细胞培养传代冻存复苏操作规程(自编)

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细胞复苏标准操作规程

细胞复苏标准操作规程

细胞复苏标准操作规程一、准备工作在进行细胞复苏之前,需要做好以下准备工作:1.准备细胞复苏所需器材和试剂,包括细胞培养瓶、细胞复苏试剂、培养基、离心管、移液管、离心机等。

2.清洗实验器材,消毒处理,确保无菌环境。

3.计算细胞复苏所需剂量和浓度,为后续操作做好准备。

二、细胞复苏前消毒在进行细胞复苏之前,需要对细胞培养基和器材进行消毒处理,以确保细胞生存环境的安全:1.将细胞培养基和器材放入高压锅中进行高温高压消毒。

2.清洗干净细胞培养瓶,确保无残留物。

3.加入适量细胞复苏试剂,以备后续使用。

三、细胞复苏细胞复苏是将冷冻保存的细胞进行复苏解冻的过程,具体操作如下:1.将细胞培养瓶放入37℃恒温水浴中,轻轻晃动培养瓶,使试剂与细胞充分接触。

2.放置于适宜温度下培养,一般需要培养至细胞融合完全。

四、细胞计数和存活率检测在细胞复苏后,需要对细胞进行计数和存活率检测,以了解细胞的生长状态和存活情况:1.收获培养好的细胞,用离心机进行离心分离。

2.计数细胞并检测存活率,可以使用血球计数板或流式细胞仪进行计数和存活率检测。

3.记录所得数据,包括细胞数量、存活率等。

五、细胞传代和扩增在细胞生长至融合完全后,可以进行细胞的传代和扩增,以获得更多的细胞数量:1.将部分细胞进行传代培养,加入适量细胞培养基,置入37℃恒温水浴中。

2.培养一段时间,至细胞融合完全。

3.继续进行细胞的传代和扩增,直至达到所需的细胞数量。

六、细胞质量检测在细胞传代和扩增过程中,需要对细胞的形态、结构和数量进行检测,以评估细胞的质量:1.观察细胞的形态和结构,包括细胞的形状、大小、边缘等特征。

2.对细胞的生长和繁殖情况进行观察和分析,包括细胞的分裂速度、生长曲线等。

3.通过检测细胞的各项指标,综合评估细胞的质量和适用性。

七、记录和整理在细胞复苏、传代和扩增过程中,需要对各项数据进行记录和整理,以便对细胞的生长状态和质量进行评估:1.对每一步操作进行详细记录,包括操作时间、操作人员、操作步骤等。

细胞培养传代冻存复苏操作规程自编

细胞培养传代冻存复苏操作规程自编

细胞培养传代冻存复苏操作规程自编.doc细胞培养传代、冻存、复苏操作规程第一章总则第一条目的为规范细胞培养实验室的操作流程,确保细胞培养的质量和安全,特制定本操作规程。

第二条适用范围本规程适用于所有进行细胞培养、传代、冻存和复苏的实验室人员。

第三条安全与健康实验室人员在操作过程中必须遵守生物安全和个人防护的相关规范。

第二章细胞培养传代第四条传代前的准备检查细胞培养基、血清、胰蛋白酶等消耗品的质量和数量。

确保无菌操作台、培养箱、显微镜等设备正常运行。

第五条传代操作步骤细胞观察:在显微镜下观察细胞形态,确认细胞健康状况。

培养基更换:使用无菌操作吸去旧培养基,加入适量的胰蛋白酶。

细胞分离:待细胞变圆后,轻敲培养瓶,使细胞脱落。

细胞计数:使用血细胞计数板或自动细胞计数仪进行细胞计数。

细胞传代:根据细胞密度和传代比例,将细胞加入新的培养基中。

第六条传代后的观察观察细胞在新培养基中的附着情况。

定期检查细胞的形态和生长状态。

第三章细胞冻存第七条冻存前的准备准备冻存管、冻存液(含DMSO)、标签等。

确保液氮罐或程序降温仪处于良好状态。

第八条冻存操作步骤细胞计数:确保细胞密度和活力符合冻存要求。

冻存液配制:按照比例加入DMSO至冻存液中。

细胞悬液制备:将细胞与冻存液混合均匀。

细胞冻存:将细胞悬液分装至冻存管中,标记信息。

降温过程:将冻存管放入程序降温仪或直接浸入液氮中。

第九条冻存后的管理将冻存管放入液氮罐中,记录存放位置。

定期检查液氮罐的液位和温度。

第四章细胞复苏第十条复苏前的准备准备培养基、胰蛋白酶、无菌操作台等。

检查培养箱、显微镜等设备是否正常。

第十一条复苏操作步骤取出冻存管:从液氮罐中取出所需冻存管。

快速解冻:将冻存管置于37°C水浴中快速解冻。

细胞悬液制备:将解冻后的细胞迅速转移到含有培养基的离心管中。

离心去除DMSO:低速离心以去除DMSO。

细胞培养:将细胞重悬于新鲜培养基中,转入培养瓶中培养。

细胞复苏、传代、冻存过程

细胞复苏、传代、冻存过程

一、细胞培养(复苏、换液、传代、冻存)(已正)进行细胞培养前,将所用物品放入超净台中,打开紫外开关,照射20-30分钟。

紫外结束后,打开鼓风,使超净台自净5-10分钟左右后开始操作。

1.细胞培养液的配制:配制50ml培养液(45ml基础培养液+5ml的胎牛血清+500ul的青霉素/链霉素)(如果基础培养基中自带青/链霉素就无需添加)2.细胞复苏:将细胞冻存管从液氮或者-80℃取出后迅速置于37℃水浴箱中水浴,不停地晃动使其迅速溶解,大约1min。

将溶解好的细胞冻存管喷上75%的乙醇消毒后拿到超净台中,用1ml的无菌大枪头将其混匀后转移至无菌的15ml离心管中,这时向其中缓慢滴加配好的培养液2ml,混匀,1000rpm, 3分钟。

然后弃掉上清,加入1ml配制好的培基使沉淀的细胞重悬。

在T25的培养瓶中加入4ml配好的培养基,然后用1ml无菌的大枪头将重悬好的细胞转移至T25瓶内,使用十字混匀的方法将瓶内的细胞铺匀,从超净台中将T25取出,拿到倒置显微镜下观察细胞是否铺匀,如铺匀了喷上75%的乙醇,放入37℃ 5%CO2的孵箱内。

(将细胞冻存管从液氮或者-80℃取出后迅速置于37℃水浴箱中水浴,不停地晃动使其迅速溶解。

1000rpm, 离心3分钟。

弃掉上清,然后加入1ml配置好的培养基使沉淀的细胞重悬。

此时将其转移到T25瓶内,再加入4ml配好的培养基,使用十字混匀的方法将瓶内的细胞铺匀,从超净台中将T25取出,拿到倒置显微镜下观察细胞是否铺匀,如铺匀了喷上75%的乙醇,放入37℃ 5%CO2的孵箱内。

)3.细胞换液:复苏的细胞在37℃ 5%CO2的孵箱内孵育4-6个小时后就应该给细胞换液,去除未贴壁的死细胞(贴壁生长的细胞)。

贴壁生长的细胞具体过程如下:将原培养基弃去,然后用高压无菌的PBS冲洗1-2次,每次3-5ml,最后一次洗完后倒掉瓶内残余的PBS,小心的用1ml无菌的大枪头加入5ml新鲜培养基,喷上75%的乙醇,放入37℃ 5%CO2的孵箱内。

细胞传代、铺板 、冻存、复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项

细胞传代、铺板 、冻存、复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项

细胞传代的步骤(贴壁细胞为例)
首先,镜下观察细胞密度,90%以上即可传代培养(为了细胞的稳定,距离上 一次传代至少间隔一天。)。
准备工作:无菌枪头、培养瓶、离心管、废液桶等所需物品,培养基、血清、 PBS、胰酶等试剂类,可根据情况,提前放入生物安全柜,进行紫外灭菌;
细胞传代的步骤(贴壁细胞为例)
培养液量 (ml)
0.1 0.2 0.5 1 2 2 5 10 5 15-30
100%细胞量(105) (约) 1 2.5 5 10 25 20 52 137 50 200
培养板需要加入的细胞量
细胞培养板中加入细胞的数量,需要考虑一下几点: 1. 常规实验的设计:转染siRNA(约30%-50%),转染质粒(约70%-
结合镜下观察,调整浓度。 ❖2. 计数细胞:参考前文中各种规格中100%满时细胞的大概数量,再根据实验的
要求,计算加入的细胞的数量。(使用计数板)
细胞计数板的使用
细胞计数板
0.1ul
干净的盖玻片
细胞计数板的使用
10-20 ul 细胞悬液 注意: 避免有气泡!
数上不数下,数左不数右
计算公式: n/4 x104 (个/ml)
4.其他:轻轻移动他人的细胞,轻轻关闭培养箱的门等
细胞冻存
准备工作:FBS,完全培养基,DMSO,或无血清冻存液,冻存管,冻存盒。 常规的细胞传代步骤,至细胞消化后离心完毕,根据细胞的量以及需要冻存的管
数配制冻存液; 冻存液: 10%DMSO+90%FBS/完全培养基(A),或者无血清冻存液(B)。 冻存程序: A : 1. 使用冻存盒:可直接放入-80℃冰箱,第二天转移入液氮罐中。
把细胞转移到生物安全柜中,吸去培养基,加入无菌PBS(只要没过即 可),轻轻摇动清洗细胞,尽量弃尽PBS。

细胞培养传代冻存复苏操作规程自编

细胞培养传代冻存复苏操作规程自编

细胞培养程序材料A、仪器1. 净化工作台,2. 离心机,3. 恒温水浴箱,4. 冰箱(4℃)5. 倒置相差显微镜,6. CO2培养箱,7. 振荡混合仪8. 酶联免疫检测仪,9. 移液枪,10. 电磁力搅拌机,11. 微孔滤器B、玻璃器皿1. 吸管,2. 小烧杯(100ml),3. 废液缸,C、塑料器皿1. 吸头,2. 枪头,3. 96孔培养板,4. 15ml离心管,5. 50ml离心管,6. 胶塞,D、其他物品1. 微量加样枪,2. 红血球计数板,F、试剂1. D-Hanks液,2. 小牛血清,3. RPMI1640,4. 双抗(青霉素、链霉素),5. 0.25%胰酶,6.0.025% EDTA7. 二甲基亚砜(DMSO),8. MTT溶液:称取250mgMTT,放入小烧杯中,加50ml培养液或平衡盐溶液在电磁力搅拌机上搅拌30min,用0.22um的微孔滤器除菌,分装,4℃保存备用,两周内有效。

一、原代细胞培养或细胞株(系)复苏培养:(一)细胞原代培养1.贴壁细胞培养法:1)、组织块培养法将所取得的组织用含青霉素、链霉素400U/ml和400ug/ml的生理盐水漂洗2此,5分钟/次。

取出组织尽可能的取出液滴,置青霉素小瓶中,加两滴小牛血清,用剪刀尽可能将其剪碎,用吸管将其泥状的组织点种在培养瓶壁,倒置于37°、5%CO2条件下30分钟后将培养瓶正置,从培养瓶的一端缓缓加入完全培养液(小牛血清15%、青霉素、链霉素各100U、100ug/ml),使组织块有培养液与其接触为准,轻轻放置于37°培养。

待24小时候补液。

或小块放置后,轻轻翻转培养瓶,使瓶底朝上,然后于瓶内加入适量培养基盖好瓶塞,将瓶倾斜放置在37℃温箱内。

培养2~4小时,待小块贴附后,将培养瓶缓慢翻转平放,静置培养,动作要轻,严禁摇动和来回振荡,以防由于冲动而使小块漂起而造成培养失败,若组织块不易贴壁可预先在瓶壁涂一薄层血清、胎汁或鼠尾胶原等。

细胞传代冻存复苏步骤

细胞传代冻存复苏步骤

准备处事:之阳早格格创做1、加进细胞室前,最先用75%酒粗揩试处事台,交着紫中灭菌30-50min,过后,关关紫中灯,透气10min.2、从冰箱中与出胰酶、PBS缓冲液、培植基注意事项:1、所有真验用的器械,仪器灭菌,消毒,烘搞.2、挨开溶剂,培植瓶瓶盖时,瓶心及瓶盖正在酒粗灯上烤一下.3、用完溶剂,培植瓶时,瓶心及瓶盖也要正在酒粗灯上烤一下.开初处事:1、真验前易服帽,开风淋,吹风.2、75%乙醇揩脚,而后用75%乙醇揩一下台里,面焚酒粗灯.3、与待用的细胞,旋紧瓶盖.4、弃去旧的培植液,把培植瓶搁回本处.5、与移液管一支,塞棉花端,及管身,均正在酒粗灯上烤一下,套佳吸球.而后将PBS缓冲液弃掉.7、用移液管(微量枪)吸与适量胰酶约2ml(所用胰酶的量),弃掉枪头.8、将细胞置于5%CO2、37度培植箱中1min-2min,脚段:普及酶活性,促进消化.9、与待用细胞,与移液管一支,塞棉花端,及管身,均正在酒粗灯上烤一下,套佳吸球.10、用移液管加进适量的真足培植液浑洗(吹集细胞)细胞,将瓶底粘着的细胞吹集下去,再将细胞悬液移进的离心管中,启心,标签.11、离心5min,1000转/min.以下分别介绍:一换液1、与待用的细胞,旋紧瓶盖.2、弃去旧的培植液,把培植瓶搁回本处.3、与移液管一支,塞棉花端,及管身,均正在酒粗灯上烤一下,套佳吸球.而后将PBS缓冲液弃掉.5、与移液管一支,塞棉花端,及管身,均正在酒粗灯上烤一下,套佳吸球.6、用移液管加进适量的细胞培植液于培植瓶中.7、将细胞置于5%CO2、37度培植箱培植.两传代1、细胞离心毕,拆启,瓶心及瓶盖正在酒粗灯上烤一下,弃去上浑液,吸与已配造的培植基适量,加进离心管中,将细胞沉悬、吹匀.2、与4-6滴细胞悬液到新的培植瓶中,培植瓶中应先加佳适量细胞培植液,吹集细胞,镜下瞅察,细胞稀度相宜则置进5%CO2、37度细胞培植箱中.三冻存1、细胞离心毕,拆启,瓶心及瓶盖正在酒粗灯上烤一下,弃去上浑液.2、按胎牛血浑:DMSO=9:1的比率配造冻存液,拆进青霉素瓶中.3、用移液管将冻存液仄衡加进离心管中,混匀离心管中细胞冻存液.4、用移液管将含细胞的冻存液移进冻存管中,启心,标签.5、冻存,需缓缓冻存,先搁置4度冰箱1小时,而后搁置-20度冰箱2小时,再置于-80度冰箱过夜,终尾置于液氮灌中保存.四种板1、细胞离心毕,拆启,瓶心及瓶盖正在酒粗灯上烤一下,弃去上浑液.2、与培植瓶及小烧杯各一只,摆搁佳.3、与移液管一支,塞棉花端,及管身,均正在酒粗灯上烤一下,套佳吸球.4、先移与2ml,5ml,20ml真足培植液,分别加进到离心管,培植瓶,小烧杯中.5、混匀离心管中含真足培植液的细胞,再从离心管中与适量细胞悬液移进培植瓶,吹集细胞.镜下瞅察,细胞稀度相宜则置进5%CO2、37度细胞培植箱中.(细胞传代脚段)6、与细胞计数板,盖玻片酒粗揩拭,均正在酒粗灯上烤一下,用微量枪从小烧杯中与出细胞悬液(约10μl),弃掉枪头,滴进盖玻片下(没有克没有及有气泡,可则会做用细胞计数),镜下瞅察细胞数(每个象限5个细胞,总战20个细胞,5×104个),没有竭安排小烧杯中细胞悬液的细胞浓度,直至镜下瞅察细胞数目切合央供.7、与1个96孔板,用酒粗棉绕96孔板边沿处揩拭一周,孔板盖正在酒粗灯上烤一下.8、用微量枪从小烧杯中与出细胞悬液(约100μl),依次滴进96孔板中(枪头至孔下1/3处),共时用移液枪吸与真足培植液(约100μl)动做对付照或者调整,边沿孔用无菌PBS弥补.9、滴完后,仍用酒粗棉绕96孔板边沿处揩拭一周.10、将96孔板置于5%CO2、37度细胞培植箱中举止培植.五 MTT真验1、交种细胞:用含10%胎牛血浑的培植液配成单个细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞交种到96孔板,每孔体积100μl.2、称与3mg MTT粉终,加6ml真足培植液,配造成浓度5%的MTT溶液,的微孔滤膜除菌.3、培植细胞:共普遍培植条件,培植3-5天(可根据考查脚段战央供决断培植时间).4、培植3-5天后,与出96孔板,用酒粗棉绕96孔板边沿处揩拭一周,孔板盖正在酒粗灯上烤一下.5、用(120μl)移液枪留神吸弃孔内培植上浑液(包罗调整孔内的培植上浑液),弃去枪头.再用移液枪按每孔100μl加MTT溶液也包罗调整孔,但是边沿孔除中(枪头正在孔上1/3处).6、呈色:继承孵育4小时,终止培植,留神吸弃孔内培植上浑液,对付于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培植上浑液.每孔加150μl DMSO,置摇床上振荡10分钟,使结晶物充分融解.7、比色:采用490nm波少,正在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸支值,记录截止,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标画造细胞死少直线.六复苏1、准备处事:开开恒温火浴锅,将温度安排正在37℃,与一离心管,加进5ml细胞培植基.2、与出冻存管,坐时搁进火浴锅中赶快摇摆,让冻存液赶快融化.3、用酒粗棉球揩洗冻存管中部以落矮传染机会.4、挨开冻存管,将冻存液留神变化到预先加进有培植基的离心管中,800rpm离心5分钟.5、留神弃掉上浑,加进约5ml培植基沉悬细胞.6、将所得细胞悬液变化进培植瓶中,盖上瓶塞,置培植箱培植.换液,传代真验用材:牛奶瓶2个---PBS缓冲液,DMEM培植基血浑瓶1个---胰蛋黑酶换液:移液管2个传代:培植瓶1个,移液管3个,离心管1个MTT真验用材:试剂:MTT粉,PBS缓冲液,真足培植液,两甲亚砜(DMSO)器材:96孔板,移液管,移液枪,烧杯,青霉素瓶若搞,小滤器,微孔滤膜除菌,酶联免疫检测仪.浑单:牛奶瓶1个,血浑瓶2个,培植瓶3个,移液管5个,离心管2-3个.。

细胞的培养-传代-计数-冻存-复苏

细胞的培养-传代-计数-冻存-复苏

一、细胞复苏(1)提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用;10%的FBS-高糖DMEM,青/链霉素,D-Hanks溶液放在37℃水浴锅中预热备用。

(2)快速从液氮罐中取出细胞冻存管,即刻放入37℃水浴锅中解冻,1000r/min 离心5分钟。

(3)吸取弃去上清液,在冻存管中加入培养基混悬细胞,移液器转移至细胞培养皿中,反复两次用培养液清洗冻存管,清洗液也移入培养瓶中。

(4)加入足量的培养液,放在CO培养箱中细胞培养,第二天换液。

2二、细胞冻存(1)提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用;10%的FBS-高糖DMEM,青/链霉素,D-Hanks溶液,DMSO放在37℃水浴锅中预热备用。

生长状态良好的细胞铺满培养瓶底的约80%时,换液后 12~24h 换液培养。

吸去培养液,D-Hanks溶液冲洗瓶底一次再吸弃。

加入 0.25%胰酶到培养瓶,覆盖瓶底,来回转动培养瓶,观察等待细胞消化至多数细胞形状变圆或从瓶底脱落下来。

(2)加入 5ml 含血清的培养液中止消化。

反复吸取瓶内培养液吹打细胞,形成细胞悬液。

进行细胞计数,细胞悬液移植15ml离心管中,3500r/min 离心 5 min。

(3)静置吸弃上清液,然后加入冻存液(73% DMEM 培养液,20%FBS,最后添加 7%DMSO 二甲基亚砜),细胞计数达到2×106/ml 以上。

细胞混匀后加入冻存管中,每管 1ml。

注明细胞种类、代数、冻存时间、名字,检查密封性。

降温程序:冷冻管置于4℃ 10 分钟→-80℃ 16~18 小时(或隔夜)→液氮槽(-196℃)长期储存。

三、细胞传代(1)提前20分钟打开生物安全柜紫外灯消毒待用;10%的FBS-高糖DMEM,青/链霉素,D-Hanks溶液放在37℃水浴锅中预热备用。

当细胞长满培养瓶底的约80%时,吸弃原先的培养液。

(2)加D-Hanks溶液洗涤一次瓶底,吸弃。

加入 0.25%胰酶到培养瓶,覆盖瓶底,来回转动培养瓶,观察等待细胞消化至多数细胞形状变圆或从瓶底脱落下来。

步骤不能再精细!细胞复苏、传代及冻存

步骤不能再精细!细胞复苏、传代及冻存

步骤不能再精细!细胞复苏、传代及冻存细胞复苏、传代及冻存实验步骤:一复苏传代( 1)准备无菌超净台,酒精灯,75%酒精喷壶,CO2培养箱,37℃水浴锅,离心机;培养瓶,含10%胎牛血清的完全培养基和基础培养基以及PBS磷酸缓冲液(提前放置超净台使平衡到室温),无菌工作服(白大褂),口罩,手套,记号笔(2)步骤1穿好无菌工作服,带上口罩和手套,快速从液氮里取出冻存管,快速放进37℃水浴锅缓慢摇晃使细胞解冻,注意冻存管的封口膜不要破裂,防止污染。

2 解冻后用纸擦干冻存管表面的水滴,酒精喷壶喷洒适量75%酒精消毒冻存管封口处。

3 开超净台,点燃酒精灯燃烧片刻后(可提前准备),冻存管放超净台,换新手套,小心打开冻存管,避免污染,无菌吸管将1ml细胞全部吸出至5ml无菌EP管,补加9ml基础培养基稀释,1000rpm,离心5min使细胞沉淀,弃上清。

4 加入新鲜配制的含10%血清的培养基4ml,轻轻混匀,用吸管将细胞移至25T培养瓶。

5平躺放置培养瓶,8字形混匀后,置于37℃,5%CO2培养箱培养。

6培养24小时后,显微镜观察细胞(贴壁细胞)贴壁后,小心更换培养基,继续培养,根据不同细胞的生长状态进行传代培养,培养瓶上标记:操作者,时间,细胞类型。

7有的实验员的培养基会加入抗生素防止细胞污染,但是这对于掌握细胞培养是非常不利的,不加抗生素培养细胞更能提醒实验者无菌操作的意识。

一旦细胞出现污染,易于发现,一旦发现污染的细胞应立刻煮沸丢弃,以免污染同实验室其他细胞。

8细胞长满90%-100%即可传代,小心打开培养瓶,瓶口过酒精灯消毒,弃培养基。

9加入1mlPBS,润洗细胞,重复3次,弃PBS。

10加入4ml完全培养基,用无菌吸管小心吹打贴壁细胞或者用胰蛋白酶消化细胞使细胞脱落。

11转移1/2脱落的细胞至新的培养瓶,各瓶补加完全培养基至4ml。

12小心封口,平躺放置培养瓶,8字形混匀后,置于37℃,5%CO2培养箱培养。

细胞冻存和复苏标准操作规程

细胞冻存和复苏标准操作规程

细胞冻存和复苏标准操作规程(SOP)背景知识:细胞培养的传代及日常维持过程中,在培养器具、培养液及各种准备工作方面都需大量的耗费,而且细胞一旦离开活体开始原代培养,它的各种生物特性都将逐渐发生变化并随着传代次数的增加和体外环境条件的变化而不断有新的变化。

因此及时进行细胞冻存十分必要。

细胞冷冻储存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;细胞储存在液氮中,温度达-196℃,理论上储存时间是无限的。

原理:细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融,实验证明这样可以最大限度的保存细胞活力。

目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质能提高细胞膜对水的通透性,加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外,减少细胞内冰晶的形成,从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。

复苏细胞应采用快速融化的方法,这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化,避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。

一、材料(一)仪器1. 净化工作台,2. 离心机,3. 恒温水浴箱,4. 冰箱(4℃、-20℃、-70℃),5. 倒置相差显微镜,6. 培养箱,7. 液氮冰箱(二)玻璃器皿1. 吸管(弯头、直头),2. 培养瓶,3. 玻璃瓶(250ml、100ml),4. 废液缸(三)塑料器皿1. 吸头,2. 枪头,3. 胶塞,4. 移液管(10ml),5. 15ml离心管,6. 冻存管(1~2ml)(四)其他物品1. 微量加样枪,2. 红血球计数板,3. 记号笔,4. 医用橡皮膏,5. 移液枪(五)试剂1. D-Hanks液,2. 小牛血清,3. 培养液,4. 双抗(青霉素、链霉素),5. 胰蛋白酶(0.25%),6. 1NHCl,7. 7.4%NaHCO3,8. DMSO(分析纯)或无色新鲜甘油二、操作步骤(一)细胞冻存1. 配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的冻存培养液;2. 取对数生长期的细胞,用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来,悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中、;3. 离心1000rpm,5min;4. 去除胰蛋白酶及旧的培养液,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的最终密度为5×106/ml~1×107/ml;5. 将细胞分装入冻存管中,每管1~1.5 ml;6. 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者;7. 冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/ min;当温度达-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/ min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。

细胞培养基本方法(复苏、换液、传代、冻存)

细胞培养基本方法(复苏、换液、传代、冻存)
8.用吸管吸取5ml-8ml的培养基打入培养瓶内,烧瓶口, 镊子和盖子;
9.盖上盖子,倒置显微镜下观察,之后标明名称和日期, 酒精棉球擦瓶口和瓶身,放入培养箱内即可。
注意:
1.打开培养箱时尽量不要说话; 2.步骤9中培养瓶放入培养箱时,应把盖子拧开少许。
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传代
1.把细胞培养瓶从培养箱中拿出,拧紧盖子; 2.观察瓶内培养基的颜色,是否浑浊等;放在
3.放入超净工作台内,点燃酒精灯,拿培养瓶 口在酒精灯火焰上转两圈以上,至少三秒。
4.取下盖子,烧瓶口;倒掉培养基,烧瓶口;
5.拿出PBS瓶子,烧瓶口和镊子;用镊子将 塞子取出,烧瓶口(至少10圈)。
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6. 用吸管吸取3ml的PBS,打入培养瓶内。烧培养 瓶口,来回晃动PBS100次后到掉PBS。重复此 操作一次。
4. 取下盖子,烧瓶口;倒掉培养基,烧瓶口;
5. 拿出PBS液瓶子,烧瓶口和镊子;用镊子将 塞子取出,烧瓶口(至少10圈)。
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6.用吸管吸取3ml的PBS,打入培养瓶内。烧培养瓶口, 来回晃动PBS100次后到掉PBS。重复此操作一次。
7.拿出培养基瓶子,烧瓶口和镊子;用镊子将塞子取出, 烧瓶口(至少10圈)。
11.拿到工作台内,烧瓶口,取下盖子,烧瓶 口。用吸管吸出胰酶,烧瓶口。
12.拿出培养基瓶子,烧瓶口和镊子;用镊子 将塞子取出,烧瓶口(至少10圈)。
13.用吸管吸取5ml的培养基打入培养瓶内, 用吸管吹打成单个细胞悬液。计数,分装 即可。
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冻存
1.把细胞培养瓶从培养箱中拿出,拧紧盖子;
2.观察瓶内培养基的颜色,是否浑浊等;放在 倒置显微镜下观察细胞生长状况。

细胞冷冻及复苏操作流程

细胞冷冻及复苏操作流程

细胞冷冻及复苏操作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。

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细胞传代铺板冻存复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项

细胞传代铺板冻存复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项

细胞传代铺板冻存复苏等细胞培养相关操作步骤和注意事项细胞传代:细胞传代是指将已经培养得到的细胞进行继代,以维持细胞的健康生长和增殖。

具体步骤如下:1.预备培养基和消化液:准备需要的培养基和细胞消化液,将培养基预暖在37摄氏度保温箱中。

2.消化细胞:将已经生长到80-90%的细胞培养皿放到细胞消化液中消化,消化时间根据细胞的种类和生长状态而定。

消化完成后,在显微镜下观察,确保细胞基本脱落。

3.细胞计数与离心:将细胞消化液转移到离心管,进行细胞计数。

根据所需细胞数量计算所需消化液的体积,并用预暖的培养基配置所需的细胞悬液。

离心细胞消化液以去除细胞消化的消化液。

4.铺板:将计算好的细胞悬液转移到铺板中,轻轻摇晃铺板使细胞均匀分布。

放置在培养箱中,培养条件根据细胞类型而定。

注意事项:-消化时间不宜过长,否则细胞会受到过度损伤。

-细胞计数时要使用显微镜和相关计数仪器,确保准确性。

-铺板时要轻轻摇晃铺板以均匀分布细胞,避免气泡产生。

冻存:冻存是将细胞保存在低温条件下,以备日后使用。

具体步骤如下:1.细胞准备:选择处于对称生长期的细胞进行冻存。

对细胞进行消化并离心,将细胞沉淀取出至干燥的离心管。

2.冻存液准备:根据细胞的特性和保存要求选择合适的冻存液,如含有二甲基亚砜(DMSO)和甘油的培养基。

将冻存液预暖。

3.冻存管装填:将已洗净的冻存管放入液氮中预冷,稍微干燥后将细胞沉淀均匀加入冻存管中。

用塑料冻存盖或冷却后的金属冻存夹紧。

4.冷冻:将装有细胞的冻存管放入-80摄氏度的深冷冰箱中,预冻24小时到48小时。

等冷冻固化后将管子迁移到液氮冷冻罐中。

注意事项:-使用合适的冻存液,避免对细胞造成过度伤害。

-在严格消毒和无菌条件下进行冻存操作。

-细胞冷冻时,必须迅速并且均匀降温,以避免冷冻诱导的细胞损伤。

复苏:复苏是指冻存的细胞被解冻、恢复生长和增殖的过程。

具体步骤如下:1.细胞解冻:将冻存的细胞管迅速取出,直接放入37摄氏度的水浴中,轻轻摇动直至融化。

干货I细胞复苏、冻存、传代之实验操作及注意事项

干货I细胞复苏、冻存、传代之实验操作及注意事项

干货I细胞复苏、冻存、传代之实验操作及注意事项细胞培养之实验操作及注意事项|细胞复苏/冻存/传代一、细胞培养前期准备工作细胞培养仪器设备:●细胞培养通风橱(即生物安全柜)●培养箱(通用推荐:湿式二氧化碳培养箱)●离心机●医用冰箱(4℃)和冰柜(-20℃)、生物超低温冰箱(-80℃)、液氮冷冻罐●倒置显微镜其他用品:细胞培养容器(培养瓶、培养皿、多孔板等),吸管和移液器,培养基、血清和试剂注意事项:●无菌工作区域:细胞培养实验室的主要要求是需要维持细胞培养操作工作区域处于无菌状态,最简单经济的方式就是使用细胞培养通风橱。

●无菌试剂和培养基:商品化试剂和培养基经过严格的质量控制以确保无菌,注意操作过程中不要被污染,其他试剂和溶液需要选择适当的灭菌方法(例如:高压蒸汽、无菌过滤等)进行灭菌。

●无菌操作:要求操作人员在实验开始前对工作区域和双手操作部分进行75%酒精消毒;尽量使用一次性塑料吸管进行单次操作,避免交叉污染;试剂瓶和培养用具使用时方可开盖,用后要第一时间盖上,暴露于环境中的时间尽可能要短。

●整体的细胞实验环境也弥足重要,需要定期对实验室环境进行较为彻底的清扫消毒和杀菌,包括实验用仪器和室内地面、桌面等。

二、细胞的复苏与冻存细胞复苏:在细胞状态不足以满足实验需求或者出现细胞污染的情况下,需要进行细胞复苏:a)从超低温冰箱或者液氮中取出自保存或商品化购买的冻存细胞后,快速转移至37℃水浴条件下轻轻转动融化(一分钟内)。

b)75%酒精擦拭冻存管外部后,转移至通风橱中。

c)加入适量新鲜的完全培养基混合,约800-1000rpm下离心5-10分钟,实际离心速度时间取决于细胞种类和细胞状态。

d)新鲜培养基重悬后接种于相应的培养器皿中,做好标记,37℃,5%CO2条件下培养。

细胞冻存:为现有细胞系做细胞储备,需要对代数相对靠前的细胞进行扩增培养和细胞冻存:a)准备细胞冻存液,置于2℃-8℃下备用。

b)观察待冻存的细胞,密度达到80%-90%左右,将贴壁/悬浮细胞分别按照传代方法收集。

细胞培养传代及冻存操作规程

细胞培养传代及冻存操作规程

细胞培养、传代及冻存操作规程一、细胞的复苏1、实验器材及试剂保温杯、温度计、镊子、温水(39℃)、培养板(根据需要选择相应孔数的培养板如6孔板,12孔板,24孔板等)、培养基DMEM+10%血清、双抗、1.5ml 离心管。

2、操作步骤①取相应体积的培养基放入到培养板中并加入双抗,放入CO2培养箱中预热,然后取适量的冷水加入到保温杯中,把温度计置于保温杯中,边加开水边用温度计搅拌,时刻关注温度计的度数直到温度升至39℃为止(为防止在移动过程中温度降低可把温度调高1——2℃。

②用镊子将所需要的细胞从液氮中取出,迅速放入提前准备好的温水中并不停的搅拌使其迅速解冻,细胞解冻好之后用移液枪把冻存管中的细胞连同冻存液一起吸出放到1.5ml离心管中,5000rpm/min 离心2min,尽量的除掉上清,然后在加入500μl培养基反复吹打待混合均匀后放入到事先准备好的培养板中并注明名称、日期及操作人。

二、细胞的传代培养1、操作步骤①准备好培养板加入相应体积的培养基之后放入培养箱中预热,添加培养基的方法如下表②将长满的细胞取出,吸除培养基,用DPBS清洗两遍,在加入相应体积的0.25%胰蛋白酶,使板底细胞都浸入溶液中,然后将培养板置于培养箱中 6 分钟后取出,在显微镜下观察消化情况。

添加胰蛋白酶的体积如下表所示③消化时间完成后应立即终止消化,一是直接加入培养基,二是吸除胰蛋白酶之后在加培养基,加入培养基以后反复吹打在此期间通过显微镜观察培养板中的细胞是否成为单细胞悬液,如果为单细胞悬液则停止吹打,将此单细胞悬液平均分配到已经预热好的培养板中,摇动混匀后放入培养箱24小时后换液。

2、注意事项在细胞传代培养中要时刻注意细胞的生长状态,以便于下一步实验的顺利进行。

其中有两点很重要,第一消化的时间,消化的时间并不是一成不变的,要根据细胞的状态随时终止消化,上面②中所诉的6分钟只是较为理想的时间;第二吹打的力度跟全面性,吹打的力度一定要适中,不能太用力避免将细胞打碎,另外每个培养板都是有边角的,那里会有很多细胞残留,需要提醒的是一定要在显微镜下观察细胞是否全部离开培养板底,如有残留可用枪头将其刮下在吹打。

细胞传代冻存复苏步骤

细胞传代冻存复苏步骤

准备工作:1、进入细胞室前,首先用75%酒精擦试工作台,接着紫外灭菌30—50min,过后,关闭紫外灯,通风10min。

2、从冰箱中取出胰酶、PBS缓冲液、培养基注意事项:1、所有实验用的器械,仪器灭菌,消毒,烘干.2、打开溶剂,培养瓶瓶盖时,瓶口及瓶盖在酒精灯上烤一下。

3、用完溶剂,培养瓶时,瓶口及瓶盖也要在酒精灯上烤一下。

开始工作:1、实验前换衣帽,开风淋,吹风。

2、75%乙醇擦手,然后用75%乙醇擦一下台面,点燃酒精灯。

3、取待用的细胞,旋紧瓶盖。

4、弃去旧的培养液,把培养瓶放回原处。

5、取移液管一支,塞棉花端,及管身,均在酒精灯上烤一下,套好吸球。

6、用移液管加入适量的PBS缓冲液,缓慢荡洗一下细胞,然后将PBS 缓冲液弃掉。

7、用移液管(微量枪)吸取适量胰酶约2ml(所用胰酶的量),弃掉枪头。

8、将细胞置于5%CO2、37度培养箱中1min-2min,目的:提高酶活性,促进消化。

9、取待用细胞,取移液管一支,塞棉花端,及管身,均在酒精灯上烤一下,套好吸球。

10、用移液管加入适量的完全培养液冲洗(吹散细胞)细胞,将瓶底粘着的细胞吹散下来,再将细胞悬液移入的离心管中,封口,标签.11、离心5min,1000转/min。

以下分别介绍:一换液1、取待用的细胞,旋紧瓶盖。

2、弃去旧的培养液,把培养瓶放回原处。

3、取移液管一支,塞棉花端,及管身,均在酒精灯上烤一下,套好吸球.4、用移液管加入适量的PBS缓冲液,缓慢荡洗一下细胞,然后将PBS 缓冲液弃掉。

5、取移液管一支,塞棉花端,及管身,均在酒精灯上烤一下,套好吸球。

6、用移液管加入适量的细胞培养液于培养瓶中。

7、将细胞置于5%CO2、37度培养箱培养。

二传代1、细胞离心毕,拆封,瓶口及瓶盖在酒精灯上烤一下,弃去上清液,吸取已配制的培养基适量,加入离心管中,将细胞重悬、吹匀.2、取4-6滴细胞悬液到新的培养瓶中,培养瓶中应先加好适量细胞培养液,吹散细胞,镜下观察,细胞密度适宜则置入5%CO2、37度细胞培养箱中。

细胞复苏、传代、冻存

细胞复苏、传代、冻存

细胞复苏操作说明(针对冻存细胞)实验仪器:超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,水浴锅 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需复苏的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 从液氮罐中取出冻存管 ,直接浸入 37℃温水中 ,并不时摇动令其尽快融化。

2. 从 37℃水浴中取出冻存管 ,打开盖子 ,移液枪吸出细胞悬液 ,加到离心管并滴加 5 倍以上完全培养 基并混匀 。

3. 操作离心 , 调至1000 转/分 ,时长 10 分钟4. 弃去上清液 ,重悬离心管底部细胞沉淀 ,在 T25 培养瓶中加入 5-6ml 完全培养基 ,计数 ,调整细胞 密度,接种培养瓶 ,37℃培养箱静置培养。

5. 次日更换一次培养液,继续培养。

6. 注意:冻存细胞建议三管一起复苏到一个 T25 培养瓶。

细胞传代操作说明(贴壁细胞)实验仪器 :超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,0.25%胰酶 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需传代的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 细胞于培养箱中 ,愈合度达到 80% ,可进行传代。

2. 按 T25 培养瓶计 ,吸出完全培养基 ,并 PBS 缓冲液轻冲 3 遍 ,添加 0.25%含 EDTA 胰酶 2ml , 消 化 2min(具体时间视细胞而定) ,后用完全培养基将细胞冲洗下来。

1000r/min 离心 10 min ,弃上清 收集细胞,铺至 2 个 T25 培养瓶中培养,各添加 7ml 完全培养基。

3. 注意: 消化时间不易过长,消化前血清成分务必去除干净,终止消化请用新鲜完全培养基,原瓶培养基不可继续使用(终止消化或传代) 。

细胞传代操作说明(悬浮细胞)实验仪器:超净工作台 ,CO2 培养箱 ,倒置显微镜 ,离心机实验试剂:DMEM 培养基 ,胎牛血清 ,三抗实验材料:T25 细胞培养瓶 ,需传代的细胞 ,移液枪 ,枪头 ,离心管实验步骤:1. 细胞于培养箱中,密度达到悬浮细胞传代标准(沉降后可铺满底面),可进行传代。

细胞冻存和复苏标准操作规程

细胞冻存和复苏标准操作规程

细胞冻存和复苏标准操作规程(SOP)背景知识:细胞培养的传代及日常维持过程中,在培养器具、培养液及各种准备工作方面都需大量的耗费,而且细胞一旦离开活体开始原代培养,它的各种生物特性都将逐渐发生变化并随着传代次数的增加和体外环境条件的变化而不断有新的变化。

因此及时进行细胞冻存十分必要。

细胞冷冻储存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;细胞储存在液氮中,温度达-196℃,理论上储存时间是无限的。

原理:细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融,实验证明这样可以最大限度的保存细胞活力。

目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质能提高细胞膜对水的通透性,加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外,减少细胞内冰晶的形成,从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。

复苏细胞应采用快速融化的方法,这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化,避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。

主体内容(操作步骤):一、材料(一)仪器1. 净化工作台2. 离心机3. 恒温水浴箱4. 冰箱(4℃、-20℃、-70℃)5. 倒置相差显微镜6. 培养箱7. 液氮冰箱(二)玻璃器皿1. 吸管(弯头、直头)2. 培养瓶3. 玻璃瓶(250ml、100ml)4. 废液缸(三)塑料器皿1. 吸头2. 枪头3. 胶塞4. 移液管(10ml)5. 15ml离心管6. 冻存管(1~2ml)(四)其他物品1. 微量加样枪2. 红血球计数板3. 记号笔4. 医用橡皮膏5. 移液枪(五)试剂1. D-Hanks液2. 小牛血清3. 培养液4. 双抗(青霉素、链霉素)5. 胰蛋白酶(0.08%)6. 1NHCl7. 7.4%NaHCO38. DMSO(分析纯)或无色新鲜甘油四、操作步骤(一)细胞冻存1. 配制含10%DMSO或甘油、10~20%小牛血清的冻存培养液;2. 取对数生长期的细胞,用胰蛋白酶把单层生长的细胞消化下来,悬浮生长的细胞则直接将细胞移至15ml离心管中、;3. 离心1000rpm,5min;4. 去除胰蛋白酶及旧的培养液,加入适量配制好的冻存培养液,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,计数,调节冻存液中细胞的最终密度为5×106/ml~1×107/ml;5. 将细胞分装入冻存管中,每管1~1.5 ml;6. 在冻存管上标明细胞的名称,冻存时间及操作者;7. 冻存:标准的冻存程序为降温速率-1~-2℃/ min;当温度达-25℃以下时,可增至-5℃~-10℃/ min;到-100℃时,则可迅速浸入液氮中。

细胞培养基本方法(复苏、换液、传代、冻存)

细胞培养基本方法(复苏、换液、传代、冻存)
细胞培养基本方法(复苏、换 液、传代、冻存)
1
细胞培养基本方法(复苏、换 液、传代、冻存)
2
一 原代培养(略)
3
二. 传 代 培 养
准备及注意事项 换液 传代 冻存 复苏 MTT
4
准备事项
1. 紫外灯照射细胞室30分钟,风机运行10分 钟后方可进入实验室.
2. 穿专用的口罩,帽子,拖鞋,工作衣等. 3. 带手套,并用酒精擦拭之. 4. 准备好实验必需用品. 5. 超净工作台内操作前用酒精棉球擦拭台面. 6. 超净工作台内操作完成后,
注意:
保护自己; 先将重铬酸钾完全溶解于水中(必要时可加热帮 助溶解),然后缓慢加入浓硫酸,以免产生热量 太多,使容器破裂。
26
噻唑蓝MTT液配制
方法
1. 称取25mgMTT, 加入5ml PBS液, 混匀, 即成5mg/ml的 MTT液;
2. 用0.22µm的微孔滤器除菌, 避光, 4℃保存一周内使用.
21
RPMI1640培养基的配制:
1. 取一小袋1640培养粉,加高压过的三蒸水800ml, 在1000ml的烧杯中用玻璃棒搅拌溶解;
2. 加碳酸氢钠2.0g,再加三蒸水定容至1000ml; 3. 加青霉素(100U/ml) ,链霉素(100µg/ml); 4. 在超净工作台内过滤除菌,分装成180ml,-
36%-38%的浓HCL到5%的稀HCL的配制比 例为3:17,
例如,配制1000ml的5%的稀盐酸,150ml的浓HCL加850ml的蒸馏水即 可。
28
细胞计数
方法
吸出细胞悬液少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和 计数板之间。 静置三分钟 镜下观察,计数板四大格细胞总数。公式为:细胞数/ml= 四大格细胞总数/4 ×104个

细胞复苏及传代操作方法

细胞复苏及传代操作方法

细胞复苏及传代操作方法
细胞复苏和传代是细胞实验室中常用的实验技术,用于维持和增殖细胞系。

细胞复苏方法:
1. 从冻存细胞库中取出冻存细胞,并将其快速解冻。

可以使用热水浴或速溶法进行解冻。

2. 解冻后,将细胞迅速转移到预先准备好的培养基中。

培养基应包含适当的营养物质和生长因子,以支持细胞复苏和增殖。

3. 将细胞培养在恒温培养箱中,通常在37摄氏度、5% CO2下培养。

4. 定期观察细胞的形态和增殖情况,确定细胞已成功复苏。

传代操作方法:
1. 当细胞达到足够的密度和数量时,用胰酶/胆碱盐溶液或丝裂霉素等方法将细胞从培养器表面剥离。

2. 将细胞转移至新的预先准备好的培养器中,添加新的培养基,以稀释细胞并提供新的营养物质。

3. 培养细胞在恒温培养箱中继续生长和增殖。

4. 定期观察细胞的形态和增殖情况,重复传代操作直到需要的细胞数目达到或超过所需的实验要求。

细胞复苏和传代操作需要严格的无菌操作和细胞培养条件,确保细胞的健康和纯度。

在进行这些操作之前,应进行充分的培训,并遵循实验室的安全操作规程。

细胞冻存、复苏及传代

细胞冻存、复苏及传代

细胞冻存步骤
1、将细胞冻存液(10%DMSO+90%FBS)配好并放置冰箱预冷;
2、当10 cm培养皿中的RBMSC细胞汇合到80%-90%时,用胰蛋白酶将细胞消化下来,1200 rpm离心,去上清;
3、加入PBS重悬细胞,以洗去残留的胰蛋白酶,1200 rpm离心,去上清;
4、加入1ml细胞冻存液重悬后,将细胞重悬液放入冻存管中,并快速将冻存管放入冻存盒中(冻存盒需先复温),再将冻存盒放入-80℃冰箱中过夜,再转移至液氮中保存。

细胞复苏步骤
1、先将培养基配好并复温,在15ml离心管中加入3ml培养基
2、将从液氮罐取出的冻存细胞置于37℃水浴锅中1-2min溶解后,立即将细胞悬液转移至
15ml离心管中,1200 rpm离心3 min,弃上清;
3、加入6ml培养基重悬细胞,并将细胞悬液转移至6cm培养皿中培养,贴壁12h后换液。

4、复苏的细胞应传代2-3代后方可用于实验。

细胞传代步骤
1、当培养皿或培养瓶内的细胞增殖为80-90%时,可进行传代。

2、弃上清,PBS洗2-3次,6cm(10cm)培养皿中加入600μl(800 μl)胰蛋白酶消化1-2min
后,在显微镜下观察细胞是否变成圆形,当细胞变成圆形后,应立即加入培养基终止消化,以免细胞消化过度。

3、1200 rpm离心3min,弃上清,加入1ml培养基重悬,将细胞重悬液转移至含有培养基
的6cm培养皿中进行培养。

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细胞培养程序材料A、仪器1. 净化工作台,2. 离心机,3. 恒温水浴箱,4. 冰箱(4℃)5. 倒置相差显微镜,6. CO2培养箱,7. 振荡混合仪8. 酶联免疫检测仪,9. 移液枪,10. 电磁力搅拌机,11. 微孔滤器B、玻璃器皿1. 吸管,2. 小烧杯(100ml),3. 废液缸,C、塑料器皿1. 吸头,2. 枪头,3. 96孔培养板,4. 15ml离心管,5. 50ml离心管,6. 胶塞,D、其他物品1. 微量加样枪,2. 红血球计数板,F、试剂1. D-Hanks液,2. 小牛血清,3. RPMI1640,4. 双抗(青霉素、链霉素),5. 0.25%胰酶,6.0.025% EDTA7. 二甲基亚砜(DMSO),8. MTT溶液:称取250mgMTT,放入小烧杯中,加50ml培养液或平衡盐溶液在电磁力搅拌机上搅拌30min,用0.22um的微孔滤器除菌,分装,4℃保存备用,两周内有效。

一、原代细胞培养或细胞株(系)复苏培养:(一)细胞原代培养1.贴壁细胞培养法:1)、组织块培养法将所取得的组织用含青霉素、链霉素400U/ml和400ug/ml的生理盐水漂洗2此,5分钟/次。

取出组织尽可能的取出液滴,置青霉素小瓶中,加两滴小牛血清,用剪刀尽可能将其剪碎,用吸管将其泥状的组织点种在培养瓶壁,倒置于37°、5%CO2条件下30分钟后将培养瓶正置,从培养瓶的一端缓缓加入完全培养液(小牛血清15%、青霉素、链霉素各100U、100ug/ml),使组织块有培养液与其接触为准,轻轻放置于37°培养。

待24小时候补液。

或小块放置后,轻轻翻转培养瓶,使瓶底朝上,然后于瓶内加入适量培养基盖好瓶塞,将瓶倾斜放置在37℃温箱内。

培养2~4小时,待小块贴附后,将培养瓶缓慢翻转平放,静置培养,动作要轻,严禁摇动和来回振荡,以防由于冲动而使小块漂起而造成培养失败,若组织块不易贴壁可预先在瓶壁涂一薄层血清、胎汁或鼠尾胶原等。

开始培养时培养基不宜多,以保持组织块湿润即可,培养24小时后再补液,培养3~5天时可换液,一方面补充营养,一方面去除代谢产物和漂浮小块所产生的毒性作用。

其他方法:消化分离法、器官培养略2.悬浮细胞培养法对于悬浮生长的细胞,如白血病细胞、淋巴细胞、骨髓细胞、胸水和腹水中的癌细胞和免疫细胞无需消化,可采用低速离心分离,直接培养,或经淋巴细胞分层液分离后接种培养。

(二)细胞株(系)细胞复苏培养细胞复苏的主要操作步骤(1)佩戴眼镜和手套,从液氮罐中取出安瓿或冷冻管。

(2)迅速放入38℃水浴中,并不时摇动,在1分钟内使其完全融化。

(3) 然后在无菌下取出细胞。

冻存管用75%酒精擦拭消毒后,打开盖子,用吸管将细胞悬液注入离心管中,再滴加10ml培养液。

(4)在1000r/min速度下离心5~10分钟,弃去上层液,加入适量培养液后接种于培养瓶中,接种浓度1×109/L,置37℃温箱静置培养,次日更换一次培养液,继续培养,观察生长情况。

若细胞密度较高,及时传代。

或无需离心直接将细胞加入瓶中,并加入培养基贴壁培养12~24小时后,充去上清,换入新鲜培养基继续培养。

加入的培养液的量依冻存的细胞数量,如果冻存数量为106,则稀释10倍使细胞达到105即可。

注意事项在细胞复苏操作时,应注意融化冻存细胞速度要快,可不时摇动安瓿或冷冻管,使之尽快通过最易受损的温度段(-5~0℃)。

这样复苏的冻存细胞存活率高,生长及形态良好。

然而,由于冻存的细胞还受其他因素的影响,有时也会有部分细胞死亡。

此时,可将不贴壁、飘浮在培养液上(已死亡)的细胞轻轻倒掉,再补以适量的新培养液,也会获得较为满意的结果。

二、细胞维持培养(细胞换液培养)、培养选拔常规观察(一)原代细胞的维持1、贴壁细胞(包括半贴壁细胞的换液)一般三天后组织块周围即可见梭形细胞长出。

第三天换液一次,其换液方法比较简单,即弃去旧液,加入与原培养液相同的等量完全培养基。

若希望细胞能在较长时间内能维持存活,但不需增殖,此时要换成含2%小牛血清的维持液。

待不同组织块周围的细胞连接成片时即可传代。

2、悬浮细胞凡经培养后只在细胞培养基中悬浮生长而不贴壁的细胞,需在倒置显微镜下方可观察到细胞的形态和生长现象,淋巴细胞的短期培养无需换液,但加入生长因子或有丝分裂源(PHA、PMA、COnA、PWM、LPS等)后,细胞不仅会发生转化而且会发生分裂繁殖,此时培养基中的营养成分并不能维持细胞的营养需求,加之代谢产物增多,pH变酸,细胞不适宜生长,需进行换液。

白血病细胞或淋巴瘤细胞体外长期培养时,都需换液培养,待达到饱和密度时才能传代。

换液时,只能采用半量换液的方式,千万不能采取倒去旧液加入新液的方式进行换液。

半量换液的方法如下:将原培养瓶竖起,在30分钟内,若细胞沉于瓶底,可用吸管轻轻吸去一半上清弃去,再加入等量的新鲜完全培养基。

若细胞不能沉于瓶底,可吸出细胞悬液,采用低速离心(1000r/min10min)弃去一半上清加入等量的新鲜完全培养基,混匀后再转入原瓶继续培养。

(二)传代细胞维持培养:同上(三)培养选拔常规观察:1.培养液2.细胞生长情况3.细胞形态变化4.污染情况三、细胞的传代培养:(1)弃旧培养液:吸除或倒掉原瓶中的旧培养基(以25mL培养瓶为例)。

(2)漂洗:每瓶加入2mL,无钙、镁PBS或HANKS液,漂洗贴壁细胞一次后倒掉。

(此步可以省略)(3)消化:每瓶加入1mL消化液(0.25%胰蛋白酶或0.025EDTA混合液1:1),轻轻摇动培养瓶,经消化液铺满所有细胞表面,在倒置显微镜下待1/2细胞变园后加适量完全培养液终止。

或细胞层略有松动,肉眼可观察到“薄膜”现象时,倒掉消化液,再继续作用2~3分钟,轻轻摇动,细胞层可随残留的消化液呈片状从瓶壁上脱落下来,在显微镜下可发现细胞回缩变圆,细胞间隙增大,此时应立即终止消化)。

在37°或25°以上环境进行消化。

(4)终止:加入完全培养基适量(通常10-20%胎牛血清培养基)5ml,用吸管反复吹打瓶壁上的细胞,吹打时要按顺序进行,以确保所有瓶壁均吹打到,吹打时动作要轻柔,不要用力过大,尽可能不要出现泡沫,以避免细胞的机械损伤。

(5)离心:离心(1100rpm)沉淀细胞(5-10分钟),去除培养基(含胰酶及EDTA)。

(6)计数:离心前先滴好计数板待计数,计算细胞的浓度。

(7)传代或冻存:离心后用完全培养基调整适当的细胞浓度后再分瓶培养(可1:3至1:5传代,在25cm2的培养瓶中长满细胞可达5*106/ml,经10倍稀释每瓶达105/ml即可,25cm2的培养瓶每瓶5ml培养液)。

或用冻存液调整浓度(一般达1*107)冻存。

(到此步时经证实未被细菌或真菌污染,则撤去抗生素,以免对细胞的生长长生不利影响,指原代培养细胞)四.细胞冻存:细胞冻存液:20% 小牛血清10% 二甲基亚砜DMSO70% 培养液操作步骤:1.选对数增生期细胞(证明无支原体污染),在冻存前一天换液。

2.按常规方法把培养细胞制成悬液,计数,使细胞密度达5*107/ml左右,离心,去上清液。

(冻存细胞数量要充分,密度达5*107/ml,在溶后稀释20倍时,仍能保持5*105ml数量)。

一般25cm2的培养瓶满瓶才达到105.3.加入配置好的冻存液,与去上清液相同的量一滴一滴的加入离心管中,让侯用吸管轻轻吹打令细胞重悬。

冻存细胞室培养液中加入保护剂10%二甲亚砜(DMSO)或甘油,可使冰点降低,使细胞内水份在冻结前透出细胞外。

(细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含5-10%DMSP和90-95%原来的细胞生长用之新鲜培养基均匀混合。

注意由于DMSO稀释时会释放出大量热能,故不可将DMSO直接加入细胞液中,必须使用前先行配制完成)4.分装于无菌冻存管中,每管1.5ml悬液。

5.旋好冻存管并仔细检查,一定要盖紧,做好标志。

6.冻存:1)冰箱4℃放2小时,-75℃过夜,转液氮保存,2)4°,0°,-20°各30分钟(现代分子生物学实验技术P647),最后直接放入液氮中保存或-80°冰箱保存。

附件一、培养细胞的生长状况观察(一)细胞计数操作规程胎盘蓝法原理:(产品批号:T8154,T6146和Z35,962-9)使用胎盘蓝染色决定血细胞总数和活细胞数目,胎盘蓝是用于染色的多种染料中能被活细胞排斥的一种染料,这种方法的成立是基于活细胞不能被染色:胎盘蓝对血清蛋白比细胞蛋白有一种更强的亲和力,如果背景太深,在计数之前细胞应成球状并重悬在无蛋白的培养基或盐液中。

方法:1、预先在平衡盐液中悬浮细胞(例如:Hank’s平稳盐液HBSS,产品批号:H2513)2、取0.5ml 0.4%胎盘蓝于一试管中,加0.3ml(HBSS和0.2ml细胞悬液(稀释倍数=5)并且混匀,允许放置5-15分钟。

注意:如果细胞在胎盘蓝中暴露时间过长,活细胞也会像死细胞一样被染上色。

3、在血细胞计数板上盖上盖玻片,使用巴斯德毛细吸管或其它合适的器材取少量的胎盘蓝细胞悬液于血细胞计数板上的两个小室中。

将巴斯德毛细吸管小心的靠在盖玻片边缘,利用毛细张力充满小室,不要过度或过少充盈。

1)从血细胞计数板的一个小室开始,计数中间和四角边长/mm的正方形中的所有细胞数(详见sigmaP1845的图样I)死细胞被染成蓝色,分别计数活细胞和死细胞数。

注意:压线细胞的计数原则,数上不数下,数左不数右(详见sigmaP1845的图II)2)重复上述步骤计数第2个小室注意:如果超过10%的细胞成串,应重复全部程序通过吹打务必使细胞在原液中和在胎盘蓝细胞悬液中一样分散,如果在10个正方形方格中细胞数少于200个或多于500个(20-50个细胞/正方形)应重复这个步骤,以调节细胞稀释倍数。

3)准备第二份样品并重新计数以保证准确4)细胞计数-血细胞计数板上盖好盖玻片的每个正方形(指中央大方格,其长度宽度均为1mm的正方形,与盖玻片的距离为0.1mm),总体积为0.1mm3或10-4cm3。

若1cm3近仍等于1ml,那么每毫升中集中的细胞数(和细胞总数)则可以这样来计算。

每毫升细胞数=每个正方形的平均细胞数⨯稀释倍数⨯104(10个正方形的细胞计数)例:如果每个正方形的平均细胞数是45⨯5⨯104=2.25⨯106个细胞/ml总细胞数=每毫升细胞数⨯最初的细胞样品的体积例:2.25⨯106 (个细胞/ml) ⨯10ml(最初体积)=2.25⨯107个细胞(总细胞)5)活细胞比例(%)=总的活细胞数(没染上色的)÷总的细胞(染上色的和没染上色的)⨯100例:如果每个正方形中没染上色的(活的)细胞平均数是37.5,总活细胞数=(37.5⨯5⨯104)活细胞数/ml⨯10ml(最初体积)=1.875⨯107个活细胞,活细胞比率(%)=1.875⨯107(活细胞数)÷2.25⨯107(总细胞数) ⨯100=83%.血球计数板的使用16×25型的计数板将计数室放大,可见它含16中格,一般取四角:1、4、13、16四个中方格(100个小方格)计数(见图二)。

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