试验6植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定原理一
植物蒸腾强度实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物蒸腾作用的基本原理和过程。
2. 探讨影响植物蒸腾强度的因素。
3. 通过实验测定植物叶片的蒸腾强度，并分析其与外界环境条件的关系。
二、实验原理蒸腾作用是植物通过气孔将水分以水蒸气的形式散发到大气中的过程。
它是植物水分循环的重要组成部分，对植物的生长发育、水分吸收和运输等生理过程具有重要作用。
蒸腾强度是指单位时间内单位面积的蒸腾量，通常用毫升/平方米/小时表示。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：生长健康的山茶树叶片、透明塑料袋、天平、剪刀、尺子、温度计、湿度计、风速计、CO2浓度计等。
2. 实验仪器：显微镜、载玻片、盖玻片、单面刀片、尖头镊子、小培养皿、lmol/L硝酸钾溶液、lmol/L氯化钙溶液、1mol/L蔗糖溶液等。
四、实验步骤1. 选取生长健康的山茶树，选择树冠中部成熟叶片作为实验材料。
2. 将叶片剪成一定面积的圆形，并用天平称量其初始重量。
3. 将叶片放入透明塑料袋中，密封并置于实验室内。
4. 分别在不同温度、湿度、风速和CO2浓度条件下，放置一定时间后，取出叶片并称量其最终重量。
5. 计算蒸腾强度：蒸腾强度 = (最终重量 - 初始重量) / (实验时间× 叶片面积)。
6. 对实验数据进行统计分析，探讨影响植物蒸腾强度的因素。
五、实验结果与分析1. 温度对蒸腾强度的影响：随着温度的升高，植物蒸腾强度逐渐增加。
这是因为温度升高导致叶片气孔开启程度增大，水分蒸发速率加快。
2. 湿度对蒸腾强度的影响：湿度降低时，植物蒸腾强度增加。
这是因为低湿度条件下，叶片表面与大气之间的水分梯度增大，水分蒸发速率加快。
3. 风速对蒸腾强度的影响：微风有利于蒸腾，强风则抑制蒸腾。
这是因为微风可以加速叶片表面水分的蒸发，而强风则会带走叶片表面的热量，降低叶片温度，从而抑制蒸腾。
4. CO2浓度对蒸腾强度的影响：CO2浓度低时，植物蒸腾强度增加。
这是因为低CO2浓度条件下，植物气孔张开程度增大，水分蒸发速率加快。
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定实验目的1.了解植物光合作用和呼吸作用的基本原理；2.掌握测定植物光合速率和呼吸速率的方法；3.研究气孔导度和蒸腾速率对植物光合和呼吸的影响。
实验器材和试剂1.叶片割断测光变色；2.2%苯酚溶液；3.高锰酸钾溶液；4.高速搅拌器；5.快速气孔导度仪。
实验步骤1.测光变色法测定植物光合速率a.取一片健康的叶片，清洗干净并将其放入植物夹，放置在一定的光照下静置30分钟；b.取出叶片，剪去主脉，用尺寸吗测量剩下的叶片面积；c.在100毫升测试管中加入60毫升的2%苯酚溶液，并把叶片放入其中；d.启动计时器，并立即测定溶液的吸光度，每20秒测量一次，直至溶液的吸光度不再变化；e.计算吸光度的差值ΔA。
f.根据标准曲线得到ΔA对应的氧气释放量。
a.取一片健康的叶片，清洗干净并将其放入植物夹，放置在一定的光照下静置30分钟；b.取出叶片，剪去主脉，用尺寸吗测量剩下的叶片面积；c.用快速气孔导度仪测量叶片的气孔导度；d.用高速搅拌器将叶片搅拌至均质的状态；e.在一定比例下加入高锰酸钾溶液，并盖紧容器；f.监测高锰酸钾溶液颜色的变化，根据变化速率计算呼吸速率。
3.研究气孔导度对光合作用的影响a.分别测量三片不同大小的叶片的气孔导度；b.在充足的光照下测定叶片的光合速率；c.根据实验数据计算气孔导度和光合速率的相关性。
4.研究气孔导度对蒸腾作用的影响a.分别测量三片不同大小的叶片的气孔导度；b.在一定的湿度条件下测定叶片的蒸腾速率；c.根据实验数据计算气孔导度和蒸腾速率的相关性。
实验结果和讨论1.实验结果：根据实验数据计算出的光合速率和呼吸速率；2.实验讨论：分析气孔导度和蒸腾速率对光合和呼吸的影响。
总结通过本实验，我们深入了解了植物生理学中光合作用和呼吸作用的基本原理，并掌握了测定植物光合速率和呼吸速率的方法。
我们还研究了气孔导度和蒸腾速率对植物光合和呼吸的影响。
植物蒸腾速率的测定实验报告
植物蒸腾速率的测定实验报告植物水势的测定实验报告实验报告课程名称：植物生理学实验指导老师：成绩：__________________实验名称：植物水势的测定实验类型：同组学生姓名：一、实验目的和要求二、实验内容和原理三、主要仪器设备四、操作方法和实验步骤五、实验数据记录和处理六、实验结果与分析七、讨论、心得一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M 一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定
植物生理学实验报告植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定实验目的：1.了解和掌握植物光合和呼吸作用的测定方法；2.研究植物气孔导度和蒸腾速率的测定方法；3.探究环境因素对植物生理作用的影响。
实验材料：1.实验植物：选取电子秤北方菜等植物样本；2.光合速率测定仪：包含一个光合速率测定仪、一个CO2传输系统和一个气体泵；3.呼吸速率测定仪：包含一个呼吸速率测定仪、一个气体泵和一个封闭室；4.气孔导度和蒸腾速率测定仪：包含一个气孔导度和蒸腾速率测定仪、一个液状样本蒸腾槽以及一套测量仪器。
实验步骤：一、光合速率测定1.准备植物叶片并置于光合速率测定仪中；2.打开CO2传输系统和气体泵，调整CO2浓度至实验要求；3.打开光合速率测定仪，开始测定光合速率；4.连续记录测定结果，并根据实验要求进行数据处理和分析。
二、呼吸速率测定1.准备植物叶片并置于呼吸速率测定仪中；2.打开气体泵并开始测定呼吸速率；3.连续记录测定结果，并根据实验要求进行数据处理和分析。
三、气孔导度和蒸腾速率测定1.准备液状样本蒸腾槽，并放入植物叶片样本；2.调节测定仪器，使其适应实验要求；3.开始测定气孔导度和蒸腾速率；4.连续记录测定结果，并根据实验要求进行数据处理和分析。
实验结果分析：根据实验数据，可以绘制出光合速率、呼吸速率、气孔导度和蒸腾速率随时间变化的曲线。
通过分析曲线的变化，可以得出以下结论：1.光合作用主要发生在光照明亮时，光合速率随着光照增强而增加，但达到一定光照强度后开始变缓；2.呼吸作用在白天和夜晚都会持续进行，但白天光合速率会超过呼吸速率，而夜晚呼吸速率会超过光合速率；3.气孔导度和蒸腾速率受光照强度、温度和湿度等环境因素的影响，在光照明亮、温度适宜、湿度适中的条件下，气孔导度和蒸腾速率会较高。
实验总结：通过本次实验，我们了解了植物光合和呼吸作用的测定方法，以及气孔导度和蒸腾速率的测定方法。
实验结果表明，光照强度、温度和湿度等环境因素对植物的生理作用有着显著影响。
观察植物蒸腾实验报告
一、实验目的1. 了解植物蒸腾作用的基本原理和过程。
2. 观察植物蒸腾作用的现象，分析影响蒸腾作用的因素。
3. 掌握实验操作方法，提高实验技能。
二、实验原理蒸腾作用是指植物体内的水分通过叶片气孔以水蒸气的形式散发到大气中的过程。
蒸腾作用是植物生命活动的重要组成部分，对植物的生长发育、水分吸收和运输以及环境调节等具有重要作用。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：柳树、玉米、小麦等植物叶片，透明塑料袋，酒精灯，剪刀，尺子，温度计等。
2. 实验仪器：显微镜，天平，干燥器，秒表等。
四、实验步骤1. 将不同植物的叶片分别剪成约1cm²的小块，用酒精灯烧去叶片表面的一层表皮，使气孔暴露出来。
2. 将处理好的叶片放入透明塑料袋中，密封袋口。
3. 将塑料袋分别放置在室内、阳光下、通风处等不同环境下，观察并记录叶片气孔的蒸腾现象。
4. 使用显微镜观察叶片气孔的开闭情况，分析不同环境对气孔蒸腾的影响。
5. 使用天平称量叶片在不同环境下的失水情况，分析蒸腾速率的变化。
五、实验结果与分析1. 观察到在阳光下，植物叶片气孔张开，蒸腾作用明显；在室内和通风处，气孔基本闭合，蒸腾作用较弱。
2. 通过显微镜观察，发现气孔在阳光下张开程度较大，室内和通风处张开程度较小。
3. 称量结果显示，在阳光下，植物叶片失水速率较快；在室内和通风处，失水速率较慢。
六、实验结论1. 植物蒸腾作用受光照强度、温度和通风条件等因素的影响。
2. 阳光下，植物叶片气孔张开，蒸腾作用明显；室内和通风处，气孔闭合，蒸腾作用较弱。
3. 植物蒸腾作用对植物生长发育、水分吸收和运输以及环境调节等具有重要作用。
七、实验讨论1. 实验过程中，如何控制实验变量，保证实验结果的准确性？2. 蒸腾作用对植物的生长发育有哪些具体影响？3. 如何提高植物蒸腾作用的效率？八、实验反思本次实验观察了植物蒸腾作用的现象，分析了影响蒸腾作用的因素。
在实验过程中，我们学会了如何操作显微镜、天平等实验仪器，提高了实验技能。
试验6植物光合和呼吸作用气孔导度和蒸腾速率的测定原理一
CO2R——参比室CO2（μl.L-1） H2OR——参比室水含量
H2OS——叶室水含量
RH_R——参比室相对湿度（%） RH_S——叶室相对湿度（%） Flow——流量（ml/s） PARi——叶室内光强（μmol.m-2s-1）
PARo——叶室外光强（μmol.m-2s-1） Press——大气压（Mpa） CsMch ——CO2S匹配 HsMch——H2OS匹配
图2 氧电极装置示意图
1、光源 2、反应杯 3、电极 4、超级恒温水浴 8、记录仪
5、触点式温度计
6、泵
7、控制器
1.氧电极
氧电极是由嵌在有 机玻璃上的铂和银所构 成，以0.5mol/L KCl为 电解质，电极头外覆盖 一层聚乙烯或聚四氟乙 烯薄膜，其厚度在15～ 25μm之间，用“〇”形套 膜环固定，使电极与被 测溶液隔离，而溶解在 溶液中的氧仍能透过薄 膜，进入电极内。较薄 的膜易透过氧，因而对 氧浓度变化的响应时间 短。
Is the chamber/IRGA connected?
4、已连接，按“Y”，CO2分析仪有“噗……” 声，仪器进入开机状态。没有连接，按 “NO”。关机或在“Sleep”状态下再连接。 5、校正。把碱石灰管和干燥剂管旋至 “Scrub”,按F3（Calibration），关闭叶室， 选择‘IRGA zero’, 按<enter>,“Y”。校正到 |CO2|< μmol, |H2O|<0.1 mmol, (约20 分)，（CO2,每天应较正，H2O可以1周一 次）。按F5(Quit)和escape返回测定界面。
六、本次实验测定内容： 1 、每组测一叶（ 3-5 次）光合速率 , 气孔导度和 蒸腾速率。计算水分利用效率。
植物的生理生化研究实验
准备实验材料，设置呼吸作用抑制剂处理组和对照组，观察并记录 植物的生长情况。
数据分析
对比处理组和对照组的植物生长数据，分析呼吸作用对植物生长的 影响及机制。
05
植物矿质营养与代谢实验
测定植物体内矿质元素含量
原子吸收光谱法
利用原子吸收光谱仪测定植物样品中矿质元素的含量，该方法具有灵敏度高、选 择性好、精密度高等优点。
应用价值
实验结果可为农业生产、生态环境保护等领域提供科学依据和技术支持。例如，通过了解植物对不同环境条件的 适应机制，可以指导农业生产中合理施肥、灌溉等措施的制定；同时，对于植物抗逆性、抗病性等方面的研究也 可为植物育种和病虫害防治提供新的思路和方法。
提出进一步研究的设想和建议
深入研究特定基因或蛋白质的功能
质壁分离观察
利用显微镜观察质壁分离后的细胞形 态，了解细胞壁的弹性和原生质体的 收缩情况。
分析水分在植物体内的运输途径
长距离运输
通过测定植物不同部位的水势和含水量，分析水分在植物体内的长距离运输途 径和机制。
短距离运输
利用显微技术观察植物细胞间的水分移动，了解水分在细胞间的短距离运输方 式和过程。
信号传导机制探讨
深入研究激素与受体结合后的信号传导过程，揭示激素调控植物生长发 育的分子机制。
03
激素互作分析
研究不同激素间的相互作用关系，探讨它们在植物生长发育中的协同或
拮抗作用。
07
实验结果分析与讨论
对实验数据进行统计分析
数据收集与整理
详细记录实验过程中的各项数据，包括植物的生长情况、生理生 化指标等，并进行分类整理。
分析环境因素对光合作用的影响
实验原理
研究光照强度、温度、CO2浓度等环境因素对光 合作用的影响。
植物叶片光合蒸腾速率气孔导度与呼吸速率的测定
1P ： 小 区 号 ， 用 户 输 入 ； 按
设置菜单3
1 P:01 R:01 FREE RECORDS nnn
“1”键可改变，输入范围01-89 R：记录号，如改变小区号， 记录号重新设置为01；
按“Y”键仪器进入预热状态， 屏幕显示:
FREE RECORDS 器剩余存储数量。
F
光 源
气 室
滤检
光测
整
片器
流
显 示 屏
放
大
2. 气路系统工作原理
IRGA只能进行CO2浓度和水蒸气浓度的测定， 不能直接测定植物叶片的光合参数。要测定光合参 数必须与同化室组成一定的气路系统。
常用的气路系统主要有：
（1）密闭式气路系统 （2）开放式气路系统
（1）密闭式气路系统
公式：Pn=△C/△t×V/S
SET PLC：选择叶室 1:BROAD：标准叶室 2:UNIVERSAL：通用型叶室
设置菜单1 设置菜单2
1 REC: M 2 INT: 0 FLO:300
1REC： 记 录 类 型 ；A 自 动 记 录 ; M手动记录。按“1”键在A和M间 转换。按“1”键选择M。 2INT：自动记录时间间隔；M记
nnn：存储
WARM UP DELAY TPS TEMP.= 40
完显成示预“热测后定(菜55单)，”C+:/参-nn比nC分O析2浓气度与，参单比位气pCpOm2;浓度差;
Q:光量子通量密度，单位μmol·m-2·s-1
C nnnn +/-nnn Q nnnn H:参比水蒸气压，单位毫巴(0.0~75.0)
低氧气体（2～3％O2，360ppmCO2） 与正常空气（21％O2，360ppmCO2） 6.控制温度下光合速率的测定
实验六 蒸腾速率的测定
实验六 植物蒸腾速率的测定
五、实验结果
记录分析观察到的现象和原因。 记录分析观察到的现象和原因。
六、注意事项
从美兰溶液中取出的根系， 从美兰溶液中取出的根系，一定要用水冲洗至 不掉色为止。 不掉色为止。
一、实验目的
掌握用离体快速称重法测定植物蒸腾速率的原 理及方法。 理及方法。
二、原理
植物蒸腾失水，其重量减轻， 植物蒸腾失水，其重量减轻，因此可用称重法 测定植物叶片在一定时间内一定叶面积所失水 量，从而求出蒸腾速率。 从而求出蒸腾速率。
三、实验材料
天竺葵带枝植物叶片
四、仪器设备
电子分析天平；剪刀；硫酸纸。 电子分析天平；剪刀；硫酸纸。
五、实验步骤
刻度1 水
2h
刻度2
10cm×10cm=1dm2
纸重mg 纸重
叶纸重mg 叶纸重
六、实验结果
叶面积（dm2）= 叶面积（
纸叶片重（ ） 纸叶片重（mg） 1dm2 纸片重（mg） 纸片重（ ）
蒸腾水量（ ） 蒸腾水量（g） 叶面积（ 叶面积（dm2） × t（h） （ ）
蒸腾速率（ 蒸腾速率（gH20·dm-2·h-1）=
二、实验材料
绿豆芽
三、设备和药品
天平，小烧杯，量筒 天平，小烧杯， 美兰溶液，氯化铵 美兰溶液，
四、实验步骤
1、取小麦根幼苗和绿豆芽胚根浸入美兰溶液中，2~3 、取小麦根幼苗和绿豆芽胚根浸入美兰溶液中， 分钟后，取出用水洗净。 分钟后，取出用水洗净。 2、另取烧杯两个，分别加入等量氯化铵和水，然后 、另取烧杯两个，分别加入等量氯化铵和水， 将根系分别浸入两个烧杯的溶液和水中， 分钟后取 将根系分别浸入两个烧杯的溶液和水中，5分钟后取 出。 3、观察氯化铵和水溶液的颜色，再观察不同处理根 、观察氯化铵和水溶液的颜色， 系的颜色。 系的颜色。
光合速率的测定实验报告
0.28 359.80 0.06 0.00 0.00
μ mol/(m s) ppm mmol/(m2s) mmol/(m2s) ppm CO2out= 359.10 ppm
2
1.61 359.10 0.00 0.00 0.00
μ mol/(m s) ppm mmol/(m s) mmol/(m2s) ppm
2
2
CO2out=
358.30
ppm
0.24 358.20 mmol/(m2s) mmol/(m2s) ppm CO2out= 357.60 ppm
2
E= CI= CO2int= 第五组数据 Pn= CO2in= E= CI= CO2int= 第六组数据 Pn= CO2in= E= CI= CO2int=
光合 速 率的 测 定
前言： 【意义】光合作用是作物有机物形成的最主要来源，没有光合作用，作物难以维持生长。 光合速率作为光合作用的一个重要指标，直接影响着作物的生长发育和产量形成，测量光合 速率对用了解作物的生长有着极其重要的意义。 【原理】Yaxin-1102 便携式光合蒸腾仪采用气 体交换法来测量植物光合作用， 通过测量流经叶室前后的 CO2 浓度的变化和湿度变化来计算 植物的净光合速率和蒸腾速率，并计算出气孔导度和胞间 CO2 浓度。 材料与方法： 材料：小麦叶片，Yaxin-1102 便携式光合蒸腾仪 方法：第一步，按下“电源”开关键，开机预热，用于使仪器与外界环境相适应，使仪器性 能更稳定。Yaxin-1102 便携式光合蒸腾仪的预热时间一般为 4 分钟作用。预热完毕，显示屏 显示主菜单（图 5） 。在此，可以开始选项，进行所要选择的工作。 预热完毕，显示屏显示主菜单（图 5） 。在此，可以开始选项，进行所要选择的工作。
5.4 光合作用的原理与应用 呼吸速率和光和速率的测定 【新教材】人教版(2019)高中生物必修一
模型-4.光合速率的测定
• 3.实验误差的校正
模型-4.光合速率的测定
2.黑白瓶法
瓶身
是否放入长势 良好的植物
放入适 宜水深
测定时间 测定项目
取值表示量
A 黑瓶
不放
相同
放入时测定 水中溶氧量为： 水中溶氧量 初始值
B 黑瓶
放入
相同
一段时间后测定 与初始值的差值 水中溶氧量 为：有氧呼吸量
光合速率测定Βιβλιοθήκη 模型-4.光合速率的测定• 真正光合速率=呼吸速率+净光合速率
模型-4.光合速率的测定
1.净光合速率的测定方法
(1)条件：整个装置必须在光下，光是植物进行 光合作用的条件。 (2)NaHCO3溶液作用：烧杯中的NaHCO3溶液保证 了容器内CO2浓度的恒定，满足了绿色植物光合 作用的需求。 (3)植物光合速率测定指标：植物光合作用释放 氧气，使容器内气体压强增大，毛细管内的有 色液滴右移。单位时间内有色液滴右移的体积
C 白瓶
放入
相同
与B瓶相同时间后 与初始值的差值 测定水中溶氧量 为：净光合量
例题-4
针对训练-2
即表示： 净光合速率。
模型-4.光合速率的测定
2.测定组织细胞呼吸速率
(1)细胞呼吸速率:常用单位时间CO2释放 量或O2吸收量来表示。
(2)原理：组织细胞呼吸作用吸收O2，释放 CO2，CO2被NaOH溶液吸收，使容器内气体压 强减小，刻度管内的有色液滴左移。单位时
间内液滴左移的体积即表示： 呼吸速率。
陆生植物光合速率与呼吸速率的实验测定常用方法
2022年高考生物总复习：陆生植物光合速率与呼吸速率的实验测定常用方法(1)装置中溶液的作用：在测细胞呼吸速率时NaOH溶液可吸收容器中的CO2；在测净光合速率时NaHCO3溶液可提供CO2，保证了容器内CO2浓度的恒定。
(2)测定原理①在黑暗条件下甲装置中的植物只进行细胞呼吸，由于NaOH溶液吸收了细胞呼吸产生的CO2，所以单位时间内红色液滴左移的距离表示植物的O2吸收速率，可代表呼吸速率。
②在光照条件下乙装置中的植物进行光合作用和细胞呼吸，由于NaHCO3溶液保证了容器内CO2浓度的恒定，所以单位时间内红色液滴右移的距离表示植物的O2释放速率，可代表净光合速率。
③真正光合速率＝净光合速率＋呼吸速率。
(3)测定方法①将植物(甲装置)置于黑暗中一定时间，记录红色液滴移动的距离，计算呼吸速率。
②将同一植物(乙装置)置于光下一定时间，记录红色液滴移动的距离，计算净光合速率。
③根据呼吸速率和净光合速率可计算得到真正光合速率。
(4)物理误差的校正：为防止气压、温度等物理因素所引起的误差，应设置对照实验，即用死亡的绿色植物分别进行上述实验，根据红色液滴的移动距离对原实验结果进行校正。
【典例2】细胞呼吸是生物非常重要的生命活动。
请回答：(1)如图表示人体细胞内有氧呼吸的过程，其中a～c表示相关过程，甲、乙表示相应物质。
①图中物质甲表示________，物质乙表示________。
②图中a、b、c所代表的过程中，产生能量最多的是________，该反应进行的场所是________。
③图中O2的作用是_________________________________________________。
(2)如图是探究酵母菌细胞呼吸方式的实验装置，在实验过程中酵母菌始终保持活性(忽略实验室的温度和大气压强对实验结果的影响)。
①据图填写上表内容。
②若仍然通过观察液滴的移动情况来确定酵母菌是否只进行有氧呼吸，应如何完善实验设计？______________________________________________________________________________________________________________________。
植物蒸腾的实验报告
一、实验目的1. 了解植物蒸腾作用的基本概念和原理。
2. 掌握测定植物蒸腾速率的方法。
3. 分析影响植物蒸腾作用的因素。
二、实验原理植物蒸腾作用是指水分从活的植物体表面（主要是叶片）以水蒸汽状态散失到大气中的过程。
蒸腾作用是植物水分循环的重要环节，对植物的生长发育具有重要意义。
实验中，通过测定植物叶片的蒸腾速率，可以了解植物蒸腾作用的强度和影响因素。
三、实验材料与方法1. 实验材料：选取生长状况良好的同种植物，分为实验组和对照组。
2. 实验仪器：电子天平、量筒、秒表、塑料薄膜、剪刀、尺子等。
3. 实验步骤：（1）将实验组和对照组的植物分别置于塑料薄膜上，用剪刀剪去叶片边缘，使叶片面积尽量一致。
（2）将实验组和对照组的植物分别置于塑料薄膜上，用尺子测量叶片面积。
（3）将实验组植物叶片用剪刀剪成小块，置于电子天平上称重。
（4）记录实验前后的时间，计算实验过程中植物叶片的失水速率。
（5）分别测定不同光照强度、不同温度、不同湿度条件下的植物蒸腾速率。
四、实验结果与分析1. 实验结果实验结果表明，植物蒸腾速率在不同光照强度、不同温度、不同湿度条件下存在显著差异。
（1）光照强度：随着光照强度的增加，植物蒸腾速率逐渐升高。
这是因为光照强度增加，植物光合作用增强，产生更多的水分，进而导致蒸腾速率加快。
（2）温度：在一定范围内，随着温度的升高，植物蒸腾速率逐渐升高。
这是因为温度升高，水分子的运动速度加快，水分蒸发速度加快，导致蒸腾速率增加。
（3）湿度：随着湿度的降低，植物蒸腾速率逐渐升高。
这是因为湿度降低，空气中的水汽压降低，植物蒸腾速率加快。
2. 分析（1）植物蒸腾作用是植物水分循环的重要环节，对植物的生长发育具有重要意义。
实验结果表明，光照强度、温度和湿度是影响植物蒸腾速率的主要因素。
（2）在农业生产中，可以通过调整光照、温度和湿度等环境条件，提高植物蒸腾速率，促进植物生长。
五、结论1. 植物蒸腾作用是植物水分循环的重要环节，对植物的生长发育具有重要意义。
植物光合速率实验报告
一、实验目的1. 了解植物光合速率的基本概念和测定方法。
2. 掌握改良半叶法测定植物叶片光合速率的原理和步骤。
3. 分析不同光照条件下植物光合速率的变化规律。
二、实验原理植物光合速率是指植物在单位时间内单位面积叶绿体所吸收的二氧化碳量或释放的氧气量。
改良半叶法是一种测定植物光合速率的经典方法，其原理如下：1. 将植物叶片沿主脉剪成两半，其中一半进行照光处理，另一半作为对照。
2. 将照光和对照叶片分别放入相同条件下培养，一段时间后，分别称量两叶片的干重。
3. 通过照光叶片干重的增量，计算植物的光合速率。
三、实验材料与方法1. 实验材料：水稻、小麦、玉米等植物叶片。
2. 实验仪器：电子天平、显微镜、光照培养箱、定时器等。
3. 实验步骤：（1）选取生长状态一致的水稻、小麦、玉米等植物叶片，沿主脉剪成两半。
（2）将其中一半叶片置于光照培养箱中，另一半作为对照。
（3）在相同条件下培养一定时间后，分别称量两叶片的干重。
（4）计算光合速率：光合速率 = 照光叶片干重增量 / 对照叶片干重增量。
四、实验结果与分析1. 不同植物叶片的光合速率实验结果显示，不同植物叶片的光合速率存在差异。
水稻叶片的光合速率最高，其次是小麦，玉米叶片的光合速率最低。
2. 不同光照条件下植物光合速率的变化规律在实验过程中，我们分别对光照强度为1000lx、2000lx、3000lx、4000lx和5000lx的条件下进行了测定。
结果表明，随着光照强度的增加，植物光合速率逐渐提高。
当光照强度达到4000lx时，光合速率达到最大值；继续增加光照强度，光合速率基本保持不变。
3. 不同植物叶片对光照强度的响应通过对比不同植物叶片的光合速率，我们发现水稻叶片对光照强度的响应最为敏感，小麦次之，玉米叶片对光照强度的响应相对较弱。
五、实验结论1. 改良半叶法是一种测定植物光合速率的有效方法。
2. 不同植物叶片的光合速率存在差异，其中水稻叶片的光合速率最高。
植物光合和呼吸作用、气孔导度和蒸腾速率的测定
植 2348 1999 1499 1001 600 300 99 50 30 11
0
物
光
强
玉 16.3 15.8 14.6 12.7 10.7 7.6 3.6 1.49 0.706 -0.136 -0.817 米
六、实验结果与分析 1、比较两种植物光光合响应曲线的差异，求出它们的光补偿点、饱和 点和量子效率，根据上述差异分两种植物光适应种类。
出气口CO2浓度差；S-叶片面积。
在开放式系统中，
气体流量是影响光合速率的重要因素，必须精确控制。流量的调节依据
是测定过程中的CO2浓度差，CO2浓度差以控制在5～25ppm的浓度范围内
较好。气体流量须根据被测叶片面积的大小及叶片的光合速率高低适当
调节。叶片面积大、光合作用强的，流速应适当大些，反之则应小些。
6CO2+6H2O
6(CH2O)+6O2
1 测干重——改良半叶法：同面积光暗叶片重量差。使用三氯乙酸 （TCA）涂抹在叶片叶柄处，阻断叶片在进行光合作用的时候向外
输出营养物质。测定的为总光合作用量。
2 测放O2 ——氧电极法。气相和液相。氧电极的原理：氧电极是由 嵌在有机玻璃上的铂和银所构成，以0.5mol/L KCl为电解质，电
分)。与电脑连接，解除SLEEP，进入F5(Utility Manu)选择File
exchange mode。打开电脑winPX for 6400,在LI-6400/User下把自
己要的测定文件拖入专设目录。在EXCEL下选择所有文件在文
本导向下，选择“，”打开。
注意事项： 1、所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口， 取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速，以免失水。 2、压力室法要严格密封，防止漏气。
植物生理生化实验原理和技术
植物生理生化实验原理和技术植物生理生化实验旨在研究植物生命过程中的生理和生化相关現象，改进对植物的了解及应用。
以下是实验原理和常用技术。
1. 光合作用测定：光合作用是植物生理的重要过程之一，可使用光合速率仪测量光合速率。
原理是通过测量植物叶片释放或吸收的氧气量，来间接测定光合速率。
2. 蒸腾作用测定：蒸腾作用是植物水分代谢的关键环节。
可利用蒸腾速率仪测量植物叶片释放的水蒸气量，从而确定植物的蒸腾速率。
3. 细胞呼吸测定：细胞呼吸是植物细胞产能的主要途径，可以通过测量释放的二氧化碳量来测定细胞呼吸速率。
常用的测定方法有测量呼吸速率的气体分析仪或密闭系统测定二氧化碳的累积。
4. 酶活性测定：酶是植物生物化学过程中的重要催化剂。
酶活性的测定可以通过测量糖类、蛋白质、核酸等底物的代谢速率，或通过测量底物与产物之间的光学、电化学变化来实现。
常用的方法有光谱法、酶促反应连续监测法等。
5. 色素提取：植物体内的色素对光合作用和其他生化过程至关重要。
常用的色素提取方法包括酒精提取、乙醚提取等。
提取后的色素溶液可以通过紫外-可见光谱仪进行定量测定。
6. 蛋白质测定：蛋白质是植物细胞内的重要有机物。
常用的蛋白质测定方法包括巴雷特试剂法、劳氏试剂法、比色试剂法等。
通过测定样品和标准溶液的吸收值，可以计算出蛋白质的含量。
7. 酶动力学测定：酶动力学是研究酶催化作用速度的科学。
可以通过测定底物浓度、酶浓度、反应时间等因素对酶活性的影响来研究酶的催化机理。
常用的测定方法有Michalis-Menten曲线法、双倒数法等。
8. 膜透性测定：膜透性是指物质穿过细胞膜的能力。
可以通过测定溶液中离子浓度的变化，来评估膜透性的改变。
常用的测定方法有电导率法、吸光度法等。
9. RNA/DNA提取和定量：RNA/DNA是植物遗传信息的主要表达形式。
可以使用相关试剂盒从植物样品中提取RNA/DNA，然后通过紫外-可见光谱仪或荧光定量仪测定其浓度。
净光合速率,气孔导度,胞间co2,蒸腾速率反映
净光合速率、气孔导度、胞间CO2浓度与蒸腾速率反映在植物生理生态学研究中，净光合速率、气孔导度、胞间CO2浓度和蒸腾速率是四个至关重要的参数。
这些参数共同构建了植物与环境之间复杂而微妙的交互关系，为我们理解植物的生长、发育以及对环境变化的响应提供了重要窗口。
一、净光合速率净光合速率（Pn）是植物叶片在单位时间、单位面积内同化CO2的量减去呼吸作用释放的CO2量，它直接反映了植物的光合作用能力。
光合作用是植物通过太阳能将水和二氧化碳转化为有机物的过程，是地球上生命存在的基石。
净光合速率的高低受到多种因素的影响，包括光照强度、温度、水分状况、CO2浓度以及植物自身的生理状态等。
在光照充足、温度适宜、水分和CO2供应充足的条件下，植物的净光合速率通常较高。
然而，当这些环境因子受到限制时，净光合速率就会下降。
例如，在高温或低温条件下，植物的酶活性可能会降低，从而导致净光合速率下降。
同样，水分亏缺也会导致气孔关闭，进而限制CO2的供应，降低净光合速率。
二、气孔导度气孔导度（Gs）是衡量植物叶片气孔开放程度的指标。
气孔是植物叶片表面的一对微小开口，它们通过调节开闭程度来控制植物体内外的气体交换和水分散失。
气孔导度的大小直接影响着植物的光合作用和蒸腾作用。
当气孔导度增大时，植物叶片对CO2的吸收增加，有利于光合作用的进行。
然而，同时也会导致植物体内的水分通过蒸腾作用更快地散失到环境中。
因此，植物需要在维持光合作用和减少水分散失之间找到一个平衡点。
这个平衡点通常受到环境因子的影响，如光照、温度、湿度和土壤水分等。
三、胞间CO2浓度胞间CO2浓度（Ci）是指植物叶片细胞间隙中的CO2浓度。
它反映了植物叶片对CO2的吸收和利用情况。
在光合作用过程中，植物叶片通过气孔吸收空气中的CO2，并将其转运到叶绿体中进行同化。
因此，胞间CO2浓度的高低直接影响着光合作用的进行。
当胞间CO2浓度较高时，说明植物叶片对CO2的吸收和利用效率较高，有利于光合作用的进行。
植物光合呼吸实验报告
一、实验目的1. 理解植物光合作用和呼吸作用的基本原理。
2. 掌握利用化学和物理方法测定植物光合作用和呼吸作用的技能。
3. 分析影响光合作用和呼吸作用的环境因素。
二、实验原理光合作用是植物通过叶绿体吸收光能，将水和二氧化碳转化为有机物（如葡萄糖）和氧气的过程。
呼吸作用则是植物将有机物氧化分解，产生能量、二氧化碳和水的过程。
两者在植物生命活动中相互依存，共同维持植物的生长和发育。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：水培植物（如水稻、水葫芦等）、澄清石灰水、碘酒、蒸馏水、剪刀、镊子、培养皿、密封袋、光照培养箱等。
2. 实验仪器：分析天平、秒表、气体分析仪、光电比色计等。
四、实验方法1. 光合作用实验：a. 将植物从培养箱中取出，用蒸馏水洗净叶片表面的泥土和杂质。
b. 用剪刀剪取一片新鲜叶片，将其放入培养皿中。
c. 用气体分析仪测定叶片的初始氧气浓度。
d. 将叶片置于光照培养箱中，设定适宜的光照强度和温度。
e. 定时测定叶片的氧气浓度，记录数据。
f. 计算光合速率。
2. 呼吸作用实验：a. 将植物从培养箱中取出，用蒸馏水洗净叶片表面的泥土和杂质。
b. 用剪刀剪取一片新鲜叶片，将其放入培养皿中。
c. 用气体分析仪测定叶片的初始二氧化碳浓度。
d. 将叶片置于光照培养箱中，设定适宜的光照强度和温度。
e. 定时测定叶片的二氧化碳浓度，记录数据。
f. 计算呼吸速率。
五、实验结果与分析1. 光合作用实验结果：a. 光照强度对光合速率的影响：在一定范围内，光合速率随光照强度的增加而增加；超过一定光照强度后，光合速率趋于稳定。
b. 温度对光合速率的影响：在一定范围内，光合速率随温度的升高而增加；超过一定温度后，光合速率开始下降。
2. 呼吸作用实验结果：a. 光照强度对呼吸速率的影响：光照强度对呼吸速率影响较小，呼吸速率随光照强度的增加而略有下降。
b. 温度对呼吸速率的影响：在一定范围内，呼吸速率随温度的升高而增加；超过一定温度后，呼吸速率开始下降。
测定光合速率实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解光合速率测定的原理和方法。
2. 掌握改良半叶法测定植物光合速率的操作步骤。
3. 分析不同光照强度和温度对植物光合速率的影响。
二、实验原理光合速率是指单位时间内植物叶片吸收二氧化碳的量或产生氧气的量。
根据光合作用的总反应式：6CO2 + 6H2O → C6H12O6 + 6O2光合速率可以用反应物消耗速度或生成物的产生速度来表示。
由于植物体内水分含量很高，且植物随时都在不断地吸水和失水，水参与的生化反应又特多，所以实际上不可能用水的含量变化来测定光合速率。
目前最常用的方法有改良半叶法、红外线CO2分析法和氧电极法。
本实验采用改良半叶法测定植物光合速率。
改良半叶法：同一叶片的中脉两侧，其内部结构、生理功能基本一致。
将叶片一侧遮光或一部分取下置于暗处，另一侧留在光下进行光合作用，过一定时间后，在这叶片两侧的对应部位取同等面积，分别烘干称重。
根据照光部分干重的增量便可计算光合速率。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：绿豆、淀粉碘液、酒精、液氮。
2. 实验设备：光照强度计、温度计、二氧化碳计、恒温水浴器、叶绿素荧光测定仪、液体氮保温饮水机。
3. 主要试剂：三氯乙酸、石蜡。
4. 主要设备：剪刀、分析天平、称量皿（或铝盒）、烘箱、刀片、金属（有机玻璃也可）模板。
四、实验步骤1. 将绿豆浸泡12小时，捞出洗净，播种于培养皿中，置于光照强度计、温度计、二氧化碳计等设备旁。
2. 待绿豆长出绿叶后，选取长势一致的叶片，用剪刀将叶片沿中脉剪成两半，其中一半遮光，另一半留光。
3. 将遮光和留光的叶片分别放入称量皿中，置于烘箱中烘干。
4. 烘干后的叶片用剪刀剪成小块，称重，计算干重增量。
5. 在不同光照强度和温度条件下重复实验，记录数据。
6. 分析实验结果，得出结论。
五、实验结果与分析1. 光照强度对光合速率的影响：在实验过程中，随着光照强度的增加，绿豆叶片的光合速率也随之增加。
这是因为光照强度直接影响光反应的进行，进而影响光合速率。
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入口
• 原理二：蒸腾速率和气孔导度测定 • 蒸腾产生水气，使叶室中湿度提高，安 装在叶室中的湿度感应器可测出湿度的 变化，经主机电脑计算出蒸腾速率，和 气孔导度（或阻力）。由于H2O和CO2之 间的扩散存在着线性关系，从而根据蒸 腾速率、气孔导度和外部CO2(Ca)浓度 等，求得内部CO2(Ci)浓度。
Is the chamber/IRGA connected?
4、已连接，按“Y”，CO2分析仪有“噗……” 声，仪器进入开机状态。没有连接，按 “NO”。关机或在“Sleep”状态下再连接。 5、校正。把碱石灰管和干燥剂管旋至 “Scrub”,按F3（Calibration），关闭叶室， 选择‘IRGA zero’, 按<enter>,“Y”。校正到 |CO2|< μmol, |H2O|<0.1 mmol, (约20 分)，（CO2,每天应较正，H2O可以1周一 次）。按F5(Quit)和escape返回测定界面。
实验5-6、植物光合和呼吸作用、气孔导度 和蒸腾速率的测定 原理一：光合测定 6CO2+6H2O
1、测干重——改良半叶法 2、测放O2 ——氧电极法 3、测CO2 ——红外线CO2分析仪法
(CH2O)6+6O2
1、测干重——改良半叶法：同面积光暗叶片重量差。
三氯乙酸 TCA
暗 中
2、测放O2 ——氧电极法。气相和液相
LI-6400控制系统接线侧
LI-6400控制系统干燥管和碱石灰管侧
LI-6400控制系统侧电缆连接
LI-6400控制系统侧气管连接
LI-6400分析器电缆连接
LI-640
二、开机与校正： 3、插上电池，打开电源开关后。 （仪器自动进行状态检测，并进入 Dir:/user/configs/Userprefs菜单）。在该菜 单下，选择一与叶室、光源相匹配的内容 （如“red blue source”表示用红兰光源不透 明底叶室） <enter>，仪器显示：
8、按F1“Open Logfile”，命名如“Zhan”及做 好标记<enter>。 9、调节叶面积，按3，按F1（Area）,输入面 积。按1返回。 10、采样。ΔCO2稳定时，按采样键（F1或 测定器黑钮）3-5次。即为同一叶片3-5次测 定值。
四、数据存取： 11、保存。采样完后按<escape>返回到主菜 单，按Close file,按F5，end进入SLEEP。（同 一班只需一个file，不同的组可以用<add mark>区分。 12、数据取出。与电脑连接，解除SLEEP， 上下选择到File exchange mode,打开电脑 winPX for 6400,在LI-6400/User下把自己要的 测定文件拖入专设目录。在EXCEL下选择所 有文件在文本导向下，选择“，”打开。
LI-6400操作指南(ver.5)
红兰光源叶室和CO2红外分析器
连接光源和控制器的地缆
LI-6400控制系统
一、仪器安装： 1、选择叶室。根据测定对象选择不同叶室进 行安装,本实验选用仪器自备的红兰光源（一 般测定选择红兰光源或自然光源不透明叶 室，荧光测定选择荧光叶室，详见说明书）。
2、连接仪器各部件 电源连线与控制器正确匹配（管道和线路 切不可接错）， 多孔插线和分析器对准 （红点）插入；硬塑料管带黑圈套的端与 分析器相接并使另一端与控制器“sample” 相接。接上带“buffer”的进气管，接上电源 （切记，除“Sleep”状态外，在电源开情况 下，不可接或卸管道和线路，否则会烧毁 仪器）。
图3氧电级的构造 1.Pt极 2.Ag-AgCl极 3.填充物 (环氧树脂) 4.电极柄 5.电极 头 6.薄膜 7.套膜环 8.KCl溶 液
3、红外线CO2分析仪法： CO2吸收4260nm红外线 封闭式：
单位时间内CO2下降量
叶室
分析器
叶室
开放式： 分析器 气体
出口 参比室和叶室CO2差值
CO2
六、本次实验测定内容： 1 、每组测一叶（ 3-5 次）光合速率 , 气孔导度和 蒸腾速率。计算水分利用效率。
光合速率 水分利用效率= （μ mol/mmol) 蒸腾速率
2、每大组测一条(植物：仙客来？)光-合曲线。 3、分析本次实验结果： （1）本次实验测定光合的光强是否符合该植物 光合要求？ （ 2 ）作出光 - 光合响应曲线图，确定呼吸率 ,确 定光补偿点、饱和点，计算量子效率。 （3）分析光对蒸腾速率和气孔导度的影响。
五、光强（ＣＯ ２ ）光合作用曲线测定（自动） 在 上 述 测 量 菜 单 下 按 ５ ， 按 F1 （AUTOPROG）,找Light curve(CO2 curve), 名 命 及 做 标 记 <enter>, 根 据 提 示 设 置 相 应 参 数 <enter>….Y, 开始自动测量。按四法提取数据。
从取出的数据可以获得下列值。
Ftime——持续时间(s) Photo——光合速率（μmol.m-2s-1） Cond——气孔导度（mol H2Om-2s-1） Ci——胞间CO2浓度（μl.L-1） Trmmol——蒸腾速率（mmol.m-2s-1） VpdL——水气压差（mg/L） Area——叶面积（cm2） BLCond——界面层导度 Tleaf——叶温（℃） StmRat——气孔比率 Tair——气温（℃） TBlk——参比室（℃） CO2S——叶室CO2（μl.L-1）
图2 氧电极装置示意图
1、光源 2、反应杯 3、电极 4、超级恒温水浴 8、记录仪
5、触点式温度计
6、泵
7、控制器
1.氧电极
氧电极是由嵌在有 机玻璃上的铂和银所构 成，以0.5mol/L KCl为 电解质，电极头外覆盖 一层聚乙烯或聚四氟乙 烯薄膜，其厚度在15～ 25μm之间，用“〇”形套 膜环固定，使电极与被 测溶液隔离，而溶解在 溶液中的氧仍能透过薄 膜，进入电极内。较薄 的膜易透过氧，因而对 氧浓度变化的响应时间 短。
三、测定及设置： 6、按F4（New MSMNTS）,按2，按F2 （FLOW）设置100-500能合适控制叶室内相 对湿度的值，<enter>，按F5（Lamp off）选 Quantum flux<enter><enter>, 根据植物类型 选择饱和光强（500-1500）， <enter>, 按1。 7、碱石灰管到“by pass”，夹好叶片，关紧 叶室，干燥剂管旋至控制到所要的RH（如 50%），立即按F5（Match） ，待仪器完成 计算后，按F1（exit）。