实验一 药理学实验基础知识与基本技能
药理学实验
针对药理学有关知识内容与实验课的要求，拟开设以下几个方面的实验：实验一:药理学实验的基本知识及基本技能训练（4学时）实验目的与要求：通过实验使学生掌握药理实验有关的动物选择、应用、捉拿、给药、采血等基本知识及基本技能的训练。
要点：一、常用动物捉持方法⑴小鼠捉持⑵家兔捉持二、常用动物给药方法⑴小鼠灌胃——；皮下注射——；腹腔注射——；肌肉注射——；尾静脉注射——；⑵家兔灌胃——；耳缘静脉给药——；三、常用动物取血方法⑴小鼠后眼眶静脉丛取血——用拇指和食,中指捏住鼠颈部,利用捏紧的压力,使静脉丛淤血.将一特制硬玻璃管(约长15cm,前端拉成管壁略厚的毛细管),从内眼角插入眼睑和眼球之间,轻轻香眼底方向移动，并略加捻转血即自然顺便玻璃管流出。
⑵眼眶动脉、静脉取血——左手抓住小鼠，拇指和食指尽量将头部皮肤捏紧，使眼球突出，用无钩弯镊将眼摘除，将鼠倒置，血即流出1. 小鼠捉持法以右手捉小鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，向后轻拉小鼠尾部，使小鼠固定于粗糙面上。
用左手的拇指、食指和中指捏住小鼠两耳及头部皮肤，无名指、小指和掌心夹住背部皮肤和尾部，使头部朝上，颈部拉直但不宜过紧，以免窒息（见图1—1）。
另一种捉持方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴，后用手掌及小指和无名指夹住其尾部，再以拇指及食指抓住两耳和头部皮肤（见图1—2）。
前者易学，后者便与快速捉拿给药。
图1—1 小鼠的捉拿方法1 图1—2 小鼠的捉拿方法22. 小鼠灌胃以左手捉持小鼠，头部朝上，使其头颈充分拉直。
右手拿起装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道（见图1—3）如插入正确，灌胃针头容易进入，如遇阻力，可能插入气管，应退出再插。
灌胃液最多不超过0.1ml。
图1—3小鼠的灌胃法图1—4小鼠的皮下注射法3. 小鼠皮下注射将小鼠至于铁丝网上，左手抓住小鼠，以拇指扣食指捏起背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮下注射药液。
（见图1—4）。
实验实训指导书药理学
实验一药理学实验基本知识和技术实验目的：1、掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；2、更好地掌握药理学基本理论知识；3、培养科学思维。
实验内容：一、药理实验的基本目的与要求二、实验动物：1、动物的选择；2、动物的标记与捉拿、固定方法；3、动物的取血方法（尾尖、眼眶静脉丛、摘眼球、断头）；4、动物的给药方法（灌胃、腹腔、皮下、尾静脉）；5、动物的麻醉方法；6、动物的处死方法。
三、实验设计基本原则。
实验步骤：一、药理学实验的基本目的与要求药理学实验课在药理学教学中占有非常重要的地位。
药理学实验课的目的在于通过实验验证药理学的基本理论，加深理解与掌握药理学的基本知识和规律；也是了解获得药理学知识的科学途径。
同时，培养学生独立思考，独立工作，科学思维的能力；培养学生动手操作、分析问题和解决问题的能力；还应培养学生对科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法及实事求是的工作作风。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：1. 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；2. 实验时：（1）实验分小组进行，实验前分工明确，实验时密切配合；（2）确定实验仪器、药品、动物与实验指导相符时，将实验器材妥善安排，正确装置、保管；（3）实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；（4）注意爱护动物、节约实验药品；（5）实验过程中保持实验室肃静、清洁。
3. 实验后：⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；⑶整理实验结果，经分析思考作出结论，按要求写出实验报告，按时交给指导老师。
实验报告的书写1.题目2.目的3.原理4.材料：实验动物，器材，药品5.方法：用自己的语言简单扼要描述出来；6.结果：要求真实、清楚；7.讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；8.结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。
药理学实验基本技能
药理教研室
实验要求
（一）实验课前 1、仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、 步骤及注意事项。 2、复习相关理论知识，充分理解实验的原理 和意义。 3、预测实验结果，写好预习报告。
（二）实验课中 1、穿白大褂，带学生证领实验器材、药品。 2、分工合作，积极参与实验操作、观察、记 录。 3、节约试剂和药品，爱护实验器材，如出现 故障，及时请示老师。 4、严格控制时间，保证在规定的课时内完成 实验任务。
实验报告的书写
1、实验名称 2、实验目的 3、实验动物 4、实验步骤 5、实验结果 6、讨论、结论
常用实验动物
一、实验动物的定义 实验动物（laboratory animal）是 根据科学研究需要在实验室条件下有 目的、有计划进行人工驯养，繁殖和 科学培育而获得的动物。 如,转基因动物
二、实验用动物 泛指一切用于实验的动物， 这是一个广义的概念，其中 包括要求严格的实验动物， 还包括家畜、野生动物和观 赏动物等。
4.肿瘤研究：具有较高的肿瘤自发率，易研 究癌变机理。如，肝癌、肺癌、白血病。 5.遗传疾病研究：具有自发性遗传疾病，如 白内障、尿崩症、肥胖、高血压等。 6.传染病研究：多种病原体可使大鼠产生与 人相似的疾病，如，慢性支气管炎，病毒 性肝炎，血吸虫病，钩虫病等。
7.口腔医学研究：大鼠牙齿上的 珐琅质蛀损在宏观和微观上同 人的蛀齿相似，可用来研究龋 齿。 8. 环境污染与人类健康的研究： 大鼠对空气污染非常敏感，重 金属污染也可导致大鼠的病理 改变，常作为这方面研究的动 物模型。
(二)生物医学中的应用 1、药物学研究和毒性试验 (1)药物筛选试验:小鼠常用于药物对疾病疗效 筛选试验,如抗肿瘤药物,抗结核药物,抗疟疾 药物等的筛选。 (2)药效及其副作用研究:如： 利用声源性惊厥小鼠来评价抗痉挛药物: 利用小鼠角膜和耳廓反射评价镇定药物。
药理学实验指导
药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。
【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。
【药品】0.9%生理盐水。
【动物】小白鼠、大鼠、家兔。
【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。
此法用于淋巴囊注射。
毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。
2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。
双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。
3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。
不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。
4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。
将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。
二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。
如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。
常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。
皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。
注药量一般为0.1～0.2ml/10g。
肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。
药理实验课件1
②确定组数、计算各组剂量： 组数（G）：5-8 组 各组剂量：各组剂量要按等比级数排列，按 下列公式求出公比r:
按公比求各组剂量：D1，D2，D3，D4，D5，
……，Dm
其中D1=Dn=最小剂量，D2=D1·r，D3 =D2·r ，……Dm =D n-1· r ③配制等比稀释溶液：要求各小鼠给药容积 一样，0.1ml/10g∽0.2ml/10g，按下列公式计 算浓度：
⑶ 豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被 选用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用 于离体心脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感， 常用于抗结核病药的实验。 ⑷ 家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对 小肠的作用。由于家兔体温变化敏感，也常用于体温 实验，用于热原检查。 ⑸ 狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。还 可利用狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和 分泌的影响。在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。
实验三 药物的协同作用和拮抗作用
［目的］ 观察激动剂与拮抗剂之间的相互作用 ［材料］ 兔子１只，0.05%硫酸阿托品注射液,0.1%盐 酸肾上腺素注液,0.2%硝酸毛果芸香碱注射液
［方法］ １、取兔放于兔固定箱内固定，避免阳光直射 眼睛，用毛剪剪去兔两眼睫毛，然后用瞳孔量 尺测量瞳孔大小，连续三次，取平均值。 ２、在兔左眼滴入０.2%毛果芸香碱3滴，滴药 时用姆指和食指将下眼睑提起,使成囊状,再用 中指压住鼻泪管开口处,防止药液流入鼻泪管而 不起作用，再用右手滴入药液。15分钟后再测 量瞳孔大小，连续三次，取平均值，并进行比 较。
6.动物的处死：大、小鼠通常用颈椎脱臼法 处死。
实验二 不同给药途径对药物作用的影响
一、实验目的 1.观察不同给药途径对同一药物的作用速度、 强度的影响； 2.观察同一药物从不同途径进入机体可产生 不同的作用。 二、实验材料 注射器、针头、小鼠灌胃针头、 烧杯、普通天平、硫酸镁溶液
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学是研究药物对生物体产生作用的科学，而药理学实验是用来研究、验证药物的药效、毒性和代谢等特性的重要手段。
在进行药理学实验之前，研究人员需要掌握一些基础知识，以确保实验的可靠性和科学性。
药理学实验的分类药理学实验通常可以分为体外实验和体内实验两大类。
体外实验体外实验是在体外环境（如离体器官、细胞培养皿等）中进行的实验，用于研究药物对细胞、基因等的作用机制和生物效应。
体内实验体内实验是在动物模型或人体中进行的实验，用于评价药物的生物活性、毒性和药代动力学特性等。
药理学实验的设计原则进行药理学实验时，必须遵守一些设计原则，以确保实验结果的准确性和可靠性。
1.随机分组：实验对象在实验前应随机分配到不同的实验组，以减少实验结果的偶然性。
2.双盲对照：在动物实验中，研究人员应当实现实验组和对照组的盲法实验，以减少实验结果的主观影响。
3.样本量控制：实验设计时需要合理确定实验组和对照组的样本量，以保证实验结果的统计学意义。
4.质量控制：在进行实验的过程中，需要确保实验操作的标准化和一致性，以减少操作误差。
药理学实验的常用技术在药理学实验中，有许多常用技术可以帮助研究人员获取所需数据和信息，例如：•ELISA检测技术：用于测定细胞因子、蛋白质等分子在样本中的浓度。
•Western blot：检测蛋白质表达水平和结构特征的技术。
•细胞色素释放试验：用于评价药物对细胞毒性的影响。
•动物行为学实验：评估药物对动物运动、认知等行为的影响。
药理学实验的伦理和安全注意事项在进行药理学实验时，研究人员需要遵守相关的伦理规范和安全措施，以保障实验对象的权益和研究人员的安全。
1.动物实验伦理：研究人员应当遵守动物实验的伦理规范，尽量减少动物的痛苦和不必要的死亡。
2.实验室安全：在实验室操作时应当穿戴个人防护装备，确保实验操作的安全。
3.数据保密：研究人员需要确保实验数据的保密性，防止实验数据泄露。
结语药理学实验作为药物研发的重要环节，需要研究人员具备扎实的基础知识和实验技术，以确保实验结果的科学性和可靠性。
药理学实验
药理学实验一药理学实验基础及基本技能训练【实验目的】熟悉注射器、灌胃针头的构造、规格和主要用途。
学会正确使用注射器及灌胃针头；学常用实验动物的捉持和给药方法；学会实验动物给药量的计算。
【实验对象】小白鼠【实验器材】注射器、灌胃针头、鼠笼、棉签。
【实验药品】生理盐水、碘伏。
【实验步骤】1．多媒体示教实验动物的捉持及给药方法：（实验原理1）（1）捉持法用右手提起鼠尾，将其放于粗糙面（如鼠笼）上。
右手向后拉鼠尾，使其固定在粗糙面上。
此时应趁其不备迅速用左手拇指和食指捏住小鼠双耳及头颈部皮肤。
然后，翻转小鼠使其腹部向上平卧于掌心中，用无名指和小指压住鼠尾并固定于手中（2）给药法①灌胃法（ig）：左手捉持小鼠，头部向上，颈部拉直。
右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，与食管成一直线，然后沿上颚轻轻插入食管，如插入无阻力、小鼠无挣扎、呼吸无异常、口唇无发绀等现象，即可注入药液。
若遇阻力，应退回重插，以免插入气管引起小鼠死亡。
药液量一般为0.1～0.3ml/10g体重，每只不超过0.5ml （图1）。
②腹腔注射法（ip）：左手捉持小鼠，右手持注射器（选用5或6号注射针头），与腹壁呈45°角，自下腹部一侧向头端刺入腹腔。
进针时角度不宜太小，部位不能太高，刺入不能太深，否则会损伤内脏。
药液量一般为0.1～0.2ml/10g体重，每只不超过0.5ml（图2）。
③皮下注射法（sc）：可两人合作，一人用左手捏住小鼠头部皮肤、右手拉住鼠尾固定小鼠；另一人左手捏起小鼠背部皮肤，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。
也可单人操作，按前法捉持小鼠，右手持注射器，针头沿右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，推入药液即可。
药液量一般为0.05～0.2ml/10g体重，每只不超过0.3ml。
④肌内注射法（im）：两人合作，一人固定小鼠，另一人将注射器针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。
药液量每腿不超过0.1ml。
药理学实验基础知识与
实验误差与控制
系统误差
由于实验方法、仪器设备、试剂等因素引起的误差，具有 可重复性和规律性。控制方法包括标准化操作、校准仪器 设备、使用合格试剂等。
随机误差
由于偶然因素引起的误差，具有不可预测性。控制方法包 括增加样本量、多次重复实验等。
过失误差
由于操作失误、记录错误等人为因素引起的误差。控制方 法包括加强实验操作培训、实施严格的质控措施等。
实验动物的捉拿、标记与分组
捉拿与标记
在药理学实验中，通常使用实验动物如小白鼠、大鼠、兔子等。实验人员需要掌 握正确的捉拿技巧，避免对动物造成不必要的应激或损伤。同时，为了便于实验 过程中的管理和记录，需要对动物进行标记，如编号、性别、体重等。
分组
为了比较不同药物或不同处理对实验结果的影响，实验中通常需要将动物随机分 成若干组，每组动物数量应保持一致，并遵循随机化原则。分组时应确保各组动 物在重要变量上均衡可比，以减小误差和偶然因素的影响。
实验数据的统计分析
描述性统计
对实验数据进行整理、分类和描述， 如计算平均值、中位数、标准差等。
推论性统计
根据样本数据推断总体特征，如进行 t检验、方差分析、卡方检验等。
回归分析
研究自变量与因变量之间的数量关系， 揭示影响因变量的因素及其程度。
统计分析软件
使用SPSS、SAS、Excel等统计分析 软件进行数据处理和统计分析，提高 数据处理效率和准确性。
05
药理学实验安全与伦理
实验安全防护措施
实验室安全规定
遵守实验室安全规定，确保实验 人员的人身安全。
防护设备
根据实验需要，正确使用防护眼镜、 实验服、手套等防护设备。
化学品管理
了解实验中使用的化学品性质，正 确存储和使用，防止泄漏和误操作。
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
一、实验对象：
本次实验的主要对象是大学生，其中包括了药学院的学生和其他学院的学生，这些学生都通过本次实验学习药理学的基础知识，以为他们日后的实践做准备。
二、实验内容：
药理学是生命科学的一个分支，是专门研究药物用于治疗疾病的方式及其机制的学科，且以研究活性物质及其分子方法为基础。
本次实验室的主要内容是学习药理学基础知识，包括药物谱、药物作用机制、药物代谢、药物毒性和药物副作用等等。
三、实验方法：
1、首先，选择药理学相关书籍作为参考，仔细阅读，深入了解药理学的基本概念和原理。
2、在理论学习之后，结合实验实践，进行有关药理学的实验，熟悉药理学实验的基本流程及其实验技术。
3、实验完成以后，通过讨论、总结和分析，形成药理学实验基础知识的实验报告。
四、总结
本次实验是为了让参与者深入了解药理学的基本概念和原理，掌握药理学实验的基本流程及实验技术。
通过本次实验，参与者可以更加熟悉药理学的学习，并能为他们日后的临床实践打下良好的基础。
药理学实验
药理学基础实验实验一药理学实验的基本知识和技术 6课时一、动物实验的基本知识和技术（一）实验动物的要求和选择药理学实验要求根据不同的实验目的选用相应合格的医学实验动物。
实验动物按微生物控制分为四级：一级为普通动物，要求不带有人兽共患病的病原体以及体外寄生虫；二级为清洁动物，在一级要求基础上还必须不带有动物传染病的病原体；三级为无特定病原体的动物；四级为无菌动物。
药理教学实验可选用一级普通动物，科研实验必须用二级以上的实验动物。
1．青蛙和蟾蜍其心脏能在离体情况下保持较持久地节律性搏动，可用来观察药物对心脏的作用；其坐骨神经腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用，用于局麻药和肌松药实验。
2．小鼠最为常用，易大量繁殖，适用于需要大量动物的实验，如半数致死量测定和药物的初筛实验。
3．大鼠用途与小鼠基本相同。
主要用于一些用小鼠不便进行的实验，如血压实验等。
大鼠对炎症反应较为灵敏，其踝关节炎模型常用于观察药物的抗炎作用。
4．豚鼠对组胺特别敏感，是筛选平喘药和抗组胺药最理想的动物。
5．家兔性情温顺，易饲养，亦是药理实验中最常用的动物之一，用于观察药物对心脏、血压、呼吸的影响。
6．狗易于通过驯养与人合作，因而很适合于慢性实验，如用手术造成胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动及分泌功能的影响；高血压的实验治疗；新药临床前毒性试验等。
（二）实验动物的捉持方法2．小鼠右手提起鼠尾，放在鼠笼（或其他粗糙面）上，向后轻拉其尾，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，并以左手小指、无名指压其尾部于手掌尺侧。
另一方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴后用手掌尺侧和小指夹住尾根部，然后用左手拇指和食指捏住头颈部皮肤。
（三）实验动物的给药方法1．灌胃小鼠：左手捉持小鼠，使头部朝上，颈部拉直，腹部朝向操作者，右手持灌胃管，自口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再从舌面紧沿上腭缓慢进入食管2cm～3cm，将药液缓慢注入。
药理学实验
动情况，比较两只小鼠有何不同？
[记录]
组别 正 常 损坏 肾功 鼠号 1 2 3 4 体重(g) 药量（ml) 注射时间 产生作用时间 表 现 备 注
实验结束后可将小鼠处死，比较二组动物肾脏的差别。氯化高汞中毒小鼠的 肾脏常明显肿大。如用小刀纵切，可见到皮质部较为苍白，髓质部有充血现象。 ［讨论题］ 为什么两组小白鼠的表现不同？有何意义？
攻击肝细胞膜上的磷脂分子， 使脂质过氧化
三氯甲基自由基 (· Cl3 ) 与微粒体Pr发生共价结合，损伤细胞 膜的结构功能，使可溶性酶活性↑
四氯化碳
功能氧化酶系统
(活性代谢产物）
直接溶解 肝细胞膜
抑制钙泵，使Ca 2+↑, 使肝细胞内Ca堆积
↓
死亡
戊巴比妥钠属巴比妥类药物，具有镇静催眠抗惊厥的 作用。随用量的增加而出现镇静、催眠、麻醉的作用。主要 在肝脏代谢失活。
2、组距、组数的确定
在预备实验所获得的0%和100%的致死量范围内确定组距、组数。 组距：指相邻两组剂量对数之差。用“ⅰ”表示。 ⅰ＝ＤK-ＤL／G-1 ＤK、ＤL分别为最大剂量、最小剂量的对数值；Ｇ为预计组数。 一般组距在0.08－0.1之间（ⅰ值过小则分组过多，各组间死亡率重叠；ⅰ值过 大则分组过少，使标准误增大）。 ⅰ的大小取决于实验动物对被试因素的敏感性。敏感性大，组距可小，敏感性小 则组距大。
小叶比正常肝脏更清楚。 ［讨论题］
为什么损坏肝组织的小白鼠在注射戊巴比妥钠后作用时间长？有何意义？
实验方法
• 2、肾功能对药物作用的影响 取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前 24小时腹腔注射０.1%氯化高氯化汞 )各2只，称其体重， 分别腹腔注射3%的硫酸链霉素 0.15ml/10g，观察小鼠的 活动情况，比较两只小鼠有何不同？
实验一药理学实验基本技能
实验一药理学实验的基本技能一、实验动物的基本技能和实验技术基础1.实验动物的标记大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。
常用的方法：1号 ---左前腿2号 ---左腰部3号 ---左后腿4号 ---头部5号 ---正中6号 ---尾根部7号 ---右前腿8号 ---右腰部9号 ---右后腿10号 ---不标记2.实验动物的捉持（大、小鼠）(1)小鼠的捉持用右手提起鼠尾，放在粗糙物（如鼠笼盖）上面，向后轻拉鼠尾；用左手拇指和食指捏住其两耳颈背部皮肤，将小鼠固定在掌中，使其腹部朝上，然后以无名指和小指夹住鼠尾或小鼠的左后肢。
（2）大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。
用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
图 1 小白鼠捉持法3、实验动物的给药方法（大、小鼠）（1）小鼠的给药方法灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。
如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。
一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。
图 2 小白鼠灌胃法实验图 3 小白鼠腹腔注射法皮下注射（H或sc）：常在背部皮下。
轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。
然后注入药液。
一般给药量为0.1～0.20ml/10g （体重）。
图 4 小白鼠皮下注射法腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm，一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。
肌内注射(im)：多注射于后肢股部肌肉，一般每侧不超过0.1ml。
尾静脉注射（iv）：将小鼠置于固定筒内，使尾部露在外面，用70％～75％的乙醇棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～59ºC温水中，待尾部左右侧静脉扩张后，左手拉尾，右手进针。
实验一 药理学实验的基本知识和基本技术
实验一药理学实验的基本知识和基本技术一、目的1. 掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力；2. 更好地掌握药理学基本理论知识；3. 培养科学思维二、基本要求1. 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；2. 实验时⑴实验器材要妥善保管；⑵实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，实事求是地做好记录；⑶注意节约实验药品；⑷维持良好的课堂纪律。
3. 实验后⑴各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘送回准备室；⑵值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；⑶书写实验报告。
三、实验报告的书写1. 题目2. 目的3. 原理4. 材料：实验动物，器材，药品5. 方法：用自己的语言简单扼要描述出来；6. 结果：要求真实、清楚；7. 讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足之处；结果异常或失败的原因；8. 结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。
四、药理学实验实验设计原则1.随机原则按照机遇均等的原则进行分组。
其目的是使一切干扰因素造成的实验误差减少，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。
2.对照原则空白对照（指在不加任何处理的条件下进行观察对照）；阴性对照也称假处理对照（给予生理盐水或不含药物的溶媒）；阳性对照也称标准对照（指以已知经典药物在标准条件下与实验药进行对照）。
3.重复原则能在类似的条件下，把实验结果重复出来，才能算是可靠的实验，重复实验除增加可靠性外，也可以了解实验变异情况。
五、实验动物1. 动物的选择（1）小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些药物的筛选，半数致死量的测定。
也较适用于避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。
（2）大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性和慢性毒性实验。
（3）豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。
也常用于离体心脏、心房、肠管实验。
药理学实验基础知识点总结
药理学实验基础知识点总结药理学实验是药物发现、研究和开发的重要环节，通过实验对药物的药理学特性进行评估，包括药理学作用、药动学、毒性等。
药理学实验要求严谨的实验设计和操作，同时也需要具备丰富的药理学知识和实验技能。
本文将针对药理学实验的基础知识点进行总结，包括实验设计、药理学作用评价、药动学评价、毒性评价等方面的内容。
一、药理学实验的基础知识点1. 实验设计实验设计是药理学实验的重要环节，合理的实验设计可以保证实验结果的可靠性和准确性。
常见的实验设计包括随机对照实验、对照组设计、交叉设计等。
在实验设计中需要考虑到实验对象的选择、样本数量、实验组织、数据分析等方面的内容。
2. 药理学作用评价药理学作用评价是对药物在生物体内产生的药理效应进行评估。
常见的药理学作用评价方法包括体外实验、体内实验、生物化学实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体的生理功能、生化代谢等方面的影响。
3. 药动学评价药动学评价是对药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等动力学过程进行评估。
常见的药动学评价方法包括药物浓度-时间曲线、体内动力学参数的测定等。
通过这些实验可以评价药物在生物体内的药代动力学特性。
4. 毒性评价毒性评价是对药物在生物体内产生的毒性反应进行评估。
常见的毒性评价方法包括急性毒性实验、慢性毒性实验、致畸毒性实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体产生的毒性效应和毒性机制。
二、药理学实验的常用技术和方法1. 细胞培养技术细胞培养技术是现代药理学实验中常用的技术之一，通过对细胞系和细胞器官进行培养，可以评价药物对细胞的毒性和药理学作用。
常用的细胞培养技术包括细胞传代培养、凋亡检测、免疫细胞化学染色等。
2. 动物实验技术动物实验技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对动物进行给药和实验观察，可以评价药物的药理学作用、药代动力学特性和毒性效应。
常用的动物实验技术包括造模实验、行为学实验、代谢实验等。
3. 分子生物学技术分子生物学技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对药物靶标和信号通路进行研究，可以揭示药物的作用机制和药效基础。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学实验是研究药物的药理作用以及其在生物体内的代谢和排泄等方面的实验。
在药物研发中，药理学实验是非常重要的一环。
通过药理学实验，可以确定药物的活性、毒性、代谢动力学等参数，为后续的临床试验提供有效的依据。
药理学实验目前已经成为了一门非常成熟的学科，其实验方法和技术也不断地得到了改进和完善。
然而，作为药学领域的新手，想要进行药理学实验，有必要掌握一定的基础知识。
一、药理学实验的分类药理学实验可以根据不同的研究目的进行分类，主要分为以下几类：1.活性评价实验：主要是评价药物的药效和作用机制，以此确定药物的适用范围。
2.安全性评价实验：主要是评价药物的毒性，包括急性毒性、亚急性毒性、慢性毒性等多个方面。
3.代谢动力学评价实验：主要是评价药物在人体内的吸收、分布、代谢和排泄等参数，以此确定药物的给药途径和用药剂量。
4.临床转化评价实验：主要是评价药物在人体中的临床效果，包括疗效、安全性、耐受性等方面，以此为药物进一步研究提供依据。
二、药理学实验的基本设计药理学实验的基本设计通常包括以下几个方面：1.药物的质量控制：包括药物的纯度、杂质含量、标准曲线等方面。
2.实验对象：通常选择灵长类动物或小鼠等模型来进行实验，要注意实验对象的品系、年龄、性别等。
3.药物的给药途径和方法：包括口服、静脉注射、皮下注射、局部涂抹等多种途径，需要结合具体药物特点制定给药方法。
4.实验组和对照组的设置：实验组通常分为高、中、低三个剂量组，对照组包括空白对照、阴性对照、阳性对照等。
5.实验指标和测试方法：根据不同的研究目的和药物特点，选择合适的实验指标和测试方法。
6.数据的统计和分析：通过数据的统计和分析，评价药物的药效、毒性、代谢动力学等方面的参数，得出结论并进行报告。
三、药理学实验的常用技术药理学实验需要使用一些常见的技术，主要包括以下几个方面：1.细胞培养技术：包括原代细胞培养、细胞株的维护和保存、细胞鉴别和分离等。
药理学实验优选全文
作风，并训练大家观察、分析和解决问题的 能力
实验前 认真预习
实验时 认真操作 仔细观察并详细记录
实验后 认真书写实验报告,按时上交 整理实验器材(清洗、消毒、摆放整齐并物归 原处)、动物处理 实验室的清洁卫生
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存 备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括：
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号 2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5％苦味酸溶 液（黄色）涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4
1
7
25 8
3 69
2. 动物性别的辨别
小鼠（左为雄性，右为雌性）
1. 时间、温度； 2. 实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何
分组等。 3. 实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量
及给药途径。 4. 实验进程、步骤和方法的详细记录。 5. 观测指标的变化和原始的描记图纸。
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要 [实验材料] 包括仪器、药品和动物 [实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比，尽量总结出图表或曲线，进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、体会和建议等 及思考题的探讨
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代 的实验材料
实验一药理实验基础知识
第一章实验一药理实验基础知识第一节药理学实验的目的和要求药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的差不多理论；通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力；通过设计性实验，培养学生独立摸索、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业后的科研工作奠定良好的基础。
为了达到上述目的，要求学生做到以下几点。
【实验前】1.认真阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。
2. 结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做到充分明白得。
3. 推测实验中可能显现的情形和发生的问题。
【实验时】1．实验器材的放置力求稳当、整齐、有条不紊。
2．严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确运算给药量，节约器材和药品。
要注意爱护实验动物和标本，幸免与实验内容无关的刺激。
3．认真、耐心地观看实验过程中显现的各种现象，实事求是地记录药物显现反应的时刻、表现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行摸索。
4．在实验过程中遇到疑难之处，先要自己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师说明情形，要求教师协助解决。
关于贵重仪器，在未熟悉其性能之前，不可轻易调试。
5．实验室内保持安静、整洁。
用药后须用原瓶塞塞好，公用药品和器材不可随意移动。
【实验后】1．将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。
如有损坏、缺少，应及时报告老师。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
2．认真整理实验记录，通过分析摸索，撰写实验报告，按时交给指导老师。
3．做好实验室的清洁卫生工作。
第二节药理学实验设计的差不多原则在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下差不多原则：一．对比原则：进行实验时必须设对比组。
设置对比组是为了使观看指标通过对比而发觉其在处理因素（如药物等）的作用下而表现出的某种特异性变化，排除各种无关因素的阻碍。
药理学实验基本知识与技能实验报告
药理学实验基本知识与技能实验报告1.了解药理学实验的基本知识、技能及主要实验方法；2.培养对药物作用的判断能力和评价能力；3.掌握实验中的操作技能和实验数据的处理方法。
实验内容：本次药理学实验主要包含以下内容：1.药物实验的基本知识：药物性质、用药途径、药物剂量和使用方法、药物评价方法等；2.药物作用的评价方法：包括药效学、副作用和毒性、药代动力学等；3.药物实验的操作方法：包括药物制剂的制备和制剂的性质分析、动物实验等操作。
实验步骤：1.药物制剂的制备和性质分析a、选取需要制备的药物制剂并准备所需要的药物原料；b、根据药品说明书，确立合适的配伍方案并计算药物配比；c、将药物原料按照配方比例称量，配合制剂的制备；d、对制剂进行性状分析，例如外观、气味、颜色、味道等。
2.动物实验的操作a、准备实验所需动物（小鼠、大鼠、猪等），按照正常条件下饲养一段时间，保持体内环境平稳；b、按照计划的剂量模式，将药物给予动物口服、注射、吸入等途径，然后观察动物的生理状况变化；c、记录药物作用的时间和程度，并观察药物的治疗效果和不良反应；d、分析动物实验结果，得出药物的作用目标、剂量规律等信息。
实验结果分析：经过对本次实验数据的统计分析，我们得出以下结果和结论：1.药物制剂的制备和性质分析这一步主要在于制备药品初步探讨药品相对的性质，包括物理性质和化学性质等。
药品初制后，需要分析其外观特点、颜色、气味、味道、纯度和含量等参数，以评价药品质量。
2.动物实验的操作本实验选择了小鼠模型，并按照剂量递增的模式给予药物，观察小鼠的生理变化，并记录药物的作用时间和不良反应。
实验结果表明，在本剂量下，药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的研究和评估。
结论：通过对本次实验的操作和数据分析，我们得出以下结论：1、药物的制备和性质分析是一项必不可少的工作，对于药品的质量保证有重要作用；2、动物实验是一种可靠的实验方法，但也有一些限制和缺陷，需要加以改进和完善；3、本实验显示出了药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的评估和改进。
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本次实验报告的书写
1、常用动物的捉拿方法 2、常用动物的给药方法 3、常用动物的编号 4、常用动物的处死方法
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18Biblioteka 谢 谢!精品课件19
药理学实验
实验一 药理学基本知识与基本技能
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1
1、实验动物的选择
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2
小白鼠
特性：繁殖能力强（妊娠期21天，年产6—9胎） 动物体积小，便于捉拿和实验操作 动物性情相对温和 廉价，来源广
适用于：药物筛选 半数致死量测定 药物效价比较 抗感染、抗肿瘤药物 避孕药物
大白鼠
特性：与小白鼠相似 适用于：药物的亚急性或慢性毒性实验
注药量一般为0.1～0.2 ml/10g。
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4 肌肉注射(im) 一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人
持带4号针头注射器将针头刺入后腿外侧肌肉。回抽 无血，即可注射。注射量一般不超过0.1～0.2 ml/ 只。
5 静脉注射(iv) 将小鼠置入固定器，反复用酒精涂擦拭尾部
使血管扩张。自尾部末端几乎平行入，刺入血管注 入药液，如无阻力，表明针头进入静脉。
3 插入深度3cm
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2 腹腔注射(ip)
将小鼠固定后，头朝下，腹部向上，从左 下腹部外侧45°进针，刺入腹腔，此时有落空感， 回抽无回血或无尿液，即可注射。
常用注射量为0.1～0.2 ml/10g 。
3 皮下注射(ih)
可选用颈部、腹部、背部、腹股沟的皮肤， 此处皮肤比较松弛，注射时，用左手拇指和食指轻 轻提起动物的皮肤，右手拿注射器，使针头水平刺 入皮下，回抽无血，缓慢推注。 拔针时，一手捏 住针刺部位，以防药液外渗。
药物抗炎作用的实验 抗高血压药物实验
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4
豚鼠
适用于：平喘药和抗组胺药的实验
抗结核药的研究
皮肤毒力实验
离体心脏及平滑肌实验
研究抗心律失常药物的机理
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5
家兔
适用于：体温实验、热原检查 药物对心脏、呼吸的影响
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猫
适用于：血压实验 心血管药物及中枢神经系统药物的研究
犬
适用于：观察药物对心脏泵功能和血流动力学的 影响 心肌细胞电生理研究 降压药及抗休克药的研究 慢性实验研究
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（一）、捉拿
双手法：
单手法：
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（二）实验动物常用的给药途径与方法
（主要介绍小白鼠）
经口灌胃 皮下注射 肌肉注射 腹腔注射 静脉注射
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1 经口灌胃（ig)
灌胃量为0.1～0.2
ml/10g
注意事项： 1 手法轻柔，如遇阻力立即抽出，以免损伤或穿 破食道
2 出现较强呼吸困难，呛咳,挣扎,立即停止操 作，可能插入气管
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2、性别鉴别
肛门与生殖孔之间的距离： 雌性：距离近,腹部有对称的乳房 雄性：距离远，之间有阴囊
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3、编号
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4、处死方法
颈椎脱位法
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5、动 物 基 本 操 作
（小鼠）
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年龄和体重的关系 可用动物体重反映年龄 成年体重18～22 g 幼年小鼠 < 18 g 老年小鼠 > 40 g