血培养采集技术操作规范
血培养标本的采集与运送操作规程
血培养标本的采集与运送操作规程一目的1、确保血标本样本培养的准确性。
2、采集血标本做细菌培养。
二用物准备一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带三操作方法及程序1、洗手、戴口罩。
2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。
用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。
消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。
3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。
4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。
5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。
再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。
6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。
同时采集标本间隔时间小于5分钟。
7、立即送实验室室温放置不超过12小时。
四注意事项1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。
4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。
5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。
6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。
血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。
血液培养标本采集的注意事项血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节！但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情，由于不了解问题所在，引发的主要后果是血培养阳性率下降，这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。
血培养采集操作规程
血培养采集操作规程一、概述当微生物侵入血液迅速繁殖超出免疫系统清除这些微生物的能力时形成菌血症或真菌菌血症。
血液和骨髓的细菌学培养对菌血症的诊断具有重要价值。
临床菌血症按病程可分为一过性菌血症、间歇性菌血症、持续性菌血症。
菌血症患者多数为间歇性菌血症，病原菌周期性出现在血液中，随之为无细菌时期。
不管临床症状经历的严重程度，患者血液中病原菌浓度相当低，据此要求临床多次采集血液标本进行培养，但24h内一般不超过3次。
血培养常见菌:革兰阴性菌主要包括大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、肠杆菌，伤寒沙门菌、绿脓假单胞菌、不动杆菌属等;革兰阳性菌主要包括金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、念珠菌属等。
菌血症是临床医学急症，应尽快采集血液进行培养。
二、物品准备与检验申请1、领取专用血培养瓶。
请拿检验申请单到病房二楼细菌室登记领取。
细菌室周一到周六上午正常上班。
其他时间如中午、夜班、节假日请到生化室联系。
普通血培养领取普通双相血培养瓶（绿色帽），全自动血培养领取:成人血培养领成人瓶（灰色帽），儿童血培养领儿童瓶（粉红色帽）。
2、填写检验申请单。
用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。
填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
三、采集指征一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征:发热(≥38℃) 或低温(≤36℃) ，寒战，白细胞增多(计数大于10. 0×109/ L ，特别有“核左移”时) ，皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低，C 反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应该同时做尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。
四、采集方法1、操作流程: 打开血培养瓶塑料盖用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞并擦干表面残余酒精→消毒皮肤后用无菌注射器抽取血液从橡皮塞处注入血培养瓶内→用75%酒精重新消毒血培养瓶橡皮塞并盖好塑料盖→立即送检。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程（一）消毒1、培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常需30s以上）穿刺采血。
（二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内的空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注入厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
（三）注意事项1、检验单需要注明抗菌药物使用的情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3、采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4、细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养2次。
5、采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。
四、运送要求1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。
血液培养标准操作规程
10临床意义
3.3标本拒收
3.3.1血培养瓶破裂或明显污染。
3.3.2培养瓶标识与检验申请单不符。
3.3.3用过期培养瓶采集标本，采血量不足等。
3.3.4对不合格标本，应及时通知采集人员重新留取标本。
3.4标本保存
采集标本后立即送检，不能及时送检的可室温放置，切勿放冰箱。冬季血培养瓶在送检过程应采取一定的保暖措施。
4试剂、仪器
4.1革兰氏染液、氧化酶试剂、3%触酶、血琼脂平板、巧克力平板、沙保罗平板及相关生化试剂等。
4.2恒星BC-60血液细菌培养仪、恒星HX-21细菌鉴定药敏分析仪，成人血培养瓶，厌氧血培养瓶、儿童血培养瓶、恒星细菌鉴定药敏分析试剂板。
4.3接种针、接种环、红外灭菌器、显微镜、电热恒温箱、CO2恒温培养箱、生物安全柜等。
4.4试剂有效期和使用参照试剂说明书。
5细菌鉴定及药敏质控
参见《微生物组内质量的控制程序》。
6检验步骤
接收标本后，立即对标本进行编号登记。门诊病人登记联系方式
6.1自动化培养
6.1.1置全自动血培养仪中。当标本有细菌生长时，仪器发出阳性报警，应立即用无菌注射器抽取瓶内培养液作直接涂片格兰染色，镜检，将结果向临床医生报告，同时转种血琼脂平板，并进行直接药敏试验，置35℃、5%CO2培养箱培养18-24h。若涂片为酵母样真菌时转接沙保罗培养基。从琼脂平板挑去菌落进行涂片染色及触酶和氧化酶实验。根据初步分出的菌属选不同的鉴定及药敏卡片上机进行细菌鉴定和药敏试验。
8.4传染病（伤寒沙门菌）报院感科及医务科。
8.5传染病菌株保存（伤寒沙门菌）交疾病控制中心复核
血培养标本采集运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程（一）血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
（二）采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。
（三）采血流程消毒1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
注意事项1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。
运送要求1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2 h内。
血培养标本采集和运送标准操作规程
血培养标本采集和运送标准操作规程（SOP）一、采集血培养的重要指征：(一)发热（≥38℃）或低温（≤36℃）(二)寒战(三)白细胞增多（>10x109／L，特别有“核左移”，未成熟的白细胞增多）(四)粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1x109／L）(五)血小板减少(六)皮肤粘膜出血(七)昏迷(八)多器官衰竭二、采血时机(一)尽可能在抗菌药物使用前；(二)对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集；(三)寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率，心内膜炎（持续性菌血症）例外；(四)怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过38℃才抽血，而错过时机。
三、血培养标本采集次数（一）留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：1.希望保留深静脉导管者至少2套（1套血培养定义：从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内）血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），并各自做好标记；2.决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室（实验室采用Maki半定量平板滚动培养）（二）未留置深静脉导管或怀疑的BSl并非导管相关1.怀疑血流感染时，独立的外周静脉无菌采集2套血培养2.当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），各自做好标记；3.对不明原因的发热、亚急性心内膜炎，抽取3套血培养；心内膜炎患者起始采集的3套血培养24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养；（三）在采血2～5天内，无需重复做血培养，细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。
四、皮肤消毒及采血步骤(一)皮肤消毒前，先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期，用75％酒精消毒血培养瓶橡皮塞并干燥；(二)用2根安尔碘棉签，以穿刺点为圆心，以约5cm直径画圈进行皮肤消毒，作用时间至少30s。
血培养标本采集的护理操作
血培养标本采集的护理操作一、目的根据医嘱采集患者血培养标本，进行临床检验，为诊断和治疗提供依据。
二、采血方式（1）“双瓶双侧”是指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从另一部位采血接种另一套培养瓶，通常选上臂静脉。
一般用于怀疑菌血症、真菌血症的成人患者。
（2）“双侧双瓶”是指从一个部位采血接种一个需氧瓶，再从另一部位采血接种另一个厌氧瓶。
一般用于婴幼儿患者。
三、采集部位要求从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。
至少做到“双侧双瓶”。
必要时从下肢静脉采血做第三套血培养。
四、血液标本在需氧瓶和厌氧瓶中的分配要求以一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养，作为常规血培养的组合。
当采血量不够推荐的采血量时，应首先满足需氧瓶，剩余标本再接种入厌氧瓶。
五、操作标准（一）操作前准备（1）评估患者询问了解患者身体状况，向患者解释，取得配合。
观察患者采血部位有无异常情况。
（2）个人准备仪表端庄，服装整洁，洗手，戴口罩。
（3）用物准备无菌手套、止血带、消毒液、棉棒、采血器、培养瓶、培养单。
（4）环境准备清洁、安静、舒适、无人员走动。
（二）操作步骤①核对医嘱及患者。
②安尔碘消毒血培养瓶瓶口3遍，待干60秒。
③抽血部位皮肤消毒，安尔碘消毒3遍，待干60秒，消毒时从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待挥发干燥后采血。
④戴无菌手套，用采血器无菌穿刺成功后，连接血培养瓶，采集后轻轻混匀以防血液凝固。
⑤再次核对患者姓名、床号。
⑥洗手，记录。
六、注意事项①严格无菌操作，避免污染。
②不应从留置静脉或动脉导管处取血，因为导管易被固有菌群污染。
③采血量及采血间隔，成年患者推荐的采血量为20～30ml，每套不少于10ml，每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者推荐的采血量应少于患儿总血容量的1％，每瓶不少于2ml。
两部位采血时间≤5分钟。
④采血时机，在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半小时为宜或在停用抗生素24小时后。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、血培养指征患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时，可作为血培养的重要指征：①发热（≥38°C）或低温（≤36°C）②寒战③白细胞增多（计数大于10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核的白细胞）；④粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1.0×109/L）；⑤血小板减少；⑥皮肤粘膜出血⑦昏迷，休克⑧多器官衰竭⑨CRP、PCT升高⑩临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，尽可能在患者寒战开始时，发热高峰前30-60分钟采血，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后。
三、采血流程(一)采血前进行手卫生，如需用手固定血管，应戴无菌手套。
(二)消毒1．培养瓶消毒：用75%酒精消毒培养瓶橡皮塞，待自然干燥60s。
2．皮肤消毒三步骤：①以采血点为中心，由内向外以75%酒精，待干30s以上。
②用2%碘酊作用30S或安尔碘作用60S，从穿刺点向外画圈消毒，直径达3 cm以上. ③用75%酒精脱碘。
对碘过敏的患者，在第一步的基础上再用75%酒精消毒60s，待酒精彻底挥发干燥后采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶（勿换针头），轻轻混匀以防血液凝固。
或采用负压血培养瓶及一次性采血针将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
四、注意事项1．标本注明血液采集时间和部位。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
血培养标本采集与转运
血培养标木采集与转运标准操作规程一、采血指征1.菌血症，可疑感染患者出现以下任一指征，应考虑采集血培养。
（1)体温〉38°C或 36°C；（2）寒战；（3）外周血白细胞计数增多（计数＞10.0X×109/L,特别是有“核左移”时）或减少（计数﹤4.0×109/L ）;）＜ 32 mmHg；（4）呼吸频率＞20次/分钟或动脉血二氧化碳分压（PaCO2（5）心率＞90次/分钟；（6）皮肤黏膜出血；（7）昏迷；（8）多器官功能障碍；（9）血压降低；（10）炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素（PCT）、1,3-β-D-葡聚糖（G试验）升高等。
2.同时伴有以下情况之一时,应立即釆集血标本。
（1）医院获得性肺炎；（2）留置中心静脉导管、PICC等血管导管＞48小时；（3）有免疫功能缺陷伴全身感染症状。
2.感染性心内膜炎凡原因未明的发热,持续在1周以上，伴有心脏杂音或心脏超声发现赘生物，或原有心脏基础疾病、人工心脏瓣膜植入患者，应多次进行血培养检测。
3.导管相关血流感染患者带有血管导管超过1天或者拨出导管未超过48小时，出现发热（体温〉38°C）、寒战或低血压等全身感染表现,不能除外导管相关血流感染可能的，应多次进行血培养检测。
二、采血釆集时机、套数、采血量1.菌血症（1）.使用抗菌药物治疗前釆集；如患者已经使用抗菌药物治疗，应在下一次用药之前或选择含有吸附抗菌药物成分的血培养瓶。
（2).急性发热患者，应在10分钟内采集（3).成人每次采集2〜3套,同时分别在不同部位采集，每个部位应需氧和I 厌氧培养各一瓶，每瓶采集8〜10 ml,或按照说明书。
|（4).儿童应立即采集；在两个部位分别采集，通常仅采集需氧瓶；采血量一般不超过总血量1％，或参考说明书。
（5).儿童在有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养：其母亲产褥期患腹膜炎、慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎,有腹腔感染的症状或体征，咬伤，接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。
血培养采集要求
血培养采集要求
血培养采集是一项非常关键而且常见的医疗检查，其结果可以帮
助医生判断患者是否感染细菌，以及感染的菌种和药物敏感性，从而
指导治疗方案的制定。
以下是对血培养采集的要求和指导事项：
一、采集前准备
1.采集前，应让患者静卧或半坐位，尽量舒适。
2.洗手消毒、佩戴口罩、手套等必要防护措施。
3.仪器、器材消毒。
二、采集过程
1. 确认患者基本信息。
2. 拭皮：用消毒棉球或纱布，在采集部位（通常是前臂静脉）上
下左右进行外缘逐渐向内半径1-2cm圆周运动，共10-15次。
能够有
效减轻细菌皮表残留。
3. 上消毒：将碘酒涂抹在采集部位上并停留1-2分钟，然后用无
菌盐水冲洗干净。
4. 收取血样：将针头栓塞起来，将无菌试管暴露出来，轻推注射器，慢慢向前注入血样。
5. 封管：采血后，轻轻摇晃试管，使抗凝剂均匀覆盖在血液表面，将莫名其妙的血液样品标准处理。
三、采集后注意事项
1.采集后应立即送到医院检验科。
2. 当患者发热、寒战或强烈的局部疼痛时应及时就医。
3. 如果采集被观察到局部炎症，要及时处理消炎和敷料。
总之，血培养采集是十分重要的医疗检查，对结果的准确性和可靠性要求非常高，因此在采集前、过程中和之后都需要严格遵守操作规范，并注意患者的安全和舒适程度。
只有这样才能够确保血培养的检测结果的准确性和可靠性，为患者的治疗提供有力的参考和支持。
临床护理技术操作规范——血培养标本采集操作流程及评分标准
2
再次核对检验单，协助患者取合适体位。（未做不得分）
6
3
选择血管，评估穿刺部位皮肤和血管弹性，铺垫巾，放好止血带。（少做一项扣2分）
8
4
卫生手消毒。（未做到不得分）
4
5
常规消毒穿刺处皮肤，在穿刺上方约6cm处系止血带。（一项不符合要求扣2分）
4
6
取出无菌注射器，嘱患者握拳，按静脉穿刺法穿刺血管，见回血后抽出所需血量。（一项不符合要求扣2分）
4
2
标本采集方法、量、时间正确，按时送检。（一项不符合要求扣1分）
3
3
用过之物品处理符合要求。（做不到不得分）
3
6
10
用封管液脉冲式冲洗导管，消毒导管接口，清除残留血迹。（一项不符合要求扣1分）
3
11
再次核对。（一项不符合要求扣2分）
2
12
协助患者取舒适卧位，整理床单位。（少做一项扣3分）
6
13
整理用物，洗手，必要时记录抽血时间和量，将标本连同检验单及时送检。（少做一项扣2分）
5
终
末
质
量
10
分
1
严格执行无菌技术操作原则，操作流程和查对制度。（一项不符合要求扣1分）
8
7
抽血毕，嘱患者松拳，松开止血带，迅速拔出针头，用干棉签按压穿刺点1-2min。（少做一项扣2分）
4
8
取下针头，将血液标本注入培养皿中。先将密封瓶盖中心部用消毒液消毒2遍，将血液注入血培养瓶中轻轻摇匀，注后中心部盖上无菌棉球固定。（一项不符合要求扣2分）
6
9
将外周穿刺的中心静脉导管的肝素帽取下，用注射器抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足够的血标本，注入培养皿中。（少做一项扣2分）
血培养操作规范及临床意义
血培养操作规范及临床意义血液培养是一种常用的临床检验方法，用于检测细菌或其他微生物在血液中的存在。
准确的血液培养操作和分析，对于临床医学的诊断和治疗具有非常重要的意义。
本文将探讨血培养操作规范及其在临床中的意义。
一、血培养操作规范1. 采样前准备医护人员应洗手并佩戴手套，对采样部位皮肤进行消毒，并用消毒棉球擦拭干净，等待皮肤干燥。
同时，应选择合适的采样部位，如肘窝静脉、桡动脉、股静脉等。
2. 采样采样时应使用无菌针和无菌管采集血液标本，一般采集量为每个采样部位2-3个管，每个管至少采集1-3ml的血液。
在采集时，应注意避免大量气泡和红细胞进入采样管中，以免影响结果。
3. 处理采集后将采样管送至实验室，并及时进行处理。
应将血液标本均匀地涂布在培养基上，可以选择使用静置法、旋转法或转移法进行操作。
静置法和旋转法适用于不同类型的培养瓶，需要在显微镜下观察细菌生长的情况。
转移法则适用于无菌环境下的操作，需要将血液标本转移至培养基上，然后进行均匀涂布和培养。
4. 结果分析血培养的结果应在一定时间内进行分析，并根据培养基的类型和细菌的特征来确定细菌的种类。
一般情况下，血培养的阳性结果表明血液内存在病原菌，阴性结果则表明血液中不存在病原菌。
在分析结果时，需要参考患者的临床症状、体征和其他检查结果来作出准确的临床诊断。
二、血培养在临床中的意义血培养是诊断血液系统感染的重要方法之一，对于临床医学的诊断和治疗具有非常重要的意义。
以下是血培养在临床中的应用：1. 诊断感染血液系统感染是一种常见的病理生理现象，可以引起严重的后果，如败血症和感染性心内膜炎等。
通过血培养可以检测细菌或其他微生物在血液中的存在，确定感染的种类并作出准确的诊断。
2. 监测治疗效果在治疗感染过程中，血培养可以用于监测治疗效果。
如治疗后血液中的细菌数量明显减少或消失，表明治疗有效。
3. 判断细菌耐药性通过血培养可以检测出细菌的耐药性，进而指导临床医生选择最佳的治疗方案。
血培养采集技术操作流程
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一、准备工作。
1. 准备好无菌血培养瓶（好氧瓶和厌氧瓶各一瓶）。
血培养的规范化操作流程
血培养的规范化操作流程血培养是临床实验室常见的一种微生物学检查方法，用于检测人体内是否存在细菌、真菌或其他微生物的感染。
在进行血培养时，需要遵循一系列规范化的操作步骤，以确保结果的准确性和可靠性。
以下是血培养的规范化操作流程。
1.检测前准备：-检测人员应佩戴个人防护装备，如实验服、手套、口罩等，以防止交叉感染。
-准备好所需的试剂和设备，包括培养基、血培养瓶、离心机、恒温箱等。
-检查培养基是否过期、封装是否完好，并进行质量检验。
2.标本采集：-根据临床需要，在合适的部位采集血液标本，并确保采集时的无菌操作。
-选择适当的采样器官，如使用灌注式血培养瓶，可选择适合的瓶颈部位。
-采集标本后应立即将其送至实验室进行处理。
3.标本处理：-将血液标本倒入血培养瓶中，通常一组采用两瓶血培养瓶，以增加检测的灵敏度。
-标本处理前应在标本瓶上标记样本信息，如患者姓名、标本号码、采样时间等。
-轻轻摇晃血培养瓶，以混匀血液和培养基，避免凝块的形成。
4.培养条件：-将血培养瓶放入恒温箱中，设置适当的温度和湿度条件（通常为35-37摄氏度和5-10%CO2）。
-检测周期根据临床需要而定，通常为24小时和48小时，有时可能需要更长的时间。
-定期检查恒温箱中血培养瓶的状态，确保温度和湿度的稳定。
5.细菌培养和观察：-在设定的培养周期后，检查血培养瓶中是否有细菌的生长。
-若瓶内产生了混浊或沉淀，则可能存在细菌生长，应进行下一步鉴定和分离。
-借助显微镜观察瓶内的液体或沉淀物，观察细菌形态、染色性质、运动性等特征。
6.细菌鉴定和药敏试验：-对生长的细菌进行鉴定，可以通过生物化学试验、分子生物学方法和免疫学方法等。
-鉴定完成后，可进行药敏试验，以确定对不同抗生素的敏感性和耐药性。
-鉴定和药敏试验的结果应记录在实验记录表中，并向临床医生提供及时的检测报告。
7.结果解读和报告：-根据细菌鉴定和药敏试验的结果，对病原体是否存在感染、感染的种类以及抗生素的选择等进行解读。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、引言血培养标本采集与运送是临床微生物学中非常重要的步骤，对于准确诊断和治疗疾病起着关键作用。
本文旨在规范血培养标本的采集与运送操作，以提高标本质量、减少污染及误诊率。
二、采集前准备1. 确认患者身份：核对患者的姓名、年龄、性别等个人信息，确保无误。
2. 选择合适的采集器械：根据采集需求，选择适当的采集器械，如无菌针头、无菌试管、培养瓶等。
三、采集操作1. 患者准备：告知患者采集过程，让其了解并配合操作。
保证患者处于舒适、稳定的状态。
2. 消毒程序：对采集部位进行消毒，常用消毒剂如酒精、碘酒，按照规程进行彻底消毒。
3. 采集血样：将无菌针头插入患者的静脉或血管，抽取适量血液，并根据需要分装入无菌试管或培养瓶中。
4. 混匀标本：轻微摇晃或轻拍血样容器，确保血液与培养液充分混合。
四、采集后处理1. 采集器械处理：丢弃使用过的针头、试管等器械，并进行相应的处理，如焚烧或贴有“感染性废物”标签的特殊垃圾袋中。
2. 患者鼓励：告知患者采集已完成，感谢其的配合并鼓励其继续配合后续治疗。
五、运送操作1. 标本标识：确保标本上有患者的姓名、住院号、采集日期和时间等必要信息，以免混淆或丢失。
2. 运送容器：选择合适的运输容器，如耐压、耐震动、密封好的容器，确保标本在运输过程中不泄漏或受到破坏。
3. 防护措施：运送标本时，保持容器稳定，避免与其他容器、物品摩擦和震动，防止标本破损或污染。
4. 运送温度：根据不同培养需求，将标本置于适当的温度条件下运送，如冷藏、冷冻或常温等。
确保温度在规定范围内，避免标本质量受损。
5. 运送时效：尽量缩短标本送达实验室的时间，以保持标本的活性和准确度。
在运送前与实验室联系，确认实验室接收时间和运送方式。
六、备注事项1. 采集者要佩戴符合要求的个人防护装备，包括手套、口罩、防护眼镜等，以确保采集过程中不发生交叉感染。
2. 采集器械和容器要严格按照规定进行消毒、清洁和灭菌，以杀灭或去除潜在污染的微生物。
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血培养采集技术操作规范
一、操作目的
严格无菌操作要求，正确留取血标本，做微生物培养，协助诊断、治疗及护理。
二、评估要点
1、评估患者病情、治疗、心理状态及配合程度。
2、了解患者寒战或发热的高峰时间。
3、了解患者的用药情况，如抗生素。
4、评估患者穿刺部位皮肤、血管情况和肢体活动度。
三、物品准备
治疗盘、弯盘、碘伏、棉签、止血带、血培养瓶、采血针、手套、治疗巾。
四、操作要点
1、核对医嘱及培养瓶条码。
2、评估患者的病情、抗生素的使用情况以及血管等基本情况。
3、告知患者及家属采血的目的、方法及如何配合、采血后的注意事项。
4、根据要求准备用物。
5、再次核对患者手腕带和培养瓶信息，确认统一后，按要求正确留取血标本。
可选用静脉直接穿刺法或经外周穿刺的中心静脉导管进行采血。
6、协助按压穿刺部位 5-10 分钟至无出血。
7、协助取舒适卧位，询问患者需要。
8、整理床单位。
9、洗手，取口罩。
10、及时送检。
11、操作速度：完成时间 8 分钟以内。
五、指导要点
1、告知患者检查的目的、方法、注意事项以及配合方法。
2、告知患者正确的降温方法，促进舒适。
六、注意事项
1、血培养瓶应在室温下避光保存。
2、根据是否使用抗生素，准备合适的需氧瓶和厌氧瓶。
3、间歇性寒战患者应在寒战或体温高峰前取血；当预测寒战或高热时间有困难时，应在寒战或发热时尽快采血。
4、已经用过抗生素治疗的患者，应在下次使用抗生素前采集血培养标本。
5、消毒时应以穿刺点为中心擦拭，应消毒两遍或遵循消毒剂使用说明书，待自然干燥后方可穿刺。
6、血标本注入厌氧培养瓶时，注意不要将注射器中的空气注入瓶中。
7、两次血培养标本采集时间至少间隔一小时。
8、经外周穿刺的中心静脉导管采血留取血标本时，每次至少采集两套血培养，其中一套从独立外周血管采血，另一套则从导管采血。
两套血培养的采血时间必须接近(<5 分钟)，并做好标记。
9、成人采血 10-20 毫升，婴幼儿 1-5 毫升。