质粒提取原理和方法
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质粒DNA提取的原理及方法
碱裂解法质粒DNA提取原理
质粒DNA提取主要包括以下几个方面:如何将细胞裂解释放质粒DNA,如何将质粒DNA和基因组DNA分离开来,如何去除RNA污染,如何去除蛋白质和其它杂质。
质粒提取方法中,最常用的方法是碱裂解法,它具有得率高,适用面广,快速,纯度高等特点。其原理是:
强碱性条件下,质粒DNA和基因组DNA同时从细胞中释放出来,并发生变性。在pH中性,并有高盐浓度存在的条件下,质粒DNA会迅速发生复性,仍为可溶性状态,染色体DNA之间交联形成不溶性网状结构,在去垢剂SDS作用下,染色体DNA与变性蛋白质和细胞碎片结合形成沉淀,通过离心去除沉淀后,再用酚氯仿抽提进一步纯化质粒DNA,用异丙醇或乙醇沉淀可将之纯化出来。
BIOMIGA公司质粒DNA纯化系列试剂盒,采用碱裂解法质粒提取原理,在高盐环境下,采用硅胶膜特异性的吸附质粒DNA,而蛋白质不被吸附,最后用低盐洗脱液将DNA从膜上洗脱下来,方法简单,快速,质量好,收获量高。
影响质粒提取的因素
影响质粒提取的因素有很多种,如质粒拷贝数,宿主菌株的种类,细菌的培养时间、培养基种类、培养条件等等。
质粒拷贝数
质粒DNA最终收获量取决于质粒的拷贝数和质粒的大小。BIOMIGA 公司质粒DNA提取系列试剂盒,操作步骤适用于高拷贝数质粒的纯化,对于低拷贝质粒纯化提取,应加大起始菌液量的体积,并且相应地增加各种缓冲液的用量。
下表给出一些常用质粒载体的拷贝数:
质粒种类
复制起点
拷贝数
1 mL菌液质粒DNA收获量(µg)
pSC101
pSC101
5
pACYC
P15A
10-12
pSuperCos
pMB1
10-20
pBR322
pMB1
15-20
pGEMR
Muted pMB1
300-400
6-7
pBluescriptR
ColE1
300-500
6-8
pUC
Muted pMB1
500-700
8-12
宿主菌株
宿主菌株的种类将会影响质粒的收获量。含内源核酸酶的宿主菌株,如JM101, JM110, HB101, TG1以及它们的衍生菌株,通常因为内源核酸酶的存在,或者在提取过程中释放出来的核酸酶的作用下,将会显著影响最终收获量,或者纯化到的质粒容易降解,推荐客户将质粒转化至不含内源核酸酶的宿主菌株中,如Top10, DH5a进行质粒纯化。
如果从含内源核酸酶的宿主菌株中纯化质粒DNA,请用试剂盒附送的核酸酶去除溶液,去除核酸酶的污染。或选用HP系列试剂盒进行质粒的纯化。
下表给出一些常用的宿主菌株种类:
EndA- Strains of E. Coli
DH5α
DH1
DH21
JM106
JM109
SK2267
SRB
XLO
TOP10
DH10B
JM103
JM107
SK1590
MM294
Stbl2™
XL1-Blue
BJ5182
DH20
JM105
JM108
SK1592
Select96™
Stbl4™
XL10-Gold
EndA+ Strains of E. Coli C600
JM110
RR1
ABLE® C
CJ236
KW251
P2392
BL21(DE3)
HB101
TG1
TB1
ABLE® K
DH12S™
LE392
PR700
BL21(DE3) pLysS
JM101
JM83
TKB1
HMS174
ES1301
M1061
Q358
BMH 71-18
All NM strains
All Y strains
菌液培养
BIOMIGA 公司质粒DNA提取系列试剂盒,标准操作适用于在LB培养基中培养12~16小时,OD600在~的菌液质粒DNA的提取。如果使用丰富培养基,如TB,2 x YT培养基,请保证OD600不超过。菌液过量,将会影响最终的收获量和纯度。
培养方式
如果用于质粒小提,请从固体培养基平板上挑取新鲜单菌落,接种到加入筛选抗生素的培养基中,震荡培养12~16小时。
如果用于中提、大提或超大提,请按照以下方式制备菌液:
挑取单克隆,接种到1~5mL培养基中,进行初摇,然后按照1:1000的比例进行放大培养,培养瓶中培养基的体积最好不要超过培养瓶的1/4体积。
抗生素浓度的选择
对含有抗性的质粒载体,在进行筛选或培养时应加入相应的抗生素。
各种抗生素的工作浓度请参照下表:
抗生素
溶解性
保存条件
严紧型质粒
松弛型质粒
氨苄青霉素
50 mg/mL(溶于水)
-20℃
20 µg/mL
60 µg/mL
羧苄青霉素
50 mg/mL溶于水
-20℃
20 µg/mL
60 µg/mL
氯霉素
34 mg/mL溶于无水乙醇
-20℃
25 µg/mL
170 µg/mL