哪些药物可作腹腔注射
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的实验动物操作方法，用于给大鼠或小鼠注射药物、细菌、细胞等。
下面是腹腔注射的详细操作方法。
1. 器材准备：- 麻醉剂：如异氟醚、胺酯类药物等。
- 抗菌消毒液：如70%乙酒或75%酒精等。
- 注射器：选择合适体积的注射器，常见的有1毫升或3毫升。
- 注射针：选择刺破力适中的针头，一般选择26G或27G的针头。
- 塑料毛巾或纸巾：用于覆盖动物身体和器械。
2. 动物准备：- 维持麻醉：将动物置于麻醉箱中或使用合适的麻醉器械，使其进入麻醉状态。
确保动物进入稳定的麻醉状态，通常表现为无反应、无睁眼反射等。
- 外表消毒：用70%乙酒或75%酒精擦拭动物腹部，确保腹部表面无菌。
3. 注射操作：- 取出注射器和针头：将注射器从包装中取出，连接好合适的针头。
- 抓住动物的肢体：用一只手抓住动物的肢体，确保动物无法挣脱。
- 针头刺入：用无菌的手指将动物的皮肤稍稍提起，将针头刺入腹部中线约1/3处。
刺入角度为45度，刺入时要轻柔而稳定。
- 吸液：将注射器的活塞轻轻拔起，抽取所需体积的液体。
注意不要抽入胃内。
- 注射液体：轻轻按下活塞，将注射液体缓慢注射入腹腔。
注射过程中，要注意速度要匀称，避免液体流入其他部位。
- 缓慢拔出针头：完成注射后，缓慢拔出针头，用棉签轻压注射部位，避免液体外渗。
4. 结束操作：- 严密控制动物体温：腹腔注射后，容易造成动物体温下降，请将动物恢复到室温环境，根据需要给予相应的保温。
- 观察动物恢复：将动物放置在恢复笼子中，观察其行动是否正常，如有异常情况应及时处理。
-处理器材：将使用完毕的注射器、针头、纸巾等处理成生物危险品，放入适当的地点。
清洁操作台面。
以上就是大鼠小鼠腹腔注射的操作方法的详细步骤。
在进行该实验操作时，需要注意动物的麻醉情况、消毒措施和注射技巧，以确保操作的成功和动物的健康。
中山大学药理学实验——戊巴比妥钠对小鼠催眠作用有效量ed50测定
图11-4-3剂量对数与有效百分率分布 图11-4-4正态曲线下的面积与标准正 态离差及
概率单位的关系
【实验】
【实验对象】 小鼠。 【实验器材和药品】 注射器（1ml）、针头（4号）、小烧杯、小
鼠罩、托盘、计算器。 戊巴比妥钠、苦味酸（标记动物号用）。
【实验步骤】
1. 实验准备及预试
动物: 一般用健康活泼的小鼠。体重 18～20克，雌雄各 半（雌鼠应无孕）。有时用大鼠、豚鼠等。从外地购进 的动物通常需在本实验室饲养一周。
（3）分组及给药
取小鼠50只（18～22克），每组雌 雄各半，按体重随机分成五组。每组 分别按设计的浓度、容积腹腔注射药 物。用原始记录本记录给药时间。 ED50 测定时是否要设对照组，应视 情况而定。
（4）观察与记录
记录在观察时间内动物的表现或动物中毒症状 、死亡时间。整个实验应记录的事项：日期 、药物名称、批号及制药单位、配药的溶剂 、药液浓度、给药途径、给药容积及给药剂 量、动物名称、性别及体重、实验时室温、 给药时间、动物的表现或中毒症状及出现的 时间、死亡时间、各组有效（或死亡）率、 计算ED50或LD50 。
附注：
腹腔注射戊巴比妥钠对小鼠的LD50测定 及计算机软件计算实例简介
Bliss法电子计算机软件
Bliss法电子计算机软件运算结果： 请应用软件计算！！！
Feiller精确校正
经过三轮加权回归，符合要求的精度（0.001），由于 回归显著性系数g > 0.01，应采用Feiller精确校正结 果。
日期药物名称批号及制药单位配药的溶剂药液浓度给药途径给药容积及给药剂量动物名称性别及体重实验时室温给药时间动物的表现或中毒症状及出现的时间死亡时间各组有效或死亡率计算ed50或ld50
小鼠注射
一、小鼠腹腔注射：腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
液体外漏的主要原因是抓取小鼠时，腹部过紧而致腹内压过高所致，应该紧抓颈部但使其腹部皮肤松软，此时进针注射，不会外漏。
4. 小鼠腹腔注射的给药容积一般为5～10ml/kg二、皮下注射给药将药液推入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。
作皮下注射常选项背或大腿内侧的皮肤。
操作时，常规消毒注射部位皮肤，然后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。
拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。
注射量约为0.1～0.3ml/10g体重。
三、皮内注射给药将药液注入皮肤的表皮河真皮之间，观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。
先将注射部位的被毛剪掉，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连接4.5针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并梢刺入，将药液注入皮内。
注射后皮肤出现一白色小皮丘，而皮肤上的毛孔极为明显。
注射量为0.1ml/次。
四、肌肉注射给药小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。
当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。
操作时1人固定小鼠，另一人用左手抓住小鼠的1条后肢，右手拿注射器。
腔内给药
胸腔灌注-药物
• 常用药物：硬化刺激药物如阿霉素局部刺 激性大，不良反应严重，现已很少应用。 非硬化刺激药物如5-fu不良反应轻，但控制 胸腔积液作用差。 • 目前用温和硬化性刺激药物，包括生物反 应调节剂和博来霉素等，能诱导产生免疫 效应细胞，又使胸膜产生化学性炎症粘连 而闭塞胸膜腔，与化疗药物联合应用，具 协同作用，对机体刺激轻微，无骨髓抑制 和消化道反应,常见的不良反应是发热，经 对症处理后易缓解，有效率高。
用量及药物
• 化疗剂量的选择：腹腔热灌注化疗药物的 剂量根据疗程的间隔、患者的个体状况， 参照静脉化疗的剂量制定。因为腹腔用药 全身毒性作用明显低于静脉用药，所以一 般选用静脉剂量范围的高剂量。
腹腔化疗-方法
• 目前采用中心静脉导管经皮穿刺置管引流 术 • 优点：1、可减少反复穿刺引起的脏器损伤； • 2、头部柔软，圆滑整齐，组织相容性好， 且引流形成密闭系统，可长期引流不引起 感染； • 3、可动态观察引流情况 • 4、可连续注入药物，利于炎症消散和积液 的吸收，还可以反复留标本
心包给药-方法
• 取坐位或半卧位，用B超定位，选定液平最 宽的部位为穿刺点，在左胸前壁胸骨旁4cm 处，按中心静脉置管方法置入8-10cm，退 出导丝，连接引流袋，可见黄色或血性心 包液引出，给予妥善固定。
心包给药-方法
• 第一次抽取量一般在100ml左右，不能大于 200ml.避免抽取过量引起不适，再次抽取便 可加量，最多可抽取500ml，放慢速度，避 免出现肺水肿，引流液为黄色或血性液， 涂片可见癌细胞，当引流量＜50ml∕d，可 以经引流管向心包内注入抗癌药物，生理 盐水20 ml，丝裂霉素8-10mg或博来霉素4560mg，夹闭引流管，嘱患者多变换体位， 使化疗药物与心包广泛接触，6小时后开放 引流，注药后连续两天＜30ml∕d，引流液
腹腔注射操作流程
腹腔注射操作流程
腹腔注射是一种常见的医疗操作，用于给患者注射药物或者抽取体液。
正确的操作流程对于患者的安全和治疗效果至关重要。
下面将详细介绍腹腔注射的操作流程。
首先，准备工作是非常重要的。
医护人员需要确认患者的身份和病史，准备好所需的药物、注射器、消毒液等工具。
在操作前，医护人员需要洗手并戴上手套，确保操作环境的清洁。
接着，医护人员需要告知患者操作的目的和过程，并取得患者的同意。
在患者同意后，医护人员需要让患者躺在舒适的位置上，暴露腹部部位。
然后，医护人员需要选择合适的注射点位。
通常腹腔注射的点位是在脐部周围2-3厘米处，避开脐部本身。
在选择点位后，医护人员需要用消毒液擦拭注射点位，确保皮肤的清洁。
接下来，医护人员需要准备好注射器，并把所需的药物吸入注射器中。
在注射前，医护人员需要把注射器中的空气排出，确保注射器内无气泡。
最后，医护人员需要将注射器插入注射点位，缓慢注射药物。
在注射过程中，医护人员需要留意患者的反应，确保注射的过程顺利。
注射完成后，医护人员需要轻轻拔出注射器，并用消毒棉球压
迫注射点位，避免出血或感染。
总的来说，腹腔注射是一项常见的医疗操作，正确的操作流程对于患者的治疗效果和安全至关重要。
医护人员需要在操作前做好准备工作，选择合适的注射点位，并注意操作过程中的细节，确保操作的顺利进行。
希望以上内容对您有所帮助。
腹腔注射
腹腔注射【定义】：腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外，腹膜以内．其吸收速度较快（2小时左右）。
【适应症】：人不常应用，有时可以作为特殊治疗手段，如多巴胺、速尿联合腹腔注射治疗肝硬化顽固性腹水。
当猪只较小而难以寻找耳静脉时，或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时，可以通过腹腔注射补液．以防脱水死亡，因下痢脱水1/3以上即有生命危险．【操作步骤】：小鼠腹腔注射腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器，配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
【禁忌】：⒈忌不等渗液体，如50%葡萄糖。
⒉药液须加温至体温⒊选用无刺激性药液，忌葡萄糖酸钙等。
⒋油乳剂，有沉淀，半固体药物不宜腹腔注射。
【优点】：操作方便，任何动物不论大小都可腹腔注射。
腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
【其他声音】：某些兽医认为腹腔注射液不宜过大，20KG的猪20-30ml，30kg 的猪40ml，50kg的猪50ml。
【个人体会】：一般情况下，输入体重5%的适宜液体是安全可靠的。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法腹腔注射是一种常见的动物实验操作方法，用于给实验动物注射药物或其他实验物质。
本文将介绍大鼠小鼠腹腔注射的操作方法，以便于科研工作者正确、安全地进行相关实验操作。
一、准备工作1.1 实验室准备需要确保实验室的环境整洁、明亮，并且通风良好。
应保持实验室的温度和湿度处于适宜的范围，以确保动物在实验过程中能够处于良好的生理状态。
实验室内应配备必要的实验器材和药品，以便于进行实验操作。
在进行腹腔注射实验之前，需要对实验动物进行充分的准备工作。
应选择健康状态良好、体重适中的大鼠或小鼠作为实验动物，并将其放置在适宜的实验室环境中进行适当的驯化和饲养。
还需要对实验动物进行必要的体格检查，确保其身体状况良好，以保证实验结果的准确性。
二、操作步骤2.1 注射器和针头准备需要准备一支干净的注射器和一根适宜的注射针头。
通常情况下，对于大鼠，可选择1ml或2ml的注射器，并配备18号至22号的注射针头；对于小鼠，可选择0.5ml的注射器，并配备22号至26号的注射针头。
在使用前，应检查注射器和针头是否完好无损，并且进行必要的消毒处理，以确保实验的安全性和准确性。
2.2 动物准备在进行注射操作之前，需要将实验动物取出并置于操作台上，用纸巾或棉签轻轻擦拭其腹部，以保持注射部位的清洁。
还需要将实验动物固定在操作台上，以防止在注射过程中出现不必要的移动和颤动。
2.3 麻醉和消毒在进行腹腔注射之前，通常需要对实验动物进行适当的麻醉处理，以减轻其疼痛感和焦虑感。
一般情况下，可选择将实验动物放置在麻醉盒中进行麻醉处理，或者使用适当的麻醉药物进行注射处理。
在进行注射操作之前，还需要对注射部位进行必要的消毒处理，以防止感染和其他并发症的发生。
2.4 注射操作在完成麻醉和消毒处理之后，即可进行腹腔注射操作。
取出预先准备好的注射器和针头，将需要注射的药物吸入注射器中，并确保注射器中无气泡和溢出。
然后，选择注射针头插入实验动物的腹部，通常可选择在肚脐周围1-2厘米的处所。
常用的麻醉剂和麻醉方法(人医和动物均有)
常用的麻醉剂和麻醉方法常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。
麻醉药物应用的方法和剂量如下：一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。
适用于各种实验动物。
如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
较大动物可用麻醉口罩滴药法。
封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。
在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
防止麻醉过深，引起死亡。
常用全身麻醉剂：乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
腹腔注射吸入麻醉
（5）分层浸润麻醉：用于深切口，深创。 （6）逐层浸润麻醉：浸润一层，切开一层 用于组织层次多的部位。
直 线 浸 润
菱 形 浸 润
扇 形 浸 润
基底部浸润麻醉
分层浸润麻醉
直线浸润麻醉
牛脐疝
（三）传导麻醉 (conduction anesthesia)
又称神经阻滞(nerve block)，把局麻药注射到神
表面麻醉的目的
（1）用于结膜或角膜的小手术；
（2）止痒。用于某些表面的炎症，以防止搔抓、
啃咬。如皮肤炎、外耳炎、结膜炎、肛门
搔痒、肉芽创等，治疗时往往与治疗药物
结合应用。
（3）用于口、鼻、直肠、气管、尿道、阴道等 处的粘膜的麻醉，便于检查和手术治疗。
（二）局部浸润麻醉
沿切口线皮下注射或深部分层注射麻 醉药，以阻滞神经末梢和神经纤维。 1、用药： 0.25-1%盐酸普鲁卡因；0.25-0.5%利多卡因 2、方法： （1）直线浸润麻醉：注射成直线型； （2）菱形浸润麻醉：注射成菱形图案 （3）扇形浸润麻醉： （4）基部浸润麻醉：用于肿瘤手术等。
阴唇、阴道、直肠及膀胱等手术。
牛的硬膜外腔麻醉应用较广，后位硬膜外腔 麻醉的适应症与马同，前位硬膜外腔麻醉可 用于剖腹产，胃、肠手术，乳房、阴茎手术， 截趾手术等。
犬、猫的腰荐麻醉：侧卧于诊台，使腰背弓 起，注射点是两侧髂骨翼内角横线与脊柱正 中轴线的交点。在该处最后腰椎棘突顶和紧 靠其后的相当于腰荐孔的凹陷部。垂直刺入 针头，感觉弓间韧带的阻力。
最后肋间神经（最后胸神经的腹支）
髂下腹神经（第1腰神经的腹支）
髂腹股沟神经（第2腰神经的腹支）
腰 旁 神 经 干
→ → →
牛腰旁神经干的位置
实验动物的给药方法
实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。
给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。
〔一〕注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。
①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。
如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。
方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。
注射后可见皮肤外表鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。
肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多项选择臀部。
注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。
给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。
4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。
此法大小鼠用的较多。
5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。
但排泄较快，作用时间较短。
①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。
鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。
操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射是一种常见的实验技术，用于给大鼠小鼠注射药物或其他物质。
下面是关于大鼠小鼠腹腔注射的操作方法的详细描述。
1. 实验前准备：
- 检查注射器和针头，确保其干净无菌。
- 准备需要注射的药物或其他物质，并按照要求配置好。
- 准备需要进行注射的大鼠小鼠。
2. 麻醉大鼠小鼠：
- 使用适当的麻醉方法（如麻醉剂注射或吸入麻醉气体）对大鼠小鼠进行麻醉。
- 检查大鼠小鼠的麻醉深度，确保其完全麻醉。
3. 准备注射位置：
- 使用消毒剂将大鼠小鼠的腹部肌肉区域清洁消毒。
4. 注射操作：
- 使用消毒剂消毒注射器和针头。
- 拿起无菌注射器，在注射器上抽取需要注射的药物或其他物质。
- 轻轻捏住大鼠小鼠的腹部肌肉区域，将注射器的针头插入皮肤下方朝向腹腔。
- 缓慢注射药物或其他物质，确保注射过程平稳且不激动大鼠小鼠。
- 在注射完成后，慢慢拔出注射器的针头。
- 用无菌棉球在注射点上轻轻按压几秒钟，以防止药物渗漏。
5. 结束操作：
- 将已完成注射操作的大鼠小鼠放置在恢复箱中进行恢复。
- 监测大鼠小鼠的恢复情况，确保其恢复正常后放回笼子或实验室环境中。
总结：对于大鼠小鼠腹腔注射，操作者需要具备良好的注射技术和动物处理经验。
在操作过程中，需要确保注射器和针头的无菌，并注意大鼠小鼠的麻醉深度以及注射过程中的稳定性。
注射后需要注意观察大鼠小鼠的恢复情况，并及时处理和记录相关数据。
腹腔注射
腹腔注射锁定【定义】：腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外，腹膜以内．其吸收速度较快（2小时左右）。
【适应症】：人不常应用，有时可以作为特殊治疗手段，如多巴胺、速尿联合腹腔注射治疗肝硬化顽固性腹水。
当猪只较小而难以寻找耳静脉时，或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时，可以通过腹腔注射补液．以防脱水死亡，因下痢脱水1/3以上即有生命危险．【操作步骤】：小鼠腹腔注射腹腔注射是常见的给药方式，尤其是在麻醉时。
常见的麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射。
1. 小鼠腹腔注射可以用1ml的注射器，配合4号针头。
2. 腹腔注射时右手持注射器，左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴，另外三个手指抓住小鼠的颈部，使小鼠的头部向下。
这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。
进针的动作要轻柔，防止刺伤腹部器官。
3. 尤其是对于体重较小的小鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部的另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液。
【禁忌】：⒈忌不等渗液体，如50%葡萄糖。
⒉药液须加温至体温⒊选用无刺激性药液，忌葡萄糖酸钙等。
⒋油乳剂，有沉淀，半固体药物不宜腹腔注射。
【优点】：操作方便，任何动物不论大小都可腹腔注射。
腹膜面积大.密布血管和淋巴管,吸收能力特强,每小时可吸收占动物体重3%~8 %的液体.且腹腔补液时间短,速度快大号针头2分钟即可输入500毫升药液,还不考虑心脏超负荷。
【其他声音】：某些兽医认为腹腔注射液不宜过大，20KG的猪20-30ml，30kg的猪40ml，50kg的猪50ml。
【个人体会】：一般情况下，输入体重5%的适宜液体是安全可靠的。
腹腔注射与静脉注射的区别腹腔注射和静脉注射的区别不大，静脉注射的药物注射后马上就能进入体循环；腹腔注射的药物要在腹腔中经过肠系膜静脉吸收后缓慢的逐步进入体循环。
两种给药方式的用量一般一样，但是腹腔注射产生作用的速度可能要慢一些。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法一、前言在生物医学研究中，动物模型的建立和使用是不可或缺的。
腹腔注射是常用的动物实验操作之一，尤其在药物毒性实验、肿瘤细胞移植实验等方面得到广泛应用。
正确的腹腔注射操作方法不仅可以确保实验结果的准确性，同时也可以减少动物的痛苦和死亡率。
在进行大鼠小鼠腹腔注射前需要对操作方法有一定的了解和掌握，以确保实验的顺利进行和动物的安全。
二、准备工作在进行腹腔注射之前，需要准备好以下工具和物品：1. 实验动物：根据实验的需要选择相应的实验动物，一般选择实验室常用的大鼠或小鼠。
2. 注射药物：根据实验的需要准备好相应的药物，确保其浓度和剂量的准确性。
3. 注射器：选择适合体积大小的注射器，通常选择1ml或者5ml的注射器，并装上适合的针头。
4. 消毒用品：如酒精棉球、无菌纱布等消毒用品。
5. 工作台：选择干净整洁且易清洗的工作台来进行操作。
三、操作步骤1. 材料准备在进行注射前，首先要确保注射器是干净、消毒的，并且装上了适当的针头。
同时要准备好注射药物，确保其浓度和剂量的准确性。
2. 动物准备将实验动物取出，放置于操作台上。
对于大鼠和小鼠，可以使用适当的镇静剂或者麻醉剂使其保持安静和不动。
在进行注射前要确保实验动物是健康的，并且体重在实验要求的范围内。
3. 操作步骤（1）消毒在进行注射前，首先要将操作台面和注射部位用75%的酒精进行彻底消毒，确保操作的无菌性。
（2）定位将动物放置在操作台上，找到注射部位。
对于小鼠来说，注射部位一般位于腹部的下方，对于大鼠来说，注射部位则位于腹部的中央。
（3）注射将注射器插入到注射部位，注射方向要与动物的腹部呈90度角。
注射时要轻轻按压注射器，并且要确保注射的速度不要过快，以免产生压力过大而引起内脏损伤。
一般来说，注射的深度要适当，以确保药物的均匀分布和不发生渗漏。
（4）观察在注射完成后，要仔细观察动物的反应。
如果出现异常情况，如呼吸困难、抽搐等症状，要立即停止实验并给予相应的处理。
实验动物给药方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。
给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。
（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。
皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。
兔在背部或耳根部注射。
蛙可在脊背部淋巴腔注射。
（二）皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。
注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。
给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（四）腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图1），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。
图1 小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射1．兔：兔耳部血管分布清晰。
兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。
内缘静脉深不易固定，故不用。
外缘静脉表浅易固定，常用。
先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图2），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
图2 家兔耳缘静脉注射方法2．小白鼠和大白鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉比较容易固定，多采用，背侧一根也可采用，但位置容易固定。
腹泻脱水的仔猪腹腔注射的药物配方
腹泻脱水的仔猪腹腔注射的药物配方腹泻脱水的仔猪腹腔注射的药物配方0.9%氯化钠500毫升25%葡萄糖 40毫升阿莫西林钠粉针 5克庆大霉素5毫升地塞米松5毫升使用方法：以上药完全混合一起，加温至37-40度。
腹腔注射，根据脱水可以多次注射，最多一天可做4-5次，每次可按10公斤体重的仔猪注射20毫升，以此类推。
注：药品要单方纯品可以静脉注射用的，市面上很多复方的尽量不要使用，除非大胆尝试后没有问题的也可以.腹腔补液时常用倒提法保定仔猪，一般在耻骨前方3～6厘米腹白线(正中线)的侧方，局部剪毛消毒后，右手持注射器，用普通注射针头，于皮肤垂直刺入腹腔2～3厘米，刺入针感有活动而无抵抗，回抽活塞无气体和液体时即可缓慢推动注射器活塞注入药物，也可连接在备用的吊瓶输液管上，完全松开流量调节器，按常规吊瓶输入药液，每注射500毫升药液只用2～3分钟，补液量要依体重和病情而定。
对极度衰竭的病仔猪，还可加入地塞米松、硫酸阿托品、强心剂等药物。
补液完毕后，术部进行消毒，0.5～1.0小时后给予清洁饮水，在水中添加酸化剂，同时在饲料中添加牲血素(补铁、补血)。
补液可参考如下处方：处方1：5%葡萄糖注射液100毫升、生理盐水150毫升、5%碳酸氢钠注射液30毫升、氨苄青霉素40万单位。
处方2：5%葡萄糖注射液200毫升、5%碳酸氢钠注射液30毫升、氧氟沙星100毫克、维生素C10毫升。
需注意的是实施腹腔补液时药液浓度不能过高，禁用刺激药物，温度需接近猪体温，补液用的注射器、针头以及注射部位要进行严格的消毒，以防感染。
腹腔补液时进针深度要掌握准确，过深则易伤及肠管等脏器，引起腹膜感染。
输液过程中要注意观察患病仔猪的反应，若挣扎过于剧烈则表明可能扎伤肠管，应立即拔针另刺，推注药液也应先慢后快，对尿毒症、腹膜炎及严重循环障碍患病仔猪，腹腔补液应慎用。
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法
大鼠小鼠腹腔注射的操作方法大鼠小鼠腹腔注射是一种常见的实验操作方法，通常用于给动物注射药物或其他实验物质，以进行相关实验研究。
正确的操作方法对实验结果具有重要的影响，下面将介绍一种标准的腹腔注射操作方法，希望能够帮助实验人员正确地进行腹腔注射实验。
一、实验仪器和物质准备1. 实验仪器：注射器、小鼠或大鼠固定器、手套、无菌消毒纱布等；2. 注射物质：需要注射的药物或其他实验物质。
二、实验操作步骤1. 实验前准备（1）将实验仪器进行消毒处理，保证实验操作的无菌状态；（2）准备好需要注射的药物或其他实验物质，确保其无菌状态；（3）将需要进行腹腔注射的小鼠或大鼠取出，并放入固定器中固定；（4）佩戴手套，确保操作的卫生和安全。
2. 注射准备（1）将注射器放入药物容器中，吸取需要的药物；（2）摇动注射器，确保药物均匀混合；（3）逐滴排出多余的气泡，使得注射器内的药物为纯液态。
3. 注射操作（1）将固定好的小鼠或大鼠放置在实验操作台上，将其腹部朝上；（2）用无菌酒精棉球清洁动物的腹部，保持清洁；（3）用手指在腹部轻轻按压，找到小鼠或大鼠的下腹窝，确定注射点；（4）用一只手固定小鼠或大鼠，用另一只手将注射器插入腹部，方向是与身体中线夹角大约45度，深度约为1-2cm；（5）缓慢注射药物，确保药物均匀进入腹腔内；（6）待药物注射完毕后，缓慢将注射器拔出，用无菌消毒纱布轻轻按压注射点，防止药物流出和感染；（7）观察小鼠或大鼠是否出现异常，确保操作的安全和准确。
4. 实验后处理（1）将实验用具进行消毒处理，保持无菌状态；（2）将小鼠或大鼠放回笼子中，观察其行为和状态，确保实验动物的健康和安全；（3）记录实验的相关数据，包括注射的时间、药物种类和用量等重要信息。
以上就是一种标准的小鼠或大鼠腹腔注射操作方法，希望能够帮助实验人员更好地进行相关实验操作。
在实际操作中，需要特别注意动物的健康和安全，遵守实验操作的相关规定和要求，确保实验的准确性和可靠性。
腹腔注射在病危猪治疗中的应用
2020年第11期腹腔注射在病危猪的治疗中常见，是向病危猪腹壁以内胃肠道、腹膜以外的部位注射药物的一种高效治疗方法。
对比其他各种注射方法，腹腔注射拥有显著的优势特征，（1）药液的容纳量较大，吸收好；（2）适用范围广，效果也最佳。
鉴于此类方法可以在短时间内发挥药效，非常适用于病危猪的治疗。
本文通过说明腹腔注射治疗病危猪的相关规定，提出了腹腔注射在病危猪治疗中的合理应用策略，以有效提升腹腔注射在病危猪治疗中应用的总体水平。
对病危猪运用腹腔注射治疗效果十分显著。
加大腹腔注射治疗病危猪的研究力度，本文分析腹腔注射在病危猪治疗中的应用策略，供参考。
1腹腔注射治疗病危猪的相关说明病危猪的体质十分特殊，采用腹腔注射技术需要配置等渗溶液，保证和病猪体中的组织液渗透压一致，亦或近似的相关药液。
通常，有关药剂配置溶液为0.8％的生理盐水或4.8％的葡萄糖溶液；而溶质以那些没有刺激性的药物作为首选。
以规避由于渗透的影响导致病危猪组织脱水而产生危险，配置药物时禁用高渗盐水、葡萄糖。
除此之外，难溶类、沉淀类的药物，难吸收的特性，不适合对病危猪进行腹腔注射。
尽管腹腔注射诸多优点，但在治疗时应注意注射剂量和注射频次，通常每2次腹腔注射治疗之间需要确保相隔1d ，同时持续进行3次腹腔注射以后，需停止注射。
此外，有关治疗人员应该注重把握相关注射药品的具体剂量，针对25kg 、35kg 、60kg 的病危猪具体的用药剂量依次需要处于25～35mL 、45mL 、55mL 的区间当中。
具体注射时应该做到精准操作，避免针头刺入到病危猪的脏器，形成严重的损害，要注意针头刺入长度。
注射前后治疗人员均应该依次借助消毒酒精棉对针头与刺入部位进行消毒。
2腹腔注射治疗病危猪的应用策略以病危猪为对象实施腹腔注射治疗时，应该做足前期的准备工作。
一般来说，治疗器包括吊瓶、助推器。
应该根据病危猪的具体状况选用适合的注射器。
一般以一次性输液器具作为首选，注射时应把末端的输液针合理拆除。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
Ｃ） ， 而且注射量不宜太大 （ ２０ｋｇ 的猪 ２０￣３０ｍｌ； ３０ｋｇ 的猪
仔猪黄、白痢、肠炎、下痢作补液时， 此法为权宜之计。
投稿信箱： ｐｉｇｓ ｔｏｄａ ｙ＠ｖｉｐ．１６３．ｃｏｍ
２１ ２００６ 年第 ４ 期
哪些药物可作腹腔注射？
余广海 大北农西ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ分公司
腹腔注射是将药物注入胃肠道浆膜以外、腹膜以内， 其 ４０ｍｌ； ５０ｋｇ 的猪 ５０ｍｌ） ， 注射的药液温度应加温至与体温相
吸收速度较快（ ２ｈ 左右） ， 当猪只较小而难以寻找耳静脉 时 ， 近（ ３７℃） ； 注 射 速 度 要 快 ， 针 头 不 宜 过 长 ， 切 忌 刺 伤 膀 胱 、肾
例无显著差异。此外， 这些行为的每日 为模式。我们的研究结果显示， 大组群
分布模式也不受组群规模的影响。
不会对猪只造成任何额外的急性或慢
研究之前， 我们主要担心的是大组 性应激。然而， 在刚刚转入大组群的几
群会增加群体应激。然而有趣的是， 在 天当中， 应注意对采食条件进行管理，
我们持续 １０ 周的试 验过程 中， 大组 群 让所有猪只都能方便地够到料槽。■■
腹腔注射的次数还不宜过多， 一般隔天 １ 次， 连续 ２￣３
不易吸收。
次即应停止使用。
腹腔注射只宜用等渗药液 （ 如 ５％ 葡萄糖液、０．９％ 生理
腹膜浆膜都比较娇嫩脆弱， 在使用腹腔注射时， 务必考
盐水） 适当配伍无刺激性 的 药 物（ 如 肌 苷 、维 生 素 Ｂ１、维 生 素 虑到治疗目的与严格选择等渗、无刺激的药物。
２．有刺激性的药液， 如氯化钙、磺胺、抗菌素等不能作腹 液， 可解毒、强心、利尿消肿， 但 有 的 人 用 ５０％ 葡 萄 糖 液 作 肌
腔注射， 容易引发腹膜炎和组织坏死。
肉注射或腹腔注射， 都是错误的。
３ ． 油 乳 剂 、有 沉 淀 的 药 物 、半 固 体 药 剂 不 宜 作 腹 腔 注 射 ，
的 猪 只 未 表 现 出 任 何 短 期（ 急 性） 或 长
期（ 慢性） 的应激反应（ 表 １） 。那就是说，
增大组群规模不会对猪只产生任何额
外的应激。
免费技术资源 由国际专家提供 尽在 ＴｈｅｐｉｇＳｉｔｅ．ｃｏｍ．ｃｎ
业界新闻 － 每日更新！ 猪群健康管理与疾病控制
超 过 １３０ 种 猪 病 信 息 疾病诊断软件
或天冷皮肤血管收缩或猪处于贫血消瘦情况血管不明显时， 脏或其他内脏器官， 注意严密消毒， 不能因腹腔注射带来污
可以通过腹腔注射、补液， 以防脱水死亡， 因下痢脱水 １／３ 以 染与感染。
上即有生命危险， 但不是什么药都可以作腹腔注射。
补 液 的 途 径 ： 除 腹 腔 注 射 而 外 ， 还 可 用 静 脉（ 耳 静 脉 、隐
繁殖问题诊断软件 养 猪 业 产 品 信 息 、链 接 以及其它各方面信息…
专 家 知 识 ，尽 在 您 的 掌 中
二、底线
在刚刚转入大组群之后， 猪只的采
图 １ 不同组群规模在（ ａ） 转群后第 ３ 天和（ ｂ） 转群后 第 １０ 周对猪只每日采食模式的影响
#############################################
１．高渗盐水、糖水（ 如 １０％氯化钠液、５０％或 １０％葡萄糖 静脉） 注射或口服补液盐（ 氯化钾 １．５ｇ、碳酸氢钠 ２．５ｇ、氯化
液） 不能作腹腔注射， 这样会引起反渗透， 使组织脱水和腹水 钠 ３．５ｇ、葡萄糖 ２０ｇ、水 ２０００ｍｌ） 。
增加。
如果是水肿病， 静脉输液时可以注入 ５０％高渗葡萄糖
!▲
生产技术
Ｐ ＩＧ Ｓ ＴＯ ＤＡＹ
大、小组群之间猪只用来采食／饮水 食行为会 受到干 扰。进入生 长、肥育 期
（ ５．２％ ∶５．２％） 、站 立／行 走（ ５．４％ ∶５．１％） 之后， 大组群的猪只似乎需要更多的时
和 休 息（ ８９．３％ ∶８９．６％） 的 平 均 时 间 比 间来调 整采食行 为， 最终 形成稳 定的行