动物药理实训报告
动物药学专业实习报告
动物药学专业实习报告一、实习背景与目的在动物药学专业的学习过程中，我深知理论与实践相结合的重要性。
为了将课堂上学到的理论知识应用到实际工作中，提高自己的专业技能和综合素质，我选择了在[实习单位名称]进行为期三个月的动物药学专业实习。
本次实习的主要目的是通过参与动物药品的研发、生产、质量检测以及临床应用等环节，深入了解动物药学的实际应用，为未来的学习和工作奠定坚实的基础。
二、实习内容动物药品研发与生产在实习期间，我参与了动物药品的研发与生产工作。
通过参与实验室的科研项目，我了解了动物药品研发的基本流程和关键技术，如药物筛选、药效评价、制剂工艺等。
同时，我也参观了生产车间，了解了动物药品的生产流程和质量控制要求，对药品的生产过程有了更加直观的认识。
动物药品质量检测在实习过程中，我参与了动物药品的质量检测工作。
通过学习和操作各种检测仪器和设备，我掌握了动物药品的质量检测方法和标准，如理化性质检测、微生物限度检测、药效学评价等。
我参与了样品的采集、处理和检测工作，学会了如何根据检测结果判断药品的质量，并对不合格药品进行了处理。
动物药品临床应用在导师的指导下，我参与了动物药品的临床应用工作。
通过参与临床试验和病例分析，我了解了动物药品在实际应用中的效果、副作用以及注意事项。
同时，我也与兽医进行了深入的交流，了解了他们在临床实践中对动物药品的需求和建议，为药品的研发和生产提供了有益的参考。
法律法规与伦理培训在实习期间，我还参加了动物药品相关法律法规和伦理规范的培训。
通过学习，我了解了动物药品的研发、生产和销售需要遵守的法律法规和伦理规范，以及如何在实际工作中遵守这些规定。
这对我未来的职业发展和行为规范具有重要的指导意义。
三、实习收获与体会实践能力的提升通过本次实习，我的实践能力得到了显著提升。
我不仅掌握了动物药品的研发、生产、质量检测以及临床应用等基本技能，还学会了如何运用所学知识解决实际问题。
这些实践经验对我未来的学习和工作具有重要的指导意义。
动物药理实训实验报告总结
一、实验背景药理学是研究药物与生物体相互作用及其规律的学科，是医学科学的重要基础学科之一。
为了加深对药理学知识的理解，提高实验技能，我们开展了动物药理实训实验。
本次实验通过动物实验模型，对药物的药效、毒性、代谢等药理学特性进行观察和测定。
二、实验目的1. 熟悉动物实验操作流程，掌握实验动物的选择、处理、给药、观察、记录和数据分析等基本技能。
2. 理解药物作用机制，观察药物在不同剂量下的药效和毒性反应。
3. 培养科学思维和实验操作能力，提高实验报告撰写水平。
三、实验内容1. 实验动物的选择与处理本次实验选用小鼠作为实验动物，实验前对小鼠进行编号、称重、性别鉴定等处理，确保实验数据的准确性。
2. 药物给药根据实验设计，采用口服或腹腔注射等方式给药，观察药物在不同剂量下的药效和毒性反应。
3. 观察与记录在实验过程中，密切观察动物的行为、生理指标及不良反应，详细记录实验数据。
4. 数据分析与处理对实验数据进行统计分析，计算药效指标、毒性指标等，得出结论。
四、实验结果与分析1. 药物对动物行为的影响实验结果显示，不同剂量药物对动物行为产生显著影响。
低剂量药物对动物行为无明显影响，随着剂量增加，动物表现出兴奋、躁动、肌肉震颤等症状。
2. 药物对动物生理指标的影响实验结果显示，药物对动物生理指标产生显著影响。
随着剂量增加，动物的体温、心率、呼吸频率等生理指标发生改变。
3. 药物毒性反应实验过程中，部分动物出现不良反应，如呕吐、腹泻、昏迷等。
经统计分析，药物在一定剂量范围内具有一定的毒性。
五、实验结论1. 本实验成功观察了药物在不同剂量下的药效和毒性反应，为药物的临床应用提供了实验依据。
2. 通过实验操作，提高了学生的实验技能和数据分析能力，培养了科学思维。
3. 实验过程中，学生掌握了动物实验操作流程，为今后的科研工作打下了基础。
六、实验体会1. 实验过程中，严格遵守实验操作规程，确保实验数据的准确性。
2. 注重观察动物的行为和生理指标，及时发现问题，调整实验方案。
动物安全药理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本研究旨在通过动物安全药理实验，对某新型药物进行安全性评价，包括急性毒性、亚慢性毒性、慢性毒性以及遗传毒性等方面，为该药物的临床应用提供科学依据。
二、实验材料1. 实验动物：健康昆明小鼠，体重18-22g，雌雄各半。
2. 药物：某新型药物，纯度≥98%，由某制药企业提供。
3. 试剂与仪器：生理盐水、苦味酸、戊巴比妥钠、注射器、灌胃针、电子天平、手术剪、止血钳、平皿、托盘、烧杯等。
三、实验方法1. 急性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重。
（3）观察指标：观察实验动物在给药后24小时内出现的死亡、中毒症状及体征。
2. 亚慢性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重，连续给药90天。
（3）观察指标：观察实验动物在给药期间及停药后30天内出现的死亡、中毒症状及体征，并进行血液学、血液生化、脏器系数等指标检测。
3. 慢性毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为5组，每组10只，分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和最大耐受量组。
（2）给药方式：除对照组外，其他各组分别灌胃给药，剂量分别为0.5、1.0、2.0、4.0g/kg体重，连续给药6个月。
（3）观察指标：观察实验动物在给药期间及停药后30天内出现的死亡、中毒症状及体征，并进行血液学、血液生化、脏器系数、病理学等指标检测。
4. 遗传毒性实验（1）实验分组：将实验动物随机分为2组，每组10只，分别为实验组（给药组）和对照组。
（2）给药方式：实验组灌胃给药，剂量为2.0g/kg体重，连续给药90天。
动物药理实训报告
动物药理实验实训指导书试行金华职业技术学院农业与生物工程学院二00九年十月前言药理学实验课是药理教学的一个重要组成部分，通过实验可使学生熟悉药理实验的基本操作方法，掌握药理实验的基本技能，验证药理学的基本理论，加强对理论知识的理解，体验科学研究的基本程序。
本实验指导选择的实验内容实用，做到既与理论课有密切联系，又有实验课的独特体系；既有整体动物（包括清醒动物和麻醉动物）实验，又有器官水平实验；既有验证性实验，又有设计性实验,还有综合性实验。
在实验课的全过程中培养与提高学生独立思考、独立操作以及科学严谨的工作作风和严密的工作方法，使学生初步具备对客观事物进行观察、比较、分析、综合和解决问题的能力，并验证、巩固和加深理解基本理论，从而初步掌握药理学实验的基本方法。
为了达到上述目的，要求同学们做到下列事项：1．预习仔细阅读所进行的实验内容，结合所学理论，认真领会实验目的和原理，熟悉操作方法与步骤，并对实验结果进行理论推测，做到心中有数，以便在实验结果不理想时能及时纠正操作上的错误。
2．清点药品器材实验操作前要对照实验讲义检查药品名称和浓度、器材的数量和性能，以防错拿错放。
3．正确操作包括调试仪器、动物手术、药量换算、给药方法等都应做到准确无误。
4．认真观察和记录实验时要仔细观察实验现象，如动物用药前后的反应差异、反应持续时间及转归，并如实记录在原始记录本上，不许随意涂改。
5．遵守实验室规则、注意作风培养要安全操作，防止触电、药物中毒、动物咬伤等事故。
必须保持实验室的整洁与安静。
实验结束后，要将所用器材擦洗干净，放回指定位置；检查仪器性能，填写使用单，如有损坏要报告带教老师。
实验死亡动物放于指定处，存活动物送回动物室或兽医院。
6．整理实验资料、书写实验报告药理实验资料可分为量反应资料(如血压、心率、平滑肌收缩幅度等)和质反应资料(如动物死亡与存活数)。
将实验资料加以整理，如设计表格进行比较分析或统计学处理(必要时，综合全实验室的实验资料)，按要求写出实验报告，交带教老师评阅。
动物药学实习报告
一、实习目的通过本次动物药学实习，使我对动物药学专业有一个更加深入的了解，掌握动物药物的基本知识，熟悉药物在动物身上的作用机理，提高自己的动手操作能力和实际工作能力。
二、实习时间及地点实习时间为2021年6月至2021年8月，实习地点为XX市XX动物医院。
三、实习内容1. 动物药物的基本知识在实习期间，我学习了动物药物的基本知识，包括药物的定义、分类、作用机理、适应症、禁忌症、剂量、用法、注意事项等。
通过学习，我对动物药物有了全面的认识。
2. 动物药物的使用方法在实习过程中，我学习了动物药物的使用方法，包括口服、注射、外用等。
同时，我还了解了不同给药途径的优缺点，以及如何根据动物的具体情况选择合适的给药途径。
3. 动物药物的临床应用在实习期间，我参与了动物医院的治疗工作，观察了医生如何根据动物的病情开具药物处方，了解了药物在临床治疗中的应用。
通过实践，我掌握了如何根据动物的病情选择合适的药物，并能够独立开具药物处方。
4. 动物药物的储存与保管在实习过程中，我学习了动物药物的储存与保管知识，了解了不同药物的储存条件、有效期、报废标准等。
同时，我还学会了如何进行药物盘点，确保药物的安全使用。
5. 动物药物不良反应的观察与处理在实习期间，我学习了动物药物不良反应的观察与处理方法。
通过观察病例，我掌握了如何识别药物不良反应，并能够根据病情给予相应的处理措施。
四、实习收获1. 提高了理论知识水平：通过实习，我对动物药物的基本知识、作用机理、临床应用等有了更加深入的了解，为今后的工作打下了坚实的基础。
2. 增强了实践能力：在实习过程中，我参与了动物医院的治疗工作，学会了如何根据动物的病情开具药物处方，提高了自己的动手操作能力。
3. 培养了团队协作精神：在实习期间，我与同事们共同完成工作任务，学会了与他人沟通、协作，提高了自己的团队协作能力。
4. 增强了职业素养：在实习过程中，我遵循职业道德，认真对待每一个病例，不断提高自己的职业素养。
兽医药理实验报告(3篇)
第1篇实验名称：抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌实验实验目的：1. 了解抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌作用。
2. 掌握平板划线法在微生物实验中的应用。
3. 分析抗生素的抑菌效果，为临床合理使用抗生素提供参考。
实验原理：金黄色葡萄球菌是一种常见的革兰氏阳性球菌，对多种抗生素敏感。
本实验通过平板划线法，将金黄色葡萄球菌接种在含有不同浓度抗生素的琼脂平板上，观察并记录抑菌圈的大小，以评估抗生素的抑菌效果。
实验材料：1. 金黄色葡萄球菌菌种2. 生理盐水3. 不同浓度的青霉素、链霉素、红霉素、庆大霉素药液4. 琼脂平板5. 移菌针6. 酒精灯7. 灭菌棉签实验方法：1. 将金黄色葡萄球菌菌种接种于生理盐水中，制成菌悬液。
2. 将不同浓度的抗生素药液分别加入琼脂平板中，制成含有不同浓度抗生素的琼脂平板。
3. 使用移菌针将金黄色葡萄球菌菌悬液均匀涂布在琼脂平板上。
4. 将琼脂平板倒置，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
5. 观察并记录抑菌圈的大小。
实验结果：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，抑菌圈直径最大。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但抑菌圈直径较青霉素小。
3. 随着抗生素浓度的增加，抑菌圈的大小也随之增大。
实验分析：1. 本实验结果表明，青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可能是由于青霉素能抑制细菌细胞壁的合成，导致细菌死亡。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但其抑菌效果不如青霉素。
这可能是由于这些抗生素的作用机制与青霉素不同，或者是金黄色葡萄球菌对这些抗生素的耐药性较高。
3. 在临床用药过程中，应根据患者的病情和药物敏感性，合理选择抗生素，以充分发挥抗生素的抑菌效果。
实验结论：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可作为临床治疗金黄色葡萄球菌感染的首选药物。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，可根据患者的病情和药物敏感性选择使用。
兽医药理学实习报告
兽医药理学实习报告一、实习背景及目的随着我国畜牧业的快速发展，兽医药理学作为一门研究药物在动物体内作用机制、药效评价和不良反应等规律的学科，在兽医临床和动物保健领域发挥着越来越重要的作用。
为了提高我们对兽医药理学的理论知识和实践技能，我们在兽医药理学实习期间，通过参观实验室、参与实验操作和临床实践等方式，深入了解了兽医药理学的基本原理和应用。
二、实习内容及收获1. 实习内容（1）实验室参观：在实习过程中，我们参观了兽医药理学实验室，了解了实验室的基本设备和功能，如高效液相色谱仪、气相色谱仪、质谱仪等。
（2）实验操作：我们参与了部分兽医药理学实验，如药物吸收、分布、代谢和排泄等方面的实验，掌握了实验操作的基本技能。
（3）临床实践：我们在兽医临床实践中，观察了药物在动物体内的作用效果，了解了药物的临床应用和不良反应。
2. 实习收获（1）理论知识：通过实习，我们对兽医药理学的理论知识有了更深入的了解，如药物的吸收途径、分布规律、代谢过程和排泄方式等。
（2）实践技能：在实验操作和临床实践中，我们掌握了兽医药理学实验的基本技能，提高了动手能力。
（3）思维能力：实习过程中，我们学会了运用兽医药理学的知识分析和解决实际问题，提高了批判性思维能力。
（4）团队协作：在实习过程中，我们与同学们共同完成实验和临床任务，学会了团队协作和沟通，增强了团队意识。
三、实习总结通过本次兽医药理学实习，我们对兽医药理学的理论知识、实践技能和临床应用有了更深入的了解。
实习过程中，我们不仅提高了自己的专业素养，还学会了团队协作和沟通。
然而，实习过程中我们也发现了自己在兽医药理学方面的不足，如理论知识不够扎实、实践操作不够熟练等。
在今后学习中，我们将努力学习兽医药理学的基本知识，提高自己的实践能力，为我国畜牧业的发展贡献自己的力量。
四、建议和展望针对实习过程中存在的问题，我们提出以下建议：1. 加强兽医药理学理论教育，提高学生的理论素养。
药理实验报告_实验动物
实验名称：药理实验实验目的：通过本实验，了解实验动物的基本操作，掌握给药方法，观察药物对实验动物的影响，并分析药物的作用机制。
实验时间：2023年X月X日实验地点：实验室实验动物：昆明种小白鼠（体重20-25g）实验器材：天平、鼠笼、鼠夹、注射器、剪刀、手术刀、酒精棉、生理盐水、实验药物（例如：阿司匹林）实验方法：1. 实验动物准备：将实验动物置于鼠笼中，适应环境，观察其活动状态。
2. 实验动物称重：使用天平称量实验动物体重，记录数据。
3. 给药方法：采用腹腔注射法给药。
将实验动物固定在鼠夹上，用酒精棉消毒腹部皮肤，注射器吸取实验药物（例如：阿司匹林），注射剂量为0.2g/kg体重。
4. 观察记录：给药后，每隔一定时间观察实验动物的行为、活动状态及生理指标变化，如呼吸、心率、体温等。
5. 实验分组：将实验动物分为实验组和对照组，实验组给予实验药物，对照组给予等体积的生理盐水。
6. 数据统计：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标变化。
实验结果：1. 实验动物体重：实验前后，实验动物体重无明显变化。
2. 行为观察：给药后，实验动物出现活动减少、精神萎靡等症状，与对照组相比，实验动物的症状更为明显。
3. 生理指标变化：（1）呼吸：实验组呼吸频率较对照组明显降低，表明药物对实验动物呼吸系统有一定抑制作用。
（2）心率：实验组心率较对照组明显降低，表明药物对实验动物循环系统有一定抑制作用。
（3）体温：实验组体温较对照组无明显变化。
实验讨论：1. 本实验通过腹腔注射法给予实验动物阿司匹林，观察到实验动物出现活动减少、精神萎靡等症状，表明阿司匹林对实验动物具有一定的抑制作用。
2. 实验结果显示，阿司匹林对实验动物呼吸系统和循环系统有一定抑制作用，这与阿司匹林的作用机制相符。
阿司匹林是一种非甾体抗炎药，具有镇痛、解热、抗炎等作用，其作用机制主要是抑制环氧合酶（COX）的活性，减少前列腺素的生成，从而达到抗炎、镇痛、解热的效果。
药理学实训报告小鼠灌胃
一、实验目的1. 熟悉小鼠灌胃操作的步骤和技巧。
2. 掌握灌胃法在小鼠实验中的应用。
3. 观察并分析灌胃后小鼠的反应，为后续药理学实验提供参考。
二、实验原理灌胃法是一种将药物、营养剂或生理盐水等液体直接送入小鼠胃内的实验方法。
通过灌胃法，可以观察药物在小鼠体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，以及药物对小鼠生理、生化指标的影响。
三、实验材料1. 实验动物：健康昆明种小鼠，体重20-25g。
2. 实验药物：燕滨扶正胶囊。
3. 实验器材：小鼠灌胃器、电子秤、秒表、实验记录表等。
四、实验方法1. 实验分组：将小鼠随机分为对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组，每组10只。
2. 灌胃操作：（1）将小鼠固定在实验板上，用酒精棉球消毒小鼠的颈部皮肤。
（2）将灌胃器插入小鼠的口腔，缓慢推进至胃部，确保灌胃液进入胃内。
（3）缓慢注入灌胃液，灌胃量以每只小鼠0.2ml计算。
（4）灌胃过程中，注意观察小鼠的反应，如出现挣扎、打喷嚏、呼吸急促等情况，应立即停止灌胃。
3. 灌胃后观察：（1）灌胃后，观察小鼠的精神状态、活动能力、进食情况等。
（2）记录小鼠的死亡情况，对死亡小鼠进行解剖，观察胃部、肝脏、肾脏等器官的病理变化。
4. 数据收集与分析：（1）统计各组小鼠的存活率、死亡时间、死亡原因等指标。
（2）对灌胃前后小鼠的生理、生化指标进行检测，如体重、血液生化指标等。
（3）分析数据，探讨燕滨扶正胶囊对小鼠的影响。
五、实验结果1. 存活率：对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组的存活率分别为100%、100%、90%和80%。
其中，高剂量组小鼠的存活率显著低于其他组（P<0.05）。
2. 死亡原因：高剂量组小鼠死亡原因主要为呼吸抑制和肝脏损伤。
3. 生理、生化指标：灌胃前后，各组小鼠的体重、血液生化指标等无明显差异。
六、实验讨论1. 灌胃法是一种简单、易行的小鼠实验方法，适用于观察药物对小鼠的影响。
2. 燕滨扶正胶囊对小鼠具有一定的刺激作用，高剂量组小鼠出现呼吸抑制和肝脏损伤，提示燕滨扶正胶囊的毒性作用。
动物常用给药实训报告
一、实训目的本次实训旨在使学生掌握动物实验中常用的给药途径和方法，提高实验操作技能，为今后从事相关研究工作打下基础。
二、实训时间2023年X月X日三、实训地点动物实验室四、实训对象小白鼠（雄性，体重约20g）五、实训内容1. 动物给药途径本次实训主要学习了以下动物给药途径：- 灌胃法- 腹腔注射法- 皮下注射法- 静脉注射法2. 给药方法（1）灌胃法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 用左手抓住小白鼠头部，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
3. 将药物注入胃内，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
4. 慢慢抽出灌胃针，并轻轻抚摸小白鼠的腹部，帮助药物进入胃内。
（2）腹腔注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 用左手抓住小白鼠腹部，右手持注射器，将针头从小白鼠腹部正中线处刺入腹腔。
3. 将药物注入腹腔，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
4. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸小白鼠腹部，帮助药物进入腹腔。
（3）皮下注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 在小白鼠背部或腹部选择合适的注射部位。
3. 用左手抓住注射部位上方皮肤，右手持注射器，将针头刺入皮下。
4. 将药物注入皮下，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入皮下。
（4）静脉注射法1. 将小白鼠固定在实验台上，头部朝向实验者。
2. 在小白鼠耳静脉选择合适的注射部位。
3. 用左手抓住小白鼠耳朵，右手持注射器，将针头刺入耳静脉。
4. 将药物注入耳静脉，注入量约为0.2～0.5ml/10g。
5. 缓慢抽出针头，并轻轻抚摸注射部位，帮助药物进入耳静脉。
六、实训结果本次实训中，所有动物均成功接受了给药，给药过程顺利，无意外发生。
七、实训总结1. 通过本次实训，学生掌握了动物实验中常用的给药途径和方法，提高了实验操作技能。
2. 在实际操作过程中，应注意以下几点：- 操作前，仔细观察动物的状态，确保动物健康。
实验动物给药实训报告总结
一、实训背景为了提高实验动物给药的技能，确保实验动物在实验过程中的安全和健康，我们进行了实验动物给药实训。
本次实训主要针对常用实验动物（如小鼠、大鼠、豚鼠等）的给药途径和方法进行了学习和实践。
二、实训目的1. 掌握实验动物给药的基本原理和操作方法。
2. 提高实验动物给药的准确性和安全性。
3. 培养团队协作和实验操作能力。
三、实训内容1. 实验动物给药途径介绍（1）灌胃法：将药物灌入动物胃内，适用于多种实验动物。
（2）肌肉注射法：将药物注入动物肌肉，适用于小鼠、大鼠等小动物。
（3）皮下注射法：将药物注入动物皮下组织，适用于小鼠、大鼠、豚鼠等。
（4）腹腔注射法：将药物注入动物腹腔，适用于小鼠、大鼠等。
（5）静脉注射法：将药物注入动物静脉，适用于多种实验动物。
2. 实验动物给药操作（1）小鼠灌胃法：固定小鼠，用灌胃针从口角插入，沿上腭插入食道，注入药物。
（2）肌肉注射法：固定小鼠，用注射针从大腿外侧肌肉注入药物。
（3）皮下注射法：固定小鼠，用注射针从背部或腹部皮下注入药物。
（4）腹腔注射法：固定小鼠，用注射针从下腹部注入药物。
（5）静脉注射法：固定小鼠，用注射针从静脉注入药物。
3. 实验动物给药注意事项（1）操作前，对实验动物进行观察，确保其健康状态。
（2）操作过程中，注意保持实验动物安静，避免其挣扎。
（3）注射部位选择合理，避免损伤大血管。
（4）注射速度适中，避免药物外渗。
（5）注射后，观察实验动物的反应，及时处理可能出现的问题。
四、实训总结1. 通过本次实训，我们掌握了实验动物给药的基本原理和操作方法，提高了实验动物给药的技能。
2. 在实训过程中，我们注意了实验动物的福利，尽量减少其痛苦，体现了实验伦理。
3. 团队协作能力得到了提升，大家在实训过程中互相学习、互相帮助，共同完成了实训任务。
4. 实验动物给药实训对我们今后的实验研究具有重要意义，我们将继续努力，提高实验动物给药水平。
五、实训收获1. 熟练掌握了实验动物给药的各种方法，为今后的实验研究奠定了基础。
动物药理实习报告体会
动物药理实习报告体会在过去的一段时间里，我有幸参与了动物药理实习项目。
这次实习让我对动物药理学有了更深入的了解，并且积累了宝贵的实践经验。
在这里，我想分享一下我的实习体会。
首先，实习让我明白了理论知识与实际操作之间的紧密联系。
在课堂上，我们学习了很多关于动物药理学的理论知识，但在实践中将这些知识应用到实际操作中却是另一回事。
通过实习，我学会了如何将理论知识与实际操作相结合，从而更好地理解和掌握药理学的原理。
其次，实习让我对动物药理学的研究方法和实验技能有了更深入的了解。
在实习过程中，我参与了一些实验，学习了如何进行实验设计、数据采集和分析等。
这些实验技能对我今后的学术研究和职业发展都将起到重要的推动作用。
此外，实习还培养了我团队合作和沟通能力。
在实习过程中，我与其他同学和老师一起合作完成各项任务。
通过相互协作，我们共同解决问题，取得了良好的实习成果。
同时，我也学会了如何与老师、同学和实验室工作人员进行有效沟通，提高了我的团队协作能力。
实习还让我对动物药理学的研究领域有了更广泛的了解。
在实习过程中，我接触到了许多不同的药物和治疗方法，了解了它们的作用机制和临床应用。
这使我更加深入地认识到动物药理学在兽医领域的重要性和广泛应用。
最后，实习让我认识到了自己在学术和实践方面的不足。
在实习过程中，我发现自己在某些方面的知识和技能还有待提高。
因此，我决定在今后的学习和实践中更加努力，不断完善自己的能力和素质。
总之，这次动物药理实习给我带来了许多收获和体会。
通过实习，我不仅加深了对动物药理学的理解，还提高了自己的实践能力和团队合作能力。
我相信这次实习对我今后的学术研究和职业发展都将产生积极的影响。
我将继续努力，不断学习和进步，为将来在兽医领域做出自己的贡献做好准备。
动物药理测试实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在通过动物药理测试，了解药物对动物生理指标的影响，为药物的临床应用提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：成年雄性小鼠，体重（20±2）g，由XX实验动物中心提供。
2. 药物：某新型抗高血压药物，由XX制药公司提供。
3. 仪器：电子天平、电子血压计、电子体温计、热板测痛仪、电刺激器、离心机、显微镜等。
4. 试剂：生理盐水、药物溶剂等。
三、实验方法1. 分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验前处理：对实验动物进行适应性饲养，观察动物的行为、饮食、活动等情况。
3. 药物给药：实验组动物按体重给予某新型抗高血压药物，对照组动物给予等体积的生理盐水。
4. 生理指标检测：（1）血压检测：给药前后，采用电子血压计测量实验动物血压。
（2）体温检测：给药前后，采用电子体温计测量实验动物体温。
（3）热板测痛实验：给药前后，采用热板测痛仪检测实验动物痛阈。
（4）电刺激实验：给药前后，采用电刺激器检测实验动物痛阈。
5. 数据处理：采用SPSS软件对实验数据进行统计分析。
四、实验结果1. 血压变化：给药后，实验组动物血压较给药前明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 体温变化：给药前后，实验组动物体温与对照组相比，差异不具有统计学意义（P>0.05）。
3. 热板测痛实验：给药后，实验组动物痛阈较给药前明显升高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 电刺激实验：给药后，实验组动物痛阈较给药前明显升高，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
五、讨论分析1. 本次实验结果表明，某新型抗高血压药物对动物血压有明显的降低作用，且痛阈升高，表明该药物具有良好的镇痛效果。
2. 与对照组相比，实验组动物血压降低、痛阈升高，说明该药物具有良好的抗高血压和镇痛作用。
3. 本次实验结果为该药物的临床应用提供了实验依据，为后续研究提供了参考。
动物药理实训总结
动物药理实训总结一、实训目标本次动物药理实训的目标是通过观察和记录药物对动物生理的影响，理解药物的作用机制和效果，提高实验操作技能，培养科学思维和团队协作能力。
二、实训过程1. 实验准备：在实验开始前，我们进行了充分的实验准备，包括复习相关理论知识，熟悉实验操作流程，准备实验动物和药品等。
2. 实验操作：在老师的指导下，我们进行了动物给药、生物样品采集、动物行为观察等实验操作。
同时，我们记录了实验过程中的关键数据，包括动物的体重、给药剂量、生物样品的分析结果等。
3. 数据分析：通过对实验数据的分析，我们发现某些药物对动物生理有明显影响，如引起心率变化、血压升高或降低等。
我们还对数据进行了统计学处理，绘制了图表，更直观地展示药物作用的效果。
4. 问题反思：在实验过程中，我们遇到了一些问题，如给药剂量不准确、动物行为异常等。
针对这些问题，我们进行了深入反思，找出问题出现的原因，并提出改进措施。
5. 经验总结：通过本次实训，我们不仅加深了对动物药理理论知识的理解，还提高了实验操作技能和团队协作能力。
同时，我们也认识到科学思维在实验过程中的重要性，要始终保持谨慎、客观的态度进行实验。
三、实训结果1. 通过本次实训，我们深入了解了药物的作用机制和效果，掌握了动物药理实验的基本操作技能。
2. 我们发现某些药物对动物生理有明显影响，如引起心率变化、血压升高或降低等。
这证明了理论知识的正确性和实际应用的价值。
3. 在实验过程中，我们遇到了一些问题，如给药剂量不准确、动物行为异常等。
针对这些问题，我们进行了深入反思，找出问题出现的原因，并提出改进措施。
这将有助于我们在未来的实验中提高操作水平和实验质量。
4. 通过本次实训，我们认识到科学思维在实验过程中的重要性，要始终保持谨慎、客观的态度进行实验。
同时，我们也认识到团队协作的重要性，只有团结协作才能更好地完成实验任务。
四、参考文献[此处列出相关的参考文献]五、致谢感谢实验室老师在实验过程中的耐心指导和帮助，感谢同学们在实验中的团结协作和互相学习。
动物医药实训报告
一、实训背景随着我国畜牧业的快速发展，动物医药行业在保障动物健康、提高畜产品质量、促进农民增收等方面发挥着重要作用。
为了提高动物医药专业学生的实践能力和专业技能，我们于2023年在某高等职业技术学院动物医药专业进行了为期两周的动物医药实训。
本次实训旨在通过理论与实践相结合的方式，使学生掌握动物医药的基本技能，为将来从事动物医药工作打下坚实基础。
二、实训目的1. 熟悉动物医药的基本理论知识和实践技能。
2. 提高学生对动物疾病的诊断、治疗和预防能力。
3. 培养学生的团队协作精神和实践创新能力。
4. 为学生将来从事动物医药工作提供实践经验和技能支持。
三、实训内容本次实训分为以下几个模块：1. 基础化学技能实训：学习动物医药所需的化学基础知识，包括无机化学、有机化学和生物化学等，掌握常见化学试剂的配制和使用方法。
2. 动物生理生化技能实训：了解动物生理学、生物化学的基本原理，掌握动物生理生化实验技能，如血液生化检测、组织切片等。
3. 动物药理与毒理技能实训：学习动物药理学、毒理学的基本理论，掌握药物作用机制、毒理效应及药物代谢等知识，提高学生对药物安全性的认识。
4. 动物药品制剂与分析检验技能实训：学习动物药品的制备方法、质量控制标准及分析检验技术，掌握常用分析仪器和检验方法。
5. 动物微生物与动物群发病技能实训：了解动物微生物学、动物传染病学的基本理论，掌握动物病原微生物的分离、鉴定和检测方法，提高学生对动物群发病的预防和控制能力。
6. 动物临床诊疗技能实训：学习动物临床诊疗的基本技能，包括病史采集、临床检查、诊断和治疗方案制定等，提高学生的临床实践能力。
四、实训过程1. 理论教学：由专业教师进行理论授课，讲解动物医药相关知识和技能。
2. 实践操作：在实验室和临床实训基地进行实践操作，由教师指导，学生分组进行实验和病例分析。
3. 现场教学：组织学生参观动物养殖场、兽医院等，了解动物医药的实际应用。
4. 小组讨论：学生分组讨论实训过程中遇到的问题，共同解决问题，提高团队协作能力。
动物给药技能实训报告总结
一、实习背景随着社会的发展和人们生活水平的提高，宠物养殖业和宠物医疗行业得到了迅速发展。
为了提高宠物医疗人员的专业技能，我校组织了一次动物给药技能实训。
本次实训旨在使学生了解动物给药的基本原理、方法和技巧，提高临床实践能力。
二、实习目的1. 掌握动物给药的基本原则和常用给药途径。
2. 熟悉常用药物的剂型和作用特点。
3. 提高动物给药的准确性和安全性。
4. 培养学生良好的职业素养和团队协作能力。
三、实习时间20xx年x月x日-20xx年x月x日四、实习地点我校动物医学实验楼五、实习内容1. 理论学习实训前，我们进行了动物给药理论的学习，包括动物给药的基本原则、常用给药途径、药物剂型、作用特点等内容。
通过学习，我们对动物给药有了初步的认识。
2. 实践操作（1）给药途径实训过程中，我们学习了以下几种给药途径：- 口服给药：通过动物口腔将药物送入体内。
- 皮下注射：将药物注入皮下组织。
- 肌肉注射：将药物注入肌肉组织。
- 静脉注射：将药物直接注入静脉。
（2）药物剂型实训中，我们了解了以下几种药物剂型：- 片剂：将药物制成片状，便于口服。
- 针剂：将药物制成水溶液，用于注射。
- 液体剂：将药物制成液体，用于口服或注射。
- 膏剂：将药物制成膏状，用于外用。
（3）给药技巧实训中，我们学习了以下给药技巧：- 保定动物：确保动物在给药过程中安全、舒适。
- 给药部位：根据药物剂型和给药途径选择合适的给药部位。
- 给药速度：控制给药速度，确保药物均匀吸收。
- 观察反应：给药后观察动物的反应，及时处理不良反应。
3. 团队协作在实训过程中，我们进行了分组练习，每组由一名组长和几名组员组成。
组长负责协调组内工作，组员相互协作，共同完成实训任务。
六、实习总结1. 实习收获通过本次实训，我们掌握了动物给药的基本原理、方法和技巧，提高了临床实践能力。
同时，我们学会了团队合作，培养了良好的职业素养。
2. 实习体会（1）动物给药是一项技术性较强的工作，需要掌握丰富的理论知识，熟练的操作技能。
药理学小白鼠实训报告
一、实验目的1. 了解小白鼠的生理结构和生理功能，为药理学实验提供动物模型。
2. 掌握小白鼠给药方法、采血技术及基本生理指标的测定方法。
3. 学习药理学实验的基本操作流程，提高实验技能。
4. 通过观察药物在小白鼠体内的作用，了解药物的药效学及药代动力学特点。
二、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 主要试剂：生理盐水、药物、生理盐水溶液、药物溶液3. 主要仪器：注射器、针头、试管、移液器、显微镜、电子天平、体温计、血压计等三、实验方法1. 小白鼠的观察与处理- 观察小白鼠的形态、行为、生理指标等，如体重、体温、呼吸、心率等。
- 记录小白鼠的生理指标，为实验提供基础数据。
2. 给药方法- 口服给药：将药物与生理盐水混合，用注射器将药物溶液灌入小白鼠口中。
- 腹腔注射给药：将药物溶液用注射器注入小白鼠腹腔。
- 肌肉注射给药：将药物溶液用注射器注入小白鼠肌肉。
3. 采血技术- 采取小白鼠尾静脉血：将小白鼠尾部固定，用酒精消毒，用针头穿刺尾静脉，收集血液。
- 采取小白鼠眼眶静脉血：将小白鼠头部固定，用酒精消毒，用针头穿刺眼眶静脉，收集血液。
4. 生理指标测定- 体温测定：用体温计测定小白鼠的体温。
- 呼吸测定：观察小白鼠的呼吸频率和深度。
- 心率测定：用听诊器测定小白鼠的心率。
5. 药物作用观察- 观察小白鼠给药后的行为变化，如活动减少、呼吸加快、心率增快等。
- 测定小白鼠的生理指标变化，如体温、呼吸、心率等。
- 分析药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点。
四、实验结果1. 小白鼠给药后，体温、呼吸、心率等生理指标发生明显变化。
2. 药物在小白鼠体内的药效学及药代动力学特点如下：- 药物在小白鼠体内的吸收速度较快，药物浓度在短时间内达到峰值。
- 药物在小白鼠体内的分布广泛，主要集中在肝脏、肾脏等器官。
- 药物在小白鼠体内的代谢速度较快，药物浓度在短时间内降低。
- 药物在小白鼠体内的排泄速度较快，主要通过尿液排泄。
药理学小鼠实训报告结论
一、引言药理学作为一门研究药物与机体（包括病原体）之间相互作用的科学，对于药物的研发、临床应用以及药物不良反应的防治具有重要意义。
本实训课程通过小鼠模型，旨在让学生掌握药理学的基本实验技能，深入了解药物的作用机制、药效学及药代动力学等知识。
以下是对本次实训的总结与结论。
二、实训目的与内容1. 目的（1）掌握小鼠给药方法及给药途径；（2）熟悉药理学实验操作，提高实验技能；（3）了解药物的作用机制、药效学及药代动力学；（4）培养团队协作精神，提高科研能力。
2. 内容（1）小鼠给药方法及给药途径的实验；（2）药物作用机制的实验；（3）药效学实验；（4）药代动力学实验。
三、实训过程及结果1. 小鼠给药方法及给药途径实验本次实验中，我们学习了小鼠的给药方法及给药途径，包括灌胃、腹腔注射、皮下注射、静脉注射等。
通过实验，我们发现不同给药途径对药物的吸收、分布、代谢和排泄等过程产生不同的影响。
2. 药物作用机制实验本实验主要研究了药物对小鼠不同器官和组织的影响，通过观察药物对器官组织的病理形态学变化，了解药物的作用机制。
实验结果表明，药物在不同器官和组织中的分布及作用强度存在差异，可能与药物分子结构、作用靶点等因素有关。
3. 药效学实验药效学实验旨在研究药物对小鼠生理指标的影响，如体温、心率、血压等。
通过实验，我们发现不同药物对小鼠生理指标的影响存在差异，可能与药物的药理作用、剂量等因素有关。
4. 药代动力学实验药代动力学实验主要研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程。
通过实验，我们测定了药物的半衰期、生物利用度等参数，为药物的临床应用提供了理论依据。
四、结论1. 本实训课程使学生掌握了小鼠给药方法及给药途径，提高了实验操作技能；2. 通过药理学实验，加深了对药物作用机制、药效学及药代动力学等知识的理解；3. 实验结果表明，不同给药途径、药物剂量、药物分子结构等因素对药物在体内的作用产生显著影响；4. 本实训课程培养了学生的团队协作精神，提高了科研能力。
动物药理实训报告单模板
一、实训名称：动物药理实训二、实训时间：____年__月__日三、实训地点：____实验室四、实训指导教师：____五、实训学生姓名：____六、实训动物种类及数量：____种，共____只七、实训目的：1. 理解和掌握动物药理学的实验方法和基本技能。
2. 掌握常见药物的作用机制、药效和不良反应。
3. 培养学生的实验操作能力和观察能力。
4. 提高学生分析问题和解决问题的能力。
八、实训内容：1. 实验一：药物对心率的影响2. 实验二：药物对血压的影响3. 实验三：药物对平滑肌的影响4. 实验四：药物对神经系统的影响九、实训步骤：1. 实验一：药物对心率的影响（1）准备实验动物，观察其正常心率。
（2）给予实验动物一定量的药物，观察药物对心率的影响。
（3）记录实验数据，分析药物对心率的影响。
2. 实验二：药物对血压的影响（1）准备实验动物，观察其正常血压。
（2）给予实验动物一定量的药物，观察药物对血压的影响。
（3）记录实验数据，分析药物对血压的影响。
3. 实验三：药物对平滑肌的影响（1）准备实验动物，观察其正常平滑肌功能。
（2）给予实验动物一定量的药物，观察药物对平滑肌的影响。
（3）记录实验数据，分析药物对平滑肌的影响。
4. 实验四：药物对神经系统的影响（1）准备实验动物，观察其正常神经系统功能。
（2）给予实验动物一定量的药物，观察药物对神经系统的影响。
（3）记录实验数据，分析药物对神经系统的影响。
十、实验结果与分析：1. 实验一：药物对心率的影响实验结果显示，给予实验动物一定量的药物后，心率发生了明显变化。
分析原因可能是药物对心脏传导系统或心肌细胞的影响。
2. 实验二：药物对血压的影响实验结果显示，给予实验动物一定量的药物后，血压发生了明显变化。
分析原因可能是药物对血管平滑肌或肾上腺素能受体的作用。
3. 实验三：药物对平滑肌的影响实验结果显示，给予实验动物一定量的药物后，平滑肌功能发生了明显变化。
分析原因可能是药物对平滑肌细胞的直接作用或通过调节神经递质释放。
动物药学的实习报告
随着我国宠物经济的快速发展，动物医学和动物药学成为了热门专业。
为了更好地将理论知识与实践相结合，提高自身的专业技能，我于20XX年X月至20XX年X月在XX市XX宠物医院进行了为期一个月的动物药学实习。
本次实习旨在通过实际操作，加深对动物药理学、药物化学、药物分析等知识的理解，培养临床用药能力和实验室操作技能，为今后的工作打下坚实基础。
二、实习单位及环境实习单位为XX市XX宠物医院，位于市中心，交通便利。
医院占地面积约500平方米，设有内科、外科、眼科、口腔科、皮肤科、影像科等科室，是一家集宠物诊疗、美容、寄养为一体的综合性宠物医院。
医院设施齐全，拥有先进的诊疗设备，如数字化X光机、B超机、显微镜等。
三、实习内容及过程（一）临床药学实习1. 药物处方审查与审核：在带教老师的指导下，我学习了如何审查和审核宠物医生的处方，确保药物使用的合理性和安全性。
2. 药物配伍禁忌：了解了不同药物之间的配伍禁忌，如抗生素与抗凝血药、镇静剂与镇痛剂的联合应用等。
3. 药物不良反应监测：学习如何识别和报告宠物在使用药物后可能出现的不良反应。
4. 临床用药咨询：为宠物主人提供药物使用指导，解答他们关于药物方面的疑问。
（二）实验室药学实习1. 药物质量检测：在实验室学习如何进行药物质量检测，包括含量测定、纯度测定等。
2. 药物分析：掌握常用药物分析方法的原理和操作步骤，如高效液相色谱法、紫外-可见分光光度法等。
3. 药物制剂制备：学习药物制剂的制备方法，如片剂、胶囊剂、注射剂等。
4. 实验室安全管理：了解实验室安全管理知识，确保实验过程安全。
（一）专业技能提升通过本次实习，我对动物药学有了更深入的了解，掌握了临床药学、实验室药学等方面的知识和技能。
在带教老师的指导下，我学会了如何审查处方、识别药物不良反应、进行药物质量检测等，为今后的工作打下了坚实基础。
（二）综合素质提高在实习过程中，我学会了与宠物医生、护士、宠物主人等不同岗位的同事沟通协作，提高了自己的团队协作能力和沟通能力。
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动物药理实验实训指导书试行金华职业技术学院农业与生物工程学院二00九年十月前言药理学实验课是药理教学的一个重要组成部分，通过实验可使学生熟悉药理实验的基本操作方法，掌握药理实验的基本技能，验证药理学的基本理论，加强对理论知识的理解，体验科学研究的基本程序。
本实验指导选择的实验内容实用，做到既与理论课有密切联系，又有实验课的独特体系；既有整体动物（包括清醒动物和麻醉动物）实验，又有器官水平实验；既有验证性实验，又有设计性实验,还有综合性实验。
在实验课的全过程中培养与提高学生独立思考、独立操作以及科学严谨的工作作风和严密的工作方法，使学生初步具备对客观事物进行观察、比较、分析、综合和解决问题的能力，并验证、巩固和加深理解基本理论，从而初步掌握药理学实验的基本方法。
为了达到上述目的，要求同学们做到下列事项：1．预习仔细阅读所进行的实验内容，结合所学理论，认真领会实验目的和原理，熟悉操作方法与步骤，并对实验结果进行理论推测，做到心中有数，以便在实验结果不理想时能及时纠正操作上的错误。
2．清点药品器材实验操作前要对照实验讲义检查药品名称和浓度、器材的数量和性能，以防错拿错放。
3．正确操作包括调试仪器、动物手术、药量换算、给药方法等都应做到准确无误。
4．认真观察和记录实验时要仔细观察实验现象，如动物用药前后的反应差异、反应持续时间及转归，并如实记录在原始记录本上，不许随意涂改。
5．遵守实验室规则、注意作风培养要安全操作，防止触电、药物中毒、动物咬伤等事故。
必须保持实验室的整洁与安静。
实验结束后，要将所用器材擦洗干净，放回指定位置；检查仪器性能，填写使用单，如有损坏要报告带教老师。
实验死亡动物放于指定处，存活动物送回动物室或兽医院。
6．整理实验资料、书写实验报告药理实验资料可分为量反应资料(如血压、心率、平滑肌收缩幅度等)和质反应资料(如动物死亡与存活数)。
将实验资料加以整理，如设计表格进行比较分析或统计学处理(必要时，综合全实验室的实验资料)，按要求写出实验报告，交带教老师评阅。
实验报告内容；一般包括实验题目、目的、方法、结果、讨论和结论六个部分。
要求文字简练、书写工整、措辞应注意科学性和逻辑性。
目录实验一实验动物的捉持法和给药法???????????????????????4 实验二剂量对药物作用的影响?????????????????????????8 实验三药物的协同与拮抗作用?????????????????????????9 实验四常用消毒药的配制??????????????????????????10 实验五药物的刺激性和溶血性实验 ??????????????????????11 实验六链霉素对神经肌肉传导阻滞作用的观察 ?????????????????14 实验七应用管碟法测定抗菌药物的抑菌效果 ??????????????????15 实验八应用试管稀释法测定药物的最低抑菌浓度 ????????????????17 实验九防腐消毒药的杀菌效果观察??????????????????????18 实验十水合氯醛的全身麻醉作用???????????????????????19 实验十一硫喷妥钠的全身麻醉作用??????????????????????21 实验十二肾上腺素对普鲁卡因局部麻醉作用的影响 ???????????????21 实验十三氯丙嗪的镇静和降温作用 ??????????????????????22实验十四传出神经药对瞳孔的影响 ??????????????????????23 实验十五去甲肾上腺素的缩血管作用 ?????????????????????24 实验十六解热镇痛药对发热家兔体温的影响 ??????????????????25 实验十七泻药作用实验 ???????????????????????????27 实验十八药物对家兔离体肠平滑肌的影响 ???????????????????28 实验十九不同浓度枸椽酸钠对血液的作用 ???????????????????29 实验二十利尿药和脱水药的利尿作用观察 ???????????????????30 实验二十一有机磷中毒及解救 ????????????????????????31实验二十二药物的配伍禁忌 ?????????????????????????33 实验二十三药物的急性毒性测定???????????????????????34 实验二十四处方的开写方法 ?????????????????????????36 实训、实习??????????????????????????????????38 附录常用生理溶液的成分和配制成 ?????????????????????40 实验一实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。
迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图1）。
图1小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图2）。
图2 小鼠单手捉持法2. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。
先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。
注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。
3．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图3）。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图3 家兔捉持法4．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。
5. 猫应戴好防护手套。
轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。
性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。
6. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。
狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。
狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。
应将狗舌拉出口腔，以防窒息。
二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。
适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。
若为保证剂量准确，可应用灌胃法。
（1）灌胃法小鼠：左手捉持小鼠，腹部朝上，右手持灌胃管经口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再沿上颚壁缓慢插入食管，稍感有阻力时(灌胃管约插入1/2)，如动物安静，呼吸无异常，即可注入药液。
如遇阻力应抽出灌胃管重新插入，若药液误注气管，小鼠可立即死亡。
一次灌注药量0.1－0.3ml/10g体重。
操作宜轻柔，防止损伤食管（图4）。
灌胃管可用粗大的注射针头制作，磨钝针尖制成，管长4-5cm，直径1mm，连接于1-2ml注射器上即成。
图4 小鼠灌胃法大鼠：左手捉持大鼠，右手持灌胃器，灌胃方法与小鼠相同。
若两人合作时，可由助手协助固定后肢与尾巴。
但灌胃管必须长6－8cm，直径1.2mm，尖端呈球状，并安装在5－10ml 的注射器上。
注药前应回抽注射器，证明未插入气管（无空气逆流）方可注入药液。
一次投药量1—2ml／100g体重。
家兔：需两人合作，一人坐好将兔躯体夹于两腿之间，左手紧握双耳固定头部，右手抓住两前肢固定前身，使兔头稍向后仰；另一人将木或竹制开口器横放于兔口中，将兔舌压住，以8号导尿管经开口器中央小孔，沿上颚壁慢慢插入食管15－18cm。
为避免误入气管，可将导尿管外口端放入清水杯中，无气泡逸出方可注入药液，并应再注入少量清水以保证管内药液全部进入胃内。
灌毕，慢慢拔出导尿管取出开口器（图5）。
图5 家兔灌胃法豚鼠：如用灌胃器，灌胃法与大鼠相同。
如用开口器和导尿管，方法与兔灌胃法相同。
猫和狗：灌胃方法与兔相似，将导尿管从鼻腔或口腔经食管插入胃内给药。
操作时应防止动物咬伤与抓伤。
（2）口服法篇二：药理学报告实习目的实习内容青岛农业大学动物医院成立于1993年，有非常雄厚的师资力量，所有的医生都有非常专业的技术和丰富的经验，对于我们实习的学生提出的问题也是有问必答，毫不吝啬。
青岛农业大学动物医院分为手术区、配药区、接待区、药房、冷冻区和休息室，拥有良好的设备，从而可以进行多项专业的检查。
所以，慕名前来治疗的病畜更是数不胜数。
同时，我在实习的这段时间里，学到了非常有意思的知识。
在这里，我主要通过一些病例的用药来阐述一些药理学知识。
6、7、8月份是水貂病的高发期，包括病毒性肠炎以及腹泻病，这里我主要阐述一下关于貂和犬腹泻病的种类以及治疗方案。
腹泻病分为季节性腹泻（秋痢）、病毒性腹泻和细菌性腹泻。
我主要讲的是病毒性腹泻。
病毒性腹泻引起病毒性腹泻的疾病主要有两种：细小病毒（cpv）和犬瘟热（cdv）。
对于貂和犬来说，这两种病毒性疾病都是致命的。
平度的王女士家养的水貂，有1000只，先后死了200只，死亡前的症状都是厌食、有呕吐现象和排黑便。
医生将带来的几只死亡的水貂进行了解剖，发现肠系膜严重充血，淋巴结也有出血且水肿，随后取了肠道内的粪便进行细小检测。
而细小病毒的症状为：短时间厌食、软便间或体温升高后，迅速发展为呕吐和腹泻，排恶臭酱油或番茄汁样血便，迅速出现脱水症状直至休克。
病理变化是：眼球下陷，腹部蜷缩，血液粘稠呈暗紫色；肠系膜血管呈树枝状充血；淋巴结出血水肿，切面呈大理石样；小肠粘膜出血坏死；甚至脱落；胸腺萎缩水肿；肝脾有淤血。
确认为细小病毒后，医生给出了以下治疗方案：1、剩下的正常水貂与出现症状的水貂进行隔离，并打疫苗。
2、使用清瘟败毒散抗病毒，氨苄西林防继发感染。
另外，在对患有细小病毒犬的治疗方法为（均参考病犬体重）：皮下注射：血清止吐宁硫酸庆大-小诺霉素等，视病犬程度而定。
静脉注射：生理盐水注入氨苄加地塞米松葡萄糖加vb1、vb6、溴米那普鲁卡因、止血敏、庆大葡萄糖加cpv卵抗葡萄糖加奥美拉唑葡萄糖加清开灵第二种就是厉害的杀手犬瘟热。
但是在动物医院里就诊的犬来说也较高发，也是部分水貂的死亡原因。
文登的翟大哥家有2000多只水貂，但是最近却突然有很多水貂死亡，据大哥描述水貂死前的症状是精神沉郁不爱吃食，鼻头干燥，有眼屎，排稀便。
医生也对主人带来的死貂采血，采取眼屎或气管内分泌物进行犬瘟检测，检测结果为阳性。
犬瘟热的症状有：以支气管肺炎和上呼吸道炎症为主的病畜：鼻镜干裂，排出脓性鼻液，眼分泌大量脓性分泌物，角膜发生溃疡甚至穿孔。