统菜单“输入信号”,输入“1通道-呼吸,2通道-压力”,调节系统参数,使呼吸曲线清楚地显示在显示器上,而压力扫描曲线随呼吸搏动而变化。
6.实验观察(1)记录平静呼吸的运动曲线的大小,并仔细识别吸气或呼气运动与曲线方向的关系。
(2)增加无效腔对呼吸运动的影响。
(3)气道阻力对呼吸运动的影响。
(4)肺牵张反射对呼吸运动的影响。
(5)血中H+增多对呼吸运动的影响。
家兔呼吸运动调节--病理生理学机能实验
《家兔呼吸运动调节》实验讨论(2009-05-11 19:55:49)转载▼标签: 校园分类: 医药类1、CO 2浓度增加使呼吸运动加强CO 2是调节呼吸运动最重要的生理性因素,它不但对呼吸有很强的刺激作用,并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。
每当动脉血中PCO 2增高时呼吸加深加快,肺通气量增大,并可在一分钟左右达到高峰。
由于吸入气中CO 2浓度增加,血液中PCO 2增加,CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO 2浓度增多,CO 2十H 2O →←H 2CO 3 HCO 3-+ H + CO 2通过它产生的 H +刺激延髓化学感受器,间接作用于呼吸中枢,通过呼吸机的作用使呼吸运动加强,此外,当PCO 2增高时,还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器,反射性地使呼吸加深加快。
2、吸人纯氮气使呼吸运动增加吸人纯氮气时,因吸人气中缺O 2,肺泡气PO 2下降,导致动脉血中PO 2下降,而PCO 2却基本不变(因CO 2扩散速度快)随着动脉血中PO 2的下降,通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋,隔肌和肋间外肌活动加强,反射性引起呼吸运动增加。
此外,缺O 2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O 2程度的加深而逐渐加强。
所以缺O 2程度不同,其表现也不一样。
在轻度缺O 2,通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O 2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。
3、静脉注人乳酸(血液中H+增高)静脉注人乳酸后,呼吸运动加深加快。
因为乳酸改变了血液PH,提高了血中H+浓度。
H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动,也可直接刺激中枢化学感受器,但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器,因此,血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大,也较缓慢。
4、麻醉双侧动脉体后,再吸人CO2和纯N2时,对呼吸运动的影响不同用普鲁卡因局部浸润麻醉家兔双侧颈动脉体后,开始吸人CO2时仍可引起呼吸运动加深加快,而再吸人纯N2时,呼吸运动基本不变。
家兔呼吸调节
实验十一家兔呼吸运动的调节一、实验目的1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。
2. 观察多种因素对呼吸运动的影响。
二、实验原理人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、有节律地进行,是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激,可以直接作用于中枢或不同部位的感受器、反射地影响呼吸运动,以适应机体代谢的需要。
肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。
三、动物与器材1.实验动物:家兔2.实验器材:兔体手术台、手术器械、张力传感器、PowerLab信号采集系统、Y型气管插管、20ml与1ml注射器、橡皮管(长1.5m,内径1cm)。
3.实验试剂:生理盐水、2%戊巴比妥钠、尼可刹米、1%乳酸。
四、实验方法与步骤1.家兔麻醉称重—麻醉(2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射)—固定(仰卧位固定)2.手术分离颈部气管和神经颈部皮肤切口6-7cm——钝性分离颈部肌肉层——做“T”形切口插入气管插管——分离双侧迷走神经3.分离剑突软骨切开皮肤,分离表面组织使剑突软骨和骨柄暴露,金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄,使剑突软骨与胸骨完全分离,但保留下方的膈肌片。
4.打开Powerlab信息采集系统,用金属钩钩住游离的剑突软骨,连接各装置。
(1)记录正常的呼吸曲线,并识别吸气与呼气运动与曲线方向的关系。
(2)增加无效腔对呼吸的影响:插管一侧加上1.5米橡皮管,另一侧用止血钳夹闭。
(3)增加气道阻力对呼吸的影响:记录一段正常呼吸曲线后,同时夹闭气管插管两侧管。
(4)肺牵张反射对呼吸的影响:插管上连接20ml注射器,在吸气末打气,呼气末抽气。
(5) 结扎双侧迷走神经,重复第4步。
(6)双节扎一侧迷走神经,剪断双侧迷走神经,分别刺激中枢端和外周端。
(7)静脉注射尼可刹米,0.5ml/只兔子。
(8)静脉注射1%乳酸,0.5~1ml/只兔子。
(9)气胸对呼吸的影响:剪断右侧肋骨,使兔子气胸。
五、实验结果1.家兔正常呼吸家兔正常呼吸时,呼吸肌有节律地收缩和舒张,其中上升支为吸气期,下降支为呼气。
家兔呼吸运动的调节实验简介
思考题 (1)分别吸入 CO2、纯 N2 和注射乳酸溶液,呼吸运动有何变化? (2)比较吸人气中 CO2 浓度增加和缺氧,家兔呼吸运动的频率和幅度变化的差异,分
别说明它们各通过何种途径发挥作用。 (3)迷走神经是肺牵张反射的传入神经,对照实验结果,讨论切断迷走神经后及刺激
迷走神经中枢端呼吸运动发生变化的机理。
(2)呼吸流量换能器输出线接微机生物信号处理系统第 1 通道(亦可选择其他通道)。 (3)微机生物信号处理系统参数设置
RM6240 系统点击“实验”菜单,选择“呼吸”或“自定义实验项目”菜单中的“呼 吸运动调节”,系统进入该实验信号记录状态。仪器参数:通道时间常数为直流,滤 波频率 30Hz,灵敏度 5mv,采样频率 800Hz,扫描速度 1 s/div。 2. 手术准备(观看动物实验的基本操作、实验动物手术 VCD) (1)麻醉固定:家兔称重后,200g/L 氨基甲酸乙酯按 lg/kg 体重,耳缘静脉注射麻 醉。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。 (2)手术:用粗剪刀剪去颈前部兔毛于水盆中,颈前正中切开皮肤 6~8cm,直至下颌 角上 l.5~2cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左、右 血管神经鞘,细心分离两侧鞘膜内的颈总动脉和迷走神经,在迷走神经下穿线备用。用 止血钳分离气管,在气管下穿两根粗棉线备用。 (3)气管插管 在环状软骨下约 1 cm 处,做“上”形剪口,用棉签将气管切口及气管 里的血液和分泌物擦净,气管插管由剪口处向肺端插入,插时应动作轻巧,避免损伤气 管黏膜引起出血,用一粗棉线将插管口结扎固定,另一棉线在切旧的头端结扎止血。用 温热生理盐水纱布覆盖手术野。 观察项目 (1)描记正常呼吸曲线 启动生物信号采集处理系统记录按钮,记录一段正常呼吸运 动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气的波形方向(呼气曲线向上.吸气曲线向下)。 (2)在气管插管一个侧管上接一根长 50cm 的胶管,观察和记录呼吸运动的变化。 (3)降低吸入气中的氧分压待呼吸曲线恢复正常,将钠石灰特制低氧瓶的导管口平行 于气管插管以降低家兔吸人气中的氧分压,观察和记录 H+对呼吸运动的变化。 (4)增加吸入气中的二氧化碳分压:打开二氧化碳发生瓶的导气管,使家兔吸入含有 较高浓度二氧化碳的空气。待家兔呼吸运动增强后立即闭合二氧化碳导管。观察呼吸曲 线变化。 (5)增加血液中的 H+:耳缘静脉缓慢注入 3%乳酸溶液 2mL,观察呼吸运动的变化。 (6)耳缘静脉缓慢注入 250g/L nikethamide 溶液 0.4mL/kg 体重(注意速度不宜过快, 以免引起惊厥),观察并记录呼吸变化。 (7)迷走神经对呼吸运动的调节作用:分别观察和记录切断一侧迷走神经和切断两侧 迷走神经以后呼吸运动的变化的一个维管束图,并注明各部分名称。
家兔呼吸运动的调节和胸内压的测定实验报告
家兔呼吸运动的调节和胸内压的测定实验报告一、实验目的分析不同环境因素(如氧气浓度、二氧化碳浓度等)对家兔呼吸运动的影响,探究其生理意义。
本次实验的目的是全面了解和掌握家兔呼吸运动的调节和胸内压的测定技术,为进一步研究呼吸系统生理机能提供实验基础和理论依据。
1. 了解家兔呼吸系统的基本结构和功能家兔的呼吸系统是其生命活动的重要组成部分,主要负责为身体提供氧气并排除二氧化碳,从而维持正常的生理功能。
了解家兔呼吸系统的基本结构和功能,对于我们进行呼吸运动的调节和胸内压的测定实验至关重要。
家兔的呼吸系统主要由呼吸道和肺组成,呼吸道包括鼻腔、喉、气管和支气管等部分,主要作用是引导空气进入肺部并完成气体交换。
肺部是家兔呼吸系统的核心部分,由大量的肺泡组成,负责进行氧气和二氧化碳的交换。
此外呼吸系统的调节还涉及到一系列复杂的生理机制,包括神经调节和体液调节等。
在神经调节方面,家兔的呼吸运动受到高级神经中枢的控制和影响。
其中脑干中的呼吸中枢起到关键作用,能够调节呼吸的频率、深度和节律等。
此外体液调节也对呼吸运动产生影响,主要是通过激素等化学物质来调节酸碱平衡和电解质平衡等生理过程,从而间接影响呼吸运动。
在胸内压测定实验中,我们需要了解家兔胸腔的结构特点。
家兔的胸腔结构为其呼吸运动提供了空间,并且与呼吸运动密切相关。
胸腔内的压力变化直接影响到呼吸运动的调节和胸内压的测定结果。
因此在实验过程中,我们需要仔细观察和记录家兔呼吸运动的变化以及胸内压的变化情况。
总结来说家兔呼吸系统的基本结构和功能是其维持生命活动的重要基础。
在呼吸运动的调节和胸内压的测定实验中,我们需要充分理解家兔呼吸系统的结构特点以及调节机制,以便更好地进行实验操作和结果分析。
2. 学习调节家兔呼吸运动的方法环境气体调节:家兔呼吸的环境气体成分对呼吸运动有着直接影响。
我们通过改变环境中的氧气浓度或二氧化碳浓度,来观察家兔的呼吸变化。
具体来说可以通过调节氧气和二氧化碳混合气体的比例,模拟不同的环境状况,观察家兔如何适应并调整其呼吸频率和深度。
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4.1在双侧迷走神经保持完整时,增加无效腔后,肺内空气的更新率下降,促使O2分压下降,CO2
分压上升;憋气导致家兔体内的O2 含量降低,CO2含量增高;往气管套管吹入CO2后同样导致CO2含量上升。
而CO2
对呼吸的影响主要通过中枢化学感受器对呼吸运动起调节作用;而O2对呼吸的影响是通过外周化学感受器实现的。
由于两者的影响同时刺激中枢化学感受器和外周化学感受器,使其反射性的调节使呼吸加深加快。
所以三个实验项目都使得呼吸加深。
4.2肺泡气体交换的效率,除与气体扩散过程有关,还与肺泡通气量和肺血流量的配比情况有关[1]。
无效腔增加时,通气/血流比值增大,导致换气效率下降。
4.3注射乳酸后,使其体内的H+
含量明显增高,而H+是外周感受器的有效刺激物,故也可反射性引起呼吸加强。
同时H+还可以直接刺激中枢化学感受器而加强呼吸,但H+透过血-脑屏障的速度较慢,故主要通过刺激外周化学感受器进行反射性调节,使其的呼吸作用加深加快。
4.4切断一侧迷走神经后,由于这一侧迷走神经的神经冲动传递受阻,使得呼吸运动的调节受阻;随后由于迷走神经为混合神经,另一侧迷走神经将起到呼吸调节作用,此时发挥负反馈调节作用,加速吸气和呼气活动的交替。
4.5同样由于迷走神经为混合神经,在神经传导通路中可以通过双侧迷走神经传入或传出神经冲动。
切断一侧迷走神经后,另一侧迷走神经仍对呼吸运动进行调节,所以在进行增加无效腔、憋气、往气管套管吹入CO2或注射乳酸,呼吸运动曲线变化都与双侧迷走神经存在时相同。
4.6肺牵张反射的肺扩张反射的作用在于阻抑吸气过长过深,促使吸气及时转入呼气。
切断了两侧迷走神经后,中断了肺牵张反射的传入通路,使肺牵张反射的生理作用被取消。
最终导致呼吸运动的加深变慢[2]。
在1868年breuer和hering发现,在麻醉动物肺充气或肺扩张,则抑制吸气;肺放气或肺缩小,则引起吸气。
切断迷走神经,上述反应消失,所以是反射性反应[3]。
有人比较了8种动物的肺扩张反射,发现有种属差异,兔的最强,人的最弱。
电刺激迷走神经中枢端,可产生呼吸暂停。
肺的牵张反射包括肺扩张后引起吸气活动的抑制,呼气加强,和肺缩小后引起呼气活动抑制,吸气加强的过程。
这两种反射传入神经纤维都经由迷走神经传入中枢,调节呼吸运动。
电刺激引起这两种纤维成分都同时持续兴奋,导致呼吸暂停。
4.7本实验中使用解剖针破坏胸膜腔密闭性,使空气进入胸膜腔内,由于空气的进入,导致胸膜腔内的负压消失,肺依靠自身的回缩力量而立刻萎缩。
造成开放性气胸后,将20ml的空气注入胸膜内,使肺的某一部分组织塌陷休息,从而减少对肺通气的影响。
4.8据电生理实验结果,肺部感受器至少可被分为三大类:慢适应感受器、快适应感受器以及C纤维感受器。
按血供来源,后者又可分为气道(体循环)与肺(肺循环)两类。
近来发现呼吸道中存在着第四类感受器,它们由迷走神经的AD传入纤维传递冲动,其放电活动不同于上述各类,对肺充气反应阈值高,故称之为高阈值AD感受器,功能上前两类基本属于机械性感受器,而后两类可归为化学敏感性感受器[4]。
4.9王凤斌,王鲁娟等进行“前包钦格复合物微量注射17-β雌二醇的呼吸效应”的实验pre2Bt复合体注射E2的呼吸兴奋效应中11只大鼠pre2Bt复合体微量注射E2后出现呼吸兴奋效应,表现为膈神经放电幅度升高,频率加快[5]。
4.10血压大幅度变化时可以反射性地影响呼吸,血压升高,呼吸减弱减慢;血压降低,呼吸加强加快。
贺书云,胡三觉,王贤辉,韩晟等[6]进行“迷走神经在心率变异性中的作用”的实验中结果发现在切断一侧迷走神经后心率变异功率谱成分均明显减小,但右侧
迷走神经切断后其LF/HF比率的增大较左侧迷走切断后明显,心率加快也明显"双侧迷走神经切断后,LF及HF的功率明显下降,心率加快及LF/HF增大均较单侧迷走切断时明显"这说明左!右侧迷走神经均与心率变异性的大小有关,右侧迷走神经支配心率变异的作用强于左侧"另外,迷走神经主要决定高频成分,右侧迷走神经在支配窦房结活动中占优势。