胡萝卜组织培养系统实验
胡萝卜组织培养
②外植体接种。 把消毒好的胡萝卜直根放入无菌培养皿中，用消毒好的 小刀沿截面将其横切成厚度1mm 左右的小圆片，然后 将小圆片的韧皮部和木质部切去，留下形成层，再将形 成层切成大约长5mm、宽5mm、高1mm 的小长块。具 体操作方法:把消毒好的胡萝卜直根放于无菌培养皿中， 用小刀将其切成2 ～ 3cm 的小段，用灭过菌的打孔器沿 着形成层穿入胡萝卜中，取得一段含有形成层的2 ～ 3cm 的圆柱体，然后用无菌解剖刀片将其切成厚1mm 的小薄片，将切好的胡萝卜外植体接种在MS + 2mg /L 2，4 － D +1. 5mg /L KT 的固体培养基上( 如图1 b) ， 放于黑暗处25℃条件下进行暗培养，50d 后长出淡黄色 愈伤。
组织培养实验室模式布局
三、实验步骤ຫໍສະໝຸດ (1) 胡萝卜愈伤组织的诱导 ①外植体消毒。用清水洗干净胡萝卜直根， 用小刀给其削去表皮，并切成小段放入烧 杯中。先用70% 酒精对胡萝卜直根消毒 5min，用无菌吸水纸吸干，再用10% 的次 氯酸钠溶液消毒10min，放入无菌水中漂洗 2 ～ 3 次，用无菌吸水纸吸干待用。
(2) 胡萝卜愈伤组织悬浮 体系的建立 用镊子夹取在固体培养 基上的胚性愈伤组织即 分散性好、疏松的愈伤 用解剖刀切碎，接种在 MS+ 0. 3mg /L 2，4 － D + 3%蔗糖的液体培 养基( pH5. 8 ) 中，每 100mL 的三角瓶中加 入MS 液体培养基50mL， 摇床转速为110r / min， 温度为25℃，黑暗培 养3 ～ 5d。
(3) 胡萝卜愈伤分化 将胡萝卜悬浮细胞 和愈伤转接在不添 加激素的MS 固体培 养基中，25℃条件 下光培养。30d 左右 愈伤长出胚状体， 40d 后长出小绿芽， 接着生根长出绿叶 片。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计
引言概述：
胡萝卜组织培养是生物学实验中常见的实验项目之一，通过培养胡萝卜组织，
可以观察细胞的生长和分化过程，为学生深入了解植物细胞生物学提供了实践机会。
本文将介绍胡萝卜组织培养教学设计的相关内容，包括实验目的、实验材料、实验步骤、实验结果分析和实验注意事项。
一、实验目的
1.1 观察植物细胞的生长和分化过程。
1.2 理解植物细胞培养的原理和方法。
1.3 学习细胞培养技术的操作步骤。
二、实验材料
2.1 需要准备的材料包括：胡萝卜、琼脂培养基、生长激素等。
2.2 实验器材包括培养皿、移液器、显微镜等。
2.3 实验环境要求无菌条件，确保实验结果的准确性。
三、实验步骤
3.1 从胡萝卜中取出组织样本，进行消毒处理。
3.2 将组织样本切割成小块，放入含有生长激素的琼脂培养基中。
3.3 将培养皿放置在恒温箱中，定期观察组织的生长情况。
四、实验结果分析
4.1 观察胡萝卜组织在培养基中的生长情况。
4.2 分析细胞的分化和增殖情况。
4.3 结合显微镜观察细胞的形态和结构，进行实验结果的定量分析。
五、实验注意事项
5.1 实验过程中要注意无菌操作，避免细菌污染。
5.2 实验结束后要及时清理实验器材，保持实验室整洁。
5.3 学生在进行实验时要注意安全，避免发生意外情况。
结语：
通过胡萝卜组织培养教学设计，学生可以深入了解植物细胞的生长和分化过程，提高实验操作能力和科学素养。
希望本文的介绍可以帮助教师更好地设计和开展胡萝卜组织培养实验，为学生的学习提供更多的实践机会。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计引言概述：胡萝卜是一种常见的蔬菜，其组织培养在生物学教学中具有重要意义。
通过胡萝卜组织培养实验，学生可以了解植物生长发育的基本原理，培养实验操作能力和科学研究精神。
因此，设计一套科学合理的胡萝卜组织培养教学方案至关重要。
一、实验目的1.1 匡助学生了解植物细胞培养的基本原理和技术。
1.2 培养学生的实验操作能力和观察分析能力。
1.3 培养学生的科学研究意识和团队协作能力。
二、实验材料和仪器2.1 胡萝卜组织样本：新鲜胡萝卜块或者悬浮液。
2.2 培养基：含有适当营养物质和植物激素的培养基。
2.3 实验器材：培养皿、移液器、显微镜等。
三、实验步骤3.1 准备工作：将胡萝卜组织样本切割成小块，消毒处理。
3.2 培养基配置：根据实验要求配置含有适当植物激素的培养基。
3.3 培养操作：将胡萝卜组织样本置于培养基中，定期观察生长情况。
四、实验观察和分析4.1 观察胡萝卜组织的生长情况：记录组织的颜色、形态和大小变化。
4.2 分析培养结果：根据观察结果分析植物细胞的分化和增殖情况。
4.3 讨论实验意义：与学生一起讨论实验结果，引导学生总结子验经验。
五、实验总结与展望5.1 总结子验成果：总结子验过程中遇到的问题和解决方法，总结子验结果。
5.2 展望未来研究：探讨胡萝卜组织培养在生物学研究中的应用前景。
5.3 提出改进建议：根据实验过程中的经验，提出改进教学设计的建议。
通过以上胡萝卜组织培养教学设计方案，可以匡助学生深入了解植物细胞培养的原理和技术，培养他们的实验操作能力和科学研究意识，为未来的科学研究打下坚实基础。
同时，教师在实施教学过程中也要根据学生的实际情况进行调整和改进，不断提高教学质量和教学效果。
胡萝卜组织培养
六、常见错误举例
• 材料切得过小。 • 材料消毒时间过长。 • 切材料时下面没垫滤纸。 • 镊子、刀在酒精灯上烧过立即放到盛酒精的烧杯里。 • 操作时，手、三角烧瓶在盛材料的培养皿上方活动，
容易把菌带到材料上。 • 把接种的切块压入培养基里面。 • 接种时瓶口垂直向上，手、镊子上的脏物掉到瓶里。 • 升汞回收倒入酒精桶里。
七、课后作业及预习
• 课后作业
有几种常用的外植体消毒液？主要原理是什 么？效果如何？
• 预习
根癌农杆菌转化的原理及方法。
实验步骤
• 材料处理
安全第一
1）配75%酒精，倒升汞；
2）把胡萝卜切成约440×20×10 mm方块，4条。
• 消毒和清洗
4）把切好的材料，放在100 mL的烧杯里，加入75％酒精，浸
8）用烧过的镊子将外植体放到培养基上，3块/瓶；
9） 盖好封口膜和牛皮纸，放回316，23~28℃，避光培养。
• 在无菌坏境下，将切好的外植体立即接在培养 基上，每瓶接种2~4个，防止交叉污染。
• 接种后，瓶、管用无菌药棉或盖封口，培养皿 用无菌胶带封口。
三、无菌操作步骤
• 接种3天前用甲醛熏蒸接种室，并于接种前3小时打开紫外线 灯进行杀菌；
• 接种前20分钟，打开超净工作台的风机以及台上的紫外灯； • 接种员洗净双手，在缓冲间换好专用实验服，换穿拖鞋等； • 上工作台后，用酒精棉球搽拭双手（特别是指甲处）和工作
泡30秒；
5）然后将外植体转入0.2％升汞中，浸泡25~30分钟，不能超
过30分钟；
6）把带有升汞和组织材料的烧杯拿到超净工作台，取出材料，
放入培养皿，用灭菌水洗4~5分钟，重复3次，用滤纸吸干。
• 接种与培养
胡萝卜植物组织培养
胡萝卜植物组织培养植物组织培养实验教案一、实验目的和要求1、了解和掌握植物组织培养的原理、方法和应用2、将胡萝卜根培养成愈伤组织二、主要实验仪器与器材1、电子天平2、灭菌锅3、无菌操作台4、植物组织培养室5、新鲜胡萝卜根6、配制培养基的化学药品及器材三、实验内容1、MS培养基母液的配置和器材的准备由实验员配制和准备。
2、植物组织培养的原理、方法和应用的讲解（1）原理：植物细胞的全能性。
（2）方法：取外植体→灭菌→接培养基→诱导愈伤组织→诱导生根发芽→植株→移栽。
（3）应用：①理论方面；②实际应用。
（4）实验过程中特别注意的问题：无菌。
3、MS培养基的配制与灭菌1升培养基：大量元素 100 毫升、微量元素 10毫升、铁盐 10毫升、有机物 10毫升、肌醇 100 毫克、10% 2,4-D 10毫升、琼脂10克、pH 5.8。
分装100毫升三角烧瓶，每瓶15毫升，牛皮纸包扎后于121℃下灭菌20分。
4、胡萝卜根外植体的接种、培养和愈伤组织诱导取胡萝卜根→用自来水冲洗→削皮→切取中间约50毫米一段→放70%乙醇中浸泡5分→用酒精烧表面及两端→刮去烧掉的皮及两端→切成5毫米圆片→切成5立方毫米组织块（保留形成层）→接种培养基→25℃下培养→观察愈伤组织生长情况（包括污染状况）。
5、写出实验报告四、实验分组及准备材料本实验每组分若干小组，每小组5人，每小组须准备如下材料：（1）500毫升试剂瓶 1只（包扎灭菌）（2）配1000毫升70%酒精（3）做棉花球（装1000毫升试剂瓶中）（4）包扎10套培养皿（灭菌）（5）包扎100毫升烧杯1只（灭菌）（6）包扎接种器材1套（包括镊子6把、解剖刀柄4把）（7）配MS培养基500毫升，分装20只100毫升三角瓶，每人4只，包扎灭菌。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计引言概述：胡萝卜是一种常见的蔬菜，其组织培养技术在植物生物技术研究中起着重要作用。
本文将介绍胡萝卜组织培养的教学设计，包括实验目的、实验步骤、实验材料和实验结果的分析等内容。
一、实验目的：1.1 了解胡萝卜组织培养的原理和意义；1.2 学习培养胡萝卜愈伤组织的方法；1.3 掌握胡萝卜愈伤组织的分化与再生过程。
二、实验步骤：2.1 材料准备：2.1.1 胡萝卜种子的消毒处理；2.1.2 培养基的制备。
2.2 组织培养的操作步骤：2.2.1 胡萝卜愈伤组织的诱导；2.2.2 胡萝卜愈伤组织的培养与增殖；2.2.3 胡萝卜愈伤组织的分化与再生。
2.3 实验观察和记录：2.3.1 观察愈伤组织的形态和颜色变化；2.3.2 记录愈伤组织的生长速度和增殖情况；2.3.3 分析愈伤组织的分化和再生能力。
三、实验材料：3.1 胡萝卜种子；3.2 无菌培养基；3.3 愈伤组织诱导剂；3.4 培养器具（包括培养皿、培养瓶、移液器等）；3.5 显微镜。
四、实验结果的分析：4.1 胡萝卜愈伤组织的诱导效果；4.2 胡萝卜愈伤组织的生长速度和增殖情况；4.3 胡萝卜愈伤组织的分化和再生能力。
五、实验的意义和应用：5.1 胡萝卜组织培养技术在植物生物技术研究中的应用；5.2 胡萝卜组织培养技术在植物育种中的意义；5.3 胡萝卜组织培养技术在植物病害防治中的潜力。
总结：通过本文的介绍，我们了解了胡萝卜组织培养教学设计的内容和步骤。
胡萝卜组织培养技术的掌握对于植物生物技术研究、植物育种和植物病害防治等领域具有重要意义。
希翼本文能够为胡萝卜组织培养教学提供一定的参考和指导。
胡萝卜组培实验
mg/L(100×) 3725 2785 mg/L(100×) 200 40 50 50 10000
mg/L 37.25 27.85 mg/L 2.0 0.4 0.5 0.5 100
MS培养基的配制
取 1000ml 烧杯，分别取各种成分的母
液100ml，加入烧杯，称取蔗糖30g，琼脂 6.5g ，按照需要的浓度分别加入各种植物 生长调节剂（2 ,4 - D 浓度1mg/L+6-BA浓 度0.5mg/L），加水至800ml。加热使琼脂 溶解，定容至 1000ml ，用 10 ％ NaOH 调节 pH至5.6~5.8。
（３）用无菌的镊子夹取一条无菌的胡萝卜，用无菌解剖刀把胡萝卜形成
层部分切成1cm3小块。
（4）取一瓶培养基，除去橡皮筋，揭开封口膜，把培养基放在紧靠 酒精灯火焰无菌区的后方。 （5）用无菌镊子夹取胡萝卜小块，接种于MS培养基上，每瓶接种6 块外植体。注意无菌操作。 （６）盖好封口膜，缠好皮筋，用记号笔在培养瓶封口膜上写好班 级姓名。 • 放入培养箱，25℃暗培养7-10天后观察记录。
培养基及材料灭菌
将配好的培养基迅速分装至50ml三角瓶中，
用棉花塞好，用牛皮纸或报纸包扎（本实 验采用封口膜封口）。放入高压灭菌锅中， 121℃、灭菌20min。
培养基及材料灭菌
• 无菌水：用500mL三角瓶，加入约300mL蒸馏水，
封口膜封口， 121℃、灭菌20min。 • 无菌滤纸、无菌瓷砖：将实验所需滤纸、瓷砖等 用包装包好， 121℃、灭菌20min。 • 剪刀、镊子、解剖刀灭菌：可直接在酒精灯上燃 烧进行灭菌。
2～3 次,再用2.5%次氯酸钠溶液处理30min ,无菌水冲洗3～5
次。
• 超净台上操作 （１）用酒精棉球擦手，然后点燃废酒精棉球擦拭超净台工作台面。 取出一张无菌滤纸，放在面前。将无菌瓷砖打开包装，置于无菌 滤纸旁边。 （２）用酒精灯火焰烧灼刀柄、刀片、镊子等，置于瓷砖上冷却后 置于无菌滤纸上。
胡萝卜组培实验报告
本科学生综合性实验报告
学号：姓名：
学院：生命科学学院专业、班级：班
实验课程名称：胡萝卜肉质根愈伤组织诱导、继代增殖、细胞
悬浮及体细胞胚胎发生培养实验
教师：
开课学期：至学年学期
填报时间：年月日
云南师范大学教务处编印
一．实验设计
二．实验报告
记录污染情况及原因分析
可能是在超净工作台中操作时不规范，导致了污染。
（三）胡萝卜愈伤组织继代增殖培养
（1）实验现象
图1胡萝卜愈伤组织继代增殖培养结果
（2）实验结果
表3胡萝卜愈伤组织继代增殖培养结果
总接种瓶数
2 总接种块数30
污染瓶数0 污染块数0
未污染瓶数 2 未污染块数30
未污染愈伤组织发生块数30 愈伤组织发生率100%
愈伤组织发生情况两个瓶内的胡萝卜愈伤组织长势较好
记录污染情况及原因分析两瓶愈伤组织均未被污染，长势较好，愈伤组织
疏松透明
（四）胡萝卜细胞悬浮培养
（1）实验现象
图2胡萝卜细胞悬浮培养结果
（2）实验结果
结果可由上图所示，细胞长势较好，经过过滤之后，将滤液在显微镜下观察，可看到单细胞。
（五）胡萝卜愈伤组织器官分化培养
现象：本实验还在进行当中，但是初步可以观察到的现象是：细胞在见光的情况下，进行叶绿体的组建，愈伤组织已经由乳白色渐变为淡绿色。
（如图3所示）
图3胡萝卜愈伤组织器官分化培养初步现象。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计背景介绍：胡萝卜是一种常见的蔬菜，具有丰富的营养价值和药用价值。
为了提高胡萝卜的产量和质量，需要进行胡萝卜组织培养的教学设计。
本文将详细介绍胡萝卜组织培养的步骤、实验材料和方法，以及预期结果和教学评价。
一、实验目的：通过胡萝卜组织培养实验，使学生了解植物组织培养的基本原理和操作技术，培养学生的实验操作能力和科学研究意识。
二、实验材料：1. 胡萝卜种子2. 细菌消毒液3. 无菌培养基4. 培养皿5. 无菌操作器具（镊子、剪刀等）三、实验步骤：1. 准备工作：a. 将胡萝卜种子放入细菌消毒液中浸泡10分钟，然后用蒸馏水冲洗3次，以去除种子表面的细菌。
b. 使用无菌操作器具将胡萝卜种子切成小块（约0.5cm）。
c. 准备无菌培养基，将培养基倒入无菌培养皿中，每一个培养皿放入适量的培养基。
2. 组织培养：a. 将切好的胡萝卜种子块放入培养皿中的培养基上。
b. 盖上培养皿盖，密封好。
c. 将培养皿放入恒温培养箱中，设置适当的温度和光照条件。
3. 观察和记录：a. 每天观察培养皿中胡萝卜组织的生长情况，记录生长速度和组织的颜色变化。
b. 每隔一段时间，取出培养皿，观察并记录胡萝卜组织的形态和质地。
四、预期结果：经过一段时间的培养，估计胡萝卜组织将开始生长，并浮现白色或者黄色的小苗。
随着培养的进行，胡萝卜组织将逐渐增多，并形成较大的胡萝卜组织块。
五、教学评价：1. 实验操作能力：学生是否能够熟练操作无菌技术，是否能够正确使用实验器具。
2. 实验数据记录：学生是否能够准确记录实验过程中的观察结果，并进行合理的数据分析。
3. 实验讨论能力：学生是否能够根据实验结果进行讨论和分析，提出合理的结论，并与理论知识相结合。
六、教学延伸：1. 学生可以进一步探索胡萝卜组织培养的影响因素，如不同培养基成份、不同温度和光照条件等对胡萝卜组织生长的影响。
2. 学生可以进行胡萝卜组织培养的实验设计和结果分析，提出自己的研究问题，并进行实验验证。
胡萝卜的组织培养-北师大版选修1生物技术实践教案
胡萝卜的组织培养-北师大版选修1 生物技术实践教案一、实验目的1.了解植物的组织培养技术，掌握常用植物的组织培养方法；2.学习如何构建植物组织培养的基本实验流程；3.初步探究不同植物体部位对于组织培养的影响。
二、实验设备和物料1. 设备不锈钢工作台、蒸馏水机、显微镜、移液器、扩展罐、手套箱、烧杯、移液管、无菌操作台等。
2. 物料•pH=5.8~6.2的MS培养基•10~20g/L蔗糖•不同部位的胡萝卜组织，还包括含有胡萝卜素的幼茎、幼芽、茎叶、幼根等部位。
•NaN3或酒精(用于杀死胡萝卜的外界细菌)•过氧化氢•活性炭(用于吸收干燥剂带来的湿度)三、实验流程1. 组织消毒将胡萝卜取出，剪去较老的部分，然后将鲜活的胡萝卜以及所需要的其他部位进行取样切碎，然后液体表面无菌处理（消毒），传统方法为用70%的乙醇漂流消毒，维持采样器具无菌工作等级。
2. 组织培养取一个无菌组织，放入MS培养液中，控制装置培养10d ~ 14d。
3. 生长检测可以用显微镜观察植物组织的生长情况。
4. 分析分析组织培养的成功率以及植物组织的生长情况，探究胡萝卜不同组织的生长特性。
四、实验注意事项1.操作前要进行完备无菌措施，保证实验结果的准确性；2.胡萝卜取样均要使用锐利的工具，并保证其在取样工具的范围内；3.胡萝卜的处理、培养、检测各个环节都要严格按照操作规范进行，否则会影响实验结果；4.植物组织培养液的温度、光照、湿度应当根据实验情况进行调整，操作时要进行多次调整。
五、实验结果分析经过实验，胡萝卜的组织培养成功率较高，可以通过MS培养液为基础进行培养。
同时，在实验中发现，不同部位的胡萝卜组织对于生长的影响较大，含胡萝卜素的部位如茎叶组织生长较快，而幼根组织生长较缓慢。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计引言概述：胡萝卜组织培养是生物学实验课程中常见的实验项目之一，通过培养胡萝卜组织，学生可以了解植物的生长过程和组织培养技术。
本文将介绍一套胡萝卜组织培养的教学设计，帮助教师更好地进行实验教学。
一、实验目的1.1 帮助学生了解植物胡萝卜的生长过程和组织培养技术。
1.2 培养学生的实验操作能力和观察分析能力。
1.3 培养学生的团队合作意识和科学研究精神。
二、实验材料准备2.1 胡萝卜：选择新鲜的胡萝卜，去皮切成小段备用。
2.2 培养基：准备含有适当植物激素的培养基，促进组织生长。
2.3 实验器材：包括培养皿、移液器、显微镜等实验器材。
三、实验步骤3.1 培养基制备：将培养基倒入培养皿中，待凝固。
3.2 组织培养：将胡萝卜组织放入培养基中，放置在适当的温度和光照条件下。
3.3 观察记录：定期观察胡萝卜组织的生长情况，记录生长速度和形态变化。
四、实验结果分析4.1 生长速度：观察不同培养条件下胡萝卜组织的生长速度，比较结果。
4.2 形态变化：观察胡萝卜组织的形态变化，分析植物生长的规律。
4.3 实验效果评价：评价实验结果的可靠性和教学效果，总结实验经验。
五、实验拓展5.1 实验设计：根据胡萝卜组织培养实验结果，设计相关实验课题。
5.2 实验研究：开展更深入的植物组织培养研究，探索新的实验方向。
5.3 实验应用：将胡萝卜组织培养技术应用于其他植物的组织培养实验中，拓展实验内容。
结语：通过以上教学设计，胡萝卜组织培养实验可以更好地帮助学生理解植物生长过程和培养技术，培养他们的实验操作能力和科学研究精神。
教师可以根据实际情况进行适当调整，提高实验教学的效果和趣味性。
希望本文的内容对胡萝卜组织培养教学设计有所帮助。
胡萝卜愈伤组织培养实验报告
植物细胞工程-胡萝卜的组织培养姓名：物理数学狂班级：生物技术综合班学号：2019004284【实验计划】1.MS培养基母液的配置与保存、MS固体培养基的配置（准备实验）2.外植体胡萝卜愈伤组织的诱导培养（2018.10.18）3.胡萝卜愈伤组织的继代培养（2018.11.8）4.胡萝卜愈伤组织悬浮培养（2018.11.22）5.胡萝卜愈伤组织诱导生根（2018.12.1）6.观察实验结果（2018.12.13）【实验时间】2018年10月18日-2018年12月13日实验（一）MS 培养基母液的配制与保存一、实验目的1.通过MS 培养基母液的配制，掌握配制培养基母液的基本技能；2.掌握培养基各种母液的保存方法。
二、实验原理1.MS 培养基的特点：①无机盐浓度高；②高含量的氮、钾，尤其是硝酸盐；③含有一定的铵盐，营养丰富；④不需要添加更多的有机附加物。
MS 按照营养水平划分为基本培养基。
2.培养基是植物离体培养组织和细胞赖以生存的营养物质，配置培养基时，为了减少试剂称取时的工作量出现的误差，以及多种营养成分混合导致沉淀产生或相互反应而失去培养效果，需要预先将各种营养成分配置为一定倍数的培养基母液，待使用时稀释到适合的浓度。
母液的浓度为培养基浓度的10倍、20倍、50倍、100倍等或更高。
3.需要时将配置好的母液按一定比例稀释到培养基指定浓度，再加入琼脂、蔗糖、生长调解物质等，制成符合要求的培养基。
三、器材与试剂1.器材：各类天平、磁力搅拌器、冰箱、烧杯、量筒、玻璃棒、试剂瓶、标签；2.试剂：95%酒精，0.1-1N NaOH ，0.1-1N HCl ，配制MS 培养基所需的各种无机物、有机物，蒸馏水。
四、方法步骤（一）母液的配制母液是欲配制培养基的浓缩液，一般配成比所需浓度高10—100倍。
优点：（1）保证各物质成分的准确性；（2）便于配置时快速移取；（3）便于低温保藏。
1.MS 大量元素母液（10×）称10升量溶解在1升蒸馏水中。
生物胡萝卜实验报告
一、实验目的1. 掌握植物组织培养的基本原理和方法。
2. 学习胡萝卜愈伤组织的诱导、继代培养和细胞悬浮培养技术。
3. 了解胡萝卜体细胞胚胎发生培养的过程。
二、实验原理植物组织培养技术是利用植物细胞的全能性，通过人工控制培养条件，使植物细胞或组织在体外发育成完整植株的技术。
胡萝卜愈伤组织诱导、继代培养和细胞悬浮培养是植物组织培养技术中的重要环节。
三、实验材料与仪器材料：- 胡萝卜- MS培养基- 营养液- 消毒剂- 玻璃器皿- 移液器- 高压蒸汽灭菌器- 恒温培养箱四、实验步骤1. 胡萝卜外植体消毒- 将胡萝卜洗净，切成小块，用70%酒精消毒30秒，然后用无菌水冲洗3次。
- 将消毒后的胡萝卜小块接种于MS培养基中。
2. 愈伤组织诱导- 将接种后的胡萝卜小块放入恒温培养箱中培养，温度控制在25℃左右，光照时间为12小时/天。
- 观察胡萝卜小块的愈伤组织形成情况。
3. 愈伤组织继代培养- 将形成的愈伤组织转移到新的MS培养基中进行继代培养。
- 继代培养过程中，每隔一段时间更换一次培养基。
4. 细胞悬浮培养- 将继代培养后的愈伤组织切成小块，接种于营养液中。
- 将接种后的细胞悬浮培养于恒温培养箱中，温度控制在25℃左右，光照时间为12小时/天。
- 观察细胞悬浮培养过程中细胞生长和繁殖情况。
5. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 将细胞悬浮培养获得的细胞转移到新的培养基中进行胚胎发生培养。
- 观察胚胎发生培养过程中胚胎的形成情况。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织诱导- 在适宜的培养条件下，胡萝卜小块逐渐形成愈伤组织。
2. 愈伤组织继代培养- 经过继代培养，愈伤组织数量增加，体积增大。
3. 细胞悬浮培养- 细胞悬浮培养过程中，细胞生长和繁殖良好，形成了大量悬浮细胞。
4. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 胚胎发生培养过程中，部分细胞形成了胚胎，进一步发育成胡萝卜植株。
六、实验结论1. 通过本实验，成功诱导了胡萝卜愈伤组织。
培育胡萝卜实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作技术。
2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导、继代增殖和细胞悬浮培养的方法。
3. 熟悉胡萝卜体细胞胚胎发生培养过程。
二、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜胡萝卜肉质根、MS培养基、植物激素、无菌水、75%酒精、无菌滤纸等。
2. 实验仪器：超净工作台、高压蒸汽灭菌器、电子天平、显微镜、移液枪、培养皿、培养箱等。
三、实验方法1. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 将新鲜胡萝卜肉质根洗净，切成小块，用75%酒精消毒30秒，无菌水冲洗3次。
- 将消毒后的胡萝卜小块接种于诱导培养基（MS培养基+2,4-D 1mg/L+6-BA1mg/L）中，在无菌条件下进行培养。
- 观察胡萝卜小块的愈伤组织形成情况。
2. 胡萝卜愈伤组织的继代增殖- 将诱导出的愈伤组织切割成小块，接种于继代培养基（MS培养基+2,4-D0.5mg/L+6-BA 0.5mg/L）中。
- 在无菌条件下进行培养，观察愈伤组织的增殖情况。
3. 胡萝卜细胞悬浮培养- 将继代增殖后的愈伤组织用无菌水冲洗，剪碎，加入适量MS培养基和植物激素（2,4-D 0.1mg/L+6-BA 0.1mg/L）。
- 在无菌条件下进行搅拌，使愈伤组织细胞悬浮。
- 将悬浮细胞接种于细胞悬浮培养基（MS培养基+2,4-D 0.1mg/L+6-BA0.1mg/L）中，在无菌条件下进行培养。
- 观察细胞悬浮培养的生长情况。
4. 胡萝卜体细胞胚胎发生培养- 将细胞悬浮培养得到的愈伤组织细胞，用无菌水冲洗，剪碎，加入适量MS培养基和植物激素（NAA 0.1mg/L+KT 0.1mg/L）。
- 在无菌条件下进行搅拌，使愈伤组织细胞悬浮。
- 将悬浮细胞接种于体细胞胚胎发生培养基（MS培养基+NAA 0.1mg/L+KT0.1mg/L）中，在无菌条件下进行培养。
- 观察体细胞胚胎发生培养的生长情况。
四、实验结果与分析1. 胡萝卜愈伤组织的诱导- 经过诱导培养，胡萝卜小块表面逐渐出现愈伤组织，愈伤组织呈白色、半透明状，质地较软。
胡萝卜的实验报告
一、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和方法。
2. 掌握胡萝卜组织培养的操作步骤。
3. 观察胡萝卜愈伤组织诱导、增殖、分化等过程。
4. 分析胡萝卜组织培养的实验结果，探讨影响实验效果的因素。
二、实验材料与仪器1. 实验材料：胡萝卜、无菌手术刀、镊子、剪刀、无菌滤纸、无菌水、无菌培养基等。
2. 实验仪器：超净工作台、培养箱、显微镜、电子天平、移液器、培养皿等。
三、实验方法1. 胡萝卜外植体准备：将胡萝卜洗净，用无菌手术刀将胡萝卜根切成小块，每个小块约1cm×1cm，放入75%酒精中消毒30秒，再用无菌水冲洗3次。
2. 胡萝卜愈伤组织诱导：将消毒后的胡萝卜小块接种于MS培养基中，培养温度为25℃±2℃，光照强度为2000lx，光照时间为12小时/天。
3. 胡萝卜愈伤组织增殖：待愈伤组织形成后，将其转接到增殖培养基中，继续培养。
4. 胡萝卜愈伤组织分化：将增殖后的愈伤组织转接到分化培养基中，诱导其分化成植株。
5. 观察与记录：定期观察胡萝卜愈伤组织的生长状况，记录实验数据。
四、实验结果与分析1. 胡萝卜愈伤组织诱导：在MS培养基中，胡萝卜小块经过7天培养，部分小块开始形成愈伤组织，愈伤组织呈白色、半透明状。
2. 胡萝卜愈伤组织增殖：在增殖培养基中，愈伤组织经过10天培养，体积明显增大，颜色逐渐变深。
3. 胡萝卜愈伤组织分化：在分化培养基中，愈伤组织经过15天培养，部分愈伤组织分化出芽和叶片，形成完整的植株。
4. 影响实验效果的因素分析：（1）培养基配方：MS培养基中含有丰富的营养成分，有利于胡萝卜愈伤组织的生长和分化。
（2）外植体消毒：消毒效果直接影响愈伤组织的形成和生长，消毒时间不宜过长，以免损伤外植体。
（3）光照条件：光照强度和光照时间对愈伤组织的生长和分化有重要影响，适宜的光照条件有利于愈伤组织的形成和分化。
（4）温度：温度是影响胡萝卜愈伤组织生长和分化的关键因素，适宜的温度有利于愈伤组织的生长和分化。
【实验】胡萝卜的组织培养
实验操作 1、提取胡萝卜素的实验流程
胡萝卜
粉碎
干燥
萃取
胡萝卜素
浓缩
过滤
2、胡萝卜素提取过程
原料颗粒小，水分 少，萃取效果好
胡 萝粉 干 卜碎 燥
①原料加工：取500g新鲜胡萝卜，清洗，沥干、粉碎、烘干。 ②原料装填：将胡萝卜粉与200mL石油醚装入蒸馏瓶。
注意：
烘干胡萝卜时，要注意控制温度若温度过高 、时间过长，胡萝卜素可能会分解。
含水量、萃取温度、时间等 原料颗粒 小、水分少、萃取温度 高 、时间 长 。
效果好
如何设计提取装置呢？
【合作探究三】
冷凝阅读管教材P78【资料三】，思考下列问题。 1.加热的作用是什么？ 能否明火加热？为什么？ 2.如何防止加热时有机溶剂挥发？ 3.萃取液的浓缩可直接用蒸馏装置， 水浴蒸锅发出去的是萃取剂还是胡萝卜素？ 4.总结提取胡萝卜素的实验流程。
②常用于食品色素；
③使癌变细胞恢复成正常细胞。
3. 理化性质
1. 橘黄色结晶 2. 不溶于水、微溶于乙醇、易溶于
石油醚等有机溶剂 3. 可氧化成两分子维生素A
4. 天然β－胡萝卜素的提取
工业方法： 植物中提取 岩藻中获得 利用微生物的发酵生产
实验室提取方法： 萃取法
【合作探究二】
阅读教材P78【资料一】和【资料二】，思考下列问题。
___需__要_____（填“需要”或“不需要”） 将鲜活的岩藻干燥。 （3）现有乙醇和乙酸乙酯两种溶剂，应选用其中的_乙__酸__乙__酯___
作为胡萝卜素的萃取剂，不选用另外一种的理由是_________ 萃取胡萝卜素的有机溶剂应不与水混溶， 而乙醇是水溶性有机溶剂。
对接高考
（ 2008生物──选修1生物技术实践）
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计引言概述胡萝卜是一种常见的蔬菜，其组织培养技术在生物学教学中具有重要意义。
通过胡萝卜组织培养实验，学生可以了解植物细胞培养的基本原理和操作技巧，培养他们的实验操作能力和科学素质。
本文将介绍胡萝卜组织培养教学设计的具体内容。
一、实验材料准备1.1 选择新鲜的胡萝卜在进行组织培养实验前，首先要选择新鲜的胡萝卜作为实验材料。
新鲜的胡萝卜组织细胞活力高，有利于细胞分裂和再生。
1.2 消毒处理将胡萝卜表面进行消毒处理，以防止外源微生物的污染。
可以使用75%酒精或者含有消毒剂的溶液对胡萝卜进行消毒处理。
1.3 切割准备将胡萝卜切成小段，保证组织培养时细胞易于释放和培养。
切割时要注意使用锋利的刀具，避免对组织细胞造成伤害。
二、组织培养基的配制2.1 选择适当的培养基根据实验的目的和要求，选择适合胡萝卜组织培养的培养基。
常用的培养基包括MS培养基、B5培养基等。
2.2 添加植物生长调节剂在培养基中添加适量的植物生长调节剂，如激素和细胞分裂素，促进胡萝卜组织的分裂和再生。
2.3 调节pH值和渗透压调节培养基的pH值和渗透压，保持培养环境的稳定性，有利于组织细胞的生长和分化。
三、组织培养操作步骤3.1 组织释放将切好的胡萝卜组织放入含有酶解剂的培养基中，利用酶解剂分解细胞壁，释放组织细胞。
3.2 培养条件控制控制培养基的温度、光照、湿度等条件，提供适宜的生长环境，促进组织细胞的生长和分化。
3.3 观察和记录定期观察胡萝卜组织的生长情况，记录细胞分裂和再生的过程，培养学生的观察和记录能力。
四、实验结果分析4.1 细胞分裂和再生分析实验结果，观察细胞分裂和再生情况，了解植物细胞的生长和分化机制。
4.2 形态特征观察观察胡萝卜组织的形态特征，比较不同处理条件下组织的生长状况，培养学生的观察和分析能力。
4.3 数据统计和图表制作对实验结果进行数据统计和分析，制作数据图表，培养学生的数据处理和表达能力。
胡萝卜组织培养教学设计
胡萝卜组织培养教学设计引言：胡萝卜是一种常见的蔬菜，富含维生素和纤维素，对人体健康有不少好处。
为了让学生更好地了解胡萝卜的生长过程和培养方法，我们设计了一套胡萝卜组织培养教学方案。
本文将从胡萝卜的组织培养原理、实验步骤、实验条件、实验结果和教学效果等方面进行详细阐述。
正文：1. 胡萝卜组织培养原理1.1 组织培养的概念和意义组织培养是一种在无菌条件下培养植物细胞、组织和器官的技术，可以实现植物的无性繁殖和基因改良等目的。
1.2 胡萝卜组织培养的原理通过体细胞分裂和再生过程，将胡萝卜的细胞培养成植株，可以利用胡萝卜的愈伤组织、叶片和种子等不同组织进行培养。
2. 胡萝卜组织培养实验步骤2.1 材料准备准备无菌培养基、胡萝卜种子、培养器具等实验所需材料。
2.2 组织消毒将胡萝卜种子进行表面消毒，以杀灭种子表面的细菌和真菌。
2.3 组织分离将胡萝卜种子切割成小块，分离出愈伤组织或者叶片等组织。
2.4 培养基接种将分离出的组织放入无菌培养基中，培养基提供了细胞分裂和再生所需的营养物质。
2.5 培养条件控制控制培养基的温度、光照和湿度等条件，促进组织的生长和分化。
2.6 观察和记录观察培养组织的生长情况，记录实验结果。
3. 胡萝卜组织培养实验条件3.1 温度控制适宜的温度有利于组织的生长和分化，普通在20-25摄氏度之间。
3.2 光照控制适量的光照可以促进光合作用和植物生长，普通采用间接光照或者人工光源。
3.3 培养基配方培养基的配方要根据胡萝卜组织的需求进行调整，提供适宜的营养物质和激素。
4. 胡萝卜组织培养实验结果4.1 组织的生长和分化观察培养组织的生长情况，包括细胞分裂、组织分化和器官形成等过程。
4.2 植株的形成通过培养和再生过程，胡萝卜组织可以形成完整的植株。
4.3 植株的生长情况观察培养植株的生长情况，包括根系发育、茎叶生长和花果结子等方面。
总结：通过胡萝卜组织培养教学设计，学生可以深入了解植物的生长过程和组织培养技术。
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云南大学生命科学实验教学中心实验报告课程名称：细胞工程实验院系：生命科学学院年级专业：2013级生物技术（国家生命科学与技术姓名：杨梦梅选课号：2015107066学号：20131070156座号：A2开课日期：2015.09 学期：2015秋季学期任课教师：吕琦、牛芸云南大学生命科学实验教学中心制胡萝卜愈伤组织的诱导、继代及细胞悬浮培养研究第一作者：杨梦梅同组实验者：赵姗( 云南大学生命科学学院,昆明650504)摘要: 以胡萝卜肉质根为外植体诱导出愈伤组织, 并建立细胞悬浮系. 实验结果表明: 胡萝卜肉质根是诱导愈伤组织和进行细胞悬浮培养的可行外植体; 诱导致密型愈伤组织的最佳激素浓度配比是 0.5 mg/ L 2, 4- D+ 0.4 mg/ L KT;继代培养 1代~ 2时,可得到高活性的悬浮细胞系；细胞悬浮培养细胞经过 14 天达到高峰期（生长平台）。
关键词: 胡萝卜; 组织培养; 细胞悬浮培养; 致密型愈伤组织;The study about inducement, subculture and suspension celllines of Carrots’ callusAbstract: Carrots’ flesh roots can induce callus as explants, and then it establishes suspension cell lines. The experimental results show that: Carrot s’flesh roots really can induce callus and then make suspension cell lines. In order to induce high density callus, the best hormone ratio is 0.5 mg/ L 2, 4- D+ 0.4 mg/ L KT. Subculturing the cell line for 1 to 2 times, we can obtain the suspension cell line with high activity. After 2 weeks, the cell line reaches to the peak of growth.Keywords: Carrot; tissue culture experiments; suspension cell; callus in high density胡萝卜( Daucus carota L . ) , 属于十字花科植物, 是一种十分重要的蔬菜作物, 由于胡萝卜肉质根营养丰富，约含有88％的水、6％～8％糖、1％～2％植物纤维，0．7％～1．2％蛋白质、1％灰份及0～3％脂肪，及其适于生食、加工、烹调等多种用途, 在世界范围内广泛栽培。
中国是农业大国, 胡萝卜作为蔬菜作物在人们生活中起着重要的作用。
因此, 加快我国胡萝卜育种研究以成为迫切需要。
近些年来, 随着生物技术与分子生物学技术的快速发展, 作为生物技术研究的理想材料, 许多国家对胡萝卜体细胞杂交技术、遗传转化与再生技术、分子标记与基因克隆技术进行了广泛深入的研究。
我国科研工作者在胡萝卜的生物技术与分子生物学研究上也取得了一定进展, 特别是在组织培养、原生质体融合、遗传转化及再生等方面。
但是在胡萝卜细胞培养方面并不是太多, 因此继续深入研究还是很有必要的。
本文对胡萝卜愈伤组织诱导的最佳培养基和细胞悬浮培养的条件进行探讨, 为其次生代谢产物α- 胡萝卜素、β- 胡萝卜素（维生素A前体）的生产以及将来的工厂化和分子生物学研究打下基础。
1 材料和方法1. 1材料来源胡萝卜肉质根自农贸市场购买.1. 2 方法1. 2. 1MS培养基的配制1000ml1)用大烧杯取蒸馏水100-120ml2)依次用移液管量取加入母液：100ml大量（10x）、100ml大量钙盐（10x）、10ml微量I（100x）、1ml微量II（1000x）、10ml铁盐（100x）、10ml有机（100x）、100ml有机肌醇（10x）、以及适当含量植物激素。
3)称取30g蔗糖加入，搅拌直至全部溶解，作为1号溶液备用。
4)称取9g琼脂，用量筒量取500ml蒸馏水一起加入1000ml体积白瓷缸中，放在电炉上一边加热一边搅拌，加热直至清澈无沉淀。
将1号溶液加入，继续加热搅拌，至将要沸腾，离火。
5)用pH试纸调pH至5.8-6.0 。
6)在白瓷缸中定容至1000ml，搅拌均匀。
7)分装至350ml培养瓶中每瓶约40~50ml。
121℃高压灭菌20min。
探究实验：培养基代号基本培养基2，4-D mg/L KT mg/LM1 MS 无无M2 MS 1 无M3 MS 2 0.5M4 MS 无 11. 2. 2胡萝卜愈伤组织的诱导( 1) 以胡萝卜肉质根形成层为外植体诱导。
用自来水洗净胡萝卜肉质根, 用小刀切成长约6~7cm块段, 将其在 75% 的酒精中消毒 60s, 再用0. 1% 的升汞消毒 10min或用20%次氯酸钠水溶液消毒20min, 最后用无菌水漂洗三遍每遍5~10min..（2）消毒好的胡萝卜根块, 切去形态学下端的5~10mm厚的一片, 留下部分用消毒好的小刀,沿截面横切成厚度 3~5mm 左右的小圆片, 然后将小圆片的韧皮部和木质部切去, 留下形成层, 再切成长 3mm, 宽 1. 5mm, 高 3~5mm 的小长块, 分别接种在M1、M2、M3、M4的诱导培养基上.（3）获得愈伤后进行继代培养, 培养环境条件与诱导培养相同.1. 2. 3胡萝卜愈伤组织的继代（1）从培养瓶中取出愈伤组织，置于无菌培养皿内，用解剖刀将愈伤组织坏死部分剔除并将愈伤组织切成黄豆大小颗粒，放在无激素的新鲜培养基表面，用镊子轻轻压实，每个培养瓶接种2~3个切块。
用记号笔标注操作者、组别和日期。
（2）3~4周后在相同培养基上继代培养1次。
1. 2. 4胡萝卜细胞无菌系的建立悬浮培养（1）用镊子夹取在固体继代培养基上继代 10d 左右的胚性愈伤组织即分散性好、疏松的愈伤, 称取鲜重2g左右的胡萝卜愈伤组织，在灭过菌的培养皿中用无菌镊子尽量将其拨散。
（2）将散碎的愈伤组织转移入盛有20ml液体无激素MS培养基的三角瓶中。
（3）置于80~120r/min摇床上25℃暗培养。
（4）每隔3天换液1次，用吸管吸去3/4旧培养液，再加入等量新鲜培养液。
连续培养2 代~ 4 代后逐渐形成稳定的细胞系。
1.2.5胡萝卜细胞再分化实验构建——胡萝卜愈伤组织的“器官分化”与“体细胞胚发生”（1）在超净工作台上，用镊子去除继代培养1~2次的疏松愈伤组织，在无菌载台上分割成长 3mm, 宽 1. 5mm, 高 3~5mm 的小长块，去除黑色、灰色或棕色的坏死细胞部分。
（2）接种在M5、M6培养基上，每瓶1~3块，轻轻压实，以保证和培养基充分接触。
（3)标注清楚组别和日期。
26℃，光照16h/d，4周后观察实验结果。
2 实验结果2. 1实验结果记录：2.1.1培养基配置结果：我们组负责配置的是M1，M2，M3，M4每种各接种两瓶。
2.1.2愈伤组织诱导结果：总接种瓶数8瓶总接种块数23块污染瓶数3瓶污染块数 5未污染瓶数5瓶未污染块数18块未污染块中愈伤组织发生块数15愈伤组织发生率83.33%愈伤组织发生情况记录18块接种成功，其中有11块愈伤组织的色泽较新鲜呈近乎白色，7块颜色偏深黄，浑浊。
污染情况及原因分析未成功的3瓶中，污染瓶中，有1瓶是霉菌污染，分析原因为培养基内水分过多，因此要选择水分适宜的培养基；1瓶细菌污染，可能是接种过程中接种器械消毒不够，掀开封口膜时碰到了封口膜里面，也可能是封口膜没绑好；一瓶为在接种过程中胡萝卜组织被烫伤，分析原因为手术刀在灼烧后没有完全冷却就使用，导致胡萝卜切面被烫伤。
2.1.3愈伤组织继代培养结果：总接种瓶数4瓶总接种块数11污染瓶数 2 污染块数 5未污染瓶数 2 未污染块数 6未污染块中愈伤组织发生块数 6愈伤组织发生率100%愈伤组织发生情况记录6块接种成功，其中有4块愈伤组织的色泽较新鲜呈浅黄色，2块颜色偏深黄，浑浊。
污染情况及原因分析两瓶都是在接种过程中胡萝卜组织被烫伤，分析原因为手术刀在灼烧后没有完全冷却就使用，导致胡萝卜切面被烫伤。
2.1.4胡萝卜细胞无菌系的建立悬浮培养结果：（以大组8~12人统计结果）瓶号接种质量g 3天后质量g 6天后质量g 14天后质量g 平均每天增值质量g1 1.98 2.00 2.73 3.90 0.142.1.5胡萝卜细胞再分化实验构建——胡萝卜愈伤组织的“器官分化”与“体细胞胚发生”结果：因实验培养时间问题，还未观察到具体结果。
预测实验结果为：如果愈伤组织脱分化以后进行再分化，则应当先时愈伤组织下部分化出根，在上部发育出芽，随着不断地生长，最终发育成完整的植株；如果是体细胞胚发生，则可以不经过愈伤组织阶段就可以发育为体细胞胚；但是体细胞胚比愈伤组织难生成得多，很多植物还无法进行体细胞胚的诱导生成，体细胞胚一旦形成，便可慢慢的分化为完整的植株。
与愈伤组织发生相比，体细胞胚更不容易发生遗传变异，从而诱导分化发育成的植株更稳定。
2.2实验结果图片第一次培养M1-1 M2-1 M2-2 M4-1 M3-1 培养成功M4-2 霉菌M1-2 细菌污染M3-2 细菌污染烫伤污染情况：接种8瓶，污染3瓶，5瓶未污染第二次培养1-2烫伤2-1霉菌1-1 愈伤组织2-2愈伤组织继代实验情况因未观察到，所以未附图。
3.分析讨论：3.1对实验现象、实验结果的分析及其结论3.1.1胡萝卜愈伤组织诱导实验中，被污染了5瓶，说明在整个实验过程中，一定要注意无菌操作，否则，任何一个环节染菌都会导致外植体被污染，使得实验失败。
3.1.2外植体的选择很重要，由于实验中选了根部上端，但切面比较靠内的胡萝卜，与其他组相比愈伤组织的量或是色泽方面都比较好，但切块太小，也许是因为不一样大小的胡萝卜，但消毒时间是一样的，可能使得胡萝卜组织受伤较重。
3.1.3同一小组中，或同一个人的实验结果都会不一样，这是由于个人操作差异，主要是培养基分装时没混匀，以及无菌操作不够规范，实验熟悉度不过造成的。
3.1.4外植体经过消毒等处理，可在愈伤组织诱导培养基上进行培养，诱导脱分化形成愈伤组织，并且通过改变2,4-D和KT的浓度，可以诱导愈伤组织再分化形成植物体然后再在继代培养基上可以增殖得到更多更好的愈伤组织。
3.2实验总结3.2.1植物组织培养实验一般历时较长，因此要及时将实验过程中的每一部分的操作内容以和实验数据记录下来。