药学兽医药理学实验
兽医药理学总论实验
第二章兽医药理学总论实验实验一植物药主要有效成分实验目的掌握植物药主要有效成分的检定方法。
一、生物碱定性实验1．如水提取液为酸性时，应加碱调至弱碱性。
2．因脂肪酸盐等也能产生持久性泡沫，故应再做溶血试验或醋酐-浓硫酸试验，以进一步确定之。
（二）皂苷溶血实验实验材料器材——圆底烧瓶、水浴锅、滤纸、试营、试管架、离心管、滴管。
药品——远志粗粉、1.8%氯化钠溶液、生理盐水、哺乳动物静脉血。
实验方法取远志水浸液（依皂苷泡沫实验中提取液即可）10mL，加等量1.8%氯化钠溶液混匀作为待试液。
取试管5支。
一管加蒸馏水1mL，另一管加生理盐水1mL；余者三管分别加待试液0.1、0.5、0.9mL及生理盐水0.9、0.5、0.1mL。
然后5支试管各加入2%红细胞悬浮液lmL，观察有何现象?（若溶液变清并带红色，即表示溶血。
因皂苷有溶血作用。
）此实验亦可用显微镜观察是否溶血。
即可在载玻片上滴一小滴红细胞悬浮液，再加远志水浸液少许，置显微镜下观察，如红细胞破裂、消失，表明含有皂苷成分。
（三）强心苷显色实验实验材料器材——试管、试管架、滴管。
药品——强心苷、冰醋酸、9%三氯化铁溶液、浓硫酸、碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂。
实验方法1．α-去氧糖实验取强心苷2~3mg溶于5mL混合试剂（为100mL冰醋酸中含9%三氯化铁溶液0.5mL）中，缓缓加入浓硫酸5mL，使形成两层。
如两层之间液面呈褐色环带，渐变浅绿、蓝色，最后冰醋酸层呈深兰色，则表明含有α-去氧糖成分。
2．碱性3,5-二硝基苯甲酸实验取强心苷甲醇提取液1mL置小试管中，加入新配制的碱性3,5-二硝基苯甲酸试剂3~4滴，显红色或紫红色，则表示含有活性亚甲基化合物。
三、挥发油定性实验实验材料器材——试管、滴管、蒸发皿。
药品——乙醚、香荚豆素-浓硫酸试剂（取香荚豆素或称香荚醛0.5g，慢慢加入浓硫酸10mL，也可用浓盐酸）、桉叶蒸馏液。
实验方法取桉叶蒸馏液3~4mL置试管中，加入乙醚2mL，立即用手按住试管振摇片刻，然后用滴管吸取上层乙醚提取液1mL，置蒸发皿中，待乙醚挥发后，残留物滴加香荚豆素-浓硫酸试剂1~2滴，如呈现黄、红、紫、蓝等颜色，则表示有挥发油存在。
(完整版)兽医药理学实验
将麻醉好的狗仰卧置于实验台上，用特制的狗头夹固定狗头(图3.3-3)。固定前将狗舌拽出口外，避免堵塞气道。将狗嘴伸入铁圈，再将直铁杆插入上、下颌之间，再下旋铁杆，使弯形铁条紧压犬的下颌（仰卧固定）或压在鼻梁上（俯卧固定）。再将狗头夹固定在手术台上。
固定好狗头后，取绳索用其一端分别绑在前肢的腕关节上部和后肢的踝关节上部，绳索的另一端分别固定在实验台同侧的固定钩上。固定两前肢时，亦可将两根绳索交叉从犬的背后穿过并将对侧前肢压在绳索下,分别绑在实验台两例的固定钩上。若采取俯卧位固定时，绑前肢的绳索可不交叉，直接绑在同侧的固定钩上。
(2)灌服法
灌服法是将动物适当固定，强迫动物摄入药物。这种方法能准确把握给药时间和剂量，及时观察动物的反应，适合于急性和慢性动物实验，但经常强制性操作易引起动物不良生理反应，甚至操作不当引起动物死亡。故应熟练掌握该项技术。强制性给药方法主要有两种：
①固体药物口服
一人操作时用左手从背部抓住动物头部，同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口，右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位，然后让动物闭口吞咽下药物。
兽医药理学实验
1.兽医处方的书写（讲授）2.3.实验动物的种类、捉拿及给药途径（讲授结合实验）
4.
实验材料：小鼠5-10（22人拟分成4-5组）只，1ml注射器20支，12-16#小鼠灌胃针5个，生理盐水
5.实验动物的采血及处死方法（讲授结合实验）
《兽医药理学综合实验》教学课件：实验5 普鲁卡因与丁卡因的表面麻醉作用和毒性比较
毒性反应：中枢神经和心血管系统的毒性，包括惊 厥、抽搐、呼吸心跳停止等。
三、实验材料
器材：滴管、注射器、手术剪 药品：1%盐酸丁卡因、1%盐酸普鲁卡因 动物：兔、小鼠
四、实验方法
1、普鲁卡因和丁卡 因的表面麻醉作用
实验五 普鲁卡因与丁卡因的 表面麻醉作用和毒性比较
一、实验目的
比较普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉作用， 以评价表面麻醉药物的作用差异。
比较鲁卡因和丁卡因的毒性大小，以对药 物进行全面评价。
二、实验原理
局部麻醉药：
是一类能在用药局部可逆性的阻断感觉神经冲动发生与传递 的药品，简称“局麻药”。
在保持清醒的情况下，可逆的引起局部组织痛觉消失； 局麻药的作用局限于给药部位并随药物扩散而迅速消失。
表示眨眼反射阴性，表明角膜已麻醉。
3. 结果以阳性反应率（阳性反应点数/刺激点数）表示。
五、实验结果
普鲁卡因与丁卡因的毒性比较
鼠号
体重 药物与 惊厥潜 惊厥性质 最后结果 剂量 伏期 和程度
甲
乙
丙
六、讨论
普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉效果有什么 不同，为什么？
常用的表面麻醉药物有哪些？使用时需要 注意什么问题？
讨论常用局部麻醉药的毒性及其防止中毒 的方法。
实验设计
丁卡因（或普鲁卡因）对兔的毒性作用
信息： 兔耳缘静脉注射1%丁卡因0.3-0.4ml/kg后会出
现惊厥 兔肌肉注射1%丁卡因2.5ml后会出现角弓反张
表面麻醉：
将穿透力强的局麻药施用于皮肤或粘膜表面，使其阻滞位 于粘膜下的神经末梢，产生麻醉现象。眼、鼻、咽喉、气管、 尿道等处的浅表手术常用此法。
《兽医药理学综合实验》教学课件：实验13 传出神经系统药物对家兔血压的影响
实验十三 传出神经系统药物对麻醉 家兔动脉血压的影响
实验目的
观察传出神经系统药物对麻醉家兔动脉血压 的影响，分析肾上腺素受体激动剂、胆碱能 受体激动剂与拮抗剂之间的相互作用，分析 药物的作用机理。
表1 观察传出神经系统药物对麻醉家兔动脉血压的影响
组 别
实验项目
剂 量
收缩压 (mmHg)
舒张压 (mmHg)
平均动 脉压
给药前 给药后 给药前 给药后
生理盐水
1
盐酸肾上腺素 去甲肾上腺素
异丙肾上腺素
氯化乙酰胆碱
2
甲基硫酸新斯的 明
氯化乙酰胆碱
硝酸毛果芸香碱
3 硫酸阿托品
硝酸毛果芸香碱
思考题
1.根据实验结果说明拟肾上腺素对血压作 用的特点，分析其机理。 2.第二组实验结果说明乙酰胆碱和新斯的 明的作用有何关系？ 3.比较第三组中①和③的结果有何不同？ 为什么？
① 0.01%氯化乙酰胆碱溶液 0.1mL/kg bw； ② 0.05%甲基硫酸新斯的明溶液 0.1mL/kg bw； ③ 0.01%氯化乙酰胆碱溶液 0.1mL/kg bw。
比较使用甲基硫酸新斯的明前后，给予氯化乙酰 胆碱时血压曲线有何不同。
（3）M受体阻断药对拟胆碱药作用的影响
① 0.1%硝酸毛果芸香碱溶液 0.1mL/kg bw； ② 0.1%硫酸阿托品溶液 0.1mL/kg bw ； ③ 0.1%硝酸毛果芸香碱溶液 0.1mL/kg bw.
➢ 将动物背位固定于手术台上，拉伸头颈部以便手 术操作。
《兽医药理学实验》
02
实验动物用药记录
03
动物福利与伦理
详细记录动物的用药情况，包括 药物名称、剂量、给药方式、时 间等，以便分析实验结果。
遵守动物福利和伦理原则，确保 实验动物的权益和福利得到保障。
03 药物作用机制
CHAPTER
药物作用机制介绍
药物作用机制定义
药物作用机制是指药物如何与机 体细胞上的受体结合，通过一系 列的信号转导和代谢过程，最终 发挥药理或毒理作用的原理。
病情况。
对照组设置
设立对照组以评估实验组药物对疾病 的治疗效果，对照组可采用安慰剂或
未处理组。
设计给药方案
根据实验目的和药物性质，制定合理 的给药方案，包括给药剂量、给药途 径和给药周期等。
实验数据收集
记录实验过程中动物的生命体征、症 状变化、生理生化指标等数据，为后 续分析提供依据。
药物疗效评价结果分析
的和药物特性进行选择。
给药方法
02
根据实验要求，选择适当的给药途径和方法，如灌胃、皮下注
射、静脉注射等。
实验指标
03
选择与药物作用机制相关的生理、生化、病理等指标进行观察
和检测，以评估药物的作用效果。
药物作用机制分析
数据处理与分析
对实验数据进行处理和分析，利用统计学方法对实验结果 进行比较和评价。
实验步骤
实验准备
选择合适的实验动物、准备实验药品和器材， 确保实验条件符合要求。
实验操作
按照规定的实验方法和技术，对实验动物进 行给药、观测和记录数据。
数据处理
对实验数据进行整理、分析和统计，得出实 验结论。
实验报告撰写
按照规定的格式和要求，撰写实验报告，总 结实验结果和经验教训。
兽医药理实验报告(3篇)
第1篇实验名称：抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌实验实验目的：1. 了解抗生素对金黄色葡萄球菌的抑菌作用。
2. 掌握平板划线法在微生物实验中的应用。
3. 分析抗生素的抑菌效果，为临床合理使用抗生素提供参考。
实验原理：金黄色葡萄球菌是一种常见的革兰氏阳性球菌，对多种抗生素敏感。
本实验通过平板划线法，将金黄色葡萄球菌接种在含有不同浓度抗生素的琼脂平板上，观察并记录抑菌圈的大小，以评估抗生素的抑菌效果。
实验材料：1. 金黄色葡萄球菌菌种2. 生理盐水3. 不同浓度的青霉素、链霉素、红霉素、庆大霉素药液4. 琼脂平板5. 移菌针6. 酒精灯7. 灭菌棉签实验方法：1. 将金黄色葡萄球菌菌种接种于生理盐水中，制成菌悬液。
2. 将不同浓度的抗生素药液分别加入琼脂平板中，制成含有不同浓度抗生素的琼脂平板。
3. 使用移菌针将金黄色葡萄球菌菌悬液均匀涂布在琼脂平板上。
4. 将琼脂平板倒置，置于37℃恒温培养箱中培养24小时。
5. 观察并记录抑菌圈的大小。
实验结果：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，抑菌圈直径最大。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但抑菌圈直径较青霉素小。
3. 随着抗生素浓度的增加，抑菌圈的大小也随之增大。
实验分析：1. 本实验结果表明，青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可能是由于青霉素能抑制细菌细胞壁的合成，导致细菌死亡。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，但其抑菌效果不如青霉素。
这可能是由于这些抗生素的作用机制与青霉素不同，或者是金黄色葡萄球菌对这些抗生素的耐药性较高。
3. 在临床用药过程中，应根据患者的病情和药物敏感性，合理选择抗生素，以充分发挥抗生素的抑菌效果。
实验结论：1. 青霉素对金黄色葡萄球菌的抑菌效果最佳，可作为临床治疗金黄色葡萄球菌感染的首选药物。
2. 链霉素、红霉素、庆大霉素对金黄色葡萄球菌也有一定的抑菌效果，可根据患者的病情和药物敏感性选择使用。
兽医药理学实验设计
兽医药理学实验设计
兽医药理学实验设计
一、实验题目
鱼类兽医药理学研究
二、实验目的
研究鱼类兽医药理学，探讨鱼类对药物的反应，探究鱼类的药理作用。
三、实验步骤
1. 对不同种类的鱼进行实验前准备，建立实验样本。
2. 将各种药物分别混合在不同的浓度水中，测试鱼类对该药物
的反应。
3. 将鱼类分别浸泡在不同浓度的药物溶液中，记录鱼类的反应
情况，做出实验结论。
4. 分析实验结果，得出结论，提出对鱼类药理作用的解释。
四、实验报告
此实验的目的在于研究鱼类兽医药理学，探讨鱼类对药物的反应，探究鱼类的药理作用。
实验步骤如上所示。
实验中，选用了三种不同种类的鱼，分别是大黄鱼、罗非鱼和鲫鱼，分别将它们浸泡在不同浓度的药物溶液中，观察鱼类的反应。
实验结果发现，罗非鱼对于药物的反应最为敏感，其后为大黄鱼和鲫鱼。
根据实验结果，认为鱼类对于不同的药物种类有着不同的反应，这可能是由于鱼类的身体环境和特定药物的机理而引起的。
另外，不
同种类的鱼也会有不同的反应情况，这可能是由于不同种类鱼的体型、体重等生理状况略有差异而引起的。
本次实验证实了鱼类对于药物的反应是不一致的，这为进一步研究鱼类药理学提供了有价值的情节和实证基础。
兽医药理学实验-05-精品文档
实验步骤
1. 实验装置的准备
（1）BL-420F生物机能实验系统
2. 麻醉
实验步骤
1.称重；2.Biblioteka 定3.麻醉实验步骤
3. 手术 （1）气管插管术
1.剪毛；
2.消毒
3.切开
实验步骤
3. 手术 （1）气管插管术
4.分离气管； 5.倒“T”切开 6.固定结扎
实验步骤
3. 手术 （2）动脉插管
1.分离血管； 2.“V”形切口 3.固定结扎
组别
药物
血压值（mmHg）
最高
最低
变化值
（收缩压） （舒张压） （压差）
①生理盐水
②盐酸肾上腺素
第一组 ③重酒石酸去甲肾上腺素
④盐酸麻黄碱
⑤盐酸异丙肾上腺素
比较以上拟肾上腺素药的血压曲线特点并分析其原理
实验步骤
实验步骤
5. 给药，观察血压变化
组别
药物
第二组 第三组
①氯化乙酰胆碱 ②甲基硫酸新斯的明 ③氯化乙酰胆碱 ①硝酸毛果芸香碱 ②硫酸阿托品 ③ 硝酸毛果芸香碱
【动物】家兔 【药品】 1.肾上腺素受体激动剂： 0.01％盐酸肾上腺素溶液； 0.01％重酒石酸去甲肾上腺素溶液； 0.5％盐酸麻黄碱溶液； 0.005％盐酸异丙肾上腺素溶液。
实验动物、药品、器械
【药品】 2. 拟胆碱药： 0.01％氯化乙酰胆碱溶液； 0.1％硝酸毛果芸香碱溶液。 3. 抗胆碱酯酶药 0.05％甲基硫酸新斯的明溶液
将压力信号 转化为电信 号，并通过 软件处理显 出成图像
实验原理
1.什么是血压？ 血压是指血管内血液施于单位面积血管壁的侧 压力，通常检测到的血压指动脉血压。
兽医药理学实验0928
0.4mL
6号 0.4mL 5 1/2号 0.5mL 6 1/2号 2mL 6 1/2号
2mL
6号 lmL 5 1/2号 4mL 7号 5mL 7号
4mL
5号 0.8mL 4号 5mL 5号 10mL 6号
小鼠
最大给药量 使用针头
豚鼠
最大给药量 使用针头
家兔
最大给药量 使用针头
二、小鼠的捉拿与保定
兽医药理学实验
指导老师：陈 品 戴梦红 华中农业大学动物医学院 2009.09
•实验课程学习要求
实验后
实验中
实验前
1.预习实验指导 ，明确实验目的 和要求，充分了 解实验方法； 2.进入实验室， 必须穿工作服； 3.检查实验器材
1.根据实验内容 进行小组内分工 2.严格、准确地 按照指导中的实 验方法进行实验 操作。 3.仔细、详实的 记录实验结果。
小鼠的给药方法
灌胃给药
1.用左手拇指和食指抓住鼠 两耳和头部皮肤，其他三指 抓住背部皮肤，将鼠抓持在 手掌内，固定好动物，头部 和颈部保持平直,右手取注 射器进行灌胃。 2.灌时针头沿鼠口角通过食 管进入胃内。灌时如很通畅， 则表示针头已进入胃内；如 动物有呕吐动作或强烈挣扎， 必须拔出后按上述方法重新 操作。决不可进针不顺硬向 里插。
例 1 ： 小 白 鼠 体 重 18g ， 腹 腔 注 射 盐 酸 吗 啡 10mg/kg，药浓度为0.1%，应注射多少容量（mL ）？ 例2：给兔静注苯巴比妥钠80mg/kg，注射体积 为1mL/kg，应配制苯巴比妥钠的浓度是多少？
六、小鼠的给药方法
肌内注射法 小鼠固定如上述,将注 射器针头刺入小鼠后肢外侧 肌肉,注入药物。 皮下注射法 注射部位可选背部皮下, 操作时轻轻拉起背部皮肤, 将注射针头刺入皮下,稍稍 摆动针头,若容易摆动则表 明针尖的位置确定在皮下, 此时注射药物。拔针时,轻 捏针刺部位片刻,以防药液 流出。
兽医药理学教学实践结题报告——纸片扩散法测定大肠杆菌对6种抗生素的敏感性
兽医药理学实践教学结题报告纸片扩散法测定大肠杆菌对6种抗生素的敏感性专业班级：指导老师：完成时间：实践地点：大肠杆菌对6种抗生素的敏感性检测（四川农业大学动物医学2009级1班）摘要：大肠杆菌病(Colibacillosis)是由致病性大肠杆菌引起的消化道传染病，流行广，发病率和死亡率较高。
这种病原菌主要经动物的消化道而感染。
能够引起多种畜禽发生急性、慢性或隐性感染。
药敏试验，是指对敏感性不能预测的分离菌株进行试验，测试抗菌药在体外对病原微生物有无抑制作用，以指导选择治疗药物和了解区域内常见病原菌耐药性变迁，有助于经验性治疗选药。
通过此试验可以帮助我们学习了解细菌对药物的敏感试验的常用方法，并根据这一原理,测定抗菌药物的质量,防伪劣假冒产品和过期失效药物。
以防盲目地滥用抗菌药物,造成药物的浪费,同时也贻误了治疗时机，会给养殖户造成了很大的经济损失。
关键词：大肠杆菌抗生素敏感性前言：致病性大肠杆菌是引起动物感染最常见的病原微生物，它可引起畜禽发生严重腹泻和败血症等，给养殖业造成了巨大的经济损失。
抗菌药物的应用在很大程度上控制了这类病原菌的发生。
但是随着药物的广泛使用，尤其不合理用药，耐药细菌迅速产生，多重耐药现象日趋严重，严重影响抗菌药物的有效使用，给新药的开发带来巨大压力，同时也带来了动物源食品的安全性问题，对人类的健康构成了潜在威胁[1,2]。
本次实验初步了解了各场大肠杆菌耐药性的发生和流行现状，为养殖场合理用药提供依据。
一、实验原理将含有定量抗菌药物的纸片贴在已接种测定菌的琼脂平板上，纸片中所含的药物吸取琼脂中的水分，溶解后便不断的向纸片周围区域扩散形成递减的梯度浓度。
在纸片周围抑菌浓度范围内测试菌的生长被抑制，从而形成透明的抑菌圈。
该抑菌圈表示药物对该种细菌的生长繁殖具有抑制作用。
通过测定抑菌圈的直径大小，可以判定药物的抑菌强弱，抑菌圈直径越大表示药物抑菌作用越强，抑菌圈直径越小表示药物抑菌作用弱，没有抑菌圈表示该药物没有抑菌作用。
(完整版)兽医药理学实验.doc
至少由2～3人进行。捆绑前实验者应先对其轻柔抚摸，避免使
其惊恐或激怒；用一条粗棉绳兜住上、下颌，在上颌处打一结
(勿太紧)，再绕回下颌打第二
个结，然后将绳引向头后部，在颈项上打第三个结且在其上打一活结（图
3.3-4）。切记住兜
绳时，要注意观察狗的动向，以防被其咬伤。如狗不能合作，须用长柄狗头钳夹持其颈部，
④心脏穿刺取血将家兔仰卧位固定，剪去心前区被毛，用碘酒消毒皮肤。术者用装有
7号针头的注射器，在胸骨左缘第三肋间或在心跳搏动最显著部位刺入心脏，刺入心脏后血
液一般可自动流入注射器，或者边刺入边抽吸，直至抽出血液。抽血后迅速拔出针头。
取血可获得较大量的血样。
心脏
[注]：如需要抗凝血样时，应事先在注射器或毛细管内加入适量抗凝剂，
腹腔时， 术者可有阻力突然减小的感觉， 再回抽针栓， 确定针头未刺入小肠、 膀胱或血管后，缓慢注入药液。
(4)静脉注射
静脉注射将药物直接注入血液，毋需经过吸收阶段，药物作用最快，是急、慢性动物实
验最常用的给药方法。静脉注射给药时，不同种类的动物由于其解剖结构的不同，应选择不
同的静脉血管。
①兔耳缘静脉注射
兔可固定在兔盒或兔台上（3.4-7）。在手术台上用兔头夹固定头部(图3.3-3A),把嘴套入
铁圈内， 调整铁圈至最适位置然后将兔头夹的铁柄固定在手术台上。或用一根较粗棉线绳一
端打个活结套住兔的两只上门齿，另一端栓在实验台前端的铁柱上。做颈部手术时,可将一
粗注射器筒垫于动物的项下,以抬高颈部,便于操作。兔的四肢固定和狗相同。
4.小鼠、大鼠
实验者右手捉住小鼠尾，鼠会本能地向前爬行。左手攥紧鼠颈背部皮
肤，使其腹部向上，拉直躯干，并以左手小指和掌部夹住其尾固定在左手上（图3.3-8）。可作腹腔麻醉。 亦可用金属筒、 有机玻璃筒或铁丝笼式固定器固定， 露出尾部， 作尾静脉注射。捉持大鼠的方法基本同小鼠。 大鼠在惊恐或激怒时会咬人， 捉拿时可戴防护手套， 或用厚布
兽医药理学实验
兽医药理学实验实验报告书写题目目的原理材料：实验动物、器材、药品方法：用自己的语言简单扼要描述出来结果：要求真实清楚讨论，将实验结果比较分析，实验中有哪些不足之处，结果异常或失败的原因结论：将实验结果归纳总结实验一：实验动物的捉拿及给药方法一、小白鼠的捉拿和给药方法1、捉拿法：以右手捉住小鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀爬处，轻轻向后拉鼠尾，趁其不备，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指靠在鼠背上，然后以无名指压住鼠尾，小指压住其左下肢，使小鼠完全固定。
2、给药方法：1）灌胃：以左手固定小鼠后，使其腹部朝上，颈部伸直，右手持配有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，再从舌面沿上颚壁轻轻进入食管，当推进2～3cm时，灌胃器的前端到达膈肌水平，此时可稍感有抵触。
一般在此位置推注药液即可。
灌胃量为每10g体重0.1～0.3ml 。
2）腹腔注射：将小鼠固定后，使其呈头低臀高位，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔，进针部位不宜太高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。
注射量一般为每10g 体重0.1～0.3ml 。
3）皮下注射：左手固定小鼠，右手持注射器，将针头刺入背部皮下注入药液。
注射量一般为每每10g体重0.05～0.2ml 。
4）肌肉注射：小鼠因肌肉较少，很少采取肌肉注射，若需要，则由两人合作，一人固定小鼠后，另一人持注射器，将针头刺入小鼠后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量每条腿不超过0.1ml。
5）尾静脉注射：将小鼠固定，使鼠尾露出。
用酒精棉球涂搽尾部，使血管扩张。
用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中选择一条扩张最明显的，右手持注射器（选用4号针头），将针头由尾端向心刺入血管，用左手拇指与食指固定针头和血管，推入药液。
注射量为每10g体重0.1～0.2ml二、家兔的捉拿和给药方法：1、捉持法：用左手抓住颈背部皮肤将家兔提起，右手托住其臀部，使家兔呈坐位姿势。
兽医药理学实验报告
实验名称：抗生素的药效学实验实验目的：1. 了解抗生素的药效学特点。
2. 掌握抗生素的药效学实验方法。
3. 分析抗生素在不同动物模型中的药效差异。
实验材料：1. 实验动物：小鼠、豚鼠、兔各10只，体重分别为20g、200g、2kg。
2. 药物：青霉素、链霉素、土霉素。
3. 实验仪器：电子天平、量筒、移液器、显微镜、培养皿、试管等。
实验方法：1. 实验动物分组：将实验动物随机分为四组，分别为青霉素组、链霉素组、土霉素组及对照组。
2. 药物配制：将青霉素、链霉素、土霉素分别配制成不同浓度的溶液。
3. 实验操作：a. 青霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射青霉素溶液，观察动物反应。
b. 链霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射链霉素溶液，观察动物反应。
c. 土霉素组：将小鼠、豚鼠、兔分别注射土霉素溶液，观察动物反应。
d. 对照组：不给予任何药物，仅观察动物反应。
4. 数据记录：记录每组动物的反应时间、反应程度等数据。
实验结果：1. 青霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射青霉素溶液后，动物出现短暂的颤抖、呼吸加快等症状，但很快恢复。
2. 链霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射链霉素溶液后，动物出现明显的颤抖、呼吸急促、昏迷等症状，部分动物死亡。
3. 土霉素组：小鼠、豚鼠、兔注射土霉素溶液后，动物出现轻微的颤抖、呼吸加快等症状，但很快恢复。
4. 对照组：动物无任何异常反应。
实验分析：1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效，动物反应轻微，恢复较快。
2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差，动物反应明显，部分动物死亡。
3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间，动物反应轻微，恢复较快。
实验结论：1. 青霉素对小鼠、豚鼠、兔具有较好的疗效，是治疗相应疾病的理想药物。
2. 链霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效较差，不建议用于治疗相应疾病。
3. 土霉素对小鼠、豚鼠、兔的疗效介于青霉素和链霉素之间，可根据实际情况选择使用。
实验注意事项：1. 实验过程中应严格遵守操作规程，确保实验数据的准确性。
《兽医药理学综合实验》教学课件：实验5 普鲁卡因与丁卡因的表面麻醉作用和毒性比较
五、实验结果
普鲁卡因与丁卡因的毒性比较
鼠号
体重 药物与 惊厥潜 惊厥性质 最后结果 剂量 伏期 和程度
甲
乙
丙
六、讨论
普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉效果有什么 不同，为什么？
常用的表面麻醉药物有哪些？使用时需要 注意什么问题？
讨论常用局部麻醉药的毒性及其防止中毒 的方法。
实验设计
丁卡因（或普鲁卡因）对兔的毒性作用
滴药时，应压住 鼻泪管，使药液
停留1分钟
四、实验方法
2、普鲁卡因和丁卡因的毒性比较
甲
腹腔注射
生理盐水
0.075ml/10g b.w.
乙
腹腔注射
1%盐酸普鲁卡因
0.075ml/10g b.w.
丙
腹腔注射
1%盐酸丁卡因
0.075ml/10g b.w.
五、实验结果
普鲁卡因和丁卡因的表面麻醉作用
眼 药物
用药
用药后的反应
前反 应 2ˊ 5ˊ 10ˊ 15ˊ 20ˊ 30ˊ 45ˊ 60ˊ
1% 左 普鲁卡
因
右角1．膜丁刺反1卡激%射因角测膜定时与，记宜录采方用法垂：直方向，每次用力相同。
2．“+”表示眨眼反射阳性，表明角膜未麻醉或不麻醉；“-”
表示眨眼反射阴性，表明角膜已麻醉。
3. 结果以阳性反应率（阳性反应点数/刺激点数）表示。
信息： 兔耳缘静脉注射1%丁卡因0.3-0.4ml/kg后会出
现惊厥 兔肌肉注射1%丁卡因2.5ml后会出现角弓反张
比较鲁卡因和丁卡因的毒性大小，以对药 物进行全面评价。
二、实验原理
局部麻醉药：
是一类能在用药局部可逆性的阻断感觉神经冲动发生与传递 的药品，简称“局麻药”。
兽医药理学实验报告
兽医药理学实验报告兽医药理学实验报告引言：兽医药理学是研究动物体内药物的吸收、分布、代谢和排泄等过程的学科。
本次实验旨在探究某种药物在动物体内的作用机理和药代动力学特性。
通过实验结果的分析和讨论，可以为兽医学领域的药物治疗提供科学依据。
实验材料与方法：1. 实验动物：选取健康的小鼠作为实验对象，保证其体重和年龄相近。
2. 药物制备：选择一种已经广泛应用于兽医临床的药物，按照一定比例配制成适合小鼠体内使用的浓度。
3. 实验组设置：将小鼠随机分为实验组和对照组，实验组注射药物，对照组注射生理盐水。
4. 采样与检测：在注射后的不同时间点，采集小鼠血液样本，利用高效液相色谱仪等设备检测药物在血液中的浓度。
实验结果：通过实验数据的统计和分析，我们得到了以下结果：1. 药物在小鼠体内的吸收速度较快，注射后短时间内即可检测到药物在血液中的存在。
2. 药物的分布范围广，不仅在血液中存在，还可以进入组织和器官，如肝脏、肺等。
3. 药物在体内的代谢速度较快，经过一段时间后，血液中的药物浓度逐渐降低。
4. 药物的排泄途径主要通过肾脏，以尿液的形式排出体外。
讨论与分析：1. 药物在小鼠体内的吸收速度较快，这说明该药物具有良好的肠道吸收能力。
这对于兽医临床应用来说非常重要，因为动物在接受治疗时，需要尽快吸收药物以达到治疗效果。
2. 药物的分布范围广，说明该药物具有较好的组织渗透性。
这对于治疗需要药物在特定组织或器官发挥作用的疾病非常重要，如肺部感染等。
3. 药物的代谢速度较快，说明该药物在体内代谢酶的作用下很快被分解。
这对于副作用较大的药物来说有一定的好处，可以减少不良反应的发生。
4. 药物的排泄途径主要通过肾脏，这提示该药物在体内的代谢产物主要以水溶性形式排出。
这对于肾功能正常的动物来说是一个好消息，因为药物代谢产物可以通过尿液迅速排除。
结论：本次实验结果表明，该药物在小鼠体内具有较好的药代动力学特性，包括良好的吸收、分布、代谢和排泄能力。
实验三 药品的配伍禁忌2
合理的，有些配伍使药物的治疗作用减弱，导致治
疗失败；有些配伍使副作用或毒性增强，引起严重
不良反应；还有些配伍使治疗作用过度增强，超出
了机体所能耐受的能力，也可引起不良反应，乃至
危害病人等。这些配伍均属配伍禁忌。
配伍禁忌种类
一、物理性配伍禁忌：
1．溶剂变化，使溶质析出，引起混浊和沉淀，如：
12.5%氯霉素注射液+5%葡萄糖注射液→析出氯霉素 结晶。
3.水解：某些药物的溶液酸或遇碱，即可产生水解 失效，如： 洋地黄制剂+酸→水解 4.变色：某些药物混合可以变色，往往不能再用， 如： 碘酊+淀粉→紫色 水杨酸钠+三氯化铁→蓝色 5.燃烧和爆炸：强氧化剂与还原剂相遇，常可发生 燃烧，甚至爆炸，如： 取甘汞粉少许，臵于小的瓷皿中，加入KI液一滴， 用玻璃搅拌，结果如何？
兽医药理学试验实验三药物的配伍禁忌目的?了解两种以上药物配合在一起时可能产生配伍禁忌从而在处方中应当避免或者应用时不应混合
兽医药理学试验
实验三
药物的配伍禁忌
目的
•了解两种以上药物配合在一 起时，可能产生配伍禁忌，从
而在处方中应当避免或者应用
时不应混合。
配伍禁忌
当应用一种药物疗效不佳时，就需要选择其他的 药物进行合理的配伍。但是并不是所有的配伍都是
② 甲鼠肌内注射硫酸链霉素3.0mg/10g。
③ 乙鼠腹腔注射5mg/mL硫喷妥钠注射液0.1mL/10g。
④ 丙鼠在肌注硫酸链霉素3.0mg/10g后，再腹腔注
射5mg/mL的硫喷妥钠注射0.1mL/10g。
观察三鼠的应用有何不同。
记录
编号
甲 乙 丙
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斗下，让其尾部露出。用酒精或二甲苯涂擦尾部，或将鼠尾在 50'C热水中浸泡半分钟使血管扩张。左手拉尾端，右手持注射器 将针头刺入尾静脉，推入药液。
h
13
• 动物的给药方法
•家兔
• 灌胃：需两人合作进行。一人取坐位用两腿夹持兔身，左手握
家兔双耳，右手抓住两前肢。另一人将木制开口器横插家兔口内， 压住舌头并固定之。取8号导尿管从开口器中部小孔插入食道。插 管时如误入气管会出现动物的挣扎和呼吸困难。也可将导尿管的 外端浸入水中，如有气泡吹出，表示插在气管内，此时应拔管重 插。当判明导尿管在食道以内后，用注射器接通导尿管将药液推 入。
h
5
• 实验设计基本原则
• 随机原则
• 使每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照 组中，除处理因素外其他因素尽可能均衡一致，从 而抵消非实验因素的影响。
• 对照原则
• 组间对照：阴性对照，阳性对照，同因素不同水平 对照；
• 自身前后对照
• 重复原则
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6
• 实验动物 •动物的选择
• 小白鼠：适用于需大量动物的实验，如某些 药物的筛选，半数致死量的测定。也较适用于 避孕药实验、抗炎镇痛药实验、中枢神经系统 药实验、抗肿瘤药及抗衰老药实验等。 • 大白鼠：比较适用于抗炎药物实验，血压测 定、利胆、利尿药实验，也可用于进行亚急性 和慢性毒性实验。
实事求是地做好记录；
• 注意节约实验药品；
• 维持良好的课堂纪律。
• 实验后
•各组同学将实验动物处死，实验台擦干净，将实验方盘
送回准备室；
•值日生搞好实验室卫生，将死亡动物送至指定场所；
•书写实验报告。
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4
• 实验报告的书写
• 题目 • 目的 • 原理 • 材料：实验动物，器材，药品 • 方法：用自己的语言简单扼要描述出来； • 结果：要求真实、清楚； • 讨论：将实验结果进行比较、分析；实验中有哪些不足 之处；结果异常或失败的原因； • 结论：将实验结果进行归纳总结，应带有提示性质。
实验八 链霉素急性毒性反应及解救
实验九 有机磷酸酯类中毒及解救
h
2
实验一 药理实验基础知识
• 目的
• 掌握基本操作，锻炼动手、动脑能力； • 更好地掌握药理学基本理论知识； • 培养科学思维
h
3
• 基本要求
• 实验前：预习实验内容并复习相关理论知识；
• 实验时
• 实验器材要妥善保管；
• 实验操作按步骤进行，仔细观察实验中出现的现象，
动物医学、制药专业
兽医药理学实验
山东农业大学动物科技学院 主讲：刘远飞
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1
本课程实验内容
实验一 药理实验基础知识
实验二 不同给药途径对药物效应的影响
实验三 药物的协同作用和拮抗作用
实验四 动物机能状态对药物作用的影响
实验五 利多卡因和普鲁卡因的表面麻醉作用观察
实验六 药物敏感性实验
实验七 磺胺类药物内服给药后的血中药物浓度测定
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7
• 实验动物
•动物的选择
• 豚鼠：因其对组胺敏感，并易于致敏，故常被选用于 抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验。也常用于离体心 脏、心房、肠管实验。又因它对结核敏感，常用于抗结 核病药的实验。 • 家兔：常用于观察研究脑电生理作用，药物对小肠的 作用。由于家兔体温变化敏感，也常用于体温实验，用 于热原检查。 • 狗：狗是记录血压，呼吸最常用的大动物。还可利用 狗做成胃瘘、肠瘘，以观察药物对胃肠蠕动和分泌的影 响。在进行慢性毒性实验时，也常采用狗。
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15
实验二 不同给药途径对药物效应的影响
• 实验目的
•观察不同给药途径对药物效应的影响。
• 实验材料
• l.0ml注射器、针头、小鼠灌胃针头、烧杯、普 通天平、3.5％硫酸镁溶液
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16
• 观察指标
• 动物活动增加情况、呼吸急促、反射亢进、震颤、惊厥 及死亡时间、炭末推进率等。
• 实验方法
• 取禁食12h的昆明种小鼠3只，称重，分别标为对照组、 灌胃组和腹腔注射组按以下给药：
上，颈部伸直。右手持配有灌胃针头的注射器，自口角 插入口腔，再从舌面沿上腭进入食道。小鼠灌胃容量一 般为0.1-0.3m1／10g。
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11
• 动物的给药方法
•小白鼠
• 腹腔注射(i.p.)：以左手固定小鼠，方法同灌胃，右手持注
射器，取30度角将针头从下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜 过高，刺入不宜太深，以免伤及内脏。小鼠腹腔注射量一般为 0.1-0.3ml／l0g。
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8
• 动物捉拿及固定方法
•小白鼠
右手提起鼠尾, 左手拇指和食指捏住双耳及头部皮肤，无名 指、小指和掌心夹其背部皮肤及尾部,便可将小鼠完全固定。如 图1。
单手捉持，用拇指和食指抓住小鼠尾巴，用小指、无名指和 手掌压住尾根部，再用腾出的拇指、食指及中指抓住鼠双耳及头 部皮肤而固定。如图2。
图1
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图2
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14
• 动物的给药方法
•家兔
• 皮下、肌肉、腹腔注射：给药方法基本上同小鼠，唯针头可
稍大，给药量可稍多。皮下与肌内为0.5-1.0/mg，腹腔为1.05.0ml/mg
• 静脉注射：将家兔置固定箱内，拨去耳壳外缘的毛，选择一条
比较明显的耳缘静脉（兔耳外缘的血管为静脉，中央的血管为动 脉，如图） ，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。用左手拇指和 中指捏住兔的耳尖部，食指垫在兔耳注射处的下面，右手持注射 器，将针头从近耳尖处刺入，当确认针头在血管中后，将药液推 入。
×
√
• 肌肉注射（i.m.）：小鼠因肌肉较少，很少采用肌肉注射，
若有需要可注射于股部肌肉，多选后腿上部外侧，一处注射量不 超过0.1mL 。
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12
• 动物的给药方法
•小白鼠
• 皮下注射(s.c.)：用左手固定小鼠后，右手持注射器于拇指
和食指捏起的皮肤处进针即可。
• 静脉注射(i.v.)：将小鼠置于特制的固定筒内或倒置的大漏
9
• 动物捉拿及固定方法
•豚鼠
豚鼠性情温和不咬人，用手握住躯干即可。
• 家兔
可用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托 其臀部，使兔呈坐位姿势。在进行仰位手术操作时，可用 绳带将其四肢仰位捆绑在兔手术台上。头部用兔头固定夹 固定。
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10
• 动物的给药方法
•小白鼠 •灌胃法（i.g.）：以左手固定小鼠后，使其腹部朝