水中大肠杆菌的检测方法终审稿)
水中大肠杆菌的检测方法
水中大肠杆菌的检测方法一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在351 ℃、483小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group）；在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」表示100 mL水中存在之大肠杆菌群数目。
二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验。
三、干扰(一)水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
(二)检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、设备(一)量筒：100至1000 mL之量筒。
(二)吸管：有0、1刻度之10 mL灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管，或无菌微量吸管（micropipet）。
(三)试管：大小约15015 mm之试管或有盖螺旋试管。
(四)发酵管（fermentation tube）：大小约229 mm 之玻璃管。
(五)稀释瓶：容量约100 mL可灭菌之硼硅玻璃制品。
(六)锥形瓶：200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品。
(七)采样容器：容量120 mL以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
(八)冰箱：温度能保持在42℃者。
(九)天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至0、01 g；待测物重量不大于2 g时，须能精秤至0、001 g。
()培养箱：温度能保持在351℃者。
(一)高压灭菌釜：温度能维持在121℃（压力约15 lb/in2 或1、1 Kg/cm2）灭菌15分钟以上者。
(二)高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
(三)接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品。
(四)pH计：精确度达0、1 pH单位。
五、试剂(一)试剂水：蒸馏水或去离子水，导电度在25 ℃时小于2 μ mho / cm（μS / cm）。
学校生活用水中大肠杆菌的检验
…
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水样
大肠杆菌个数 平均大肠杆菌个数
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≯《 ｌ 大肠杆菌能在 伊红 ——美蓝培养基上生长， 其代谢产物
０ ０ （ ≯ 有机酸） 就与伊红和美蓝结合， 使菌落呈深红紫色， 并带有金
１
２ ３ ４ ５ ６ ７ ，
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０≤ 用火焰灼烧 自 ≥ 鬟 来水龙头三分钟，然后打开水龙头放水五 ０澎 分钟， 再用无菌的三角瓶接取 １ ０ ｌ ０ ｍ 水样， ０ 每个采水点各取
表 ２： 实验 结 果
五 、 论 讨
澄 水样３ 采样时间、 编号见 １ 份， 地点、 表 ： ０ 水样编号 采水点 时 间 ０ １ ３ ２ １ 号井 １ ｌ０ 日 月 ０
４５６ ２号井 自来 水 １ １０ 日 月 １ １０ 日 月
不同的水样所处环境不同 ， 水质也不同。
学校两 口水井均取 自浅层地下水 ， 附近均有污染 源。１ 但 号井水原来是全校师生长期 的饮用水 （ 开发时 ， 井水经检测符 合饮用水标准 ）位于校园东北边 ， ， 学校食 堂的锅炉房 ， 其污染 源是食 堂部分污水和煤渣水渗滤 ， 经地层 的过滤作用 ， 渗入井 水中的污水 已经很少 ， 故基本无污染。
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湖 南省汨 罗市桃林 中学 周 信
生活用水如果被含人 畜粪 便的污水 污染 ，就 可能引起肠 膜边缘 ， 使粗糙面 向上 ， 在漏斗上 ， 放 将水样倒入漏斗 中， 抽 边
≯ ≥ 道传染病， 溅 如细菌性痢疾等。 人们常用大肠杆菌作为判断自 来 滤 边 加 水 。
5.水中大肠杆菌的检测（多管发酵法）
5.水中大肠杆菌的检测（多管发酵法）第一篇：5.水中大肠杆菌的检测(多管发酵法)水中大肠杆菌群书的监测（发酵法）一、试验目的：1.了解和学习水中大肠杆菌的测定原理和测定意义。
2.学习和掌握水中大肠杆菌的监测方法。
二、试验原理：水的微生物学的检验，特别是大肠杆菌的检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。
国家饮用水的标准规定饮用水中大肠杆菌群书每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。
水中大肠杆菌的检验方法，常用多管发酵发和滤膜法。
多管发酵发可运用于各种水样的检验，但操作繁琐，需要时间长。
滤膜法仅用于自来水和深井水。
操作简洁快速，但不适用于杂质较多，易于阻塞滤孔的水样。
三、试验材料：1.培养基：乳糖蛋白胨培养基，伊红美蓝培养基2.器材：灭菌三角瓶、无菌平皿、无菌吸管、无菌试管等。
四、试验内容第一天：1.水样的采集自来水洗将自来水龙头用酒精灯火焰灼烧灭菌，在开放水龙头取水流5ｍｈ，以灭菌山角瓶接水取样以备分析。
2.用发酵法检查大肠杆菌（1）生活饮用水的检验①初步发酵试验：在2个各装有50ｍｈ的3倍乳糖蛋白胨培养液的三角瓶中，以无菌操作各自加水样10ｍｈ。
摇匀后，37℃培养24ｈ第二天：②平板分离：经24ｈ培养后。
特产酸产气及只产酸的发酵管，分别划线接种于伊红美蓝琼脂平板（EMD培养基上），37℃培养18～24ｈ。
大肠杆菌群在EMD平板上，菌落呈紫黑色，具有或略带或不带有金属光泽，或者呈淡紫红色，仅中心颜色较深，挑取符合上述特征的菌落进行涂片，革兰氏染色，镜检。
第三天：③复发酵试验：将革兰氏阴性无芽孢杆菌的菌落的剩余部分接于单倍乳糖发酵管中，为防止遗漏，每管可接种来自同一初发酵管的平板上同一类型菌群1～3个，37℃培养24ｈ，如果产酸又产气者，即证实有大肠菌群存在。
第四天：④报告：根据证实有大肠菌群存在的复发酵管的阳性管，查附录1或2，报告每升水样品中大肠菌群数（MPN）五、思考题记录试验结果，并对所测样品作出评价。
饮用水大肠杆菌检测方法
1、饮用水中大肠杆菌快速检测方法，其特征在于包括以下步骤：(1)水样中微生物的收集及其DNA的提取：采用灭菌后的滤膜或滤器过滤水样，在装有无菌水的EP管中，洗涤滤膜，离心，弃上清液，备用；(2)水样中微生物DNA的提取：A、向EP管中加入TE缓冲液，使之重悬；B、加入SDS和蛋白酶K，混匀，温育45min～1h；C、加入氯仿/异戊醇，混匀，离心，将上清液转入一个新EP管中；D、加入等体积的酚/氯仿/异戊醇，混匀，离心，将上清液转入一个新EP管中；E、加入异丙醇，轻轻混合直到DNA沉淀下来，离心；F、弃上清，沉淀物用乙醇洗涤，晾干；G、将沉淀重溶于TE缓冲液，摇匀；H、用紫外分光光度计测定提取的基因组DNA模板的0D 值，计算其DNA浓度，计算方法为：DNA浓度(μg/μL)＝OD值260nm×样品稀释倍数×50/1000 I、将基因组DNA模板做好标记，贮存，备用；(3)PCR扩增；反应引物：上游引物：5’-tgttcagtggcaagagtt-3’下游引物：5’-taatcgatatacccgctc-3’50μL反应体系：10×PCR缓冲液5μL Tag酶2U/μL1μL MgCl2(25mM)5μL dNTP(2.5MM)5μL ddH2029μL 上游引物10μM2μL 上游引物10μM2μL 模板DNA1.5μg/μL1μL (4)产物观察：A、凝胶的准备：先配置琼脂糖溶液，加热，使其充分溶解，再加入溴化乙锭溶液；B、配置TAE电泳液；C、倒胶：将配置好的琼脂糖溶液倒入胶板中，待其凝固后，放入电泳槽中；D、电泳：将扩增好的PCR产物与缓冲液按比例混合，加入到凝胶加样孔中，同时加入DNA分子量标准，接通电源，设定电压和电流，开始电泳。
E、观察；将扩增产物在紫外光下观察，拍摄图片。
实验八 水中大肠杆菌的测定
（三）多管发酵法检测大肠菌群
1.取5支装有3倍浓乳糖蛋白胨培养基的初发酵管，每支分别 加入水样10mL。另取5支装有乳糖蛋白胨培养基的初发酵 管，每支分别加入水样1mL。再取5支装有乳糖蛋白胨培养 基的初发酵管，每支分别加入按1：10稀释的水样1mL，均 贴好标签。摇匀后在37℃恒温箱中培养24h。
三、实验材料和用具
1、培养基 复红亚硫酸钠培养基、乳 糖蛋白胨半固体培养基、乳糖蛋白胨 培养液、3倍浓乳糖蛋白胨培养液、伊 红美兰培养基。
2、仪器及用具 微孔滤膜（0.45um）、 滤器（500mL）、抽气设备、镊子、 发酵用试管、杜氏小管、培养皿、刻 度吸管或移液管、接种环、酒精灯。
四、操作步骤
（一）水样的采集
1.自来水 将自来水龙头用火焰灼烧3min灭菌， 在拧开水龙头流水5min，以排除管道内积存的死 水，随后用已灭菌的三角瓶接取水样。
2.池水、河水、或湖水 将无菌的带玻璃塞的小口 瓶侵入距水面10~15cm深的水层中，瓶口朝上， 除去瓶塞，待水流入瓶中装满后，盖好瓶塞，取 出后立即进行检测，或临时存于冰箱，但不能超 过24h。
（二）滤膜法检测大肠菌群
1.无菌滤膜 无菌镊子 滤器膜承受器，过滤杯——滤膜承 受器，旋紧。真空泵——抽气口
2.水100mL滤杯，启动抽真空系统，使水从下端流出。 3.有细胞的滤膜 无菌镊子 平贴于复红亚硫酸钠固体培养
基上（紧贴，无气泡），37℃培养16~18h。挑选红色或紫 红色、带有或不带有金属光泽的菌落，或淡红色、中心颜 色较深的菌落进行涂片和革兰氏染色观察。 4.经染色证实为革兰氏阴性无芽孢杆菌者，接种到乳糖蛋白 胨半固体培养基上， 37℃培养6~8h后观察，产气者为阳 性（观察要及时，以免气泡消失） 5.结果计算
水中大肠杆菌的检测办法
附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法NIEA E201.54B 一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在35 ± 1 ℃、48 ± 3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group）；在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，二、三、(一)(二)四、(一)(二)(三)(四)(五)(六) 锥形瓶：200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品。
(七) 采样容器：容量120 mL以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
(八) 冰箱：温度能保持在4 ± 2℃者。
(九) 天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至0.01 g；待测物重量不大于2 g时，须能精秤至0.001 g。
(十) 培养箱：温度能保持在35 ± 1℃者。
(十一) 高压灭菌釜：温度能维持在121℃（压力约15 lb/in2或 1.1 Kg/cm2）灭菌15分钟以上者。
(十二) 高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
(十三) 接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品。
(十四) pH计：精确度达0.1 pH单位。
五、试剂(一) 试剂水：蒸馏水或去离子水，导电度在25 ℃时小于2 μ mho / cm（μS / cm）。
(二)5.0g2.75g2.75g配成2倍浓度（取71.2 g LST培养基粉末溶于1 L试剂水），完全溶解后，分取10 mL注入装有倒置发酵管之试管内，经121℃灭菌15分钟，冷却后备用，灭菌后培养基之pH值应在 6.8 ± 0.2。
灭菌后培养基若未当日使用，应保存在4 ± 2℃，保存期限为14天。
可根据检验需求量，依配方配制培养基。
２、煌绿乳糖胆汁培养基（Brilliant green lactose bile broth，简称BGLB）1公升的BGLB 培养基中含有下列成份：蛋白胨（Peptone）10.0g乳糖（Lactose）10.0g牛胆粉（Oxgall Powder）20.0g煌绿色试剂（Brilliant Green）0.0133g试剂水1L取40 g BGLB培养基粉末溶于1 L试剂水，完全溶解后，分取5至10 mL注入装有倒置发酵管之试管内，4 ± 2℃，(三)pH100 mL，灭3个月。
水中大肠杆菌的检测方法
附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法NIEA 一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在35 ±1 ℃、48 ± 3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group）；在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」表示 100 mL水中存在之大肠杆菌群数目。
二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验。
三、干扰(一) 水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
(二) 检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、设备(一) 量筒：100至1000 mL之量筒。
(二) 吸管：有刻度之10 mL灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管，或无菌微量吸管（micropipet）。
(三) 试管：大小约150 × 15 mm之试管或有盖螺旋试管。
(四) 发酵管（fermentation tube）：大小约22 × 9 mm之玻璃管。
(五) 稀释瓶：容量约100 mL可灭菌之硼硅玻璃制品。
(六) 锥形瓶：200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品。
(七) 采样容器：容量120 mL以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
(八) 冰箱：温度能保持在4 ± 2℃者。
(九) 天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至 g；待测物重量不大于2 g时，须能精秤至 g。
(十) 培养箱：温度能保持在35 ± 1℃者。
(十一) 高压灭菌釜：温度能维持在121℃（压力约15 lb/in2或 Kg/cm2）灭菌15分钟以上者。
(十二) 高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在 160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
(十三) 接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品。
水中大肠杆菌的检测实验报告
1. 掌握水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 了解水中大肠杆菌污染的严重性及预防措施。
3. 培养实验操作技能，提高对水质监测的认识。
二、实验原理大肠杆菌（Escherichia coli）是一种条件致病菌，广泛存在于人和动物的肠道中。
在水质监测中，大肠杆菌常作为粪便污染的指示菌。
本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌的检测，通过观察菌落特征，确定水中大肠杆菌的存在。
三、实验材料1. 实验器材：无菌试管、移液器、培养箱、酒精灯、无菌棉签、试管架、培养皿、显微镜等。
2. 实验试剂：伊红美蓝培养基、无菌水、水样、氯化钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠等。
四、实验步骤1. 水样采集：采集待检测水样，用无菌容器盛装，避免污染。
2. 水样稀释：将水样进行适当的稀释，以便在培养基上形成单菌落。
3. 接种：取适量稀释后的水样，用无菌棉签均匀涂布于伊红美蓝培养基表面。
4. 培养：将接种后的培养基放入培养箱中，在37℃条件下培养24小时。
5. 观察：观察培养基上的菌落特征，如菌落大小、形状、颜色等，判断是否存在大肠杆菌。
6. 鉴定：对疑似大肠杆菌的菌落进行进一步的鉴定，如革兰氏染色、生化试验等。
五、实验结果与分析1. 菌落观察：在伊红美蓝培养基上，大肠杆菌菌落呈深紫色（黑色），边缘整齐，有金属光泽。
2. 鉴定结果：经革兰氏染色和生化试验，证实所观察到的菌落为大肠杆菌。
1. 大肠杆菌是水质监测中的重要指标，其存在表明水质可能受到粪便污染，存在健康风险。
2. 本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌检测，操作简便，结果准确。
3. 在实际水质监测中，还需结合其他指标，如粪大肠菌群、耐热大肠菌群等，全面评估水质状况。
七、实验总结1. 本实验成功检测了水中大肠杆菌，掌握了水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。
2. 通过实验，提高了对水质监测的认识，增强了环保意识。
3. 在今后的学习和工作中，将继续关注水质问题，为保护水资源、保障人民群众健康贡献力量。
水的大肠菌群检测方法修订稿
水的大肠菌群检测方法 WEIHUA system office room 【WEIHUA 16H-WEIHUA WEIHUA8Q8-4．1 在2个装有50ml三倍浓缩乳糖胆盐培养液的大试管或烧杯内各加入水样100mL。
4．2 在10支装有5mL三倍浓缩乳糖胆盐培养液的试管里各加入水样10mL。
4．3 轻摇试管，使液体充分混匀，置36±1℃培养箱中，培养24h。
4．4 观察每管是否产气，如不产气则报告为大肠菌群阴性；若有气体产生则为推测性试验阳性，需做进一步的证实试验。
5 证实试验5．1 平板分离自推测性检验阳性管中取一接种环培养液，接种到伊红美蓝琼脂平板上，置36±1℃培养箱培养18～24h，观察菌落形态，典型的大肠菌群菌落为黑紫色或红紫色，具有金属光泽。
5．2 复发酵试验挑取可疑大肠菌群菌落1或2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，于36±1℃培养箱中，培养24h。
5．3 凡乳糖发酵管最终产酸产气，革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌，为大肠菌群阳性。
记下证实实验的阳性管数，查最大可能数（MPN）检索表得出1000mL水样中总大肠菌群的MPN值。
总大肠菌群（MPN）检索表二、大肠菌群膜法测定1 定义大肠菌群（coliform bacteria）为需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌，将带菌滤膜贴在含乳糖的选择性培养基上，经37℃培养24小时后，呈现深暗红色带金属光泽的菌落。
2 仪器2．1 滤器2．2 滤膜，孔径0．45μm。
直径根据滤器规格，目前常用的有35mm和27mm两种。
2．3 抽滤设备2．4 无齿镊子2．5 其它仪器见《GB/T ××××－××公共场所茶具微生物检验方法，大肠菌群测定》中第3章。
3 培养基3．1 品红亚硫酸钠培养基3．1．1 成分：蛋白胨 10g酵母浸膏 5g牛肉膏 5g乳糖 10g琼脂 10～20g磷酸氢二钾 3．5g无水亚硫酸钠 5g5％碱性品红乙醇溶液 20mL蒸馏水 1000mL3．1．2 储备培养基的制备将磷酸氢二钾、酵母浸膏、牛肉膏及蛋白胨加到含有900mL蒸馏水的烧杯中，溶解后调pH值到7．2～7．4，加入琼脂加热溶解，用蒸馏水补足至1000mL，趁热用脱脂棉或绒布过滤，再加入乳糖，混匀后定量分装于烧瓶内，115℃高压灭菌20min，置冷暗处备用。
水质大肠杆菌检测方法
水质大肠杆菌检测方法水质大肠杆菌是一种常见的水污染指标微生物，其存在可能导致水质污染，对人体健康造成威胁。
因此，对水质中的大肠杆菌进行有效检测是非常重要的。
本文将介绍一些常用的水质大肠杆菌检测方法，希望能对相关领域的研究人员和从业者有所帮助。
一、培养法。
培养法是目前常用的一种大肠杆菌检测方法。
其步骤主要包括取样、制备培养基、接种培养、培养箱培养、观察结果等。
首先，需要在水样中取样，并将其接种到含有大肠杆菌生长所需营养物质的培养基中。
然后，将接种好的培养基置于培养箱中进行培养，培养箱内的温度、湿度等条件需要根据大肠杆菌的生长特性进行调节。
最后，观察培养基上是否有大肠杆菌的生长，通过对菌落的形态、颜色等特征进行鉴定，从而判断水样中是否存在大肠杆菌。
二、PCR法。
PCR法是一种分子生物学技术，也被广泛应用于大肠杆菌的检测。
其原理是通过PCR扩增技术，将水样中的DNA扩增成百万倍，然后通过电泳等方法进行检测。
相比于传统的培养法，PCR法具有检测速度快、准确度高等优点。
但是，PCR法需要专业的实验室设备和技术支持，成本较高，因此在实际应用中需要权衡利弊。
三、免疫学方法。
免疫学方法是利用抗体与抗原特异性结合的原理，通过免疫学技术对大肠杆菌进行检测。
常见的免疫学方法包括酶联免疫吸附试验（ELISA）、免疫荧光法等。
这些方法具有检测速度快、灵敏度高等优点，但是需要专门的实验室设备和技术支持，成本较高。
四、生化方法。
生化方法是通过检测水样中大肠杆菌代谢产物的变化来进行检测。
常见的生化方法包括呼吸法、酶法等。
这些方法具有检测速度快、对大肠杆菌的特异性强等优点，但是在实际应用中需要注意误差的控制。
综上所述，针对水质中大肠杆菌的检测，目前存在多种方法可供选择。
在选择检测方法时，需要根据实际情况权衡各种方法的优缺点，选择最适合的方法进行检测。
同时，为了保证检测结果的准确性，需要严格按照相关标准和规范进行操作，并进行质控措施的监测和管理。
水中大肠杆菌的检测实验报告
水中大肠杆菌的检测实验报告水中大肠杆菌的检测实验报告一、引言水是人类生活中不可或缺的重要资源，然而，水中可能存在着各种微生物，其中包括一些对人体健康具有潜在威胁的病原菌。
大肠杆菌是一种常见的肠道细菌，其存在于水中可能意味着水源受到了污染。
因此，本实验旨在通过对水样中大肠杆菌的检测，评估水质的安全性。
二、实验方法1. 样品采集：在实验室中，我们选择了不同来源的水样进行采集，包括自来水、河水和湖水。
每个样品分别采集三个重复样品，以保证实验的可靠性。
2. 细菌培养基准备：我们使用了大肠杆菌培养基，并按照说明书的要求进行了制备。
3. 细菌培养：将采集到的水样分别接种到培养基中，然后在恒温箱中培养24小时。
4. 结果观察：观察培养皿中是否有大肠杆菌的生长，若有，则说明水样中存在大肠杆菌。
三、实验结果经过24小时的培养，我们观察到了以下结果：1. 自来水样品：在自来水样品中，没有观察到任何细菌的生长，说明自来水的水质符合卫生标准。
2. 河水样品：在河水样品中，我们观察到了一些培养皿中有大肠杆菌的生长，说明河水可能存在污染风险。
3. 湖水样品：在湖水样品中，几乎所有的培养皿中都观察到了大肠杆菌的生长，这表明湖水的水质存在严重污染。
四、讨论与分析1. 自来水的安全性：根据实验结果，我们可以得出结论，自来水的水质是安全的，不会存在大肠杆菌的污染。
这可能是因为自来水经过了严格的处理和消毒，以确保水质的安全性。
2. 河水的污染风险：由于河水样品中观察到了一些大肠杆菌的生长，说明该河水存在一定的污染风险。
可能是由于附近的人类活动或者其他因素导致了河水的污染，因此需要采取相应的措施来保护河水的水质。
3. 湖水的严重污染：湖水样品中观察到了大肠杆菌的大量生长，这表明湖水的水质存在严重的污染。
湖水是人们常用的水源之一，如果湖水受到污染，将对周围的环境和人们的健康造成严重影响。
因此，我们需要加强对湖水的保护和治理，以确保水质的安全性。
饮用水中大肠杆菌的检测方法
饮用水中大肠杆菌的检测方法(一)水样的采集供细菌学检验的水样，必须按一般无菌操作的基本要求采集，并保证再运送、贮存过程中不受污染。
水样从采集到检验不应超过4h，在0～4℃下保存不应超过24h ，如不能在4h 内分析，应在检验报告上注明保存时间和条件。
1、自来水取样：应在水龙头打开放水5min，再用无菌容器接取水样，待分析。
如水样内含有余氯，则采样瓶灭菌后按每500mL水样加3%Na2S2O3.5H2O溶液1mL。
2、江、河、湖、池自然水体取样：可用采样器，采样瓶应先灭菌。
采样后，瓶内应留有空隙。
如果与其他化验项目联合取样，细菌学分析水样应采在其他样品之前。
(二)初发酵试验1.水样稀释：制备水样10-1、10-2的稀释液，方法为用无菌移液管吸取水样10mL放于盛有90mL无菌水和若干玻璃珠的锥形瓶中，充分振荡使混合均匀，并使其中的细菌尽量呈单个存在，即为10-1稀释液;再从10-1制备10-2稀释液。
以此类推，稀释到所需倍数。
2.接种和培养：以无菌操作于5支三倍浓缩培养基(接种前一定应先检查杜汉氏小管内有无气泡)中各加入水样10mL，5支普通培养基试管中加入水样1mL，5支普通培养基试管中加入10-1稀释液1mL，小心混匀放入37℃培养箱中培养24h 。
此即5管法。
3.结果观察：37℃中培养24h后取出观察，观察有无气体(杜汉氏小管内有无气体)和酸产生(培养基有无变色)。
在48h之间，培养管内倒置的杜汉氏小管内有任何量的气体积累，或培养基颜色从紫色变为黄色，便可初步断定为阳性反应。
若所测定的15支管中均为阳性反应，说明浓水样污染严重，可将样品进一步稀释后，再按上述方法接种、培养和观察。
水质大肠杆菌检测方法
水质大肠杆菌检测方法水质大肠杆菌是一种常见的水污染指标微生物，其存在表明水体可能受到了粪便或污水的污染。
因此，对于饮用水、游泳水、工业用水等不同用途的水体，检测水质中大肠杆菌的含量具有重要意义。
本文将介绍几种常用的水质大肠杆菌检测方法，以供参考。
一、培养基法。
培养基法是一种常见的大肠杆菌检测方法，其基本原理是将水样在含有大肠杆菌生长所需营养物质的培养基上培养，然后观察培养基上是否有大肠杆菌的生长。
这种方法操作简单，成本较低，但需要一定的培养时间，通常需要24-48小时才能得到结果。
此外，培养基法对于大肠杆菌的特异性较差，可能会同时检测出其他肠道菌群。
二、膜过滤法。
膜过滤法是一种常用的水质微生物检测方法，其原理是将水样通过微孔膜过滤，然后将膜放置在含有营养物质的培养基上进行培养。
通过计数膜上的大肠杆菌落，可以得到水样中大肠杆菌的数量。
这种方法操作简便，结果准确，而且可以检测到低浓度的大肠杆菌。
但是，膜过滤法需要一定的实验室设备和技术支持。
三、分子生物学方法。
随着分子生物学技术的发展，PCR（聚合酶链式反应）和实时荧光定量PCR等分子生物学方法也被应用于水质大肠杆菌检测中。
这些方法具有高度的特异性和灵敏度，可以快速准确地检测出水样中的大肠杆菌。
此外，分子生物学方法还可以对大肠杆菌进行分子鉴定和基因分析，为进一步研究提供了有力的支持。
然而，分子生物学方法需要相对复杂的实验操作和昂贵的设备，对操作人员的技术要求也较高。
综上所述，针对水质大肠杆菌的检测，可以根据实际情况选择合适的方法。
培养基法操作简单，成本低，适合于一般的水质监测；膜过滤法准确性高，可以检测低浓度的大肠杆菌；而分子生物学方法则具有高度的特异性和灵敏度，适合于对水质中微生物的深入研究。
在实际应用中，可以根据需求和条件选择合适的检测方法，以保障水质安全和生态环境的健康。
水中大肠杆菌的检测方法
附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法NIEA 一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在35 ± 1 ℃、48 ± 3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group）；在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」表示100 mL水中存在之大肠杆菌群数目。
二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验。
三、干扰(一) 水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
(二) 检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、设备(一) 量筒：100至1000 mL之量筒。
(二) 吸管：有刻度之10 mL灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管，或无菌微量吸管（micropipet）。
(三) 试管：大小约150 × 15 mm之试管或有盖螺旋试管。
(四) 发酵管（fermentation tube）：大小约22 × 9 mm之玻璃管。
(五) 稀释瓶：容量约100 mL可灭菌之硼硅玻璃制品。
(六) 锥形瓶：200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品。
(七) 采样容器：容量120 mL以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
(八) 冰箱：温度能保持在4 ± 2℃者。
(九) 天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至g；待测物重量不大于2 g时，须能精秤至g。
(十) 培养箱：温度能保持在35 ± 1℃者。
(十一) 高压灭菌釜：温度能维持在121℃（压力约15 lb/in2或Kg/cm2）灭菌15分钟以上者。
(十二) 高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
(十三) 接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品。
水中大肠杆菌的检测方法
附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法NIEA E201.54B 一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在35 ±1 c、48 士3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group ）;在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」表示100 mL水中存在之大肠杆菌群数目。
二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验。
三、干扰（一）水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
（二）检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、设备（一）量筒：100至1000 mL之量筒。
（二）吸管：有0.1 刻度之10 mL 灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管，或无菌微量吸管（micropipet ）。
（三）试管：大小约150 x 15 mm之试管或有盖螺旋试管。
（四）发酵管（fermentation tube ）:大小约22 x 9 mm之玻璃管。
（五）稀释瓶：容量约100 mL 可灭菌之硼硅玻璃制品。
（六）锥形瓶：200 至2000 mL 之可灭菌硼硅玻璃制品。
（七）采样容器：容量120 mL 以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
（八）冰箱：温度能保持在 4 士 2 C者。
（九）天平：待测物重量大于 2 g 时，须能精秤至0.01 g ;待测物重量不大于2 g 时，须能精秤至0.001 g 。
（十）培养箱：温度能保持在35 士1 C者22（十^一）高压灭菌釜：温度能维持在121C（压力约15 lb/in 或1.1 Kg/cm ）灭菌15分钟以上者（十二）高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在者。
160C达2小时或170C达1小时以上（十三）接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品（十四）pH计：精确度达0.1 pH单位。
实验八 水中大肠杆菌的测定
三、实验材料和用具
1、培养基 复红亚硫酸钠培养基、乳 糖蛋白胨半固体培养基、乳糖蛋白胨 培养液、3倍浓乳糖蛋白胨培养液、伊 红美兰培养基。 2、仪器及用具 微孔滤膜（0.45um）、 滤器（500mL）、抽气设备、镊子、 发酵用试管、杜氏小管、培养皿、刻 度吸管或移液管、接种环、酒精灯。
四、操作步骤
（三）多管发酵法检测大肠菌群
1.取5支装有3倍浓乳糖蛋白胨培养基的初发酵管，每支分别 1.取 支装有3 加入水样10mL。另取5 加入水样10mL。另取5支装有乳糖蛋白胨培养基的初发酵 管，每支分别加入水样1mL。再取5 管，每支分别加入水样1mL。再取5支装有乳糖蛋白胨培养 基的初发酵管，每支分别加入按1 10稀释的水样1mL，均 基的初发酵管，每支分别加入按1：10稀释的水样1mL，均 贴好标签。摇匀后在37℃恒温箱中培养24h。 贴好标签。摇匀后在37℃恒温箱中培养24h。 2.取出培养后的发酵管，观察发酵液的颜色为黄色者记录为 2.取出培养后的发酵管，观察发酵液的颜色为黄色者记录为 产酸，杜氏小管内有气泡者记录为产气。将产酸产气和产 酸的两类发酵管分别划线接种于伊红美兰培养基上，在 37℃恒温箱中培养18~24h。挑选深紫黑色和紫黑色带有 37℃恒温箱中培养18~24h。挑选深紫黑色和紫黑色带有 或不带有金属光泽的菌落、或淡紫红色和中心色较深的距 离，将其一部分分别取样进行涂片和革兰氏染色观察
3.经镜检为革兰氏阴性无芽孢杆菌，者将它的另一 3.经镜检为革兰氏阴性无芽孢杆菌，者将它的另一 部分接种于装有倒置杜氏小管的乳糖蛋白胨培养 液的复发酵管中，每管接种菌落1~3个， 37℃ 液的复发酵管中，每管接种菌落1~3个， 37℃培 养24h，有产酸产气者为大肠菌群，记为阳性管。 24h，有产酸产气者为大肠菌群，记为阳性管。 4根据3个梯度（10mL、1mL、0.1mL）的5支中 根据3个梯度（10mL、1mL、0.1mL）的5 出现阳性管数，查表细菌最可能数，再乘以100 出现阳性管数，查表细菌最可能数，再乘以100 换算成1L水样中的大肠菌群数。 换算成1L水样中的大肠菌群数。
水中大肠杆菌的检测方法(最新知识点)
水中大肠杆菌的检测方法附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法ＮIEＡE２01．54B 一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌,且能在3５± 1 ℃、４8 ± 3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Colｉｆorm groｕｐ）;在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「1０0 mＬ水中最大可能数(MＰＮ/100 mＬ）」表示 1００ mL水中存在之大肠杆菌群数目....感谢聆听...二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验.三、ﻩ干扰（一）水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
（二)ﻩ检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、ﻩ设备(一) 量筒：100至1000 ｍL之量筒。
（二）吸管:有0.1刻度之10 ｍＬ灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管,或无菌微量吸管（ｍicropｉpet)。
(三）ﻩ试管:大小约１5０×１5 mm之试管或有盖螺旋试管.（四)ﻩ发酵管（feｒmenｔaｔiｏn tuｂe）：大小约２２×9 ｍm之玻璃管。
(五）稀释瓶：容量约１00 mL可灭菌之硼硅玻璃制品。
（六）锥形瓶:200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品. (七) 采样容器：容量１２0 mＬ以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
（八）ﻩ冰箱：温度能保持在4 ± 2℃者.(九）天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至0.０1 ｇ；待测物重量不大于2 ｇ时，须能精秤至０．０01 g。
（十) 培养箱：温度能保持在35 ±1℃者。
(十一）ﻩ高压灭菌釜:温度能维持在１２1℃（压力约15 l ｂ/in2或 1．1 Kｇ/cｍ２）灭菌１５分钟以上者。
（十二）高温干热烘箱:如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
如何检测水样中的大肠杆菌
如何检测水样中的大肠杆菌1、配稀释液（0.85%生理盐水——0.85g氯化钠+100ml水）和乳糖胆盐培养液（180ml）；2、取4只试管，每只中加入9ml稀释液并盖上塞子；3、另取4只试管，每只中放入一只小导管后加入10ml乳糖胆盐培养液，再盖上塞子；4、配品红琼脂225ml（加热煮沸至全溶），入45度水浴中；5、配乳糖发酵液180ml；6、平皿用牛皮纸包成筒（15个）、试管用金属篓子装起、移液管用专业长筒装上同上一起灭菌。
7、取出放入冰箱（只是品红琼脂立马倒15个平皿（15ml/个））；8、将2步中的4只试管放在试管架上，用灭菌吸管在第一只管中加1ml样品摇匀；另用一只灭菌吸管从第一管中取1ml加入第二管中摇匀，该吸管用后插入第一管；又用一只灭菌吸管从第二管中取1ml加入第三管中摇匀，该吸管用后插入第二管；再用一只灭菌吸管从第三管中取1ml加入第四管中摇匀。
若样品较脏，据情况可多做几个梯度。
9、初发酵：用1ml灭菌吸管吸各梯度的样1ml，分别接种在1管单料乳糖胆盐发酵管内，置44.5度培养箱中培养24h。
10、观察各管产酸（紫变黄）产气（小导管中）情况，从最右端产酸产气的一管开始往左取连续的四管进行分别涂板。
11、涂板，用接种环（在酒精灯上灭菌）取一环阳性液在平皿边缘开始涂板（约1/4面积），又从垂直方向（上边缘）涂板，只拉三条带菌线，涂成1.5/4面积，再从第二区边缘且垂直其划线方向涂板，只拉两条带菌线（目的是培养出单个的菌落）；12、将涂好的放入37度培养24h后，取一片载玻片，用在酒精灯上灭菌后的接种环取2环生理盐水到玻片两端，再轻取典型菌落和非典型菌落各取一丁点儿在上片生理盐水中涂片（本应无色，若有紫色，是取到了琼脂），然后拿起玻片在火上方烤干，达到杀死菌并固定菌的作用。
13、染色：夏天染1分钟，冬天染2分钟。
A蓝色盖染液滴满玻片上固定的区域染色后开细水冲掉多的染液，用滤纸占去片上的水，B 黃色盖染液滴满片上固定区染色，细水冲，滤纸占，C 黑色盖滴满上区脱色，不计时，水冲占干，D 红色盖染液滴满上区10秒后水冲占干。
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水中大肠杆菌的检测方法文稿归稿存档编号：[KKUY-KKIO69-OTM243-OLUI129-G00I-FDQS58-附件水中大肠杆菌群检测方法－多管发酵法NIEA E201.54B一、方法概要本方法系用以检测水中革兰氏染色阴性，不产生内生孢子之杆状好氧或兼性厌氧菌，且能在35 ± 1 ℃、48 ± 3小时发酵乳糖并产生酸及气体之大肠杆菌群（Coliform group）；在不同体积或不同稀释度之水样所产生之结果，以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」表示 100 mL水中存在之大肠杆菌群数目。
二、适用范围本方法适用地面水体、地下水体、废水、污水及水源水质水样中大肠杆菌群之检验。
三、干扰(一) 水样中含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长之物质。
(二) 检测使用的玻璃器皿及设备含有抑制或促进大肠杆菌群细菌生长的物质。
四、设备(一) 量筒：100至1000 mL之量筒。
(二) 吸管：有0.1刻度之10 mL灭菌玻璃吸管或市售无菌塑料吸管，或无菌微量吸管（micropipet）。
(三) 试管：大小约150 × 15 mm之试管或有盖螺旋试管。
(四) 发酵管（fermentation tube）：大小约22 × 9 mm之玻璃管。
(五) 稀释瓶：容量约100 mL可灭菌之硼硅玻璃制品。
(六) 锥形瓶：200至2000 mL之可灭菌硼硅玻璃制品。
(七) 采样容器：容量120 mL以上无菌之硼硅玻璃瓶或无菌塑料有盖容器，或市售无菌袋。
(八) 冰箱：温度能保持在4 ± 2℃者。
(九) 天平：待测物重量大于2 g时，须能精秤至0.01 g；待测物重量不大于2 g时，须能精秤至0.001 g。
(十) 培养箱：温度能保持在35 ± 1℃者。
(十一) 高压灭菌釜：温度能维持在121℃（压力约15 lb/in2或 1.1 Kg/cm2）灭菌15分钟以上者。
(十二) 高温干热烘箱：如用于玻璃器皿等用具之灭菌，温度须能保持在160℃达2小时或170℃达1小时以上者。
(十三) 接种环：为白金或镍铬合金制，适用于细菌接种或移植，亦可使用无菌塑料制品。
(十四) p H计：精确度达0.1 pH单位。
五、试剂(一) 试剂水：蒸馏水或去离子水，导电度在 25 ℃时小于2 μ mho / cm（μS / cm）。
(二) 培养基，应使用市售商品化培养基。
１、硫酸月桂酸胰化蛋白胨培养基（Lauryl sulfate tryptose broth，简称LST）1倍浓度LST培养基含有下列成份：胰化蛋白胨（Tryptose）20.0g乳糖（Lactose） 5.0g氯化钠（NaCl）5.0g磷酸氢二钾（K2HPO4）2.75g磷酸二氢钾（KH2PO4）2.75g硫酸月桂酸钠（Sodium lauryl sulfate）0.1g试剂水1L配成2倍浓度（取71.2 g LST培养基粉末溶于1 L试剂水），完全溶解后，分取10 mL注入装有倒置发酵管之试管内，经121℃灭菌15分钟，冷却后备用，灭菌后培养基之pH值应在 6.8 ± 0.2。
灭菌后培养基若未当日使用，应保存在4 ± 2℃，保存期限为14天。
可根据检验需求量，依配方配制培养基。
２、煌绿乳糖胆汁培养基（Brilliant green lactose bile broth，简称BGLB）1公升的BGLB 培养基中含有下列成份：蛋白胨（Peptone）10.0g乳糖（Lactose）10.0g牛胆粉（Oxgall Powder）20.0g煌绿色试剂（Brilliant Green）0.0133g试剂水1L取40 g BGLB培养基粉末溶于1 L试剂水，完全溶解后，分取5至10 mL注入装有倒置发酵管之试管内，经121℃灭菌15分钟，冷却后备用，其pH值应在7.2 ± 0.2。
灭菌后培养基若未当日使用，应保存在4 ± 2℃，保存期限为14天。
可根据检验需求量，依配方配制培养基。
(三) 无菌稀释液１、磷酸二氢钾储备溶液取3.4 g磷酸二氢钾（KH2PO4）溶于50 mL的试剂水中，俟完全溶解后，以1.0 N NaOH 溶液调节其pH值为7.2 ±0.1，然后加试剂水至100 mL，灭菌（过滤灭菌或121 ℃高温高压灭菌15分钟）后储存于冰箱中备用。
4 ± 2 ℃下保存期限为3个月。
２、氯化镁储备溶液取8.1 g氯化镁（MgCl26H2O），先溶于少量试剂水，俟完全溶解后，再加试剂水至全量为100 mL，灭菌（过滤灭菌或121℃高温高压灭菌15分钟）后，储存于冰箱中备用。
4 ± 2 ℃下保存期限为3个月。
３、无菌稀释液分别取10 mL氯化镁储备溶液和2.5 mL磷酸二氢钾储备溶液再加入试剂水至2,000 mL，混摇均匀后，分装于稀释瓶中，经121℃灭菌15分钟，作为无菌稀释液备用。
如欲用于水样稀释，分装之无菌稀释液灭菌后体积须为90 ± 2.0 mL。
4 ± 2 ℃下保存期限为3个月。
六、采样与保存(一) 盛装水样检验微生物之容器，应使用清洁并经灭菌之玻璃瓶或无菌塑料容器或市售无菌采样袋，且于采样时应避免受到污染。
水样若含有余氯时，无菌容器中应加入适量之无菌硫代硫酸钠（采取加氯之废水时，每100 mL水样中加入0.1 mL、10%硫代硫酸钠可还原15 mg/L余氯。
采取含氯之饮用水水样时，每100 mL之水样如加入0.1 mL之3%硫代硫酸钠，可中和之余氯量约为5 mg / L。
）。
(二) 采样前应清洁手部，再行采水样，所采水样应具有代表性。
(三) 运送时水样温度应维持在小于10 ℃且不得冻结，而实验室内保存温度应维持在4 ± 2 ℃。
(四) 水样应于采样后24小时内完成推定实验之水样添加步骤（七、步骤(一)４、），并置入培养箱中培养。
(五) 水样量须以能做完所需检验为度，但不得少于120 mL。
七、步骤试验分两阶段进行。
首先进行推定试验，若推定试验结果为阳性反应，则继续进行第二阶段之确定试验，如结果仍是阳性反应则显示有大肠杆菌群存在。
各试验步骤如下述：(一) 推定试验１、慎选发酵管中没有气泡且未污染之10 mL、2倍浓度LST试管。
２、水样在进行检测或稀释之前必须剧烈摇晃25次以上，以使样品充分混摇均匀。
３、视水样中微生物可能浓度范围进行水样稀释步骤，使用无菌吸管吸取10 mL水样至90 mL无菌稀释液中，形成10倍稀释度水样，混合均匀，而后自10倍稀释度水样以相同操作方式进行一系列适当之100、1000、10000倍等稀释水样，进行稀释步骤时，均需更换无菌稀释吸管，水样稀释步骤如图一所示（注1）。
４、以无菌吸管分别取各稀释度10 mL水样至内含10 mL 2倍浓度的LST试管中，每一稀释度各作5支，小心混合均匀，混合后发酵管内不可产生气泡。
５、在35 ± 1℃培养箱中培养48 ± 3小时，观察并记录发酵情形，若有气体产生则推定试验为阳性反应，若无气体产生则推定试验为阴性反应，但若培养液呈混浊状态，虽无产气，亦应进行确定试验。
(二) 确定试验若推定试验之发酵管中有气体或混浊产生时，则使用BGLB进行确定试验：１、慎选发酵管中没有气泡且未污染之BGLB试管。
２、利用无菌接种环自产生气体以及混浊之LST培养基试管中，接种一圈培养液至BGLB培养基试管中。
３、在35 ± 1℃培养箱中培养48 ± 3小时。
４、在48 ± 3小时内，BGLB 培养基试管如有气体产生，则确定试验为阳性反应。
八、结果处理(一) 经确定试验确认BGLB试管为阳性反应后，应以「100 mL水中最大可能数（MPN/100 mL）」计算及记录。
5支发酵管连续三种稀释度之MPN可查表一。
(二) 表一所示接种之水样量为10 mL、1.0 mL 及0.1 mL，若所用之稀释度有三种以上时，采用最具意义之三种稀释度，查表后再计算100 mL水中大肠杆菌群最大可能数。
稀释度之选取方式如下：１、先选取5管均呈阳性反应的最高稀释度（此时稀释度较低之各组试管必须全部呈阳性反应），再选取下两个稀释度（如表二水样别a）。
２、如果稀释度最低的一组并非5管均呈阳性反应，则选取稀释度最低的一组，再选取下两个稀释度（如表二水样别b、c）。
３、如果依据上述原则（１、及２、）选取3个稀释度后，下一稀释度试管组仍有阳性反应试管，则舍弃原先3组中稀释度最低的一组，纳入下一稀释度的数据（如表二水样别d）。
４、如果依据上述原则（１、至３、）选取3个稀释度后，更高稀释度之试管组仍有阳性反应试管，则把更高稀释度之阳性反应试管数加至原先3组中稀释度最高的一组（如表二水样别e）。
(三) 100 mL水中大肠杆菌群最大可能数（MPN/100 mL）之计算公式如下：结果小于100时，以整数表示（小数字数四舍五入），菌落数大于100以上时，只取两位有效数字：例如110以1.1 × 102表示，16,000以1.6 × 104表示。
(四) 检测纪录须注明采样时间、培养起始及终了时间、培养基名称、培养温度及各稀释度的数据等相关数据。
九、质量管理(一) 微生物采样人员及检测人员应具备微生物基本训练及知识。
(二) 每批次采样时应进行运送空白。
(三) 每批次或每10个水样需进行试剂空白实验。
(四) 新购入之培养基，每批号均须以大肠杆菌群阳性控制菌株（如E.coli、Enterobacter aerogenes、Citrobacter freundii）进行测试，以确保数据质量。
(五) 若一季期间水样均未检出大肠杆菌群，则须以大肠杆菌群菌株进行培养基测试，以确保数据质量。
(六) 本方法培养所得之细菌可能具有感染性，检测后之培养基及器皿应经高温高压灭菌处理。
十、精密度及准确度略十一、参考数据(一) APHA. 2005. Standard Methods for the Examination of Water andWastewater, 21st Edition, Section 9221. American Public HealthAssociation, Washington, D.C.(二) Difco & BBL Manual: Manual of Microbiological Culture Media.2003. BD Diagnostic Systems.注1：水样如须稀释，建议于稀释后30分钟内完成检测步骤，以免造成细菌死亡或增生，影响实验结果。
图一水样稀释步骤表一三连续稀释度（10 mL、1 mL、0.1 mL）五试管重复测试时，阳性结果组合之MPN指数及95%信赖区间表二判读说明。